CN108424441B - 一种核糖核酸酶抑制剂包涵体的复性方法 - Google Patents

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Abstract

本发明涉及一种核糖核酸酶抑制剂(RI)包涵体的复性方法。本发明的方法在复性过程中应用了RNase A,使RI的复性得率大大提高,而RNase A很容易在后续的纯化过程中,经由一定浓度无机盐在偏酸性的条件下除去,而RI则可以藉由适当的纯化标签而结合于纯化柱上,从而很方便地进行纯化,得到高纯度的RI。

Description

一种核糖核酸酶抑制剂包涵体的复性方法
技术领域
本发明属于化学及生物工程领域;更具体地,本发明涉及一种核糖核酸酶抑制剂包涵体的复性方法。
背景技术
核糖核酸酶抑制因子(Ribonuclease Inhibitor,RI)是哺乳动物细胞浆中的一种酸性蛋白质,分子量50kD。它能够以1:1的比例结合并抑制胰腺核糖核酸酶超家族中的RNase A和血管形成因子(Angiogenin,Ang)。RI与Ang的结合引起人们的关注是因为Ang具有促进新生血管内皮生长的活性,而新生血管形成是实体肿瘤组织生长所必需的。将RI注射到小鼠的移植肿瘤组织内,导致实体肿瘤组织大面积坏死及新生血管明显减少。根据RI一级结构的一个重要特点,32个半胱氨酸残基全部为还原状态,认为RI具有抗氧化的作用。这一作用在细胞水平得到证实:能够过表达RI的C6细胞抗过氧化氢损伤的能力明显增强。因此,通过基因工程的方法生产具有生物活性的RI无疑具有重要作用。
RI是一种多功能的体内重要的调节分子,是核糖核酸酶A(RNase A)的抑制剂,它与RNase A紧密结合,形成马蹄形的立体结构,从而导致核糖核酸酶的活性受到抑制。它参与基因的表达与调控,是具有重要功能的一种蛋白质。在RI的结构中,有11对二硫键和8个游离的巯基。巯基是RI的活性必需基团,巯基的氧化会导致RI的失活。作为RNase A的抑制剂,RI在体外实验中可以保护mRNA及rRNA免受RNase的降解,导致蛋白质合成旺盛。在生长旺盛的组织如再生肝和妊娠鼠肝中皆可检测到RI活力增强。在衰老过程中,人体RI活力下降,RNase A活力上升,RNA降解加快,蛋白合成速度下降。即当内外环境改变时,易使含有30个-SH的RI的活性下降甚至失活,导致体内主要以RNase A-RI,复合物形式而存在的RNaseA呈游离状态,加速RNA(特别是mRNA,及rRNA)降解,进而影响蛋白质的合成速率,引起组织萎缩、功能下降。RI及RNase A的活性与机体的状态及年龄有关,故可作为研究衰老的指标之一。总之,RI通过对RNA和蛋白质的调节作用而对组织细胞的功能状态起调节作用。
核糖核酸酶抑制剂(RI)的制备方法主要是直接从人体胎盘提取、大肠杆菌重组可溶性表达、包涵体复性这三种方法获得。
直接从人体胎盘提取核糖核酸酶抑制剂(RI)的方法是由美国Promega公司最早发现并建立的,但是采用该方法所使用的原料人体胎盘近来受到国家的管控,而且人体胎盘也会存在母体病毒污染的风险,提取收率偏低,再加上存放的时间、温度都会对核糖核酸酶抑制剂(RI)产生不确定的影响,无法实现大规模的生产。
因此,当前多采用基因工程的方法,使用大肠杆菌系统进行制备。大肠杆菌表达系统具有技术成熟、目的蛋白表达量高、操作简单等特点。通过克隆人体胎盘的核糖核酸酶抑制剂的基因序列,构建表达载体,在大肠杆菌中进行表达,成为一种全新获得核糖核酸酶抑制剂(RI)的方式。但是核糖核酸酶抑制剂(RI)序列中含有11对二硫键和8个游离的巯基,在进行大肠杆菌诱导表达过程中蛋白结构易于错误折叠,表达产物主要以包涵体的形式存在。
中国专利申请CN102234649A报道可以进行RI的可溶性表达,但是需要在RI序列5’-端加入TrxA硫氧还蛋白融合标签,纯化过程中采用TEV酶切的方式再将标签去除,该方法存在着TrxA标签切除不彻底、TEV酶残留污染等问题。
中国专利申请CN1584031A报道人来源的核糖核酸酶抑制剂(RI)可以经原核系统(大肠杆菌)、真核系统(酵母)进行表达,然后菌体破碎、亲和层析纯化,但并未公开提及其表达的可溶性程度。
美国专利申请US005552302A报道人来源的核糖核酸酶抑制剂(RI)经原核表达后,可溶性(而且有活性)部分只占总表达量的0.1%。这也说明实际上RI在进行原核系统进行表达后,主要还是以包涵体形式存在。
美国专利申请US28215194A报道人来源的核糖核酸酶抑制剂(RI)经原核表达后,主要形成包涵体,然后对包涵体进行变性、溶解、柱纯化等得到高纯度的RI。但是采用该种复性方法,复性得率不高(20g菌体只能得到300万单位的RI)。
由此可知,现有技术中,核糖核酸酶抑制剂(RI)主要还是通过包涵体复性的方法来进行制备。李春宇等比较了稀释复性、凝胶柱复性、透析复性等不同的复性方法,结果显示,稀释复性得率为12.3%、凝胶柱复性得率为10.7%、透析复性得率为1%。
由此结果可以推测,稀释复性效果最好,但是复性得率仍然较低,大部分的包涵体未能被有效利用。因此,复性得率低是当前核糖核酸酶抑制剂(RI)大规模生产工艺中面临的瓶颈问题。
综合以上因素,本领域迫切需要进一步开发高效低成本生产核糖核酸酶抑制剂(RI)的新方法。
发明内容
本发明的目的在于提供一种核糖核酸酶抑制剂(RI)包涵体的复性方法。
在本发明的第一方面,提供一种核糖核酸酶抑制剂包涵体的复性方法,所述方法包括:
(1)对核糖核酸酶抑制剂包涵体进行变性、溶解;
(2)对(1)的变性产物进行复性;其中,在复性液中添加核酸酶RNase A;和
(3)对(2)的复性产物进行柱纯化,获得可溶性核糖核酸酶抑制剂。
在一个优选例中,步骤(1)之前,还包括以下步骤:
重组表达核糖核酸酶抑制剂,获得含有包涵体的表达宿主;
对表达宿主进行破碎,分离出包涵体。
在另一优选例中,表达宿主破碎、裂解后,进行离心获取沉淀,洗涤;
较佳地,利用裂解缓冲液裂解,所述的裂解缓冲液包含:Tris-HCl、无机盐、甘油;
较佳地,利用洗涤缓冲液洗涤,所述洗涤缓冲液包含:Tris-HCl、无机盐、表面活性剂。
在另一优选例中,所述的无机盐包括解离为阳离子或阴离子的无机盐;较佳地,所述的阳离子选自:钾离子或钠离子;较佳地,所述的阴离子是EDTA离子或氯离子。
在另一优选例中,所述的表面活性剂包括离子型、非离子型表面活性剂两种;较佳地,所述的离子型表面活性剂选自:脱氧胆酸钠;较佳地,所述的非离子型表面活性剂是曲拉通(Triton X-100)。
在另一优选例中,所述的Tris-HCl的终浓度为35±15mM,PH为7.5±0.5;所述的EDTA的终浓度是1±0.5mM;或所述的表面活性剂的终浓度是1±0.5mM。
在另一优选例中,步骤(1)中,利用变性液对包涵体进行变性、溶解,其包含:选自尿素、十二烷基肌氨酸钠或SDS的变性剂。
在另一优选例中,所述的变性剂是尿素,其终浓度是6±2M;
所述的变性剂是十二烷基肌氨酸钠,其终浓度是1±0.5%(w/v);
所述的变性剂是SDS,其终浓度是2±1%(w/v);
在另一优选例中,步骤(2)中,所述的复性液包含:Tris-HCl、无机盐、还原剂等。
在另一优选例中,所述的核酸酶RNase A在复性液中的终浓度为15±12mM;较佳地为15±10mM;
所述的Tris-HCl的终浓度为35±15mM,PH为7.5±0.5;
所述的还原剂为DTT,其终浓度是1±1mM;较佳地,其终浓度为1±0.5mM。
在另一优选例中,步骤(2)中,对(1)的变性产物进行复性时,将(1)的变性产物与复性液按照1:(10±5)的体积比例混合;较佳地,复性时间是20±10hr,复性温度是4±1℃。
在另一优选例中,步骤(3)中,将(2)的复性产物上样至纯化柱,利用洗涤缓冲液洗去与核糖核酸酶抑制剂结合的核酸酶RNase A;然后,利用梯度洗脱缓冲液进行梯度洗脱,得到纯化的可溶性核糖核酸酶抑制剂。
在另一优选例中,所述的洗涤缓冲液包含(但不限于):NaAC/HAC、无机盐、还原剂;较佳地,所述的NaAC/HAC的终浓度为35±15mM,PH为5.0±0.5;较佳地,所述的无机盐的终浓度是300±15mM;较佳地,所述的还原剂的终浓度是1±0.5mM;
所述的梯度洗脱液包含Tris-HCl、无机盐、甘油、还原剂等,较佳地,所述的Tris-HCl终浓度为35±15mM,PH为7.5±0.5;较佳地,所述的无机盐的终浓度是50±15mM;较佳地,所述的还原剂的终浓度是1±0.5mM;
所述的梯度洗脱液中包含咪唑,其浓度范围是10mM~550mM。
在另一优选例中,所述的核糖核酸酶抑制剂连接有标签序列,所述的纯化柱是能够识别该标签序列的柱;较佳地,所述的标签是His-tag,所述的纯化柱是Ni柱。
本发明的其它方面由于本文的公开内容,对本领域的技术人员而言是显而易见的。
附图说明
图1为使用本发明的方法纯化后的RI包涵体的SDS-PAGE检测。
图2为复性后的核糖核酸酶抑制剂RI用Ni柱纯化的SDS-PAGE图谱。
具体实施方式
本发明经过深入的研究,揭示了一种新的核糖核酸酶抑制剂(RI)包涵体的复性方法,包括获得包涵体,对包涵体变性、溶解,用复性缓冲液进行稀释复性,复性液进行柱纯化,得到核糖核酸酶抑制剂。本发明人在复性过程中应用了RNase A,使RI的复性得率大大提高,而RNase A很容易在后续的纯化过程中,经由一定浓度无机盐(如300mM左右)在偏酸性(如PH5.0附近)的条件下洗掉,而RI则可以藉由适当的纯化标签而结合于纯化柱上,从而很方便地进行纯化,得到高纯度的RI。本发明的方法操作简便、经济、复性收率高,为核糖核酸酶抑制剂的大规模工业化生产提供了基础。
本发明涉及一种核糖核酸酶抑制剂包涵体的复性方法,所述方法包括以下步骤:(1)对核糖核酸酶抑制剂包涵体进行变性、溶解;(2)对(1)的变性产物进行复性;其中,在复性液中添加核酸酶RNase A;(3)对(2)的复性产物进行柱纯化,获得可溶性核糖核酸酶抑制剂。
一般而言,步骤(1)之前,还包括以下步骤:重组表达核糖核酸酶抑制剂,获得含有包涵体的表达宿主;对表达宿主进行破碎、洗涤,分离出包涵体。
适用于本发明的重组表达的宿主是原核细胞,或称为原核宿主。常用的原核宿主包括大肠杆菌、枯草杆菌等。在进行重组表达时,需要将RI的编码基因插入到适合的重组载体中,所述的表达载体可包含一个或多个编码RI的基因序列,还可包含与所述核酸分子的序列操作性相连的表达调控序列,以便于蛋白的表达。
作为本发明的优选方式,将表达宿主用裂解缓冲液高速分散,离心沉淀用洗涤缓冲液洗涤,再用裂解缓冲液高速分散,去除包涵体表面残留的去污剂,得到纯化后的包涵体。
作为本发明的优选方式,表达宿主破碎、裂解后,进行离心获取沉淀(以包涵体为主要成分),洗涤,去除包涵体表面附着的膜蛋白等,获得较纯的核糖核酸酶抑制剂的包涵体。
利用裂解缓冲液裂解时,所述的裂解缓冲液包含:Tris-HCl、无机盐、甘油。较佳地,所述的无机盐选自:EDTA、钠离子、氯离子或钾离子;更佳地,所述的无机盐由EDTA、氯化钠产生;更佳地,EDTA的终浓度为1±0.5mM,氯化钠的终浓度为50±10mM,甘油的终浓度为10±5%;所述的Tris-HCl的终浓度为35±15mM,PH为7.5±0.5。
利用洗涤缓冲液洗涤时,所述洗涤缓冲液包含:Tris-HCl、无机盐、表面活性剂。较佳地,所述的无机盐选自:EDTA、钠离子、氯离子或钾离子;较佳地,所述的去污剂选自:曲拉通、SDS、脱氧胆酸钠等。更佳地,所述的无机盐由EDTA、氯化钠产生;更佳地,EDTA的终浓度为1±0.5mM,氯化钠的终浓度为50±10mM,甘油的终浓度为10±5%。更佳地,所述的去污剂由曲拉通、脱氧胆酸钠产生;更佳地,所述的去污剂曲拉通的终浓度为2±0.5%;脱氧胆酸钠的终浓度为1±0.5%;所述的Tris-HCl的终浓度为35±15mM,PH为7.5±0.5。
作为本发明的优选方式,对核糖核酸酶抑制剂包涵体进行变性、溶解的方法包括以下步骤:将纯化后的包涵体,用重悬缓冲液重悬;将包涵体重悬液快速加入包涵体变性液中,搅拌。
所述的重悬缓冲液包括Tris-HCl、无机盐、还原剂等。较佳地,所述的无机盐选自:EDTA、氯离子、钠离子;较佳地,所述的无机盐由EDTA、氯化钠产生;较佳地,EDTA的终浓度为1±0.5mM,氯化钠的终浓度为50±10mM;较佳地,所述的还原剂是DTT;更佳地,所述的还原剂DTT的终浓度为1±0.5mM;所述的Tris-HCl的终浓度为35±15mM,PH为7.5±0.5。
所述的包涵体变性液包括Tris-HCl、无机盐、还原剂、变性剂等。较佳地,所述的无机盐选自:EDTA、氯离子、钠离子;较佳地,所述的无机盐由EDTA、氯化钠产生;较佳地,EDTA的终浓度为1±0.5mM,氯化钠的终浓度为50±10mM;较佳地,所述的还原剂是DTT,变性剂是尿素、SDS或十二烷基肌氨酸钠;较佳地,所述的变性剂尿素的终浓度是6±2M,十二烷基肌氨酸钠的终浓度是1±0.5%(w/v),SDS的终浓度是2±1%(w/v);更佳地,所述的还原剂DTT的终浓度为1±0.5mM,变性剂尿素的终浓度是6±2M;所述的Tris-HCl的终浓度为35±15mM,PH为7.5±0.5。
作为本发明的优选方式,对变性产物进行复性包括以下步骤:1)将包涵体变性液,加入复性缓冲液中,快速搅拌;2)将步骤1)得到的复性液,置于约4℃冰柜,缓慢搅拌复性。优选地,所述的快速搅拌包括用内置搅拌器搅起漩涡,使溶液快速混合;较佳地搅拌时间是20±10min;较佳地为20±5min。
所述的复性缓冲液包括Tris-HCl、无机盐、还原剂、甘油、核酸酶RNase A等。较佳地,所述的无机盐选自:EDTA、氯离子、钠离子;较佳地,所述的无机盐由EDTA、氯化钠产生;较佳地,EDTA的终浓度为1±0.5mM,氯化钠的终浓度为50±10mM;较佳地,所述的还原剂是DTT;更佳地,所述的还原剂DTT的终浓度为1±0.5mM,所述的Tris-HCl的终浓度为35±15mM,PH为7.5±0.5,所述的甘油的终浓度为5±1%;
所述的核酸酶RNase A的终浓度是15±12mM;较佳地,所述的核酸酶RNase A在复性液中的终浓度为15±10mM;较佳地为15±8mM,如范围在5~25;7~23;10~20;12~18mM等。
作为本发明的优选方式,所述的将包涵体变性液加入复性缓冲液中,是包涵体变性液按照1:(10±5)的体积比例与复性液混合;较佳地,按照1:(10±4)的体积比例进行混合;更佳地,较佳地,按照1:(10±2)的体积比例进行混合。
作为本发明的优选方式,复性的时间是20±10hr;较佳地,复性时间是20±5hr。所述的复性温度是4±1℃。
作为本发明的优选方式,所述的核糖核酸酶抑制剂RI连接有标签序列,所述的纯化柱是能够识别该标签序列的柱。为了进行蛋白纯化,可以设计合适的标签,较佳地,所述的标签是His-tag(包含6~10个His;较佳地为6×His),所述的纯化柱是Ni柱。其它多种合适的标签也可以用于本发明。例如,所述的标签可以是FLAG,HA,c-Myc,AU1,EE,T7,4A6,ε,B,gE以及Ty1(见表1)。
表1
表位 SEQ ID NO: 相应抗体
6-His HHHHHH 1 BAbCO<sup>*</sup>
FLAG DYKDDDK 2 4E11
HA YPYDVPDYA 3 12Ca5
c-Myc EQKLISEEDL 4 9E10
AU1 DTYRYI 5 BAbCO
EE EYMPME 6 anti-EE
4A6 SFPQFKPQEI 7 4A6
ε KGFSYFGEDLMP 8 anti-PKC
B QYPALT 9 D11,F10
gE QRQYGDVFKGD 10 3B3
Ty1 EVHTNQDPLD 11 BB2,TYG5
作为本发明的优选方式,所述的包涵体复性液的柱纯化方法包括以下步骤:1)将复性液进行稀释,上样至Ni离子交换柱;2)上样结束,先利用洗涤缓冲液进行洗涤,去除与和糖核酸酶抑制剂结合的RNase A;3)洗涤结束,用梯度洗脱缓冲液将RI进行梯度洗脱,得到高纯度的活性RI。
所述的洗涤缓冲液包括NaAC/HAC、无机盐、还原剂、甘油等。较佳地,所述的无机盐选自:EDTA、氯离子、钠离子;较佳地,所述的无机盐由EDTA、氯化钠产生;较佳地,EDTA的终浓度为1±0.5mM,氯化钠的终浓度为300±15mM;较佳地,所述的还原剂是DTT;更佳地,所述的还原剂DTT的终浓度为1±0.5mM,所述的NaAC/HAC的终浓度为35±15mM,PH为5.0±0.5,所述的甘油的终浓度为5±1%;
所述的梯度洗脱液包括Tris-HCl、无机盐、还原剂、甘油、咪唑等。较佳地,所述的无机盐选自:EDTA、氯离子、钠离子;较佳地,所述的无机盐由EDTA、氯化钠产生;较佳地,EDTA的终浓度为1±0.5mM,氯化钠的终浓度为50±15mM;较佳地,所述的还原剂是DTT;更佳地,所述的还原剂DTT的终浓度为1±0.5mM,所述的Tris-HCl的终浓度为35±15mM,PH为7.5±0.5,所述的甘油的终浓度为5±1%;所述的咪唑的浓度范围是10mM~550mM。
与现有技术相比,本发明的核糖核酸酶抑制剂包涵体的复性方法具有下列优点:
(1)本发明提供的方法,在复性过程中加入核糖核酸酶抑制剂RI的特异性配体RNase A,有助于RI在复性过程中的正确折叠,可大大提高RI的复性得率。
(2)本发明提供的方法中复性液中的RNase A很容易经无机盐在偏酸性(PH5.0附近)的条件下洗掉,而RI可设计为结合于亲和柱上,从而很方便地进行柱纯化,得到高纯度的RI。
(3)本发明提供的方法的复性时间远少于传统的稀释复性、透析复性等,节省了时间。
下面结合具体实施例,进一步阐述本发明。应理解,这些实施例仅用于说明本发明而不用于限制本发明的范围。下列实施例中未注明具体条件的实验方法,通常按照常规条件如J.萨姆布鲁克等编著,分子克隆实验指南,第三版,科学出版社,2002中所述的条件,或按照制造厂商所建议的条件。
实施例1、RI包涵体的纯化
(1)核糖核酸酶抑制剂RI载体的构建
从分离自人体的废弃的胎盘组织中抽提总RNA,然后进行RT-PCR扩增RI基因序列(在N端加入6×His-tag),经酶切回收、连接pET28b载体,转化DH5a感受态细胞,挑单克隆培养后抽提质粒(pET28b-6*His-RI)转化表达宿主菌。
(2)菌体制备
将构建的BL21DE3表达菌株,接种到含有100ml LB培养基(Kana+),37℃,230rpm,16hr。将种子液按照1%的接种量转接2×YT培养基,进行发酵培养,当菌液OD600达到0.9时,加入诱导剂IPTG至终浓度0.2mM,诱导4.5小时,诱导结束后离心收集菌体,-20℃暂存。
(3)包涵体的纯化
取10g菌体,按1g/10ml的比例与裂解缓冲液混合,高速分散,冰浴超声(输出功率400~500W,间隔5S,2次),离心(7500rpm,30min)沉淀,用洗涤缓冲液重悬并高速分散混匀,再次冰浴超声(输出功率400~500W,间隔5S,2次),离心(7500rpm,30min)沉淀。
重复洗涤一次,然后再用裂解缓冲液重悬混匀,离心(7500rpm,30min)。
重复洗涤一次,得到纯化后的包涵体(3g)。
纯化后的RI包涵体的SDS-PAGE检测如图1。可见,经纯化后,能洗掉大部分结合在表面的膜蛋白等杂质。
裂解缓冲液配方:EDTA 1mM,氯化钠50mM,甘油10%(v/v),Tris-HCl35mM,PH为7.5。
洗涤缓冲液配方:曲拉通2%,脱氧胆酸钠1%,EDTA 1mM,氯化钠50mM,甘油10%(v/v),Tris-HCl 35mM,PH为7.5。
实施例2、RI包涵体的复性
(1)包涵体的变性、溶解
取1g纯化后的包涵体,加入10ml重悬缓冲液中,快速搅拌1hr,然后将上述重悬液加入4℃保存的10ml包涵体变性液中,快速搅拌30min,此时包涵体全部溶解,为透明状。
重悬缓冲液配方:DTT 1mM,EDTA 1mM,氯化钠50mM,甘油10%(v/v),Tris-HCl15mM,PH为7.5。
包涵体变性液配方:DTT 1mM,变性剂尿素6M,Tris-HCl 35mM,EDTA 1mM,氯化钠50mM,甘油10%(v/v),PH为7.5。
(2)包涵体的复性
将上述变性液快速倒入4℃保存的100ml复性液中,快速搅拌混匀,然后低速搅拌20hr,得到经处理的复性液。
按照cCMP的测活方法,1g包涵体经复性后,得到了426万单位的RI。
复性液配方:DTT 1mM,EDTA 1mM,氯化钠50mM,甘油10%(v/v),Tris-HCl 35mM,PH为7.5,甘油5%(v/v),RNase A 15mM。上述复性液配方中添加:核酸酶RNase A 15mM。
实施例3、RI复性液的柱纯化(4℃层析)
(1)上样
将前述获得的经处理的复性液稀释至蛋白浓度为0.5~1mg/ml,并调节PH=8.0,上样至Ni-sepharose FF(10ml,GE公司),流速=2ml/min。
(2)洗杂去除RNase A
上样结束,先用柱平衡缓冲液洗2倍柱体积,换用洗涤缓冲液洗柱,流速=2ml/min,同时进行SDS-PAGE电泳,检测洗涤液的杂带情况,当洗涤液中无RNase A条带时,结束洗涤。
柱平衡缓冲液配方:DTT 1mM,EDTA 1mM,氯化钠50mM,甘油10%(v/v),Tris-HCl35mM,PH为7.5。
洗涤缓冲液配方:DTT 1mM,EDTA 1mM,氯化钠300mM,NaAC/HAC 35mM,PH为5.0,甘油5%(v/v)。
(3)RI的梯度洗脱
用梯度洗脱缓冲液,对Ni-sepharose FF进行0~100%的线性梯度洗脱,跑SDS-PAGE得到高纯度的RI,收集合并RI条带部分,对应RI存储缓冲液进行透析,3次。
按照cCMP的测活方法,1g包涵体得到了368万单位的RI。
复性后的核糖核酸酶抑制剂RI用Ni柱纯化的SDS-PAGE图谱如图2。其中,wash处为用洗涤缓冲液洗涤的RNase A条带,说明RNase A在洗涤过程中被洗掉;E1~E8为Ni柱梯度洗脱液的分步收集,其中无RNase A杂带,只有RI条带。
梯度洗脱缓冲液配方:DTT 1mM,EDTA 1mM,氯化钠50mM,甘油10%(v/v),Tris-HCl35mM,PH为7.5,咪唑500mM。
实施例4、RI包涵体的放大复性及纯化(纯化阶段需4℃层析)
(1)包涵体的变性、溶解
取20g纯化后的包涵体,加入200ml重悬缓冲液(配方同前)中,快速搅拌1.5hr,然后将上述重悬液加入4℃保存的300ml包涵体变性液(配方同前)中,快速搅拌30min,此时包涵体全部溶解,为透明状。
(2)包涵体的复性
将上述变性液快速倒入4℃保存的3500ml复性液(基础配方同前,其中添加:核酸酶RNase A 20mM)中,快速搅拌混匀,然后低速搅拌20hr,得到复性液。
按照cCMP的测活方法,20g包涵体经复性后,复性液中具有得到了9850万单位的RI。
(3)RI复性液柱纯化
将复性液稀释至蛋白浓度在0.5-1mg/ml,并调节PH=8.0,上样至Ni-sepharoseFF(300ml,GE公司),流速=10ml/min。
上样结束,先用柱平衡缓冲液(配方同前)洗2.5倍柱体积,换用洗涤缓冲液(配方同前)洗柱,流速=5ml/min,同时跑SDS-PAGE电泳检测洗涤液的杂带情况,当洗涤液中无RNase A条带时,结束洗涤。
用梯度洗脱缓冲液(配方同前),对Ni-sepharose FF进行0~100%的线性梯度洗脱,跑SDS-PAGE得到高纯度的RI,收集合并RI条带部分,对应RI存储缓冲液进行透析,4次。
按照cCMP的测活方法,20g包涵体得到了8372万单位的RI。
以上所述仅为本发明的较佳实施例而已,并非用以限定本发明的实质技术内容范围,本发明的实质技术内容是广义地定义于申请的权利要求范围中,任何他人完成的技术实体或方法,若是与申请的权利要求范围所定义的完全相同,也或是一种等效的变更,均将被视为涵盖于该权利要求范围。
序列表
<110> 上海兆维科技发展有限公司
<120> 179459
<160> 11
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 2
<211> 6
<212> PRT
<213> 多肽(polypeptide)
<400> 2
His His His His His His
1 5
<210> 2
<211> 7
<212> PRT
<213> 多肽(polypeptide)
<400> 2
Asp Tyr Lys Asp Asp Asp Lys
1 5
<210> 3
<211> 9
<212> PRT
<213> 多肽(polypeptide)
<400> 3
Tyr Pro Tyr Asp Val Pro Asp Tyr Ala
1 5
<210> 4
<211> 10
<212> PRT
<213> 多肽(polypeptide)
<400> 4
Glu Gln Lys Leu Ile Ser Glu Glu Asp Leu
1 5 10
<210> 5
<211> 6
<212> PRT
<213> 多肽(polypeptide)
<400> 5
Asp Thr Tyr Arg Tyr Ile
1 5
<210> 6
<211> 6
<212> PRT
<213> 多肽(polypeptide)
<400> 6
Glu Tyr Met Pro Met Glu
1 5
<210> 7
<211> 10
<212> PRT
<213> 多肽(polypeptide)
<400> 7
Ser Phe Pro Gln Phe Lys Pro Gln Glu Ile
1 5 10
<210> 8
<211> 12
<212> PRT
<213> 多肽(polypeptide)
<400> 8
Lys Gly Phe Ser Tyr Phe Gly Glu Asp Leu Met Pro
1 5 10
<210> 9
<211> 6
<212> PRT
<213> 多肽(polypeptide)
<400> 9
Gln Tyr Pro Ala Leu Thr
1 5
<210> 10
<211> 11
<212> PRT
<213> 多肽(polypeptide)
<400> 10
Gln Arg Gln Tyr Gly Asp Val Phe Lys Gly Asp
1 5 10
<210> 11
<211> 10
<212> PRT
<213> 多肽(polypeptide)
<400> 11
Glu Val His Thr Asn Gln Asp Pro Leu Asp
1 5 10

Claims (20)

1.一种核糖核酸酶抑制因子包涵体的复性方法,其特征在于,所述方法包括:
(1) 对核糖核酸酶抑制因子包涵体进行变性、溶解;
(2) 对(1)的变性产物进行复性;其中,在复性液中添加核酸酶RNase A,所述的核酸酶RNase A在复性液中的终浓度为10-20 mM;所述的复性液包含:Tris-HCl、无机盐、还原剂;所述Tris-HCl的终浓度为35±15mM,pH为7.5±0.5;所述还原剂为DTT,其终浓度是1±0.5mM;其中,将(1)的变性产物与复性液按照1:(10±5)的体积比例混合;复性时间20±10hr,复性温度4±1℃;和
(3) 对(2)的复性产物进行柱纯化,获得可溶性核糖核酸酶抑制因子。
2.如权利要求1所述的方法,其特征在于,步骤(1)之前,还包括以下步骤:
重组表达核糖核酸酶抑制因子,获得含有包涵体的表达宿主;
对表达宿主进行破碎,分离出包涵体。
3.如权利要求2所述的方法,其特征在于,表达宿主破碎、裂解后,进行离心获取沉淀,洗涤。
4.如权利要求3所述的方法,其特征在于,利用裂解缓冲液裂解,所述的裂解缓冲液包含:Tris-HCl、无机盐、甘油。
5.如权利要求3所述的方法,其特征在于,利用洗涤缓冲液洗涤,所述洗涤缓冲液包含:Tris-HCl、无机盐、表面活性剂。
6.如权利要求1所述的方法,其特征在于,步骤(1)中,利用变性液对包涵体进行变性、溶解,其选自尿素、十二烷基肌氨酸钠或SDS的变性剂。
7.如权利要求6所述的方法,其特征在于,所述的变性剂是尿素,其终浓度是6±2 M。
8.如权利要求6所述的方法,其特征在于,所述的变性剂是十二烷基肌氨酸钠,其终浓度是1±0.5%(w/v)。
9.如权利要求6所述的方法,其特征在于,所述的变性剂是SDS,其终浓度是2±1%(w/v)。
10.如权利要求1或8所述的方法,其特征在于,所述的核酸酶RNase A在复性液中的终浓度为12~18 mM。
11.如权利要求1所述的方法,其特征在于,步骤(3)中,将(2)的复性产物上样至纯化柱,利用洗涤缓冲液洗去与核糖核酸酶抑制因子结合的核酸酶RNase A;然后,利用梯度洗脱缓冲液进行梯度洗脱,得到纯化的可溶性核糖核酸酶抑制因子。
12.如权利要求11所述的方法,其特征在于,所述的洗涤缓冲液包含:NaAc/HAc、无机盐、还原剂。
13.如权利要求12所述的方法,其特征在于,所述的NaAc/HAc的终浓度为35±15mM,pH为5.0±0.5。
14.如权利要求12所述的方法,其特征在于,所述的无机盐的终浓度是300±15mM。
15.如权利要求12所述的方法,其特征在于,所述的还原剂的终浓度是1±0.5mM。
16.权利要求11所述的方法,其特征在于,所述的梯度洗脱缓冲液包含Tris-HCl、无机盐、甘油、还原剂。
17.权利要求16所述的方法,其特征在于,所述的Tris-HCl终浓度为35±15mM,pH为7.5±0.5。
18.权利要求16所述的方法,其特征在于,所述的无机盐的终浓度是50±15mM。
19.权利要求16所述的方法,其特征在于,所述的还原剂的终浓度是1±0.5mM。
20.权利要求11所述的方法,其特征在于,所述的梯度洗脱缓冲液中包含咪唑,其浓度范围是10 mM~550mM。
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