CN108374032A - 一种细菌来源几丁质酶、及其在制备GlcNAc中的应用 - Google Patents

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Abstract

本发明公开一种细菌来源几丁质酶BsChi在降解固体几丁质中的应用，编码所述几丁质酶BsChi的基因的核苷酸序列如GenBank(AF069131.1)所示。利用所述几丁质酶BsChi与N‑乙酰葡糖胺酶OfHex1组成复合酶，将两种几丁质降解酶复合使用后，其水解几丁质粗原料生产GlcNAc的效率有了很大提升。经过对该几丁质酶的表达纯化及活性分析后，发现无论是对底物的结合能力还是对复杂底物的水解能力都较一般的几丁质酶有相应的增强。尤其是当二者摩尔比例为(96～99)：(1～4)；酶量达到20μM以上时，水解超微蟹粉、黑曲霉菌丝体和虾皮粉等固体几丁质粗底物时能够产生90％的GlcNAc，具有良好的工业化应用前景。

Description

一种细菌来源几丁质酶、及其在制备GlcNAc中的应用
技术领域
本发明属于生物技术领域，具体涉及一种高效的细菌来源几丁质酶的制备方法及与一种昆虫来源的高效N-乙酰葡糖胺酶的联合应用。
背景技术
几丁质(chitin)是以N-乙酰-β-D-葡萄糖胺(GlcNAc)为基本单位在自然界大量存在的天然线性直链多糖。几丁质降解后的多种产物如GlcNAc、(GlcNAc)2、几丁寡糖等可用于食品、保健品和化妆品的生产，且研究表明GlcNAc及其衍生物在人体免疫系统、癌症研究中起着很重要的作用。自然界中，几丁质主要存在于节肢动物的外骨骼中，如虾壳、蟹壳，但是传统的化学方法处理这些废弃物得到的副产物种类繁多，其分子大小难以控制、去乙酰化程度不一致，并且化学方法会造成严重的环境污染，所以这些废弃物常常得不到充分的利用。
相对于化学方法，利用纯化后的几丁质酶水解几丁质得到的产物比较均一且不会对环境造成污染，是一种应用前景良好的方法。但是就目前的酶法水解而言还存在水解效率低，酶的利用率低等缺点和不足。迫切需要找到高效的几丁质酶来实现几丁质粗底物的工业转化。
发明内容
为了提高利用几丁质粗原料生产GlcNAc的效率，本发明首先分别提供了两种几丁质降解酶，包括：一种高效的细菌来源几丁质酶和一种昆虫来源的高效N-乙酰葡糖胺酶；在此基础上，本发明将所述两个几丁质降解酶进行合理组合使用，发挥了协同作用，在复合酶生产GlcNAc中显示出良好的应用前景。
本发明公开一种细菌来源几丁质酶BsChi在降解固体几丁质中的应用，具体的，编码所述几丁质酶BsChi的基因的核苷酸序列如GenBank(AF069131.1)所示。经过对该几丁质酶的表达纯化及活性分析后，发现无论是对底物的结合能力还是对复杂底物的水解能力都较一般的几丁质酶有相应的增强。
对于上述技术方案中所述的应用，是利用所述几丁质酶BsChi水解固态底物α-几丁质和β-几丁质，例如：含几丁质的生物质，如节肢动物外壳及真菌菌丝体，包括超微蟹粉、黑曲霉菌丝体和虾皮粉等固态底物，几丁质酶BsChi的最适温度为30～50℃，最适pH值为5～7。
对于上述技术方案中所述的应用，具体的，是即利用所述几丁质酶BsChi与N-乙酰葡糖胺酶OfHex1组成复合酶，将两种几丁质降解酶复合使用后，其水解几丁质粗原料生产GlcNAc的效率有了很大提升。其中，编码所述N-乙酰葡糖胺酶OfHex1基因的核苷酸序列如GenBank(DQ887769.1)所示。进一步研究几丁质酶BsChi与N-乙酰葡糖胺酶OfHex1组成的复合酶的协同应用。结果表明，当二者摩尔比例为(96～99)：(1～4)时；尤其是98.5:1.5的比例下，能够产生最大的协同效果，当二者的酶量达到20μM以上时，水解超微蟹粉、黑曲霉菌丝体和虾皮粉等固体几丁质粗底物时能够产生90％的GlcNAc；优选的情况下，二者的酶量达到30μM。
对于上述技术方案中所述的应用，具体的，所述的底物先经预处理，所述的固态底物还经过预处理：粉碎至80～150目后，再经蛋白酶处理；所述蛋白酶的主要成分为枯草杆菌Bacillus licheniformis蛋白酶Carlsberg。
对于上述技术方案中所述的应用，具体的，所述粉碎为超微研磨至100目；所用酶为Alcalase 2.4L FG蛋白酶，用量为1g酶/50g底物。
有益效果：本发明所构建表达的细菌几丁质酶BsChi具有比已知公认的细菌高效几丁质酶SmChiA和已经商品化的几丁质酶更好的水解效果，比较(GlcNAc)2的产量，BsChi是SmChiA的1.58倍，是商品化几丁质酶的1.27倍。本发明所提出的将几丁质酶和N-乙酰葡糖胺酶协同使用的组合酶法，能够高效的水解固体几丁质产生GlcNAc。使用30μM的复合酶就可以使得GlcNAc的产率达到90％。
附图说明
图1是几丁质酶BsChi的SDS-PAGE检测结果图，泳道1是空白质粒细菌总蛋白，泳道2是带有目的基因的细菌总蛋白，泳道3是细菌裂解液上清，泳道4是细菌裂解液沉淀，泳道5是纯化的BsChi，泳道6是蛋白标准品；
图2是BsChi的酶学特性，图2A图是最适温度曲线，图2B图是最适pH值曲线，图2C图是水解α-几丁质和β-几丁质的进程曲线，图2D图是HPLC的水解产物分析；
图3是粗蟹粉经过不同预处理的效果对比；
图4是BsChi与SmChiA和商品化几丁质酶的活性对比；
图5是复合酶水解能力评价，图5A图是复合酶浓度对产量的影响，图5B图是HPLC分析产物纯度图。
具体实施方式
下述非限制性实施例可以使本领域的普通技术人员更全面地理解本发明，但不以任何方式限制本发明。任何熟悉本技术领域的技术人员在本发明披露的技术范围内，根据本发明的技术方案及其发明构思进行等同替换或改变均属于本发明保护范畴。
为了方便表述，在以下实施例中，“mM”表示mmol/L；“μM”表示“μmol/L”；大肠杆菌BL21(DE3)感受态细胞(购自Takara)；灭菌的条件为121℃下高压灭菌20min。
实施例1
BsChi酶的制备
BsChi的序列来自于GenBank(AF069131.1)。将获得的基因连接至pET28(a)，获得质粒pET28(a)-BsChi。
重组表达质粒pET28(a)-BsChi热击法转化大肠杆菌BL21(DE3)感受态细胞。表达菌在37℃生长至OD600为1.8时，添加0.5mM IPTG。随后，细胞在16℃诱导表达12h。在4℃条件下，8000rpm离心5min收集菌体，并重悬在Buffer A(20mM磷酸二氢钠，500mM氯化钠，pH7.4)中。采用高压匀质机破碎菌体，压力为800bar。在4℃条件下，10000rpm离心10min，去除未破碎的菌体以及包涵体，0.22μm滤器过滤上清。采用金属螯合层析分离纯化蛋白，蛋白在Buffer E(20mM磷酸二氢钠，500mM氯化钠，50mM咪唑，pH 7.4)下洗脱杂质蛋白，蛋白在Buffer F(20mM磷酸二氢钠，500mM氯化钠，250mM咪唑，pH 7.4)下洗脱并收集。以考马斯亮蓝法检测蛋白浓度，使用SDS-PAGE检验目标蛋白BsChi的纯度。
结果表明，得到的BsChi酶的产量为4.43mg/L，具有较高纯度，如图1所示。图1是几丁质酶BsChi的SDS-PAGE检测结果图。
SmChiA酶的制备
SmChiA的序列来自于GenBank(EF451957.1)。将获得的基因连接至pET22(b)，获得质粒pET22(b)-SmChiA。
重组表达质粒pET22(b)-SmChiA热击法转化大肠杆菌BL21(DE3)感受态细胞。表达菌在37℃生长至OD600为1.8时，添加0.5mM IPTG。随后，细胞在16℃诱导表达12h。在4℃条件下，8000rpm离心5min收集菌体，并重悬在Buffer A(20mM磷酸二氢钠，500mM氯化钠，pH7.4)中。采用高压匀质机破碎菌体，压力为800bar。在4℃条件下，10000rpm离心10min，去除未破碎的菌体以及包涵体，0.22μm滤器过滤上清。采用金属螯合层析分离纯化蛋白，蛋白在Buffer E(20mM磷酸二氢钠，500mM氯化钠，50mM咪唑，pH 7.4)下洗脱杂质蛋白，蛋白在Buffer F(20mM磷酸二氢钠，500mM氯化钠，150mM咪唑，pH 7.4)下洗脱并收集。
OfHex1的制备
OfHex1的序列来自于GenBank(DQ887769.1)。将获得的基因连接至pPIC9，获得质粒pPIC9-OfHex1。
重组表达质粒pPIC9-OfHex1点击法转化毕赤酵母GS115感受态细胞。表达菌在BMGY培养液中，100mL/瓶，30℃摇床培养24小时。待菌液浓度达到要求时将BMGY培养液分装于100mL离心管中2500rpm离心5分钟，弃上清，用BMMY培养液重悬(扩大培养不超过3倍)，30℃摇床培养，每24小时加1％过滤后的甲醇，以诱导目的蛋白的表达。直至培养完成的前一天，该步骤共需培养144小时，即加入5天甲醇。随后，硫酸铵沉淀，过夜。10000rpm离心10分钟将硫酸铵沉淀离心弃上清，沉淀用Buffer A溶解。采用金属螯合层析分离纯化蛋白，蛋白在Buffer E(20mM磷酸二氢钠，500mM氯化钠，50mM咪唑，pH 7.4)下洗脱杂质蛋白，蛋白在Buffer F(20mM磷酸二氢钠，500mM氯化钠，150mM咪唑，pH 7.4)下洗脱并收集。
实施例2
BsChi酶活性的评价
BsChi的最适温度和最适pH值用MU-β-(GlcNAc)2和α-几丁质进行测定。利用BR缓冲液的缓冲范围pH 4-9，测定BsChi的最适pH值。利用温度范围20到80℃，测定BsChi的最适温度。
BsChi水解产物的测定，选取α-几丁质和β-几丁质作为水解底物。反应均在1.5mL离心管中进行，实验组反应体系为100μL，几丁质底物浓度为10mg/mL，BsChi的终浓度为0.1μM，然后用20mM磷酸盐缓冲液将体积补足到100μL，37℃水解12小时，每隔2小时取样。产生的还原糖利用铁氰化钾法测定，水解产物利用HPLC分析组成。
结果表明，如图2所示，BsChi的最适温度为40℃，最适pH值为6。水解α-几丁质和β-几丁质的主产物均为(GlcNAc)2。
实施例3
粗蟹粉的底物预处理
本发明所用的底物预处理方法为超微研磨和蛋白酶处理。粗蟹粉(CCSP)经过球磨机研磨并经过100目(一般情况下80～150目也可以)筛子过滤后得到超微蟹粉(FCSP)，超微蟹粉经过Alcalase 2.4L FG蛋白酶(诺维信(中国)；活力393235U/g，主要成分为枯草杆菌Bacillus licheniformis蛋白酶Carlsberg)处理之后得到所需的除去杂质蛋白的超微蟹粉(PFCSP)。反应体系中，蟹壳粉的质量为0.2g，加入pH 8.0的PBS溶液使得总体积为浸没底物体积的二倍，再加入蛋白酶使终浓度为1g蛋白酶/50g底物，60℃水解13h。水解结束后离心去除上清液，用去离子水洗底物3次以去除底物中残留的碱性蛋白酶。
为了评价底物预处理对酶促反应的影响，分别用预处理前的粗底物和处理后的超微蟹粉进行酶促反应，反应条件相同均为：酶的使用浓度为3μM，底物浓度均为10mg/mL。反应条件为：在pH 6.0的20mM磷酸盐缓冲液中40℃反应12小时。水解产生(GlcNAc)2的量用铁氰化钾法测定。
结果表明，如图3所示，经过预处理的粗蟹粉较不进行预处理的粗蟹粉(GlcNAc)2的产量提高了242％。
实施例4
BsChi与SmChiA和商品化几丁质酶(Chitinase from Streptomyces griseus购自北京Sigma公司)水解能力的比较
底物为按照实施例3所述方法制备，即选取经过Alcalase 2.4L FG蛋白酶预处理的超微蟹粉。为控制反应变量，使三种酶的使用浓度均为3μM，底物浓度均为10mg/mL。反应条件为：在pH 6.0的20mM磷酸盐缓冲液中40℃反应12小时(此处所以的缓冲液都是磷酸盐缓冲液)。水解产生(GlcNAc)2的量用铁氰化钾法测定。
结果表明，如图4所示，比较(GlcNAc)2的产量，BsChi是SmChiA的1.58倍，是商品化几丁质酶的1.27倍。
实施例5
BsChi与N-乙酰葡糖胺酶OfHex1的协同应用
取少量OfHex1与本发明的几丁质酶混合为了评价复合酶的效果，设置了10，20，30和40μM四个浓度的复合酶(摩尔比为：98.5％BsChi:1.5％OfHex1)，反应条件为：底物为按照实施例3所述方法制备，即选取经过Alcalase 2.4L FG蛋白酶预处理的超微蟹粉。200μL反应体系，底物浓度为10mg/mL，在pH 6.0的20mM磷酸盐缓冲液中40℃反应24小时。产生的GlcNAc用HPLC进行评价。
结果表明，如图5所示，使用30μM的复合酶就可以使得GlcNAc的产率达到90％。

Claims (8)

1.一种细菌来源几丁质酶BsChi在降解固体几丁质中的应用，其特征在于：编码所述几丁质酶BsChi的基因的核苷酸序列如GenBank(AF069131.1)所示。
2.根据权利要求1所述的应用，其特征在于：利用所述几丁质酶BsChi水解固态底物α-几丁质和β-几丁质，几丁质酶BsChi的温度为30～50℃，pH值为5～7。
3.根据权利要求1所述的应用，其特征在于：利用所述几丁质酶BsChi与N-乙酰葡糖胺酶OfHex1组成复合酶，其中，编码所述N-乙酰葡糖胺酶OfHex1基因的核苷酸序列如GenBank(DQ887769.1)所示。
4.根据权利要求1所述的应用，其特征在于：所述的复合酶中，几丁质酶BsChi与N-乙酰葡糖胺酶OfHex1的摩尔比为(96～99)：(1～4)。
5.根据权利要求1所述的应用，其特征在于：所述的复合酶中，几丁质酶BsChi与N-乙酰葡糖胺酶OfHex1使用过程中，二者总酶量为20μM以上。
6.根据权利要求1所述的应用，其特征在于：所述的含几丁质的生物质，如节肢动物外壳及真菌菌丝体。
7.根据权利要求所述的应用，其特征在于：所述的底物先经预处理，所述的固态底物还经过预处理：粉碎至80～150目后，再经蛋白酶处理；所述蛋白酶的主要成分为枯草杆菌Bacillus licheniformis蛋白酶Carlsberg。
8.根据权利要求7所述的应用，其特征在于：所述粉碎为超微研磨至100目；所用酶为Alcalase 2.4L FG蛋白酶，用量为1g酶/50g底物。
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Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN113174396A (zh) * 2021-04-15 2021-07-27 湛江市享爱食品有限公司 一种高效水酶的克隆技术应用方法
CN113322293A (zh) * 2021-05-27 2021-08-31 浙江工业大学 一种球磨辅助组合酶法少水化催化几丁质的方法
CN115125227A (zh) * 2022-05-23 2022-09-30 中国农业科学院植物保护研究所 一种几丁质复合酶及其应用

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104630193A (zh) * 2013-11-06 2015-05-20 中国科学院海洋研究所 一种几丁质脱乙酰基酶及其构建方法和应用
CN107446906A (zh) * 2016-05-31 2017-12-08 中粮集团有限公司 一种复合酶及其应用以及酶解几丁质的方法
CN107475273A (zh) * 2017-10-10 2017-12-15 中国科学院成都生物研究所 新几丁质酶p1724及其应用

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104630193A (zh) * 2013-11-06 2015-05-20 中国科学院海洋研究所 一种几丁质脱乙酰基酶及其构建方法和应用
CN107446906A (zh) * 2016-05-31 2017-12-08 中粮集团有限公司 一种复合酶及其应用以及酶解几丁质的方法
CN107475273A (zh) * 2017-10-10 2017-12-15 中国科学院成都生物研究所 新几丁质酶p1724及其应用

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
WEIXING ZHU ET AL.: "Production of N-Acetyl-d-glucosamine from Mycelial Waste by a Combination of Bacterial Chitinases and an Insect N-Acetyl-d-glucosaminidase", 《J AGRIC FOOD CHEM》 *
XING FU ET AL.: "An acidic, thermostable exochitinase with β-N-acetylglucosaminidase activity from Paenibacillus barengoltzii converting chitin to N-acetyl glucosamine", 《BIOTECHNOL BIOFUELS》 *
YANG,C.-Y.ET AL.: "Bacillus subtilis chitinase (chi) gene, complete cds", 《GENBANK登录号AF069131.1》 *
YANG,Q. ET AL.: "Ostrinia furnacalis N-acetylglucosaminidase mRNA, complete cds", 《GENBANK登录号DQ887769.1》 *

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN113174396A (zh) * 2021-04-15 2021-07-27 湛江市享爱食品有限公司 一种高效水酶的克隆技术应用方法
CN113322293A (zh) * 2021-05-27 2021-08-31 浙江工业大学 一种球磨辅助组合酶法少水化催化几丁质的方法
CN115125227A (zh) * 2022-05-23 2022-09-30 中国农业科学院植物保护研究所 一种几丁质复合酶及其应用
CN115125227B (zh) * 2022-05-23 2024-01-30 中国农业科学院植物保护研究所 一种几丁质复合酶及其应用

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