一种FFPE组织样本的超低频建库方法
技术领域
本发明涉及一种FFPE组织样本的超低频建库方法,主要解决基于NGS测序过程中,FFPE 样本的建库测序问题。
背景技术
目前FFPE样本的建库方法主要有两类:
第一类为双链DNA建库方法,该方法不足之处主要表现在以下几个方面:
1、双链DNA所需建库样本量较大,因此,无法满足临床上的某些组织样本的需要,比如穿刺组织的FFPE样本,5~10年的FFPE样本等;
2、由于在建库过程中需要多步纯化过程,因此某些较短的或者超短的DNA,单链的DNA,严重损伤的DNA均被损失,无疑给原本就珍贵的样本雪上加霜,从而造成某些超低频率的突变无法检出;
3、由于建库过程需要对某些严重降解的样本进行末端修复,PCR富集,上机测序等,这些过程均存在着引入技术突变的可能性,从而导致检测的不准确。
第二类为单链DNA建库方法,该方法的不足之处在于:
1、在单链建库过程中,单链接头与单链DNA的连接具有偏好性,连接效率比较低,导致依然需要较大的起始建库样本量;
2、在现有的单链建库中依然存在着与双链DNA建库共有的问题,那就是同样存在着无法排除因人为操作引入的突变。
发明内容
本发明目的在于解决现有技术中的上述问题,提供一种FFPE组织样本的超低频建库方法。
本发明为达到上述目的,所采用的技术手段是:一种FFPE组织样本的超低频建库方法,其步骤如下:
步骤一、FFPE样本DNA的提取;
步骤二、DNA片段化处理:确定提取的FFPE DNA样本的降解程度,根据降解程度决定是否打断;
步骤三、DNA的去磷酸化与变性:使用去磷酸化酶FastAP,对DNA5’与3’端去磷酸化;
步骤四、单链接头的添加:在连接酶的作用下,将单链接头与变性的单链DNA进行连接;
步骤五、链霉素磁珠捕获与洗脱:利用链霉素与生物素结合的特性,使用带有链霉素的磁珠对步骤四中的连接产物进行捕获,然后变性,洗脱;
步骤六、引物退火与延伸:根据单链接头的部分序列,设计引物,并在dNTP、酶条件下,进行延伸反应;
步骤七、双链第二接头的添加与文库洗脱:使用连接酶将双链第二接头与延伸获得的靶双链DNA分子进行连接,使用洗脱洗去残留接头;
步骤八、LM-PCR扩增,引入barcode:使用带barcode的引物序列,进行带磁珠的PCR反应,靶向富集DNA分子;
步骤九、磁珠纯化PCR扩增产物。
进一步的,所述步骤一中FFPE样本DNA的提取是指:
单链接头的获得:
按照以下序列信息合成两条序列,
Adaptor序列:5’Pho-GCTACCCCAC-NNNNNNNNNNNN-AGATCGGAAG-XXXXXXXXXXXX-TEG-Biotin3’;
Splinter序列:3’NNNNNN-CGATGGGGTG5’;
Adaptor序列的纯化:总反应体系为20 ul:2 ul of 10 µM A序列, 16 ul 1 x T4 RNA连接酶buffer, 1 ul Klenow fragment of E.coli DNA polymerase I,1 ul T4 多久核苷酸激酶;反应条件为37℃,20min,95℃,2min;
Splinter序列的纯化:总反应体系为20 ul:4 ul of 10 µM Splinter序列, 14 ul 1x T4 RNA 连接酶buffer, 1 ul Klenow fragment of E.coli DNA polymerase I,1 ulT4 多聚核苷酸激酶;反应条件为37℃,20min,95℃,2min;
将上述20 ul的Adaptor序列与20 ul的Splinter序列组成40 ul反应体系,PCR仪上杂交,95℃,10s,逐步降低温度至10℃,降温速率为0.1℃/s,合成单链接头;
双链第二接头的获得:
按照以下序列信息合成两条序列:
5’CGACGCTCTTC-ddC 3’
5’Pho-GGAAGAGCGTCGTGTAGGGAAAGAG*T*G*T*A 3’
总反应体系为50 ul:20 ul 500 µM 上链序列,20 ul 500 uM下链序列,9.5 ul TEbuffer, 0.5 ul 5M NaCl;反应条件为:PCR仪上杂交,95℃,10s,逐步降低温度至10℃,降温速率为0.1℃/s;反应结束后,加入50 ul的TE buffer,合成双链第二接头。
相关试剂配制:
1xBWT+SDS Buffer:1 M NaCl,10 mM Tris-HCl (pH 8.0),1 mM EDTA(pH 8.0),0.05%Tween-20,0.5% SDS;
0.1xBWT+SDS Buffer:0.1 M NaCl, 10 mM Tris-HCl (pH 8.0),1 mM EDTA (pH8.0), 0.05% Tween-20,0.5% SDS;
Stringency wash buffer:49.5 ml的ddH20, 250 ul的20%(wt/vol) SDS,250 ul的20× SSC buffer;
0.1xBWT Buffer:0.1 M NaCl,10 mM Tris-HCl (pH 8.0),1 mM EDTA (pH 8.0),0.05% Tween-20;
TE Buffer:49.4 ml的ddH20,500 ul的1 M Tris-HCl(pH 8.0),100 ul 的0.5 M EDTA(pH 8.0)。
进一步的,所述根据降解程度决定是否打断是指:根据凝胶电泳显示的降解程度,将提取的FFPE DNA样本分为四种类型:无降解,有主带且主带大小大于2K;轻度降解,有主带但主带范围在1K~2K之间;中度降解,无主带,条带弥散,片段范围在100bp~2kb之间;严重降解,无主带,片段大小小于500bp;严重降解的样本,无需打断,直接建库,无降解、轻度降解与中度降解的需要进行超声打断。
进一步的,所述步骤三中,去磷酸化反应体系为:8 ul 10x T4 RNA ligation
Buffe;2 ul 2% Tween 20;1ul FastAP;x ul FFPE DNA;34.6-x ul ddH20;去磷酸化反应条件为35~39℃,6~15min,然后90~100℃变性1~5min,立即冰浴。
进一步的,所述步骤四中,单链接头为带有UID标签与Splinter序列的接头,其中UID标签用于标记每条单链DNA分子。
进一步的,所述步骤四中,连接酶为T4 DNA连接酶,连接反应的体系为:32 ul 50% PEG-8000;0.4 ul 100 mM ATP;1 ul 单链接头;1 ul T4 DNA Ligase;45.6 ul步骤三变性产物;连接反应温度35~39℃,反应时间35~80min。
进一步的,所述步骤五中,使用MyOne C1磁珠,进行捕获;文库洗脱过程中,先将样本90~100℃变性处理1~10min,立即冰浴后,进行洗脱Buffer,洗去Splinter序列,弃上清。
更进一步的,所述步骤六中,延伸反应使用48 ul Buffer回溶磁珠,Buffer体系为:39.1 ul ddH20;5 ul 10 x Klenow reaction buffer;0.4 ul 25 mM dNTP;2.5 ul 1%Tween-20 和1 ul 延伸引物(100uM);引物退火条件为:65℃,2 min。
进一步的,所述步骤七中,连接酶为T4 DNA连接酶,进行双链第二接头的添加,连接体系为:73.5 ul ddH20;10 ul 10x T4 DNA 连接酶buffer;10 ul 50 % PEG-4000;2 ul第二接头(100uM);2.5 ul 1% Tween-20;2 ul T4 DNA 连接酶,连接条件为:15~30℃,反应时间35~80min。
本发明有益效果在于:针对FFPE组织样本等降解样本的二代测序建库时,提供一种解决办法,其次在建库的初期通过对每一个DNA进行标记,从而为后续排除因技术引入突变提供条件。
具体实施方式
实施例1
一种FFPE组织样本的超低频建库方法,其步骤如下:
步骤一、FFPE样本DNA的提取;
步骤二、DNA片段化处理:提取过程,需要根据凝胶电泳显示的降解程度,将提取的FFPEDNA样本分为四种类型:无降解,有主带且主带大小大于2K;轻度降解,有主带但主带范围在1K~2K之间;中度降解,无主带,条带弥散,片段范围在100bp~2kb之间;严重降解,无主带,片段大小小于500bp;严重降解的样本,无需打断,直接建库,无降解、轻度降解与中度降解的需要进行超声打断;
步骤三、DNA的去磷酸化与变性:使用去磷酸化酶FastAP,对DNA5’与3’端去磷酸化;
步骤四、单链接头的添加:在连接酶的作用下,将单链接头与变性的单链DNA进行连接;
步骤五、链霉素磁珠捕获与洗脱:利用链霉素与生物素结合的特性,使用带有链霉素的磁珠对步骤四中的连接产物进行捕获,然后变性,洗脱;
步骤六、引物退火与延伸:根据单链接头的部分序列,设计引物,并在dNTP、酶条件下,进行延伸反应;
步骤七、双链第二接头的添加与文库洗脱:使用连接酶将双链第二接头与延伸获得的靶双链DNA分子进行连接,使用洗脱洗去残留接头;
步骤八、LM-PCR扩增,引入barcode:使用带barcode的引物序列,进行带磁珠的PCR反应,靶向富集DNA分子;
步骤九、磁珠纯化PCR扩增产物。
实施例2
步骤一、单链接头的获得:按照以下序列信息合成两条序列:
Adaptor序列(A):5’Pho-GCTACCCCAC-NNNNNNNNNNNN-AGATCGGAAG-XXXXXXXXXXXX-TEG-Biotin;
序列(A)为接头序列,由5部分组成,包括10nt的碱基序列区,12nt的UID区,10nt的illumina接头区,10个C3-Spacer区以及与链霉素结合的生物素区;
Splinter序列(B):3’NNNNNN-CGATGGGGTG5’;
序列(B)为Splinter序列,由2部分组成,包括6nt的随机序列区与10nt的互补区,
Adaptor(A)的纯化:总反应体系为20 ul:2 ul of 10 µM A序列, 16 ul 1 x T4 RNA连接酶buffer, 1 ul Klenow fragment of E.coli DNA polymerase I,1 ul T4 多久核苷酸激酶;反应条件为37℃,20min,95℃,2min。
Splinter序列(B)纯化:总反应体系为20 ul:4 ul of 10 µM Splinter序列, 14ul 1 x T4 RNA 连接酶buffer, 1 ul Klenow fragment of E.coli DNA polymerase I,1ul T4 多聚核苷酸激酶;反应条件为37℃,20min,95℃,2min。
单链接头的合成:将上述20 ul的Adaptor序列与20 ul的Splinter序列组成40 ul反应体系,PCR仪上杂交,95℃,10s,逐步降低温度至10℃,降温速率为0.1℃/s。
双链第二接头的获得:
按照一下序列信息合成两条序列:
5’CGACGCTCTTC-ddC 3’
5’Pho-GGAAGAGCGTCGTGTAGGGAAAGAG*T*G*T*A 3’
双链第二接头的合成:总反应体系为50 ul:20 ul 500 µM 上链序列,20 ul 500 uM下链序列,9.5 ul TE buffer, 0.5 ul 5M NaCl;反应条件为:PCR仪上杂交,95℃,10s,逐步降低温度至10℃,降温速率为0.1℃/s;反应结束后,加入50 ul的TE buffer。
相关试剂配制:
1xBWT+SDS Buffer:1 M NaCl,10 mM Tris-HCl (pH 8.0),1 mM EDTA(pH 8.0),0.05%Tween-20,0.5% SDS;
0.1xBWT+SDS Buffer:0.1 M NaCl, 10 mM Tris-HCl (pH 8.0),1 mM EDTA (pH8.0), 0.05% Tween-20,0.5% SDS;
Stringency wash buffer:49.5 ml的ddH20, 250 ul的20%(wt/vol) SDS,250 ul的20× SSC buffer;
0.1xBWT Buffer:0.1 M NaCl,10 mM Tris-HCl (pH 8.0),1 mM EDTA (pH 8.0),0.05% Tween-20;
TE Buffer:49.4 ml的ddH20,500 ul的1 M Tris-HCl(pH 8.0),100 ul 的0.5 M EDTA(pH 8.0)。
步骤二、打断:根据提取FFPE样本的降解程度,选择打断或者不打断,
DNA的降解程度采用2%琼脂糖凝胶电泳进行判断,判断标准为
无降解 | 有主带,且主带大小大于2K |
轻度降解 | 有主带,但主带范围在1K-2K之间 |
中度降解 | 无主带,条带弥散,片段范围在100bp-2kb之间 |
严重降解 | 无主带,片段大小小于500bp |
DNA样本的打断标准为,严重降解的样本无需打断,直接进行下一步骤;如果为无降解或者轻度/中度降解的样本需要进行打断。
步骤三、磷酸化与热变性:反应体系为45.6 ul:8 ul 10 x T4 RNA连接buffer, 2ul 2% Tween 20,ul FastAP,x ul FFPE DNA;34.6-x ul ddH20;去磷酸化反应条件为:37℃,10min。变性条件为:95℃,2min;立即冰浴。
步骤四、生物素UID单链接头的连接:此步骤分为2个部分,1)单链接头的合成;2)单链接头与变性DNA的连接。反应体系为80 ul:32 ul 50 % PEG-8000; 0.4 ul 100 mMATP;1 ul 单链接头;1 ul T4 DNA Ligase;45.6 ul磷酸化变性产物,反应条件为:37℃,1h。
步骤五、磁珠捕获与洗脱:使用MyOne C1磁珠捕获片段,使用洗脱试剂进行洗脱:磁珠的准备:使用500 ul的1xBWT+SDS Buffer洗涤20 ul Myone C1磁珠两次,250 ul的1xBWT+SDS Buffer重悬;磁珠捕获:将连接产物95℃孵育1 min,快速转移至冰上,冰浴冷却2-5min,加入重悬磁珠250 ul,室温条件下摇管20min,磁力架上,弃上清,200 ul 0.1 xBWT+SDS重悬磁珠,磁力架上弃上清;洗脱去除Splinter序列:100 ul 45℃预热的Stringency wash buffer重悬磁珠,45℃加热振荡孵育3 min,磁力架上,弃上清,200 ul0.1 x BWT重悬磁珠,磁力架上,弃上清。
步骤六、引物退火与延伸:
延伸引物序列为:5’GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCT 3’
延伸反应体系为:总体系为48 ul,39.1 ul ddH20,5 ul 10 x Klenow reactionbuffer,0.4 ul 25 mM dNTP,2.5 ul 1% Tween-20,1 ul退火引物,将其与上述磁珠混合;
延伸反应条件为:65℃,2 min,立即转移冰上冷却2-5min,加入2 ul Klenowfragment, 25℃,5 min,35℃,25min,期间每间隔2s,混匀样本60s。
延伸后洗脱:将延伸产物置磁力架上,弃上清,200 ul 0.1 x BWT+SDS Buffer重悬磁珠,磁力架上,弃上清,100 ul Stringency wash buffer,45℃条件下重悬磁珠,45℃,热浴振荡3min,磁力架上,弃上清,200 ul 0.1 x BWT Buffer重悬磁珠,磁力架上,弃上清。
步骤七、双链第二接头添加与洗脱:双链第二接头的添加,分为两个步骤:1)双链第二接头的合成;2)双链第二街头的连接。总反应体系为100 ul:73.5 ul ddH20,10 ul 10x T4 DNA 连接酶 buffer,10 ul 50% PEG-4000,2 ul双链第二接头(100 µM), 2.5 ul 1%Tween-20,2 ul T4 DNA连接酶,用反应液重悬延伸后洗脱的磁珠,反应条件为22℃,1h;连接后洗脱:连接产物磁力架上,弃上清,200 ul 0.1 x BWT+SDS Buffer重悬磁珠,磁力架上,弃上清,100 ul Stringency wash buffer,45℃条件下重悬磁珠,45℃,热浴振荡3min,磁力架上,弃上清,200 ul 0.1 x BWT Buffer重悬磁珠,磁力架上,弃上清,20 ul TEBuffer回溶磁珠,然后95℃,热浴2min。
LM-PCR扩增,引入barcode:
扩增引物序列为:
5’AATGATACGGCGACCACCGAGATCTACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTT 3’,
5’CAAGCAGAAGACGGCATACGAGAT NNNNNNNN GTGACTGGAGTTCAGACGTGT 3’,其中每个粗体部分代表Barcode序列
LM-PCR反应体系为:总反应体系为50ul:25ul 2 x KAPA HiFi HotStart ReadyMixr,2.5 ul上游引物,2.5 ul下游引物,20 ul TE Buffer回溶的磁珠,进行PCR反应。
磁珠纯化PCR扩增产物:Beckman磁珠纯化PCR产物。
本发明针对FFPE组织样本等降解样本的二代测序建库时,提供一种解决办法,其次在建库的初期通过对每一个DNA进行标记,从而为后续排除因技术引入突变提供条件。
以上所述,仅为本发明的具体实施方式,并不局限于此,任何熟悉本技术领域的技术人员在本发明揭露的技术范围内,可轻易想到变化或替换,都应涵盖在本发明的保护范围之内。