CN107881122B - 一株用于水果采后病害防治的葡萄酒酿酒酵母及其应用 - Google Patents

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Abstract

本发明公开了一株用于果蔬采后病害防治的抑菌谱广、效果稳定的葡萄酒酿酒酵母Saccharomyces ellipsoideus菌株BY36及其使用方法与用途。该菌株在中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心的保藏菌株编号为CGMCC No.14910。该葡萄酒酿酒酵母的使用方法：将菌株活化，用YPD发酵培养，离心，菌体用无菌水配成1×108细胞/mL的菌悬液；将苹果、梨、葡萄、草莓、柑橘或圣女果等果蔬放入菌悬液中，浸泡30秒后取出，风干；放入保鲜盒中，常温贮藏。该葡萄酒酿酒酵母菌株可同时控制苹果青霉病和灰霉病，梨果实灰霉病，葡萄灰霉病、曲霉病、黑斑病、炭疽病和红粉病，草莓灰霉病，柑橘青霉病，以及圣女果灰霉病和曲霉病，减少采后病害造成的损失，具有很好的应用前景。

Description

一株用于水果采后病害防治的葡萄酒酿酒酵母及其应用
技术领域
本发明涉及水果采后病害生物防治领域，尤其涉及一株用于水果采后病害生物防治的葡萄酒酿酒酵母(Saccharomyces ellipsoideus)，该菌株对苹果、梨、葡萄、草莓、柑桔、圣女果的主要采后病害均具有显著的防治效果。
背景技术
虽然新鲜水果品质劣变受诸多因素的影响，但病害是最主要的原因。其中，真菌性病害引起的腐烂变质是果实采后损失中最严重的因素。虽然可以通过农业防治、物理防治、化学防治和生物防治等很多途径进行防治水果采后病害，但目前的主要措施是化学防治(Eckert&Ogawa，1985，1988)。然而，长期使用化学农药不但导致病原菌产生耐药性而降低杀菌效果(Prusky et al.，1985；Viňas et al.，1991；Holmes&Eckert，1999)，而且频繁地使用高浓度的化学药剂也增加了果实上的农药残留量，严重威胁人们的健康，并造成环境污染(Gullion&Kuijipers，1994)。因此，开发安全、高效、无毒、低抗性的果实采后病害控制新技术成为当前世界各国的研究重点(Falik et al.，1995；Tian et al.，2001；Kulakiotuet al.，2004)，其中利用生物拮抗菌防治是目前被证明安全有效的新方法(Wilson&Wisniewski，1989；Janisiewicz&Koersten，2002)。
迄今为止，国内外已经筛选出了许多对水果采后病原真菌具有明显抑菌效果的细菌、酵母菌和小型丝状真菌，其中利用拮抗酵母菌防治果实采后病害是当前已被证明的安全、高效的新技术，这主要由于大多数病原菌通过伤口入侵果实，而酵母菌主要通过与病原菌进行营养和空间竞争来防治病害，而且拮抗酵母菌能够适应低温、低氧、高二氧化碳等果实采后贮藏条件(王友升，2012)。
然而，虽然目前国内外报道的拮抗酵母菌有近百种，但大多数拮抗酵母菌的生防效果仅在少数果实上得到验证。而由于同一酵母菌的不同菌株之间的生防效果有很大差异(Filonowet al.，1996)，因此，大多数拮抗酵母菌的缺乏抑菌谱广、效果稳定的菌株。
发明内容
针对上述技术难题，本发明的目的在于提供一株用于水果采后病害防治的葡萄酒酿酒酵母(Saccharomyces ellipsoideus)BY36菌株，所述BY36菌株已在中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心提交保藏，保藏菌株编号为CGMCC No.14910。
另一方面，本发明提供所述菌株在水果采后病害防治的应用，按照以下步骤进行：将所述BY36菌株活化，用YPD液体培养基发酵培养，离心得到菌体，将菌体用无菌水配制成浓度为1×108细胞/mL的菌悬液；将水果放入菌悬液中，浸泡30秒后取出，风干；放入保鲜盒中，密封后，放入常温贮藏。
优选地，其中所述水果选自苹果、梨、葡萄、草莓、柑橘和圣女果。
优选地，将菌株从-80℃冰箱取出，用YPDA培养基活化，挑取单菌落至YPD液体培养基里，于26℃、200r/min条件下培养24h，4000rpm离心5min收集菌体，用无菌水洗3遍。
优选地，所述YPDA培养基是：酵母浸粉10g，蛋白胨20g，葡萄糖20g，琼脂18g，去离子水1000ml，自然pH，121℃灭菌30min。
优选地，所述BY36菌株用于控制苹果青霉病和灰霉病，梨果实灰霉病，葡萄灰霉病、曲霉病、黑斑病、炭疽病和红粉病，草莓灰霉病，柑橘青霉病，以及圣女果灰霉病和曲霉病。
本发明所提供的菌株是从自然发酵的酿酒葡萄醪液中筛选分离到的对苹果、梨、葡萄、草莓、柑橘、圣女果采后病害具有显著防治效果的葡萄酒酿酒酵母BY36，可广泛用于水果采后病害的防治，减少采后病害造成的损失，具有很好的应用前景。
本发明的优点：(1)本发明所提供的葡萄酒酿酒酵母BY36为本实验室从葡萄酒发酵醪液中筛选得到，其对人体无害，安全性高。(2)本发明所使用的葡萄酒酿酒酵母BY36抑菌谱广，可以同时控制苹果青霉病、灰霉病和黑斑病，梨果实灰霉病，葡萄灰霉病、曲霉病、黑斑病、炭疽病和红粉病，草莓灰霉病，柑橘青霉病，以及圣女果灰霉病和曲霉病。(3)本发明所提供的葡萄酒酿酒酵母BY36在YPD培养基中生长良好，易于培养，性状稳定，且单独使用一定浓度该菌悬液就能有效防治多种水果采后病害，使用成本低，市场前景广阔。(4)本发明所提供的葡萄酒酿酒酵母BY36可以代替化学杀菌剂防治水果采后病害，避免使用化学杀菌剂对人的危害，且不污染环境，社会和生态效益显著。
通过以下实施实例更加详细的说明本发明。以下实施实例仅是说明性的，本发明并不受这些实施实例的限制。
附图说明
图1为本发明葡萄酒酿酒酵母Saccharomyces ellipsoideus BY36的26S rDNAD1/D2区核酸序列进化关系图。
图2为葡萄酒酿酒酵母BY36对苹果青霉病和灰霉病的抑制效果。注：Control：无菌水，即对照组；S.e：1×108细胞/mL的葡萄酒酿酒酵母BY36菌悬液。不同字母代表差异显著(P<0.05)。
图3为葡萄酒酿酒酵母BY36对葡萄酒酿酒酵母对梨果实灰霉病的抑制效果。注：Control：无菌水，即对照组；S.e：1×108细胞/mL的葡萄酒酿酒酵母BY36菌悬液。不同字母代表差异显著(P<0.05)。
图4为葡萄酒酿酒酵母BY36对葡萄灰霉病、曲霉病、黑斑病、炭疽和红粉病的抑制效果。注：Control：无菌水，即对照组；S.e：1×108细胞/mL的葡萄酒酿酒酵母BY36菌悬液。不同字母代表差异显著(P<0.05)。
图5为葡萄酒酿酒酵母BY36对草莓灰霉病的抑制效果。注：Control：无菌水，即对照组；S.e：1×108细胞/mL的葡萄酒酿酒酵母菌悬液。不同字母代表差异显著(P<0.05)。
图6为葡萄酒酿酒酵母BY36对柑橘青霉病的抑制效果。注：Control：无菌水，即对照组；S.e：1×108细胞/mL的葡萄酒酿酒酵母菌悬液。不同字母代表差异显著(P<0.05)。
图7为葡萄酒酿酒酵母BY36对圣女果灰霉病和曲霉病的抑制效果。注：Control：无菌水，即对照组；S.e：1×108细胞/mL的葡萄酒酿酒酵母菌悬液。不同字母代表差异显著(P<0.05)。
具体实施方式
实施例1：葡萄酒酿酒酵母Saccharomyces ellipsoideus菌株BY36的生物学特性
1.形态学特征
(1)YPDA培养基(酵母浸粉1％，蛋白胨2％，葡萄糖2％，琼脂1.8％，121℃灭菌20min)上26℃培养48h，菌落呈圆形、白色，菌落边缘光滑圆润。细胞形态呈椭球型。
(2)在YPDA液体培养基中培养24h后，不形成醭，菌液浑浊，有沉淀，镜检酵母细胞呈椭圆形，芽殖。
2.分子生物学鉴定
以通用正向引物NL-1(5’-GCATATCAATAAGCGGAGGAAAAG-3’)和反向引物NL-4(5’-GGTCCGTGT TTCAAGACGG-3’)进行PCR扩增酵母26S rDNA D1/D2区核酸序列，将PCR产物的测序结果输入网站www.NCBI.nlm.nih.gov进行BLAST，从GenBank数据库中下载同源序列，通过MEGA6软件构建进化树如图1，确定筛选到的菌株为葡萄酒酿酒酵母(Saccharomycesellipsoideus)。
本发明的葡萄酒酿酒酵母BY36已保藏于中国北京市朝阳区北辰西路1号院3号的中国科学院微生物研究所的中国微生物菌株保藏委员会普通微生物中心，保藏时间为2017年11月15日，保藏编号为CGMCC No.14910，建议的分类命名为葡萄酒酿酒酵母Saccharomyces ellipsoideus。
实施例2葡萄酒酿酒酵母BY36对苹果青霉病和灰霉病的抑制效果
1.实验方案
将葡萄酒酿酒酵母BY36从-80℃冰箱取出，用YPDA培养基(酵母浸粉10g，蛋白胨20g，葡萄糖20g，琼脂18g，去离子水1000ml，自然pH，121℃灭菌30min)活化，挑取单菌落至YPD液体培养基里，于26℃、200r/min条件下培养24h，4000rpm离心5min，弃上清，收集的菌体用无菌水反复清洗3次，血球计数板计数配成配制成浓度为1×108细胞/mL的葡萄酒酿酒酵母BY36菌悬液。
将青霉病菌(Penicillium expansum)或灰霉病菌(Botrytis cinerea)在PDA培养基平板上激活，26℃下培养7～14d，刮取适量孢子，用无菌水配制成浓度为5×104细胞/mL的青霉病菌或灰霉病菌孢子悬浮液。
将健康无损的苹果果实用2％次氯酸钠消毒5min，用去离子水冲洗，晾干，用无菌打孔器在果实赤道处打5个孔,表面伤口为2mm(直径)×2mm(深)。每个伤口处等量加入20μL以下处理液：(1)1×108细胞/mL的葡萄酒酿酒酵母BY36菌悬液；(2)无菌蒸馏水。4h后接种20μL青霉病菌或灰霉病菌孢子悬浮液。晾干后，将果实放入塑料箱，保持相对湿度95％，置于室温(25℃)4天后记录果实发病率，以此评价葡萄酒酿酒酵母BY36的抑菌效果。发病率的计算公式为：发病率(％)＝发病的果实/果实总数×100％。
2.试验结果
按照上述步骤试验，统计苹果的发病率结果如下：
(1)葡萄酒酿酒酵母BY36对苹果青霉病的抑制效果
如图2所示，对照组苹果青霉病发病率为100％，经过葡萄酒酿酒酵母BY36处理的苹果青霉病发病率为20％，因此葡萄酒酿酒酵母BY36能够有效控制苹果青霉病病害。
(2)葡萄酒酿酒酵母BY36对苹果灰霉病的抑制效果
如图2所示，对照组苹果灰霉病的发病率为100％，经过葡萄酒酿酒酵母BY36处理的苹果灰霉病发病率为0，因此毕赤酵BY36能够有效控制苹果灰霉病病害。
实施例3葡萄酒酿酒酵母BY36对梨果实灰霉病的抑制效果
1.实验方案
将葡萄酒酿酒酵母BY36从-80℃冰箱取出，用YPDA培养基(酵母浸粉10g，蛋白胨20g，葡萄糖20g，琼脂18g，去离子水1000ml，自然pH，121℃灭菌30min)活化，挑取单菌落至YPD液体培养基里，于26℃、200r/min条件下培养24h，4000rpm离心5min，弃上清，收集的菌体用无菌水反复清洗3次，血球计数板计数配成配制成浓度为1×108细胞/mL的葡萄酒酿酒酵母BY36菌悬液。
将灰霉病菌(Botrytis cinerea)在PDA培养基平板上激活，26℃下培养7～14d，刮取适量孢子，用无菌水配制成浓度为5×104细胞/mL的灰霉病菌孢子悬浮液。
将健康无损的梨果实用2％次氯酸钠消毒5min，用去离子水冲洗，晾干，用无菌打孔器在果实赤道处打5个孔,表面伤口为2mm(直径)×2mm(深)。每个伤口处等量加入20μL以下处理液：(1)1×108细胞/mL的葡萄酒酿酒酵母BY36菌悬液；(2)无菌蒸馏水。4h后接种20μL灰霉病菌孢子悬浮液。晾干后，将果实放入塑料箱，保持相对湿度95％，置于室温(25℃)4天后记录果实发病率，以此评价葡萄酒酿酒酵母BY36的抑菌效果。发病率的计算公式为：发病率(％)＝发病的果实/果实总数×100％。
2.试验结果
按照上述步骤试验,统计梨果实的发病率结果如图3所示，对照组梨果实灰霉病的发病率为100％，经过葡萄酒酿酒酵母BY36处理的梨果实灰霉病发病率为66％，因此葡萄酒酿酒酵母BY36能够有效控制梨果实灰霉病病害。
实施例4葡萄酒酿酒酵母BY36对葡萄采后病害的抑制效果
1.实验方案
将葡萄酒酿酒酵母BY36从-80℃冰箱取出，用YPDA培养基(酵母浸粉10g，蛋白胨20g，葡萄糖20g，琼脂18g，去离子水1000ml，自然pH，121℃灭菌30min)活化，挑取单菌落至YPD液体培养基里，于26℃、200r/min条件下培养24h，4000rpm离心5min，弃上清，收集的菌体用无菌水反复清洗3次，血球计数板计数配成配制成浓度为1×108细胞/mL的葡萄酒酿酒酵母BY36菌悬液。
将灰霉菌(Botrytis porri)、刺孢曲霉(Aspergillus aculeatus)、链格孢菌(Alternaria eichhorniae)、果生炭疽菌(Colletotrichum fructicola)或粉红单端孢(Trichothecium roseum)在PDA培养基平板上激活，26℃下培养7～14d，刮取适量孢子，用无菌水配制成浓度为5×104细胞/mL的灰霉菌、刺孢曲霉、链格孢菌、果生炭疽菌或粉红单端孢孢子悬浮液。
将健康无损的葡萄果实用2％次氯酸钠消毒5min，用去离子水冲洗，晾干，用无菌打孔器在果实赤道处打1个孔,表面伤口为2mm(直径)×2mm(深)。每个伤口处等量加入20μL以下处理液：(1)1×108细胞/mL的葡萄酒酿酒酵母BY36菌悬液；(2)无菌蒸馏水。4h后接种20μL灰霉菌、刺孢曲霉、链格孢菌、果生炭疽菌或粉红单端孢孢子悬浮液。晾干后，将果实放入塑料箱，保持相对湿度95％，置于室温(25℃)4天后记录果实发病率，以此评价葡萄酒酿酒酵母BY36的抑菌效果。发病率的计算公式为：发病率(％)＝发病的果实/果实总数×100％。
2.试验结果
按照上述步骤试验，统计葡萄果实的发病率结果如下：
(1)葡萄酒酿酒酵母BY36对葡萄果实灰霉病的抑制效果
如图4所示，对照组葡萄果实灰霉病发病率为85％，经过葡萄酒酿酒酵母BY36处理的葡萄果实灰霉病发病率为0，因此葡萄酒酿酒酵母BY36能够有效控制葡萄果实灰霉病病害。
(2)葡萄酒酿酒酵母BY36对葡萄果实曲霉病的抑制效果
如图4所示，对照组葡萄果实曲霉病的发病率为100％，经过葡萄酒酿酒酵母BY36处理的葡萄果实曲霉病发病率为0，因此葡萄酒酿酒酵母BY36能够有效控制由造成的葡萄果实曲霉病病害。
(3)葡萄酒酿酒酵母BY36对葡萄果实黑斑病的抑制效果
如图4所示，对照组葡萄黑斑病的发病率为100％，经过葡萄酒酿酒酵母BY36处理的葡萄黑斑病发病率为60％，因此葡萄酒酿酒酵母BY36能够有效控制葡萄黑斑病病害。
(4)葡萄酒酿酒酵母BY36对葡萄炭疽病的抑制效果
如图4所示，对照组葡萄炭疽病的发病率为93％，经过葡萄酒酿酒酵母BY36处理的葡萄炭疽病发病率为73％，因此葡萄酒酿酒酵母BY36能够有效控制葡萄炭疽病病害。
(5)葡萄酒酿酒酵母BY36对葡萄红粉病的抑制效果
如图4所示，对照组葡萄红粉病的发病率为100％，经过葡萄酒酿酒酵母BY36处理的葡萄红粉病发病率为73％，因此葡萄酒酿酒酵母BY36能够有效控制葡萄红粉病病害。
实施例5葡萄酒酿酒酵母BY36对草莓果实灰霉病的抑制效果
1.实验方案
将葡萄酒酿酒酵母BY36从-80℃冰箱取出，用YPDA培养基(酵母浸粉10g，蛋白胨20g，葡萄糖20g，琼脂18g，去离子水1000ml，自然pH，121℃灭菌30min)活化，挑取单菌落至YPD液体培养基里，于26℃、200r/min条件下培养24h，4000rpm离心5min，弃上清，收集的菌体用无菌水反复清洗3次，血球计数板计数配成配制成浓度为1×108细胞/mL的葡萄酒酿酒酵母BY36菌悬液。
将灰霉病菌(Botrytis porri)在PDA培养基平板上激活，26℃下培养7～14d，刮取适量孢子，用无菌水配制成浓度为5×104细胞/mL的灰霉病菌孢子悬浮液。
将健康无损的草莓果实用2％次氯酸钠消毒5min，用去离子水冲洗，晾干，用无菌打孔器在果实赤道处打1个孔,表面伤口为2mm(直径)×2mm(深)。每个伤口处等量加入20μL以下处理液：(1)1×108细胞/mL的葡萄酒酿酒酵母BY36菌悬液；(2)无菌蒸馏水。4h后接种20μL灰霉病菌孢子悬浮液。晾干后，将果实放入塑料箱，保持相对湿度95％,置于室温(25℃)4天后记录果实发病率，以此评价葡萄酒酿酒酵母BY36的抑菌效果。发病率的计算公式为：发病率(％)＝发病的果实/果实总数×100％。
2.试验结果
按照上述步骤试验，统计草莓果实的发病率结果如图5所示，对照组草莓果实灰霉病发病率为78％，经过葡萄酒酿酒酵母BY36处理的草莓果实灰霉病发病率为45％，因此葡萄酒酿酒酵母能够有效控制草莓果实灰霉病病害。
实施例6葡萄酒酿酒酵母BY36对柑橘青霉病的抑制效果
1.实验方案
将葡萄酒酿酒酵母BY36从-80℃冰箱取出，用YPDA培养基(酵母浸粉10g，蛋白胨20g，葡萄糖20g，琼脂18g，去离子水1000ml，自然pH，121℃灭菌30min)活化，挑取单菌落至YPD液体培养基里，于26℃、200r/min条件下培养24h，4000rpm离心5min，弃上清，收集的菌体用无菌水反复清洗3次，血球计数板计数配成配制成浓度为1×108细胞/mL的葡萄酒酿酒酵母BY36菌悬液。
将青霉病菌(Penicillium italicum)在PDA培养基平板上激活，26℃下培养7～14d，刮取适量孢子，用无菌水配制成浓度为5×104细胞/mL的青霉病菌(孢子悬浮液。
将健康无损的柑橘果实用2％次氯酸钠消毒5min，用去离子水冲洗，晾干，用无菌打孔器在果实赤道处打1个孔,表面伤口为2mm(直径)×2mm(深)。每个伤口处等量加入20μL以下处理液：(1)1×108细胞/mL的葡萄酒酿酒酵母BY36菌悬液；(2)无菌蒸馏水。4h后接种20μL青霉病菌孢子悬浮液。晾干后，将果实放入塑料箱，保持相对湿度95％，置于室温(25℃)4天后记录果实发病率，以此评价葡萄酒酿酒酵母BY36的抑菌效果。发病率的计算公式为：发病率(％)＝发病的果实/果实总数×100％。
2.试验结果
按照上述步骤试验，统计柑橘果实的发病率结果如图6所示，对照组柑橘果实青霉病发病率为73％，经过葡萄酒酿酒酵母BY36处理的柑橘果实青霉病发病率为26％，因此葡萄酒酿酒酵母BY36能够有效控制柑橘果实青霉病病害。
实施例7葡萄酒酿酒酵母BY36对圣女果灰霉病和曲霉病的抑制效果
1.实验方案
将葡萄酒酿酒酵母BY36从-80℃冰箱取出，用YPDA培养基(酵母浸粉10g，蛋白胨20g，葡萄糖20g，琼脂18g，去离子水1000ml，自然pH，121℃灭菌30min)活化，挑取单菌落至YPD液体培养基里，于26℃、200r/min条件下培养24h，4000rpm离心5min，弃上清，收集的菌体用无菌水反复清洗3次，血球计数板计数配成配制成浓度为1×108细胞/mL的葡萄酒酿酒酵母BY36菌悬液。
将灰霉病菌(Botrytis porri)或刺孢曲霉(Aspergillus aculeatus)在PDA培养基平板上激活，26℃下培养7～14d，刮取适量孢子，用无菌水配制成浓度为5×104细胞/mL的灰霉病菌或刺孢曲霉孢子悬浮液。
将健康无损的圣女果用2％次氯酸钠消毒5min，用去离子水冲洗，晾干，用无菌打孔器在果实赤道处打1个孔,表面伤口为2mm(直径)×2mm(深)。每个伤口处等量加入20μL以下处理液：(1)1×108细胞/mL的葡萄酒酿酒酵母BY36菌悬液；(2)无菌蒸馏水。4h后接种20μL灰霉病菌(Botrytis porri)或刺孢曲霉(Aspergillus aculeatus)孢子悬浮液。晾干后，将果实放入塑料箱，保持相对湿度95％，置于室温(25℃)4天后记录果实发病率，以此评价葡萄酒酿酒酵母菌株BY36的抑菌效果。发病率的计算公式为：发病率(％)＝发病的果实/果实总数×100％。
2.试验结果
按照上述步骤试验，统计圣女果发病率结果如下：
(1)葡萄酒酿酒酵母BY36对圣女果灰霉病的抑制效果
如图7所示，对照组圣女果灰霉病发病率为100％，经过葡萄酒酿酒酵母BY36处理的圣女果灰霉病发病率为53％，因此葡萄酒酿酒酵母BY36能够有效控制由灰霉病菌造成的圣女果灰霉病病害。
(2)葡萄酒酿酒酵母BY36对圣女果曲霉病的抑制效果
如图7中所示，对照组圣女果曲霉病的发病率为100％，经过葡萄酒酿酒酵母BY36处理的圣女果曲霉病发病率为66％，因此葡萄酒酿酒酵母BY36能够有效控制圣女果曲霉病病害。

Claims (4)

1.一株用于水果采后病害防治的葡萄酒酿酒酵母(Saccharomyces ellipsoideus)BY36菌株，其特征在于：所述BY36菌株已在中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心提交保藏，菌株保藏编号为CGMCC No.14910。
2.如权利要求1所述的BY36菌株在水果采后病害防治中的应用，其特征在于：按照以下步骤进行：将所述BY36菌株活化，用YPD液体培养基发酵培养，离心得到菌体，将菌体用无菌水配制成浓度为1×108细胞/mL的菌悬液；将水果放入菌悬液中，浸泡30秒后取出，风干；放入保鲜盒中，密封后，放入常温贮藏；所述水果选自苹果、梨、葡萄、草莓、柑橘和圣女果；
所述BY36菌株用于控制苹果的扩展青霉病菌(Penicillium expansum)或灰霉菌(Botrytis cinerea)，梨果实的灰霉菌(Botrytis cinerea)，葡萄的大蒜盲种葡萄孢(Botrytis porri)、刺孢曲霉(Aspergillus aculeatus)、水葫芦链格孢(Alternaria eichhorniae)、果生炭疽菌(Colletotrichum fructicola)或粉红单端孢(Trichothecium roseum)，草莓的大蒜盲种葡萄孢(Botrytis porri)，柑橘的意大利青霉病菌(Penicillium italicum)，以及圣女果的大蒜盲种葡萄孢(Botrytis porri)或刺孢曲霉(Aspergillus aculeatus)。
3.根据权利要求2所述的应用，其特征在于，将菌株从-80℃冰箱取出，用YPDA培养基活化，挑取单菌落至YPD液体培养基里，于26℃、200r/min条件下培养24h，4000rpm离心5min收集菌体，用无菌水洗3遍。
4.根据权利要求3所述的应用，其特征在于所述YPDA培养基是：酵母浸粉10g，蛋白胨20g，葡萄糖20g，琼脂18g，去离子水1000ml，自然pH，121℃灭菌30min。
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