CN107586758B - 一种干细胞样记忆性t细胞体外诱导剂及诱导方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开一种干细胞样记忆性T细胞体外诱导剂及诱导方法,属于细胞诱导剂和细胞诱导方法技术领域。所述的诱导剂包括红桂木凝集素;所述的诱导剂还包括细胞因子IL‑2;所述的干细胞样记忆性T细胞为CD3+细胞的亚群。本研究发现了ALL联合细胞因子IL‑2可以在体外诱导TSCM细胞产生并促使增殖和集落形成,快速诱导CD3+T细胞扩增为TSCM,有效提高CD3+TSCM的绝对数和形成比例,其诱导效果优于单独使用红桂木凝集素或细胞因子IL‑2进行扩增的效果。
Description
技术领域
本发明属于一种细胞培养诱导剂及细胞的诱导方法,具体涉及一种干细胞样记忆性T细胞体外诱导剂及诱导方法。
背景技术
2005年,Zhang等在研究小鼠移植物抗宿主反应疾病(graft versus hostdisease,GVHD)模型中发现,一群来源于供体的CD8+T细胞在GVHD发生的过程中持续存在,造成宿主损伤。与初始T细胞或成熟记忆性T细胞相比,这群T细胞具有干细胞的特征,即能够自我更新,在体内能够分化产生中枢性和效应性记忆性CD8+T细胞,并且产生的这些子代细胞表现出记忆性T细胞的特征,能够快速对再次免疫的抗原产生反应并且分化为效应细胞,引起GVHD。研究人员将这群细胞定义为“干细胞样记忆性T细胞”,或称为“TSCM细胞”。
TSCM细胞具备快速增殖能力,在归巢因子IL-15和IL-7作用下,能够快速的增殖,CD8+TSCM细胞在IL-15作用下能快速的分裂,这种分裂方式与干细胞非常类似,增殖的两个子代细胞中,一个子代细胞继续分化为其他细胞类型,另外一个自我复制,依然维持母代细胞的表型,因此虽然经历多代细胞分裂,部分细胞仍然处于静息状态,依然具有产生子代细胞的增值和分化能力。在IL-7的刺激下,CD4+TSCM细胞具有相似的能力。TSCM细胞一方面可分泌具有杀伤能力的细胞因子,如IFN-γ、TNF-α、granzyme B 等;另一方面,在遇到抗原刺激时还可迅速分化成为效应T 细胞,中央记忆性T 细胞以及效应记忆性T 细胞,发挥其快速免疫应答的功能。
TSCM细胞具有很强的抗肿瘤功能,无论在动物模型和人源化小鼠黑色素瘤模型中均观察到这种现象。研究人员推测TSCM细胞的抗肿瘤效应,除了可能由于其具有很强的增殖能力和分化能力,同时也与自身能够产生抗肿瘤的细胞因子如IFN-γ有关。另外,TSCM白血病的治疗中也表现出较强的免疫抗肿瘤能力。
这群细胞作为一种具有自我更新能力和多能性潜力的T细胞亚群,在诸多的免疫性疾病中都发挥着重要的作用。
上述研究结果提示TSCM细胞具备干细胞的特性,具有很强的增殖和分化能力,体外移植实验表明其具有很强的生存能力,TSCM细胞能有效的扩增,并保持长效的记忆T细胞能力,TSCM细胞所具备的这些特征解决了临床上移植细胞体外扩增难的问题。其次,TSCM细胞很强的生存能力使得植入体内细胞生存时间延长,并且自身能够产生具有抗肿瘤功能的细胞因子。因此人们还可以进一步探索如何利用体外扩增TSCM细胞来作为新的过继免疫治疗策略。TSCM细胞有可能成为最为有效的ACT(the adoptive cell transfer,ACT)治疗肿瘤的细胞类型。由于TSCM细胞在人体中的比例非常低,由此,探索如何能够诱导这种细胞快速扩增的方法就变得尤为重要和迫切。
红桂木凝集素(artocarpuslingnanensislectin,ALL)是一种性质稳定、凝集活性高的植物凝集素,有研究发现,ALL能诱导T细胞的活化,能促进人外周血单核细胞来源的树突状细胞的成熟及增殖。基于ALL在激活T细胞、树突状细胞增殖生长方面的重要作用,联合细胞因子IL-2,本研究试图探索ALL在体外是否可诱导人TSCM细胞的扩增,并检测其在TSCM细胞诱导生成中的作用。
发明内容
本发明的目的是提供一种红桂木凝集素联合细胞因子IL-2在体外诱导人外周血CD3+T细胞产生人TSCM细胞的扩增。
本发明的另一目的是提供一种干细胞样记忆性T细胞体外诱导扩增的方法。为实现本发明目的所使用的技术方案为:
一种干细胞样记忆性T细胞体外诱导剂,所述的诱导剂包括红桂木凝集素;
所述的诱导剂还包括细胞因子IL-2;
所述的干细胞样记忆性T细胞为CD3+细胞的亚群。
优选的,所述的CD3+细胞的亚群是指在CD3+细胞中选定CD45RA+CD45RO -的细胞亚群,进一步再选出CD62L+CCR7+的细胞亚群,随后在这个亚群细胞的基础上,选定CD95 +CD122 +双阳性细胞。
一种干细胞样记忆性T细胞体外诱导方法,具体步骤为:
(1)将分选获得的CD3+细胞置于添加有流式细胞术用抗体的细胞培养液中培养;
(2)在培养液中加入诱导剂红桂木凝集素和细胞因子IL-2进行诱导培养;
(3)诱导培养完成后,分选出CD3+ TSCM细胞。
优选的,所述的红桂木凝集素的浓度为2.5~10ug/ml,所述的细胞因子IL-2的浓度为5~25 ng/ml。
优选的,所述的红桂木凝集素的浓度为7.5ug/ml,所述的细胞因子IL-2的浓度为12.5ng/ml。
优选的,所述的TSCM细胞培养时间在6~8天左右。
优选的,所述的流式细胞术用抗体包括human CD3-APC、FITC、human CD8-APC、human CD8-Pacific blue、humanCD45RA-PE、human CD45RO-PE-Cy5、human CD62L-PE-Cy7、human CCR7-FITC、human CD95-PE-Cy5和human CD122-PE的一种或多种。
一种红桂木凝集素在制备干细胞样记忆性T细胞体外诱导剂的应用。
一种红桂木凝集素和细胞因子IL-2在制备干细胞样记忆性T细胞体外诱导剂的应用。
本发明突出的实质性进步和显著的特点是:
本研究发现了ALL联合细胞因子IL-2可以在体外诱导TSCM细胞产生并促使增殖和集落形成,快速诱导CD3+ T细胞扩增为TSCM,有效提高CD3+ TSCM的绝对数和形成比例,其诱导效果优于单独使用红桂木凝集素或细胞因子IL-2进行扩增的效果。
ALL联合细胞因子IL-2可以在体外诱导TSCM细胞产生,具有一定的浓度梯度依赖性,其中最佳的浓度组合是7.5ug/ml ALL+12.5ng/ml IL-2。随着处理时间的延长,能够诱导产生更多的TSCM细胞。但是,如果处理时间过长,细胞会出现一定程度的死亡。因此,诱导TSCM的最佳时间为6~8天。
本发明提供的ALL、细胞因子IL-2具有安全性高,不存在药物毒性,能为过继免疫治疗的广泛开展提供了良好的技术支持。
附图说明
图1是构建的流式检测TSCM细胞的模板。
图2是ALL+IL-2处理组对TSCM细胞扩增结果。
图3是ALL处理组对TSCM细胞扩增结果。
图4是IL-2处理组对TSCM细胞扩增结果。
图5是不同浓度ALL,IL-2,以及ALL+IL-2组合对TSCM细胞增殖率的影响;
其中A1~A4分别为:2.5ug/ml、5ug/ml、7.5ug/ml、10ug/ml的ALL;
B1~B4分别为:5ng/ml、7.5ng/ml、12.5ng/ml、25ng/ml的IL-2;
C1~C16分别为:2.5ug/ml ALL+5ng/ml IL-2、2.5ug/ml ALL+7.5ng/ml IL-2、
2.5ug/ml ALL+12.5ng/ml IL-2、2.5ug/ml ALL+25ng/ml IL-2、5ug/ml ALL+5ng/ml IL-2、
5ug/ml ALL+7.5ng/ml IL-2、5ug/ml ALL+12.5ng/ml IL-2、5ug/ml ALL+25ng/mlIL-2、
7.5ug/ml ALL+5ng/ml IL-2、7.5ug/ml ALL+7.5ng/ml IL-2、7.5ug/ml ALL+12.5ng/ml IL-2、7.5ug/ml ALL+25ng/ml IL-2、10ug/ml ALL+5ng/ml IL-2、10ug/ml ALL+7.5ng/ml IL-2、
10ug/ml ALL+12.5ng/ml IL-2和10ug/ml ALL+25ng/ml IL-2。
图6是不同浓度ALL、IL-2和ALL+IL-2组合对TSCM细胞集落生成的影响。
图7不同浓度ALL、IL-2和ALL+IL-2组合对TSCM细胞生成比率的影响。
图8 培养时间对生成TSCM细胞的影响。
具体实施方式
下面结合实施例对本发明方案做进一步详细描述,下述说明仅是为了解释本发明,并不对其内容进行限定。
实施例1
1 材料
健康人的外周成分血由南宁市血液中心提供。
2 主要试剂和仪器
人外周血淋巴细胞分离液( 天津市灏洋生物制天津市灏洋生物制品科技有限公司),RPMI-1640培养基( Gibco,美国),胎牛血清( FBS)( Gibco,美国),青-链霉素双抗( Gibco,美国),生物安全柜,细胞培养箱( Thermo),离心机( Eppendorf),光学倒置生物显微镜( Leica),分析型流式,细胞仪( BD),流式细胞术用抗体包括human CD3-APC、FITC、human CD8-APC、human CD8-Pacific blue、humanCD45RA-PE、human CD45RO-PE-Cy5、human CD62L-PE-Cy7、human CCR7-FITC、human CD95-PE-Cy5和human CD122-PE 均购自BDPharmingen。
3 主要方法
3.1 分离人外周血T细胞( peripheral blood mononuclearcells,PBMCs) 的分离2.5 mL 抗凝人外周成分血,加入等体积的生理盐水稀释,混匀后把稀释后的血贴壁缓缓加入已装有2.5mL 人外周淋巴细胞分离液的15 mL 离心管中,2500 r /min 离心25 min,离心后,小心吸取悬于液体中间白膜层细胞,转移至15 mL离心管中,加入5倍体积的PBS 缓冲液洗细胞,1500 r /min离心10 min ,弃上清液。重复清洗细胞1次。用RPMI-1640完全培养基悬浮细胞,37℃ 5% CO2培养箱培养3~4 h,转移悬浮细胞至新培养瓶。
3.2 构建流式检测TSCM细胞的方法:采取4步法来鉴定和分析TSCM细胞。首先选定CD3+细胞,然后在CD3+细胞中选定CD45RA+CD45RO -的细胞亚群,进一步再选出CD62L+CCR7+的细胞亚群,随后在这个亚群细胞的基础上,选定CD95 +CD122 +双阳性的细胞;该群细胞就是本研究所要关注的TSCM细胞。
3.3 刺激因子对生成TSCM细胞的影响:在96孔板中设置各处理组。对照组:不加任何刺激。ALL组:分别加2.5ug/ml、 5ug/m、7.5ug/ml、10ug/ml的ALL。
IL-2组:分别加5ng/ml、7.5ng/ml、12.5ng/m、25ng/ml的IL-2。
ALL+IL-2联合组:分别加2.5ug/ml ALL+5ng/ml IL-2、2.5ug/ml ALL+7.5ng/mlIL-2、
2.5ug/ml ALL+12.5ng/ml IL-2、2.5ug/ml ALL+25ng/ml IL-2、 5ug/ml ALL+5ng/ml IL-2、
5ug/ml ALL+7.5ng/ml IL-2、5ug/ml ALL+12.5ng/ml IL-2、5ug/ml ALL+25ng/mlIL-2、
7.5ug/ml ALL+5ng/ml IL-2、7.5ug/ml ALL+7.5ng/ml IL-2、7.5ug/ml ALL+12.5ng/ml IL-2、7.5ug/ml ALL+25ng/ml IL-2、10ug/ml ALL+5ng/ml IL-2、10ug/ml ALL+7.5ng/ml IL-2、
10ug/ml ALL+12.5ng/ml IL-2、10ug/ml ALL+25ng/ml IL-2,培养0~12天, 倒置显微镜下观察细胞的生长,并记录细胞集落。
CCK实验每孔加入CCK-8溶液10μl,37℃继续培养2小时,用Bio-Rad酶标仪在450nm处检测吸光度值,计算增殖率。实验重复3 次。测吸光度值,计算增殖率;增殖率( %) =(阳性对照组OD 值-阴性对照组的OD 值) /阴性对照组的OD 值× 100%。
3.4 细胞亚群的检测和分析在细胞培养的第2、4、6、8、10和12天,分别收取细胞标记抗体(human CD3-APC、FITC、human CD8-APC、human CD8-Pacific blue、humanCD45RA-PE、human CD45RO-PE-Cy5、human CD62L-PE-Cy7、human CCR7-FITC、human CD95-PE-Cy5和human CD122-PE) 检测TSCM的比例。
4 统计学处理
采用SPSS 13. 0 分析软件进行统计分析,计量资料所有结果统一用均数±标准差( mean ± SD) 表示。各个实验组与对照组之间采用单因素方差分析进行比较,以P <0. 05 为差异有统计学意义。
实施例2
5.结果
5.1 构建流式检测TSCM细胞的方法
本研究首先构建了一个流式检测TSCM细胞的模板,见图1,将刺激后的T细胞进行抗体标记,在分析的过程中,采取4步法来鉴定和分析TSCM细胞。首先选定CD3+细胞,然后在CD3+细胞中选定CD45RA+CD45RO -的细胞亚群,进一步再选CD62L+CCR7+的细胞亚群,随后在这个亚群细胞的基础上,选定CD95 +CD122 +双阳性的细胞。该群细胞就是本研究所要关注的TSCM细胞。
5.2 检测ALL、IL-2 对TSCM细胞扩增效果的影响
加ALL和IL-2处理的细胞2、4、6、8、10、12天后,细胞生长良好, 聚集成团并形成丰富集落;高倍镜下可见细胞染色质疏松、胞质丰富;单独加ALL处理的细胞,生长良好,能够聚集成集落,但是细胞密度、集落的丰富度不如加ALL+IL-2联合处理的细胞;单独加IL-2处理的组能够促使细胞增殖,但是不能形成集落。结果如图2~图4。
5.3 不同浓度的ALL+IL-2浓度处理对细胞增殖,集落形成和TSCM产生率的影响
处理6天之后,用CCK8方法对各处理组促进T细胞的增殖情况进行检测发现,随着ALL和IL-2浓度的增加,细胞的增殖得到显著的促进。单纯ALL处理T细胞,细胞增殖率随着ALL的浓度增加而增大,IL-2处理组的增殖幅度则较小,ALL+IL-2联合处理组的细胞增殖率均比单纯ALL处理组、IL-2处理组的高,其中7.5ug/ml ALL+12.5ng/ml IL-2处理的细胞增殖率最高。(见图5)
处理6天之后,观察并记录各处理组促进T细胞的集落生成情况时检测发现,单纯ALL处理T细胞,细胞生成集落的数量随着ALL的浓度增加而增大,而单纯用IL-2处理的细胞集落的生成不明显,ALL+IL-2联合处理组的细胞集落数生成也依赖ALL的浓度呈现增长。(见图6)
处理6天之后,应用已构建的流式检测TSCM细胞的模板对诱导产生的TSCM细胞进行检测发现,随着ALL浓度的增加,TSCM细胞的产生比例显著增加促进。单纯ALL处理T细胞,细胞增殖率随着ALL的浓度增加而增大,单纯IL-2处理组的几乎没有诱导TSCM细胞的生成,ALL+IL-2联合处理组诱导产生的TSCM细胞比率均比单纯ALL处理组的高,其中7.5ug/mlALL+12.5ng/ml IL-2处理诱导产生的TSCM细胞比率最高。(见图7)
5.4 培养时间对生成TSCM细胞的影响
根据ALL、IL-2 浓度对T细胞增殖和集落生成的影响,我们选取了对细胞增殖和集落生成均能产生的浓度为7.5ug/ml ALL+12.5ng/ml IL-2的组合来刺激生成TSCM细胞。通过分别培养2、4、6、8、10和12天后,用已构建的流式检测TSCM细胞的模板对生成TSCM的比例进行检测发现,处理后TSCM的细胞比例分别为3.04%、7.34%、 11.65%、12.52%、8. 29%和5.25%,见图8。说明随着培养时间的增长TSCM细胞的比例逐渐增高,并且在6~8天左右达到最高,10天之后后TSCM的比例则下降。
以上所述仅为本发明的优选实施例而已,并不用于限制本发明,对于本领域的技术人员来说,本发明可以有各种更改和变化。凡在本发明的精神和原则之内所作的任何修改、等同替换、改进等,均应包含在本发明的包含范围之内。
Claims (6)
1. 一种干细胞样记忆性T细胞体外诱导剂,其特征在于,所述的诱导剂包括红桂木凝集素;所述的诱导剂还包括细胞因子IL-2;所述的干细胞样记忆性T细胞为 CD3+CD45RA+CD45RO-CD62L+CCR7+CD95+CD122+细胞亚群;其中,所述的红桂木凝集素的浓度为2.5 ~ 10µg/ml,所述的细胞因子IL-2的浓度为5 ~ 25 ng/ml。
2.一种干细胞样记忆性T细胞体外诱导方法,其特征在于,具体步骤为:
(1)将分选获得的CD3+细胞置于添加有流式细胞术用抗体的细胞培养液中培养;所述的流式细胞术用抗体包括human CD3-APC、FITC、human CD8-APC、human CD8-Pacific blue、human CD45RA-PE、human CD45RO-PE-Cy5、human CD62L-PE-Cy7、human CCR7-FITC、humanCD95-PE-Cy5和human CD122-PE的一种或多种;
(2)在培养液中加入诱导剂红桂木凝集素和细胞因子IL-2进行诱导培养;所述的红桂木凝集素的浓度为2.5 ~ 10µg/ml,所述的细胞因子IL-2的浓度为5 ~ 25 ng/ml;
(3)诱导培养完成后,分选出CD3+TSCM细胞;分选方法为在CD3+细胞中选定CD45RA+ CD45RO-的细胞亚群,进一步再选出CD62L+ CCR7+的细胞亚群,随后在这个亚群细胞的基础上,选定CD95+ CD122+双阳性细胞。
3.根据权利要求2所述的干细胞样记忆性T细胞体外诱导方法,其特征在于,所述的红桂木凝集素的浓度为7.5µg/ml,所述的细胞因子IL-2的浓度为12.5ng/ml。
4.根据权利要求2所述的干细胞样记忆性T细胞体外诱导方法,其特征在于,所述的TSCM细胞培养时间在6 ~ 8天。
5.一种红桂木凝集素在制备干细胞样记忆性T细胞体外诱导剂的应用,其特征在于,所述的干细胞样记忆性T细胞为CD3+CD45RA+CD45RO-CD62L+CCR7+CD95+CD122+细胞亚群;所述的红桂木凝集素的浓度为2.5 ~ 10µg/ml。
6.一种红桂木凝集素和细胞因子IL-2的组合在制备干细胞样记忆性T细胞体外诱导剂的应用,其特征在于,所述的干细胞记忆性T细胞为CD3+CD45RA+CD45RO-CD62L+CCR7+CD95+CD122+细胞亚群;所述的红桂木凝集素的浓度为2.5 ~ 10µg/ml,所述的细胞因子IL-2的浓度为5 ~ 25 ng/ml。
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