CN107557346B - 一株h9亚型低致病性禽流感病毒及其应用 - Google Patents

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Abstract

本发明公开了一株H9亚型低致病性禽流感病毒,分类命名:H9亚型禽流感病毒X‑13毒株,保藏单位:中国典型培养物保藏中心,保藏单位简称:CCTCC,保藏单位地址:中国.武汉.武汉大学,保藏日期:2017年7月26日,保藏编号:CCTCC NO:V201733。本发明提供的H9亚型禽流感病毒X‑13毒株具有良好的特异性和免疫原性,免疫鸡群能抵抗新型H9亚型禽流感病毒的感染。本发明作为对抗新型H9亚型禽流感病毒的疫苗毒株,可以预防禽类的H9亚型禽流感,也可以用于病毒的鉴定和流行病学的调查。

Description

一株H9亚型低致病性禽流感病毒及其应用
技术领域
本发明属于生物疫苗技术领域,具体涉及一株H9亚型低致病性禽流感病毒及其应用。
背景技术
禽流行性感冒(Avian Influenza,AI)简称禽流感,是由禽流感病毒(AvianInfluenza Virus,AIV)所引起的一种急性、热性、高度接触性传染病。禽流感病毒属于正粘病毒科、流感病毒属、A型禽流感病毒。病毒粒子感染谱广,呈多形性、多宿主性。将禽流感按致病力和毒力的不同划分,可以分为三类,分别为高致病性禽流感、低致病性禽流感和无致病性禽流感。低致病性禽流感主要以H9N2亚型为主,感染H9N2的临床症状主要表现为呼吸道症状,如:气管水肿、干酪样渗出物等。蛋鸡感染后症状不明显,多表现为产蛋率和孵化率下降。禽类感染禽流感病毒后表现的临床症状复杂,加之该病毒的亚型众多,各亚型间缺少交叉保护性,对养禽业危害巨大。
自从1994年我国首次在广东分离到H9N2亚型禽流感病毒以后,该病毒在我国广泛流行,主要危害表现为产蛋减少和混合感染致死等形式,对我国养禽业造成了巨大损失。为减少H9N2禽流感病毒的危害,自九十年代末起,以CK/GD/SS/94、CK/SD/6/96、和CK/SH/F/98等为代表的早期疫苗毒株在我国已经广泛使用,在我国早期H9亚型禽流感病毒的防控过程中发挥了巨大作用。然而,随着H9亚型禽流感病毒的不断变异,早期疫苗的保护效果开始下降。2010年河南省接种过疫苗的鸡场中,已经有零星的H9亚型禽流感暴发事件。
发明内容
本发明的目的是提供一株抗原特性不同于传统H9亚型禽流感疫苗毒株的新型H9亚型低致病性禽流感病毒毒株。
本发明的目的是以下述方式实现的:
一株H9亚型低致病性禽流感病毒,分类命名:H9亚型禽流感病毒X-13毒株,保藏单位:中国典型培养物保藏中心,保藏单位简称:CCTCC,保藏单位地址:中国.武汉.武汉大学,保藏日期:2017年7月26日,保藏编号:CCTCC NO:V201733。
如上述的H9亚型低致病性禽流感病毒在制备生产用种毒中的应用。
如上述的H9亚型低致病性禽流感病毒在制备H9亚型禽流感病毒诊断用抗原试剂中的应用。
如上述的H9亚型低致病性禽流感病毒在制备H9亚型禽流感病毒诊断用阳性血清试剂中的应用。
如上述的H9亚型低致病性禽流感病毒在制备H9亚型禽流感病毒治疗用抗血清中试剂的应用。
一种预防禽流感的疫苗,所述疫苗的活性成分包含灭活后的上述的H9亚型低致病性禽流感病毒。
本发明的H9N2亚型禽流感病毒毒株具有下述特点:
(1)所述毒株为禽流感病毒H9N2亚型毒株;
(2)所述毒株具有抗原特异性;
(3)所述毒株具有免疫原性。
(4)所述毒株能突破早期H9亚型禽流感疫苗的保护。
相对于现有技术,本发明提供的H9亚型禽流感病毒X-13毒株具有良好的特异性和免疫原性,免疫鸡群能抵抗新型H9亚型禽流感病毒的感染。本发明作为对抗新型H9亚型禽流感病毒的疫苗毒株,可以预防禽类的H9亚型禽流感,也可以用于病毒的鉴定和流行病学的调查。
附图说明
图1是HA基因的PCR产物在1%琼脂糖凝胶中电泳结果。
图2是NA基因的PCR产物在1%琼脂糖凝胶中电泳结果。
图3是交叉保护试验的病毒检出率。
图4是交叉保护试验检出的病毒滴度。
具体实施方式
申请人自2010年起,在河南省监测到多起H9亚型禽流感暴发的事件,陆续从免疫过H9亚型传统疫苗的禽流感暴发鸡场中分离到了36株H9亚型禽流感病毒毒株。在这些H9亚型禽流感病毒毒株中,经过HA、NA基因的序列比对和HI交叉保护试验的比较,筛选出一株抗原性优秀、免疫原性好、免疫效力高的新型H9亚型禽流感病毒X-13毒株A/chicken/Henan/13/2010(H9N2亚型)。该病毒的抗原特性已经发生改变,可以突破早期疫苗株的保护,感染鸡群。随着H9亚型禽流感病毒的不断变化,该病毒毒株作为原有H9亚型疫苗毒株的更替和储备是很有意义的。
一株H9亚型低致病性禽流感病毒,分类命名:H9亚型禽流感病毒X-13毒株,保藏单位:中国典型培养物保藏中心,保藏单位简称:CCTCC,保藏单位地址:中国.武汉.武汉大学,保藏日期:2017年7月26日,保藏编号:CCTCC NO:V201733。
如上述的H9亚型低致病性禽流感病毒在制备生产用种毒中的应用。
如上述的H9亚型低致病性禽流感病毒在制备H9亚型禽流感病毒诊断用抗原试剂中的应用。
如上述的H9亚型低致病性禽流感病毒在制备H9亚型禽流感病毒诊断用阳性血清试剂中的应用。
如上述的H9亚型低致病性禽流感病毒在制备H9亚型禽流感病毒治疗用抗血清中试剂的应用。
一种预防禽流感的疫苗,所述疫苗的活性成分包含灭活后的上述的H9亚型低致病性禽流感病毒。
实施例1:H9亚型禽流感病毒X-13毒株的分离与鉴定
1.流行病学调查
调查鸡群的临床表现、剖检病变及死亡率等情况。2010年12月河南新郑某大型养鸡场的三黄肉鸡群开始出现食欲不振、精神沉郁、咳嗽甩头、打喷嚏、呼吸困难等症状。剖检发现,发病鸡呼吸系统和消化道均有明显的病理变化,气管环有严重充血、出血,肺脏严重充血出血,小肠淋巴结红肿出血,肝脏和肾脏肿大。部分病鸡发生急性死亡,使用各种抗生素治疗无明显好转。
2.病料采集与处理
选择临床症状典型的濒死鸡,无菌采集气管、泄殖腔棉拭子,按体积加入适量含青霉素1000U/mL、链霉素1000U/mL的灭菌生理盐水,混匀后置4℃冰箱抑菌反应2h,-30℃冰箱中反复冻融3次后6000rpm离心10min取上清液,0.22μm无菌滤器过滤备用。
3.病毒鸡胚接种
将病毒液尿囊腔接种9~11日龄SPF鸡胚,每枚胚0.2mL,37℃孵化,每8h照蛋1次,将24h以前死亡的鸡胚弃去。收获24h后死亡的鸡胚及96h未死亡活鸡胚,置4℃冰箱冷却8~16h,无菌收获尿囊液,连续盲传3~5代。测定血凝性,弃去效价不超过1:16的鸡胚尿囊液,收获其他鸡胚尿囊液。
4.HA试验及HI试验
取10份来自不同SPF鸡胚的尿囊液,按β微量法在96孔V型板上进行HA试验。具体操作与结果判定按《中华人民共和国兽药典》进行。结果见表1。然后分别用抗NDV、抗H9亚型、抗H7亚型、抗H5亚型禽流感病毒标准阳性血清进行HI试验。具体操作与结果判定按《中华人民共和国兽药典》进行。所有样品检测结果均为H9亚型,都不与其他血清反应。
表1 HA试验结果
Figure GDA0002614654720000041
5.病毒纯化
对于有血凝性的尿囊液进行3次终点稀释法克隆纯化病毒,即每一次均将病毒稀释至最小感染剂量,接种9~10日龄SPF鸡胚,置37℃孵育,每8h照胚一次,弃去24h内死亡鸡胚,96h后收集鸡胚尿囊液,测其HA效价,弃去效价不超过7log2的鸡胚。以上有限稀释方法重复三次,得到纯化的病毒。
6.基因的扩增与分析
取病毒液用病毒RNA提取试剂盒(TAKARA)提取RNA,进行反转录操作,反转录引物:5’-AGCAAAAGCAGG-3’。取5μL RNA加入1μL反转录引物,70℃水浴10min,冰浴5min。然后加入dNTP 1μL、反转录酶0.5μL、5×反转录酶Buffer 4μL、RNasin 0.5μL、ddH2O 8μL,混匀后42℃水浴1h,70℃15min,所得即为反转录产物。反转录产物用PCR的方法扩增HA基因,其引物如下:
F1:5’-TATTCGTCTCAGGGAGCGAAAGCAGGGG-3’,
R1:5’-ATATCGTCTCGTATTAGTAGAAACAAGGGTGTTTT,
用PCR的方法扩增NA基因,其引物如下:
F1:5’-TATTGGTCTCAGGGAGCGAAAGCAGGAGT-3’,
R1:5’-ATATGGTCTCGTATTAGTAGAAACAAGGAGTTTTTT-3’,HA与NA基因的PCR反应体系:模板2μL,上、下游引物各1μL,mix Taq预混酶12.5μL,ddH2O 9.5μL,总体积25μL。反应程序:95℃5min;94℃20sec,58℃45sec,72℃2min,循环30次;72℃10min。HA预期扩增长度为1742+29bp,NA预期扩增长度为1413+29bp。将PCR产物在1%琼脂糖凝胶中电泳观察。结果见图1、图2。
7.H9亚型禽流感X-13毒株的鸡胚半数感染量(EID50)的测定
将H9亚型禽流感X-13毒株进行10倍梯度稀释,经尿囊腔途径接种10日龄SPF鸡胚,每个稀释度接种5枚鸡胚,接种量均为0.1mL,接种后用蜡密封,在37℃孵化器中培养,剔除24h内死亡胚,观察至96h,收集各组鸡胚尿囊液测定血凝价,效价不低于1:16判为感染。按Reed-Muench法计算每0.1mL细胞培养液中病毒的鸡胚半数感染量(EID50),结果见表2。
表2 H9亚型禽流感X-13毒株的EID50
Figure GDA0002614654720000051
注:*分母表示总SPF鸡胚数,分子表示为感染的鸡胚数。
实施例2:H9亚型禽流感X-13株病毒抗原的制备
1.H9亚型禽流感X-13毒株种子批的制备
取纯化后的H9亚型禽流感X-13毒株用灭菌生理盐水10-4倍稀释,接种9~10日龄SPF鸡胚,每枚鸡胚尿囊腔内接种0.1mL,接种后用蜡密封,置37℃孵化器孵育,每8h照胚一次,剔除24h内死亡鸡胚,观察至96h。收获鸡胚尿囊液于灭菌容器内,测定血凝价,凡效价低于7log2的鸡胚应弃去。同时作无菌检查。收获的病毒液灭活前在-30℃以下冻存,应不超过3个月。
2.无菌检验
按《中华人民共和国兽药典》进行病毒液的无菌检验与支原体检验。
3.抗原灭活
将甲醛溶液加入到病毒液中,使其终浓度为0.2%(V/V),震荡混匀后,转入另一无菌容器中,密封后37℃灭活24h,间隔4~6h震荡混匀一次。灭活后的病毒液取样品进行无菌检验。方法及判定标准按《中华人民共和国兽药典》进行。
4.乳化
油相的制备:取注射用白油、司本-80和硬脂酸铝按94:6:2的比例混合,加热至透明,经121℃高压灭菌后冷却备用,即为油相。
水相的制备:经灭活检验的病毒液按3%(V/V)加入灭菌后的司本-80,充分混合均匀,即成为水相。
乳化:取油相3份,打开电机慢速搅拌,然后徐徐加入1份水相,高速乳化至形成稳定油包水剂型。所制备得到的的免疫制品用于检验X-13病毒的免疫特性。
实施例3:H9亚型禽流感X-13毒株的免疫效果
1.血清学效力试验
50只7~10日龄SPF鸡随机分为2组,实验组30只,对照组20只。实验组于颈部皮下注射疫苗,接种免疫制剂剂量为0.3mL,其中抗原剂量为75μl。接种前采血1次,接种后每周采血一次,直到第5周。每次每组分别随机采血5只,分离血清,进行抗禽流感病毒H9亚型HI抗体的检测,结果取几何平均值。HI检测结果如表3所示,实验组免疫后28d达到高峰,之后也维持在高水平。
表3血清学效力检验
Figure GDA0002614654720000071
3.攻毒交叉保护试验
取70只3周龄的SPF鸡,取40只分为每组10只的1~4组,分别使用4种H9亚型禽流感商品疫苗:SS株(肇庆大华农生物药品有限公司,批号01708023)、SY株(杨凌绿方生物有限公司,批号20161004)、WD株(山东华宏生物工程有限公司,批号201703004)、YBF003株(青岛易邦生物工程有限公司,批号160271605)按照说明书进行免疫;取10只为第5组,作为X-13免疫组;取20只分别为每组10只的第6组和第7组,分别作为阳性对照组、阴性对照组。免疫3周后其抗体水平均达到较高水平,然后使用含有106EID50的X-13病毒液0.2mL静脉注射SPF鸡,攻毒5天后用棉拭子采集气管、泄殖腔分泌物,处理后每份病料接种SPF鸡胚,分别测定SPF鸡胚的血凝性,HA效价不低于1:16即判该病料为阳性,对于HA效价低于1:16的尿囊液盲传一代,如果HA效价不低于1:16仍然判该病料为阳性。根据阳性病料的数量计算出病毒检出率。根据以上结果,将同一组的阳性病料混合后,测定该组的平均病毒滴度(log10EID50/mL),反应出病毒的复制情况。结果如表4所示。使用1994年到2005年分离到的4种H9亚型禽流感商业疫苗免疫SPF鸡后,使用2010年分离到的H9亚型禽流感X-13毒株攻毒,攻毒5天后检测排毒,发现攻毒鸡的病毒检出率均在80%以上,即试验中4种早期的H9亚型禽流感商品化疫苗面对X-13病毒毒株的攻击,其产生的高水平抗体不能抵御X-13毒株的攻击。结果见图3、图4。
表4攻毒交叉保护试验
Figure GDA0002614654720000081
注:*分母表示攻毒鸡只数,分子表示病毒分离为阳性的鸡只数。“-”表示没有测定
以上所述的仅是本发明的优选实施方式,应当指出,对于本领域的技术人员来说,在不脱离本发明整体构思前提下,还可以作出若干改变和改进,这些也应该视为本发明的保护范围。

Claims (6)

1.一株H9亚型低致病性禽流感病毒,分类命名:H9亚型禽流感病毒X-13毒株,保藏单位:中国典型培养物保藏中心,保藏单位简称:CCTCC,保藏单位地址:中国.武汉.武汉大学,保藏日期:2017年7月26日,保藏编号:CCTCC NO:V201733。
2.如权利要求1所述的H9亚型低致病性禽流感病毒在制备生产用种毒中的应用。
3.如权利要求1所述的H9亚型低致病性禽流感病毒在制备H9亚型禽流感病毒诊断用抗原试剂中的应用。
4.如权利要求1所述的H9亚型低致病性禽流感病毒在制备H9亚型禽流感病毒诊断用阳性血清试剂中的应用。
5.如权利要求1所述的H9亚型低致病性禽流感病毒在制备H9亚型禽流感病毒治疗用抗血清中试剂的应用。
6.一种预防禽流感的疫苗,其特征在于:所述疫苗的活性成分包含灭活后的权利要求1所述的H9亚型低致病性禽流感病毒。
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