CN107501408B - 一种特立帕肽的制备方法 - Google Patents
一种特立帕肽的制备方法 Download PDFInfo
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Abstract
本发明公开了一种特立帕肽的制备方法,包括了它的合成与纯化,属于药物制备的领域。本发明通过1)在活化剂系统的存在下,由树脂固相载体和Fmoc‑Phe‑OH偶联得到Fmoc‑Phe‑树脂;2)通过固相合成法,按特立帕肽主链肽序依次偶联具有N端Fmoc保护且侧链保护的氨基酸得到全肽树脂;3)全肽树脂在32号氨基酸缩合时使用COMU作为缩合剂且每步合成过程中采用哌啶/Cl‑HOBT的DMF溶液作为脱保护剂;4)肽树脂裂解得到粗品,粗品经过初步纯化、精制及除盐等过程制得了特立帕肽,其工艺杂质中的消旋杂质D‑His32‑特立帕肽含量小于0.1%。本发明提供了一种纯度高、成本低、适合规模化生产的特立帕肽制备工艺,此工艺既有效控制了工艺杂质又明显的提高了特立帕肽的总收率。
Description
技术领域
本发明属于多肽药物领域,具体涉及一种特立帕肽的制备方法。
背景技术
特立帕肽(Cas No:52232-67-4)是一种由美国礼来公司开发的一种合成的多肽激素,主要用于治疗原发性及性腺功能减退性骨质疏松症、绝经后骨质疏松症。特立帕肽的分子式为C181H291N55O51S2,其对应的分子量为4117.75,特立帕肽由34个天然氨基酸组成,其肽序为:H-Ser-Val-Ser-Glu-Ile-Gln-Leu-Met-His-Asn-Leu-Gly-Lys-His-Leu-Asn-Ser-Met-Glu-Arg-Val-Glu-Trp-Leu-Arg-Lys-Lys-Leu-Gln-Asp-Val-His-Asn-Phe-OH。礼来公司是采用基因表达得到特立帕肽,例如专利US6590081,然而,基因表达法有着技术门槛,工作复杂,三废严重等缺陷。中国专利CN102731643A公开了以CTC Resin为固相载体分为5个片段进行偶联,虽然该方法可以缩短合成周期,但是其总收率仅为32.2%。当下比较流行的合成方法为固相逐步合成法,该方法具有操作简单和设备要求低的优点,但是该方法也因为总收率较低而限制了特立帕肽的生产效率。如专利CN103467595A,其在逐步合成偶联到17位丝氨酸时,以未保护的丝氨酸和16位天冬酰胺羧基进行酯缩合,在获得粗肽后再将酯键转化为酰胺键,其总收率最高为42.1%。专利CN104017064A也公开了一种逐步合成方法,其在合成16-17位氨基酸时采用假脯氨酸二肽,并以特定的裂解液裂解,其总收率最高为38%。专利CN104530218A公开了一种逐步合成方法,以CTC Resin或Wang Resin树脂为固相载体合成,其总收率为34.72%。
L-His易消旋成D-His,因此,导致消旋杂质生成,即:D-His32-特立帕肽。
D-His32-特立帕肽的结构如下:H-Ser-Val-Ser-Glu-Ile-Gln-Leu-Met-His-Asn-Leu-Gly-Lys-His-Leu-Asn-Ser-Met-Glu-Arg-Val-Glu-Trp-Leu-Arg-Lys-Lys-Leu-Gln-Asp-Val-D-His-Asn-Phe-OH。该杂质的存在严重影响特立帕肽的含量以及使用安全。因此需要找到有效的方法将其去除并使其达到优质标准级别0.1%以下。现有的合成方法,制备特立帕肽发现现有技术存在的技术问题是:合成纯度偏低、成本高,特别是杂质D-His32-特立帕肽含量较大,不适合规模化生产的问题。
发明内容
本发明的目的在于提供一种收率高、杂质D-His32-特立帕肽含量小的特立帕肽的制备方法。
一种特立帕肽的固相合成方法,其特征在于:
所述特立帕肽的氨基酸序列为:H-Ser-Val-Ser-Glu-Ile-Gln-Leu-Met-His-Asn-Leu-Gly-Lys-His-Leu-Asn-Ser-Met
-Glu-Arg-Val-Glu-Trp-Leu-Arg-Lys-Lys-Leu-Gln-Asp-Val-L-His-Asn-Phe-OH;其编号如下:
包括如下步骤:
(1)在活化剂的存在下,树脂固相载体和Fmoc-Phe-OH偶联反应,得到Fmoc-Phe-树脂;
(2)通过固相合成法,在缩合剂存下在,按特立帕肽主链肽序依次偶联具有N端Fmoc保护的氨基酸得到全肽树脂,且每偶联上一个具有N端Fmoc保护的氨基酸后,采用脱保护剂脱除Fmoc基团,再偶联下一个具有N端Fmoc保护的氨基酸;
其中,在连接第32号氨基酸(即第2个组氨酸His)时,氨基酸缩合的缩合剂为COMU,其余的缩合剂为DIC/Cl-HOBT、TBTU/HOBT/DIEA、TBTU/Cl-HOBt/DIEA组合中的一种或多种;
所述的脱保护剂为哌啶/Cl-HOBt的DMF溶液或者哌啶的DMF溶液;
(3)采用含有PhSMe/PhOH/EDT体系的裂解液裂解2小时,将肽链从肽树脂上脱下,经过初步纯化、精制即得特立帕肽。
进一步地,所述步骤(2)包括如下步骤:
a.将Fmoc-Phe-树脂在脱保护剂中反应30min,脱除Fmoc基团,得到H-Phe-树脂;
b.在缩合剂存在下,H-Phe-树脂与Fmoc-Asn(Trt)-OH反应2h,偶联得到Fmoc-Asn(Trt)-Phe-树脂;
c.重复a、b步骤,按照特立帕肽主链肽序依次偶联具有N端Fmoc保护的氨基酸。
进一步地,步骤(1)所述的树脂固相载体为wang树脂或者2-CTC树脂。
进一步地,步骤(1)中所述的树脂固相载体是替代度为1.0~1.4mmol/g的树脂。
进一步地,步骤(1)所述的树脂固相载体为替代度为1.0~1.4mmol/g的CTC Resin树脂。
进一步地,步骤(1)中所述的活化剂为DIEA、TEA或者DBU,活化剂与Fmoc-Phe-OH的摩尔比范围为(4~8):1,优选为6:1。
进一步地,步骤(1)中树脂固相载体与Fmoc-Phe-OH的摩尔比为(1~4):1,优选为2.8:1。
进一步地,步骤(2)中,所述缩合剂为TBTU/HOBT/DIEA或TBTU/Cl-HOBT/DIEA,缩合剂中三种化合物的摩尔比为1:1:1。
进一步地,步骤(2)中,缩合剂中Cl-HOBT或HOBT或COMU与步骤(1)中树脂固相载体的摩尔比为(1~4):1;每个具有N端Fmoc保护的氨基酸与步骤(1)中树脂固相载体的摩尔比为1:(1~4)。
进一步地,步骤(2)中所述的哌啶、Cl-HOBT、DMF体积比为1:1:8;所述哌啶与DMF的体积比为1:4;所述脱保护剂与树脂固相载体的体积摩尔比为100ml:(5~20)mmol,优选为100ml:7mmol。
进一步地,步骤(3)中所述的裂解液为体积比为PhSMe:PhOH:EDT:溶剂=5:3:2:95的溶液;和/或,所述溶剂选自TFA、苯甲硫醚、苯酚、乙二硫醇、三异丙基硅烷、二甲硫醚一种或多种。
进一步地,步骤(3)中所述的纯化为采用C18反向色谱柱;和/或,所述的精制为用凝胶色谱法精制,填料为葡聚糖凝胶G-25。
本发明人研究发现,在32号氨基酸偶联使用新型偶联剂COMU,并在每步脱保护液中加入Cl-HOBt可有效的减少D-His32-特立帕肽的生成,提高了粗肽的收率,降低了HPLC纯化难度。经过HPLC纯化后,杂质D-His32-特立帕肽含量降低到0.1%以下。
本发明人对特立帕肽的制备方法进行了研究,提供了一种纯度高、成本低、适合规模化生产的特立帕肽制备工艺,此工艺既有效控制了工艺杂质又明显的提高了特立帕肽的总收率。
术语解释:
Fmoc:芴甲氧羰基
Fmoc-AA:芴甲氧羰基保护的氨基酸
TBTU:2-(1H-苯并三偶氮L-1-基)-1,1,3,3-四甲基脲四氟硼酸酯
HOBT:1-羟基苯并三唑
DIEA:N,N-二异丙基乙胺
COMU:(2-肟基-氰基乙酸乙酯)-N,N-二甲基-吗啉基脲六氟磷酸酯CAS:1075198-30-9
Cl-HOBT:6-氯-1-羟基苯并三氮唑
Ac2O:乙酸酐
tBu:叔丁基
TrT:三苯甲基
Boc:叔丁氧羰基
Pbf:2,2,4,6,7-五甲基二氢苯并呋喃-5-磺酰基
Phe:苯丙氨酸
His:组氨酸
Val:缬氨酸
Asp:天冬氨酸
Gln:谷氨酰胺
Leu:亮氨酸
Lys:赖氨酸
Arg:精氨酸
Trp:色氨酸
Glu:谷氨酸
Met:甲硫氨酸
Ser:丝氨酸
Gly:甘氨酸
Ile:异亮氨酸
DMF:N,N-二甲基甲酰胺
MeOH:甲醇
DCM:二氯甲烷
TFA:三氟乙酸
PhSMe:苯甲硫醚
PhOH:苯酚
EDT:乙二硫醇
MTBE:甲基叔丁基醚
ACN:乙腈
2-CTC Resin树脂:氯代(邻氯苯基)二苯基甲烷
显然,根据本发明的上述内容,按照本领域的普通技术知识和惯用手段,在不脱离本发明上述基本技术思想前提下,还可以做出其它多种形式的修改、替换或变更。
以下通过实施例形式的具体实施方式,对本发明的上述内容再作进一步的详细说明。但不应将此理解为本发明上述主题的范围仅限于以下的实例。凡基于本发明上述内容所实现的技术均属于本发明的范围。
附图说明
图1特立帕肽的合成工艺路线
具体实施方式
实施例1
(1)Fmoc-Phe-CTC Resin树脂的制备
将20g(28mmol)替代度为1.4mmol/g的CTC Resin树脂加入到玻璃反应柱中,向其中加入200mL的DCM溶20min,抽干,重复3次;同时称取10mmol的Fmoc-Phe-OH和60mmol的DIEA,将这两种物质用200mL的DCM溶解,搅拌均匀后倒入玻璃反应柱中,搅拌反应1小时。其后抽除液体,用DCM进行洗涤,洗涤6次,每次用量200mL,再用DMF进行洗涤,洗涤6次,每次用量200mL;即得到Fmoc-Phe-CTC Resin树脂45.1g,替代度为0.4mmol/g。
(2)全肽树脂的合成
向步骤1)生成的Fmoc-Phe-CTC Resin树脂中加400mL配置好的体积浓度为20%的哌啶的DMF溶液,搅拌使其反应30min,之后抽除液体,用DMF洗涤产物6次,每次用量200mL,将洗涤液DMF抽干,其后称取10mmol的Fmoc-Asn(trt)-OH、10mmol的TBTU和10mmol的HOBT,将这三种物质用200mL的DMF:DCM=1:1混合溶剂溶解,溶解完全后向其中加入10mmol的DIEA形成混合液,再次搅拌均匀后将混合液加入到玻璃反应柱内,搅拌2小时,其后抽除液体,用DMF对产物洗涤6次,每次用量200mL,抽干即得到Fmoc-Asn(trt)-Phe-CTC Resin树脂,此后用脱保护剂(体积百分比浓度为1:1:8哌啶/Cl-HOBT/DMF溶液)脱除树脂上的Fmoc保护基,分别加入10mmol的Fmoc-His(trt)-OH、10mmol的COMU和10mmol的DIEA,再次搅拌均匀后将混合液加入到玻璃反应柱内,搅拌2小时。用脱保护剂为体积百分比浓度为1:1:8哌啶/Cl-HOBT/DMF溶液脱除树脂上的Fmoc保护基,将剩余氨基酸顺次偶联与脱保护,操作至最后一个氨基酸偶联完毕,即得到全肽树脂约66.2g。
(3)全肽树脂的切割
裂解液的配制:
取2000mL的圆底烧瓶,向其中加入950mL的TFA,50mL的PhSMe,30mL的PhOH,20mL的EDT,并搅拌混匀得到裂解液。
裂解:
向裂解液中加入全肽树脂66g,搅拌反应2小时,然后用砂芯漏斗进行过滤,滤出的树脂再用300mL的TFA洗涤,重复过滤与洗涤两次后合并滤液,减压浓缩至滤液体积约为原始体积的1/10左右,然后将其加入到体积为浓缩液10倍的预冷的甲基叔丁基醚中,沉降过夜并析出白色固体。缓慢倒出上清液体,并离心5次,每次用甲基叔丁基醚1000mL,得到白色固体粉末,真空干燥10小时,取出称重,即得到粗品肽50.5g(HPLC纯度:61.2%,收率58.1%)。
(4)特立帕肽粗肽的初步纯化
使用反相高效液相色谱法对粗肽进行初步纯化,使用的反相高效液相色谱的组成为:极性流动相:A相:体积百分比浓度为0.1%的三氟乙酸(TFA)溶液;B相:乙腈;
色谱柱:10μm的C18反相色谱柱;
检测波长:220nm
流速:80mL/min(色谱柱放大的情况下,流速可相应的增加)
先以流动相A平衡柱子,然后取粗肽(含肽约21g)4L进样,先用流动相A冲洗20min,然后采用梯度洗脱:洗脱剂为A相与B相的混合,其中B相的体积百分比在45min内由15%上升至40%,密切观察主峰的出现,主峰出现时开始收集,主峰峰顶前、峰顶附近、峰顶后分段收集,无杂峰出现时收集结束。将峰顶出现前、峰顶出现后收集到的液体进行适当浓缩,再加入色谱柱中进行相同的流动相A冲洗与洗脱剂的梯度洗脱,同样收集三段产物,以此重复多次后合并每次收集到的峰顶附近的液体,将其适度地旋转蒸发浓缩,即制得纯化肽的溶液4551mL(含量:3.2mg/mL,HPLC纯度:97.4%),可将其冷冻暂存。
(5)特立帕肽粗肽的精制及除盐
使用凝胶色谱法对纯化肽进行精制与除盐,使用的凝胶液相色谱的流动相为:极性流动相:流动相A:水;流动相B:乙腈
色谱填料:葡聚糖凝胶G-25
检测波长:220nm
流速:80mL/min(色谱柱放大的情况下,流速可相应的增加)
先在室温下,将葡聚糖凝胶干粉分别用乙醇、无盐水、盐酸浸泡后用水洗至中性,并将溶胀好的凝胶根据装柱要求一次性置入柱内;然后取纯化肽的溶液4551mL进样,上样控制在1~4%的柱体积,脱盐时高径比为5:1;然后流动相A与流动相B等度洗脱,以时间为节点收集,对于中间时间段的产物合并收集,将其适度地旋转浓缩,即得到所述无盐形式的特立帕肽精制液800mL(含量15.3mg/mL,HPLC纯度:99.3%),可冷冻暂存。
(6)冻干、包装
取特立帕肽的精制液800mL,以0.22μm的滤膜进行过滤,将滤得的固体分装于适当容器中进行冻干,冻干粉用洁净的容器密封包装,经检测合格后入库,即制得特立帕肽成品9.2g(HPLC纯度99.87%,收率45.1%,D-His32-特立帕肽含量为0.01%)
实施例2
1)取3.3g取代度为0.3mmol/gFmoc-Phe-wang-Resin树脂中加20mL配置好的体积浓度为20%的哌啶的DMF溶液,搅拌使其反应30min,之后抽除液体,用DMF洗涤产物6次,每次用量20mL,将洗涤液DMF抽干,其后称取1mmol的Fmoc-Asn(trt)-OH、1mmol的TBTU和1mmol的HOBT,将这三种物质用20mL的DMF:DCM=1:1混合溶剂溶解,溶解完全后向其中加入10mmol的DIEA形成混合液,再次搅拌均匀后将混合液加入到玻璃反应柱内,搅拌2小时,其后抽除液体,用DMF对产物洗涤6次,每次用量20mL,抽干即得到5.1g Fmoc-Asn(trt)-Phe-wang Resin树脂。
2)将上述树脂取一半,加入体积比为1:4哌啶/DMF溶液脱除树脂上的Fmoc保护基,反应30min,加入1mmol的Fmoc-His(trt)-OH、1mmol的COMU和1mmol的DIEA,再次搅拌均匀后将混合液加入到玻璃反应柱内,搅拌2小时此后加入体积比为1:4哌啶/DMF溶液脱除树脂上的Fmoc保护基,反应时间为30min,将剩余氨基酸顺次偶联与脱保护,操作至最后一个氨基酸偶联完毕,即得到全肽树脂。
3)全肽树脂加入裂解液,搅拌反应2小时,然后用砂芯漏斗进行过滤,滤出的树脂再用30mL的TFA洗涤,重复过滤与洗涤两次后合并滤液,减压浓缩至滤液体积约为原始体积的1/10左右,然后将其加入到体积为浓缩液10倍的预冷的甲基叔丁基醚中,沉降过夜并析出白色固体。缓慢倒出上清液体,并离心5次,每次用甲基叔丁基醚100mL,得到白色固体粉末,真空干燥10小时,取出称重。
实验结果:特立帕肽粗肽2.3g,HPLC纯度为58.1%,粗肽纯化、除盐、冻干后分别得特立帕肽精肽0.65g,HPLC纯度为99.62%,D-His32-特立帕肽含量为0.03%,总收率为48.45%。
实施例3
1)取3.3g取代度为0.3mmol/gFmoc-Phe-wang-Resin树脂中加20mL配置好的体积浓度为20%的哌啶的DMF溶液,搅拌使其反应30min,之后抽除液体,用DMF洗涤产物6次,每次用量20mL,将洗涤液DMF抽干,其后称取1mmol的Fmoc-Asn(trt)-OH、1mmol的TBTU和1mmol的HOBT,将这三种物质用20mL的DMF:DCM=1:1混合溶剂溶解,溶解完全后向其中加入10mmol的DIEA形成混合液,再次搅拌均匀后将混合液加入到玻璃反应柱内,搅拌2小时,其后抽除液体,用DMF对产物洗涤6次,每次用量20mL,抽干即得到5.1g Fmoc-Asn(trt)-Phe-wang-Resin树脂。
2)将上述树脂取一半,用脱保护剂为体积百分比浓度为1:1:8哌啶/Cl-HOBT/DMF溶液脱除树脂上的Fmoc保护基,分别加入1mmol的Fmoc-His(trt)-OH、1mmol的COMU和1mmol的DIEA,再次搅拌均匀后将混合液加入到玻璃反应柱内,搅拌2小时,用脱保护剂为体积百分比浓度为1:1:8哌啶/Cl-HOBT/DMF溶液脱除树脂上的Fmoc保护基,将剩余氨基酸顺次偶联与脱保护,操作至最后一个氨基酸偶联完毕,即得到全肽树脂。
3)全肽树脂加入裂解液,搅拌反应2小时,然后用砂芯漏斗进行过滤,滤出的树脂再用30mL的TFA洗涤,重复过滤与洗涤两次后合并滤液,减压浓缩至滤液体积约为原始体积的1/10左右,然后将其加入到体积为浓缩液10倍的预冷的甲基叔丁基醚中,沉降过夜并析出白色固体。缓慢倒出上清液体,并离心5次,每次用甲基叔丁基醚100mL,得到白色固体粉末,真空干燥10小时,取出称重。
实验结果:得到特立帕肽粗肽2.0g,HPLC纯度分别为63.2%;粗肽纯化、除盐、冻干后得特立帕肽精肽0.70g,HPLC纯度为99.68%,D-His32-特立帕肽含量分别为0.15%,总收率为55.20%。
实施例4
步骤1和3同实施例3,仅将步骤2改为以下操作:
将上述树脂取一半,用脱保护剂为体积百分比浓度为1:4哌啶/DMF溶液脱除树脂上的Fmoc保护基保护基反应30min,分别加入1mmol的Fmoc-His(trt)-OH、1mmol的COMU和1mmol的DIEA,再次搅拌均匀后将混合液加入到玻璃反应柱内,搅拌2小时,用脱保护剂为体积百分比浓度为1:4哌啶/DMF溶液脱除树脂上的Fmoc保护基将剩余氨基酸顺次偶联与脱保护,操作至最后一个氨基酸偶联完毕,即得到全肽树。
实验结果:分别得到特立帕肽粗肽2.2g,HPLC纯度分别为60.1%;粗肽纯化、除盐、冻干后得特立帕肽精肽0.69g,HPLC纯度为99.62%,D-His32-特立帕肽含量为0.03%,总收率为51.98%。
实施例5
1)取3.3g取代度为0.3mmol/gFmoc-Phe-CTC-Resin树脂中加20mL配置好的体积浓度为20%的哌啶的DMF溶液,搅拌使其反应30min,之后抽除液体,用DMF洗涤产物6次,每次用量20mL,将洗涤液DMF抽干,其后称取1mmol的Fmoc-Asn(trt)-OH、1mmol的TBTU和1mmol的HOBT,将这三种物质用20mL的DMF:DCM=1:1混合溶剂溶解,溶解完全后向其中加入10mmol的DIEA形成混合液,再次搅拌均匀后将混合液加入到玻璃反应柱内,搅拌2小时,其后抽除液体,用DMF对产物洗涤6次,每次用量20mL,抽干即得到5.1g Fmoc-Asn(trt)-Phe-CTCResin树脂。
2)将上述树脂取一半,加入体积比为1:4哌啶/DMF溶液脱除树脂上的Fmoc保护基反应30min,加入1mmol的Fmoc-His(trt)-OH、1mmol的COMU和1mmol的DIEA,再次搅拌均匀后将混合液加入到玻璃反应柱内,搅拌2小时此后加入百分比浓度为1:4哌啶/DMF溶液脱除树脂上的Fmoc保护基反应30min,将剩余氨基酸顺次偶联与脱保护,操作至最后一个氨基酸偶联完毕,即得到全肽树脂。
3)全肽树脂加入裂解液,搅拌反应2小时,然后用砂芯漏斗进行过滤,滤出的树脂再用30mL的TFA洗涤,重复过滤与洗涤两次后合并滤液,减压浓缩至滤液体积约为原始体积的1/10左右,然后将其加入到体积为浓缩液10倍的预冷的甲基叔丁基醚中,沉降过夜并析出白色固体。缓慢倒出上清液体,并离心5次,每次用甲基叔丁基醚100mL,得到白色固体粉末,真空干燥10小时,取出称重。
实验结果:得到特立帕肽粗肽2.3g,HPLC纯度为68.1%;粗肽纯化、除盐、冻干后得特立帕肽精肽0.65g,HPLC纯度为99.72%,D-His32-特立帕肽含量别为0.02%,总收率为41.38%。
实施例6
1)取3.3g取代度为0.3mmol/g Fmoc-Phe-CTC-Resin树脂中加20mL配置好的体积浓度为20%的哌啶的DMF溶液,搅拌使其反应30min,之后抽除液体,用DMF洗涤产物6次,每次用量20mL,将洗涤液DMF抽干,其后称取1mmol的Fmoc-Asn(trt)-OH、1mmol的TBTU和1mmol的HOBT,将这三种物质用20mL的DMF:DCM=1:1混合溶剂溶解,溶解完全后向其中加入10mmol的DIEA形成混合液,再次搅拌均匀后将混合液加入到玻璃反应柱内,搅拌2小时,其后抽除液体,用DMF对产物洗涤6次,每次用量20mL,抽干即得到5.1g Fmoc-Asn(trt)-Phe-CTC Resin树脂。
2)将上述树脂取一半,分别加入1mmol的Fmoc-His(trt)-OH、1mmol的COMU和1mmol的DIEA,再次搅拌均匀后将混合液加入到玻璃反应柱内,搅拌2小时,用脱保护剂为体积百分比浓度为1:1:8哌啶/Cl-HOBT/DMF溶液脱除树脂上的Fmoc保护基将剩余氨基酸顺次偶联与脱保护,操作至最后一个氨基酸偶联完毕,即得到全肽树脂。
3)全肽树脂加入裂解液,搅拌反应2小时,然后用砂芯漏斗进行过滤,滤出的树脂再用30mL的TFA洗涤,重复过滤与洗涤两次后合并滤液,减压浓缩至滤液体积约为原始体积的1/10左右,然后将其加入到体积为浓缩液10倍的预冷的甲基叔丁基醚中,沉降过夜并析出白色固体。缓慢倒出上清液体,并离心5次,每次用甲基叔丁基醚100mL,得到白色固体粉末,真空干燥10小时,取出称重。
实验结果:得到特立帕肽粗肽2.5g,HPLC纯度为73.2%;粗肽纯化、除盐、冻干后得特立帕肽精肽0.91g,HPLC纯度为99.88%,D-His32-特立帕肽含量为0.01%,总收率为49.66%。
实施例7
步骤1和3同实施例8,仅将步骤2改为以下操作:
将上述树脂取一半,分别加入1mmol的Fmoc-His(trt)-OH、1mmol的COMU和1mmol的DIEA,再次搅拌均匀后将混合液加入到玻璃反应柱内,搅拌2小时,(条件8)用脱保护剂为体积百分比浓度为2:8哌啶/DMF溶液脱除树脂上的Fmoc保护基将剩余氨基酸顺次偶联与脱保护,操作至最后一个氨基酸偶联完毕,即得到全肽树脂。
实验结果:得到特立帕肽粗肽2.2g,HPLC纯度为68.1%;粗肽纯化、除盐、冻干后得特立帕肽精肽0.69g,HPLC纯度为99.52%,D-His32-特立帕肽含量为0.03%,总收率为45.83%。
试验例1
步骤1和3同实施例2,仅将步骤2改为以下操作:
将上述树脂取一半,加入体积比为1:4哌啶/DMF溶液脱除树脂上的Fmoc保护基反应30min,加入1mmol的Fmoc-His(trt)-OH、1mmol的TBTU和1mmol的HOBT,将这三种物质用20mL的DMF:DCM=1:1混合溶剂溶解,溶解完全后向其中加入10mmol的DIEA形成混合液,再次搅拌均匀后将混合液加入到玻璃反应柱内,搅拌2小时后加入体积比为1:4哌啶/DMF溶液脱除树脂上的Fmoc保护基反应30min,将剩余氨基酸顺次偶联与脱保护,操作至最后一个氨基酸偶联完毕,即得到全肽树脂。
实验结果:特立帕肽粗肽2.1g。HPLC纯度为61.2%,粗肽纯化、除盐、冻干后分别得特立帕肽精肽0.68g,HPLC纯度为99.07%,D-His32-特立帕肽含量为0.15%,总收率分别为52.41%。
试验例2
步骤1和3同实施例5,仅将步骤2改为以下操作:
将上述树脂取一半,加入体积比为1:4哌啶/DMF溶液脱除树脂上的Fmoc保护基反应30min,加入1mmol的Fmoc-His(trt)-OH、1mmol的TBTU和1mmol的HOBT,将这三种物质用20mL的DMF:DCM=1:1混合溶剂溶解,溶解完全后向其中加入10mmol的DIEA形成混合液,再次搅拌均匀后将混合液加入到玻璃反应柱内,搅拌2小时此后加入脱保护试剂,将剩余氨基酸顺次偶联与脱保护,操作至最后一个氨基酸偶联完毕,即得到全肽树脂。
实验结果:得到特立帕肽粗肽2.1g,HPLC纯度为67.2%;粗肽纯化、除盐、冻干后得特立帕肽精肽0.68g,HPLC纯度为99.67%,D-His32-特立帕肽含量为0.03%,总收率为48.02%。
表1.本发明实施例和试验例实验条件和结果对比
从表1数据可以看出,本发明在32号具有N端Fmoc保护的氨基酸缩合的缩合剂为COMU,制备的特立帕肽中D-His32-特立帕肽含量低,且特立帕肽纯度和收率均较高,特别是进行放大生产时,其收率尤其高,如实施例1。
Claims (13)
1.一种特立帕肽的固相合成方法,其特征在于:
所述特立帕肽的氨基酸序列为:
H-Ser-Val-Ser-Glu-Ile-Gln-Leu-Met-His-Asn-Leu-Gly-Lys-His-Leu-Asn-Ser-Met-Glu-Arg-Val-Glu-Trp-Leu-Arg-Lys-Lys-Leu-Gln-Asp-Val-His-Asn-Phe-OH;
所述方法包括如下步骤:
(1)在活化剂的存在下,树脂固相载体和Fmoc-Phe-OH偶联反应,得到Fmoc-Phe-树脂;所述树脂固相载体为2-CTC树脂;
(2)通过固相合成法,在缩合剂存下在,按特立帕肽主链肽序依次偶联具有N端Fmoc保护的氨基酸得到全肽树脂,且每偶联上一个具有N端Fmoc保护的氨基酸后,采用脱保护剂脱除Fmoc基团,再偶联下一个具有N端Fmoc保护的氨基酸;
其中,在连接第32号氨基酸时,氨基酸缩合的缩合剂为COMU,其余的缩合剂为DIC/Cl-HOBT、TBTU/HOBT/DIEA、TBTU/Cl-HOBt/DIEA组合中的一种或多种;
所述的脱保护剂为哌啶/Cl-HOBt的DMF溶液;
(3)采用含有PhSMe/PhOH/EDT体系的裂解液裂解2小时,将肽链从肽树脂上脱下,经过初步纯化、精制即得特立帕肽。
2.根据权利要求1所述的合成方法,其特征在于:所述步骤(2)包括如下步骤:
a. 将Fmoc-Phe-树脂在脱保护剂中反应30min,脱除Fmoc基团,得到H-Phe-树脂;
b. 在缩合剂存在下,H-Phe-树脂与Fmoc-Asn(Trt)-OH反应2h,偶联得到Fmoc-Asn(Trt)-Phe-树脂;
c. 重复a、b步骤,按照特立帕肽主链肽序依次偶联具有N端Fmoc保护的氨基酸。
3.根据权利要求1所述的合成方法,其特征在于:步骤(1)所述反应的时间是1h。
4.根据权利要求1所述的合成方法,其特征在于:步骤(1)中所述的活化剂为DIEA、TEA或者DBU,活化剂与Fmoc-Phe-OH的摩尔比范围为(4~8):1。
5.根据权利要求4所述的合成方法,其特征在于:所述活化剂与Fmoc-Phe-OH的摩尔比为6:1。
6.根据权利要求1或2所述的合成方法,其特征在于:步骤(1)中树脂固相载体与Fmoc-Phe-OH的摩尔比为(1~4):1。
7.根据权利要求6所述的合成方法,其特征在于:步骤(1)中树脂固相载体与Fmoc-Phe-OH的摩尔比为2.8:1。
8.根据权利要求1所述的合成方法,其特征在于:步骤(2)中,TBTU/HOBT/DIEA或TBTU/Cl-HOBT/DIEA中三种化合物的摩尔比为1:1:1。
9.根据权利要求1所述的合成方法,其特征在于:步骤(2)中,缩合剂中Cl-HOBT或HOBT或COMU与步骤(1)中树脂固相载体的摩尔比为(1~4):1;每个具有N端Fmoc保护的氨基酸与步骤(1)中树脂固相载体的摩尔比为1:(1~4)。
10.根据权利要求1所述的合成方法,其特征在于:步骤(2)中所述的哌啶、Cl-HOBT、DMF体积比为1:1:8;所述脱保护剂与树脂固相载体的体积摩尔比为100ml:(5~20)mmol。
11.根据权利要求10所述的合成方法,其特征在于:所述脱保护剂与树脂固相载体的体积摩尔比为100ml:7mmol。
12.根据权利要求1所述的合成方法,其特征在于:步骤(3)中所述的裂解液为体积比为PhSMe:PhOH:EDT:溶剂=5:3:2:95的溶液;所述溶剂选自TFA、苯甲硫醚、苯酚、乙二硫醇、三异丙基硅烷、二甲硫醚一种或多种。
13.根据权利要求1所述的合成方法,其特征在于:步骤(3)中所述的纯化为采用C18反向色谱柱;和/或,所述的精制为用凝胶色谱法精制,填料为葡聚糖凝胶G-25。
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