CN107446928B - 一个花椰菜器官发育调控miRNA序列及其应用 - Google Patents
一个花椰菜器官发育调控miRNA序列及其应用 Download PDFInfo
- Publication number
- CN107446928B CN107446928B CN201710872496.5A CN201710872496A CN107446928B CN 107446928 B CN107446928 B CN 107446928B CN 201710872496 A CN201710872496 A CN 201710872496A CN 107446928 B CN107446928 B CN 107446928B
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- mirna
- cauliflower
- plant
- transgenic
- organ development
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Active
Links
Images
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/11—DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
- C12N15/113—Non-coding nucleic acids modulating the expression of genes, e.g. antisense oligonucleotides; Antisense DNA or RNA; Triplex- forming oligonucleotides; Catalytic nucleic acids, e.g. ribozymes; Nucleic acids used in co-suppression or gene silencing
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
- C12N15/79—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
- C12N15/82—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for plant cells, e.g. plant artificial chromosomes (PACs)
- C12N15/8216—Methods for controlling, regulating or enhancing expression of transgenes in plant cells
- C12N15/8222—Developmentally regulated expression systems, tissue, organ specific, temporal or spatial regulation
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
- C12N15/79—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
- C12N15/82—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for plant cells, e.g. plant artificial chromosomes (PACs)
- C12N15/8241—Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology
- C12N15/8261—Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology with agronomic (input) traits, e.g. crop yield
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2310/00—Structure or type of the nucleic acid
- C12N2310/10—Type of nucleic acid
- C12N2310/14—Type of nucleic acid interfering N.A.
- C12N2310/141—MicroRNAs, miRNAs
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Zoology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Plant Pathology (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)
Abstract
本发明公开了一个花椰菜器官发育调控miRNA序列及利用上述序列培养高植株、少分支转基因植物的方法,它包括如下步骤:(1)花椰菜总DNA提取;(2)花椰菜miRNA‑1前体的扩增;(3)花椰菜miRNA‑1植物过表达载体的构建及鉴定;(4)遗传转化;(5)miRNA‑1转基因拟南芥的抗性筛选及分子鉴定;(6)miRNA‑1过表达转基因拟南芥表型分析。结果显示,转基因植物植株高度显著高于野生型;转基因植物植株茎分支数显著少于野生型;本发明公开的miRNA序列及其利用序列培育高植株、少分支转基因植物的方法对于揭示miRNA在花椰菜器官发育中的调控机制,进而采用基因工程手段干预植物器官发育进程,培育符合育种目标的高植株、少分支作物或经济植物具有重要价值。
Description
技术领域
本发明属于现代分子生物转基因植物技术领域,涉及生物技术中一个在花椰菜器官发育中发挥关键调控作用的miRNA序列及其在培育高植株、少分支转基因植物中的应用。
背景技术
MicroRNA (miRNA)是真核生物中内源性、非编码、并具有调控作用的一类小分子RNA。其作为转录后水平上的一种调控因子广泛存在于动植物中。在植物体中,miRNA 基因转录出前体miRNA (pri-miRNAs), pri-miRNAs 在DCL1作用下被切割成成熟茎环结构前体(pre-miRNA),pre-miRNAs继续被DCL1切割产生miRNA/miRNA* 双链分子。随后miRNA*链被降解, miRNA与AGO1(Argonaute 1)蛋白等一起形成RNA诱导的沉默复合体(RNA-inducedsilencing complex, RISC), RISC通过与靶基因mRNA结合进而对其进行切割或抑制其翻译,造成靶基因表达的沉默或抑制。miRNA 的这种调控方式在植物生长发育及逆境应答等多个过程中均发挥重要作用。
花椰菜(Brassica oleracea L. var. botrytis)是十字花科芸薹属甘蓝种的一个变种,是重要的蔬菜作物,当前我国是世界上花椰菜种植面积最大的国家。但对花椰菜器官发育调控,特别是由miRNA介导的调控机制认识十分有限。借助现代分子生物技术和手段,可以对花椰菜器官发育中发挥重要调控作用的miRNA鉴定、分离。相关miRNA的获得及功能阐释对于揭示花椰菜器官发育过程中miRNA的调控机制及采用基因工程手段干预植物器官发育进程,培育符合育种目标的高植株、少分支作物或经济植物具有重要价值。
发明内容
本发明的目的是公开一个在花椰菜器官发育中发挥关键调控作用的miRNA前体(命名为miRNA-1)序列,并提供一种利用该前体序列,采用基因工程手段获得高植株、少分支转基因植物的方法和应用。为实现此述目的,本发明公开了如下的技术方案:
一个在花椰菜器官发育中发挥关键调控作用miRNA-1前体序列,它由序列5’ ATTTCAGGTGATGTAGTTGAGAAGTAGCTGTAAAGCTCAGGAGGGATAGCGCCATGTCTCACCGGTACTATAAAATGTTTGTATATCTATATTGGCGCTATCCATCCTGAGTTCTATGGCTTCTTCTTGCTTTTATCCTGAGAT 3’组成(SEQID NO:1)。
本发明进一步公开了一种利用上述miRNA前体序列培养高植株、少分支转基因植物的方法,它包括如下步骤:
(1)花椰菜总DNA提取;
(2)花椰菜miRNA-1前体的扩增
首先利用生物学软件设计带NcoⅠ和BsteⅡ酶切位点的引物:
上游引物:5’ CCATGGGTAGAGAAGAATCTGTAAAGCTCAG3’(SEQ ID NO:2)
下游引物:5’GGTCACCGTAGTAAGAAGAGCCAATGAAACT3’(SEQ ID NO: 3)
引物序列由上海生物工程公司合成。以花椰菜基因组DNA为模板进行PCR扩增。将此PCR产物与pEASY-T1载体连接后,转化DH5α大肠杆菌感受态细胞,将菌液涂到筛选培养基上,37℃培养6-8h,根据蓝白斑筛选原理,挑取白色菌落培养,对阳性克隆进行PCR鉴定并测序验证。
(3)花椰菜miRNA-1植物过表达载体的构建及鉴定
提取测序正确的阳性克隆以及pCAMBIA3301质粒,然后分别进行NcoⅠ、BsteⅡ 双酶切,对目的条带进行胶回收,使用T4DNA连接酶对两目的片段连接,将连接产物转化DH5α感受态细胞,筛选培养基筛选培养,挑取白色菌落培养,并进行PCR和双酶切鉴定。提取测序正确的阳性重组质粒,转化农杆菌LBA4404,并对得到的阳性菌株进行PCR鉴定。
NcoⅠ、BsteⅡ 双酶切体系如下:质粒1 μg、10×T buffer 2 μL、0.1%BSA(牛血清白蛋白) 2 μL、NcoⅠ(15U/μL)0.5μL、BsteⅡ(10U/μL)0.5μL,无菌水补至20 μL。将上述混合液置于0.2mL的离心管中,37度孵育3h;将带有相同酶切位点目的基因片段及pCAMBIA3301质粒的回收并进行连接,连接体系如下:pCAMBIA3301质粒5 μL、目的片段5μL、10×ligasebuffer(连接缓冲液) 1μL、Ligase(连接酶) 1μL、无菌水补至10 μL,将上述连接混合物置于0.2mL的离心管中轻轻混匀后,16℃ 水浴保温24 h;重组质粒的转化:加5μL连接产物于50 μL大肠杆菌感受态细胞中,轻弹混匀,冰浴30 min;42℃热激30 s,立即置于冰上2 min;加500 μL平衡至室温的LB,180 rpm 37℃孵育1 h;4000 rpm离心1min后,弃掉部分上清,剩余150 μL重悬菌体,涂于LB平板(含160 mg/L Kan);37℃培养过夜。挑取白色克隆于1 mLLB培养基(含160 mg/L Kan)37℃,180 rpm 培养8 h。取1 μL菌液作为模板进行PCR鉴定,筛选获得阳性重组质粒;重组质粒转化农杆菌LBA4404:取1 μg重组质粒加入150 μL农杆菌感受态中,轻轻混匀;冰浴 30 min;液氮速冻5 min;37℃热击 5 min;加入800 μL YEB液体培养基(不含抗生素),28℃ 180 rpm 复苏4 h;4000 rpm离心1min后,弃掉部分上清,剩余150μL重悬菌体,涂于YEB平板(含90mg/L Rif、120mg/L Str 和150 mg/L Kan);28℃倒置培养2-3 d。挑取白色克隆于1 mL YEB培养基(含90mg/L Rif、120mg/L Str 和150 mg/L Kan),28℃,220 rpm 培养2 d。取1 μL菌液作为模板进行PCR鉴定;同时提取农杆菌阳性质粒进行双酶切鉴定;取经鉴定的阳性菌株菌液500μL加入500μL 40% 甘油YEB培养基,正当混匀后于-20℃保存备用;
(4)遗传转化:拟南芥盛花时期,剪去已结果的果荚备用。取出保存的含有miRNA-1重组质粒的农杆菌活化、扩大培养,5000rpm离心10min,菌体重悬于silwet L-77终浓度为0.05%的500mL 5%的蔗糖溶液中(此配好的的溶液即为转化液);将拟南芥的整个花序放入转化液中,浸染50 s后移出,用保鲜膜将整个植株包好,侧置于托盘中,避光培养24h,然后直立培养, 5 d后进行第二次转化。种子成熟后,收集全部种子,记为T0代。
(5)miRNA-1转基因拟南芥的抗性筛选及分子鉴定
收集的T0代种子4℃春化3-4d,播种到土壤中。待长出前两片真叶时喷Basta(原液10万倍稀释)筛选,每天喷两次,连续七天。将筛选出的阳性苗移栽到新的土壤中,CTAB法提取抗性苗的DNA进行PCR分子鉴定。
(6)miRNA-1过表达转基因拟南芥表型分析
将确定的miRNA转基因拟南芥T2代种子和野生型种子同时播种到土壤中。等长出前两片真叶后喷Basta(原液10万倍稀释)筛选,每天喷两次连续七天。将筛选出的阳性苗移栽,对野生型和转基因拟南芥阳性苗表型进行对比观察。实验的结果发现:
(1)转基因植物植株高度显著高于野生型;
(2)转基因植物植株茎分支数显著少于野生型。
本发明重点解决了在作物或能源植物新品种育种中对高植株、少分支作物或能源植物新品种的需求。
本发明所述的YEB培养基指的是含90mg/L Rif(利福平)、100mg/L 120mg/L Str(链霉素)和150 mg/L Kan(卡那霉素)的培养基。
本发明同时也公开了miRNA-1序列(SEQ ID NO:1)在干预花椰菜及其他植物器官发育中的应用。实验结果显示:转基因植物植株高度显著高于野生型;同时转基因植物植株茎分支数显著少于野生型。这对高植株、少分支适合密植的转基因作物或经济植物起到了关键的作用。
本发明公开的利用miRNA-1序列,采用基因工程手段获得高植株、少分支转基因植物的方法与现有技术相比所具有的积极效果在于:
(1)操作过程更加简单,对操作环境的要求更低;
(2)费用低廉,广谱性高,可在绝大多数双子叶植物中开展;
(3)转化效率高,可以实现短时间内获得大量具有高植株、少分支的转基因植株。
附图说明
图1为显示本案花椰菜器官发育调控miRNA-1序列转基因拟南芥植株抗性筛选(左)及分子鉴定(右);
图2为 显示本案花椰菜器官发育调控miRNA-1转化拟南芥后转基因拟南芥及野生型各个发育期的比较(A,B,C,D分别指示7d,15d,30d,60d大小的拟南芥; WT显示同一生长期野生型表现,OE、OE1、OE2、 OE3显示同一生长期miRNA-1转基因植株表型)。
具体实施方式
下面结合说明书附图和具体实施例,进一步阐述本发明。应理解这些实施例仅用于说明本发明而不用于限制本发明的范围。下列实施例中未注明具体条件的实验方法,通常按照常规条件如Sambrook等人,分子克隆:实验室手册(New York: Cold Spring HarborLaboratory Press,1989)中所述的条件。本发明所有生化试剂、酶、载体、菌株均可在各种生化试剂公司中购买,引物序列由上海生物工程公司合成。
本发明所需生化试剂及酶等来源见下表:
实施例1
一个在花椰菜器官发育中发挥关键调控作用miRNA-1前体序列,它由序列5’ ATTTCAGGTGATGTAGTTGAGAAGTAGCTGTAAAGCTCAGGAGGGATAGCGCCATGTCTCACCGGTACTATAAAATGTTTGTATATCTATATTGGCGCTATCCATCCTGAGTTCTATGGCTTCTTCTTGCTTTTATCCTGAGAT 3’组成(SEQID NO:1)。
利用上述miRNA前体序列培养高植株、少分支转基因植物的方法,它包括如下步骤:
(1)花椰菜总DNA提取:
采用上海生物工程公司代售的植物DNA提取试剂盒进行花椰菜总DNA提取。具体过程如下:①称取50 mg 左右的花椰菜放入已用液氮预冷过的研钵内,于液氮中充分研磨成粉末状(研磨过程中不断加入液氮),将碾碎的材料移至试剂盒提供的裂解液中,震荡混匀,65 ℃水浴30 min,期间每隔10 min 颠倒混匀1次;②加入相同体积的酚/氯仿,轻轻震荡混匀,放入4 ℃离心机中,选择12,000 rpm 离心10 min;③吸取上清液,加入相同体积的氯仿,轻轻震荡混匀,放入4 ℃离心机中,选择12,000 rpm 离心10 min;④吸取上清液,加入两倍体积的预冷的无水乙醇,轻轻震荡混匀,于-20 ℃冰箱中沉淀30 min以上;⑤放入4 ℃离心机中,选择12,000 rpm 离心10 min,弃上清液,然后加入1 mL预冷的75%的乙醇,轻轻将沉淀吹起,漂洗两次,倒掉漂洗液;⑥瞬时离心后,用枪吸干残余的乙醇,室温放置晾干沉淀,加入50 μL双蒸水溶解沉淀;⑦加入1 μL的RNase A(10 mg/mL),置于37 ℃水浴中反应30 min;⑧用NanoDrop( ND-1000)测定 DNA浓度和质量,琼脂糖凝胶电泳检测DNA 的质量,-20 ℃保存。
(2)花椰菜miRNA-1前体的扩增
首先利用生物学软件设计带NcoⅠ和BsteⅡ酶切位点的引物:
上游引物:5’ CCATGGGTAGAGAAGAATCTGTAAAGCTCAG3’;
下游引物:5’GGTCACCGTAGTAAGAAGAGCCAATGAAACT3’。
引物序列由上海生物工程公司合成。以花椰菜基因组DNA为模板进行PCR扩增。将此PCR产物与pEASY-T1载体连接后,转化DH5α大肠杆菌感受态细胞,将菌液涂到筛选培养基上,37℃培养6-8h,根据蓝白斑筛选原理,挑取白色菌落培养,对阳性克隆进行PCR鉴定并测序验证。
(3)花椰菜miRNA-1植物过表达载体的构建及鉴定
提取测序正确的阳性克隆以及pCAMBIA3301质粒,然后分别进行NcoⅠ、BsteⅡ 双酶切,对目的条带进行胶回收,使用T4DNA连接酶对两目的片段连接,将连接产物转化DH5α感受态细胞,筛选培养基筛选培养,挑取白色菌落培养,并进行PCR和双酶切鉴定。提取测序正确的阳性重组质粒,转化农杆菌LBA4404,并对得到的阳性菌株进行PCR鉴定。
NcoⅠ、BsteⅡ 双酶切体系如下:质粒1 μg、10×T buffer 2 μL、0.1%BSA(牛血清白蛋白) 2 μL、NcoⅠ(15U/μL)0.5μL、BsteⅡ(10U/μL)0.5μL,无菌水补至20 μL。将上述混合液置于0.2mL的离心管中,37度孵育3h;将带有相同酶切位点目的基因片段及pCAMBIA3301质粒的回收并进行连接,连接体系如下:pCAMBIA3301质粒5 μL、目的片段5μL、10×ligasebuffer(连接缓冲液) 1μL、Ligase(连接酶) 1μL、无菌水补至10 μL,将上述连接混合物置于0.2mL的离心管中轻轻混匀后,16℃ 水浴保温24 h;重组质粒的转化:加5μL连接产物于50 μL大肠杆菌感受态细胞中,轻弹混匀,冰浴30 min;42℃热激30 s,立即置于冰上2 min;加500 μL平衡至室温的LB,180 rpm 37℃孵育1 h;4000 rpm离心1min后,弃掉部分上清,剩余150 μL重悬菌体,涂于LB平板(含160 mg/L Kan);37℃培养过夜。挑取白色克隆于1 mLLB培养基(含160 mg/L Kan)37℃,180 rpm 培养8 h。取1 μL菌液作为模板进行PCR鉴定,筛选获得阳性重组质粒;重组质粒转化农杆菌LBA4404:取1 μg重组质粒加入150 μL农杆菌感受态中,轻轻混匀;冰浴 30 min;液氮速冻5 min;37℃热击 5 min;加入800 μL YEB液体培养基(不含抗生素),28℃ 180 rpm 复苏4 h;4000 rpm离心1min后,弃掉部分上清,剩余150μL重悬菌体,涂于YEB平板(含90mg/L Rif、120mg/L Str 和150 mg/L Kan);28℃倒置培养2-3 d。挑取白色克隆于1 mL YEB培养基(含90mg/L Rif、120mg/L Str 和150 mg/L Kan),28℃,220 rpm 培养2 d。取1 μL菌液作为模板进行PCR鉴定;同时提取农杆菌阳性质粒进行双酶切鉴定;取经鉴定的阳性菌株菌液500μL加入500μL 40% 甘油YEB培养基,正当混匀后于-20℃保存备用;
(4)遗传转化:拟南芥盛花时期,剪去已结果的果荚备用。取出保存的含有miRNA-1重组质粒的农杆菌活化、扩大培养,5000rpm离心10min,菌体重悬于silwet L-77终浓度为0.05%的500mL 5%的蔗糖溶液中(此配好的的溶液即为转化液);将拟南芥的整个花序放入转化液中,浸染50 s后移出,用保鲜膜将整个植株包好,侧置于托盘中,避光培养24h,然后直立培养, 5 d后进行第二次转化。种子成熟后,收集全部种子,记为T0代。
(5)miRNA-1转基因拟南芥的抗性筛选及分子鉴定
收集的T0代种子4℃春化3-4d,播种到土壤中。待长出前两片真叶时喷Basta(原液10万倍稀释)筛选,每天喷两次,连续七天。将筛选出的阳性苗移栽到新的土壤中,CTAB法提取抗性苗的DNA进行PCR分子鉴定。图1为显示本案花椰菜器官发育调控miRNA-1序列转基因拟南芥植株抗性筛选(左)及分子鉴定(右);
(6)miRNA-1过表达转基因拟南芥表型分析
将确定的miRNA转基因拟南芥T2代种子和野生型种子同时播种到土壤中。等长出前两片真叶后喷Basta(原液10万倍稀释)筛选,每天喷两次连续七天。将筛选出的阳性苗移栽,对野生型和转基因拟南芥阳性苗表型进行对比观察。实验的结果发现:转基因植物植株高度显著高于野生型;转基因植物植株茎分支数显著少于野生型;图2为 显示本案花椰菜器官发育调控miRNA-1转化拟南芥后转基因拟南芥及野生型各个发育期的比较 (A,B,C,D分别指示7d,15d,30d,60d大小的拟南芥; WT显示同一生长期野生型表现,OE、OE1、OE2、OE3显示同一生长期miRNA-1转基因植株表型)。
SEQUENCE LISTING
<110> 南开大学
<120> 一个花椰菜器官发育调控miRNA序列及其应用
<160> 3
<170> PatentIn version 3.5
<210> 1
<211> 144
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 1
atttcaggtg atgtagttga gaagtagctg taaagctcag gagggatagc gccatgtctc 60
accggtacta taaaatgttt gtatatctat attggcgcta tccatcctga gttctatggc 120
ttcttcttgc ttttatcctg agat 144
<210> 2
<211> 31
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 2
ccatgggtag agaagaatct gtaaagctca g 31
<210> 3
<211> 31
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 3
ggtcaccgta gtaagaagag ccaatgaaac t 31
Claims (1)
1.一个利用在花椰菜器官发育中发挥关键调控作用miRNA-1前体序列培养高植株、少分支转基因植物的方法,其特征在于它按如下的步骤进行:
(1)花椰菜总DNA提取;
(2)花椰菜miRNA-1前体的扩增;
首先利用生物学软件设计带NcoⅠ和BsteⅡ酶切位点的引物:
上游引物:5’ CCATGGGTAGAGAAGAATCTGTAAAGCTCAG3’;
下游引物:5’GGTCACCGTAGTAAGAAGAGCCAATGAAACT3’
(3)花椰菜miRNA-1植物过表达载体的构建及鉴定;
(4)遗传转化;
(5) miRNA-1转基因拟南芥的抗性筛选及分子鉴定;
(6)miRNA-1过表达转基因拟南芥表型分析;
步骤(2)中所述miRNA-1前体序列由序列为5’ ATTTCAGGTGATGTAGTTGAGAAGTAGCTGTAAAGCTCAGGAGGGATAGCGCCATGTCTCACCGGTACTATAAAATGTTTGTATATCTATATTGGCGCTATCCATCCTGAGTTCTATGGCTTCTTCTTGCTTTTATCCTGAGAT 3’组成。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201710872496.5A CN107446928B (zh) | 2017-09-25 | 2017-09-25 | 一个花椰菜器官发育调控miRNA序列及其应用 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201710872496.5A CN107446928B (zh) | 2017-09-25 | 2017-09-25 | 一个花椰菜器官发育调控miRNA序列及其应用 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN107446928A CN107446928A (zh) | 2017-12-08 |
CN107446928B true CN107446928B (zh) | 2021-02-05 |
Family
ID=60498303
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201710872496.5A Active CN107446928B (zh) | 2017-09-25 | 2017-09-25 | 一个花椰菜器官发育调控miRNA序列及其应用 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN107446928B (zh) |
Families Citing this family (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN108531503B (zh) * | 2018-03-09 | 2021-05-25 | 广西壮族自治区药用植物园 | 优化拟南芥转基因效率的方法 |
CN111304198B (zh) * | 2019-12-13 | 2020-10-09 | 南京林业大学 | 春兰miR390b在控制植物营养器官发育中的应用 |
CN112646815B (zh) * | 2020-12-25 | 2022-12-02 | 海南大学 | 一种微小rna分子及其应用 |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2009130480A1 (en) * | 2008-04-22 | 2009-10-29 | Oxford Gene Technology Ip Limited | Analysis of nucleic acids |
-
2017
- 2017-09-25 CN CN201710872496.5A patent/CN107446928B/zh active Active
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2009130480A1 (en) * | 2008-04-22 | 2009-10-29 | Oxford Gene Technology Ip Limited | Analysis of nucleic acids |
Non-Patent Citations (4)
Title |
---|
Auxin regulation of the microRNA390-dependent transacting small interfering RNA pathway in Arabidopsis lateral root development;Eun Kyung Yoon等;《Nucleic Acids Research》;20091204;第38卷(第4期);第1382-1391页 * |
Genome-Wide Association Study Reveals Candidate Genes for Control of Plant Height, Branch Initiation Height and Branch Number in Rapeseed (Brassica napus L.);Ming Zheng等;《Front. Plant Sci.》;20170718;第8卷;文章编号1246 * |
Genome-wide identification and characterization of miRNAs in the hypocotyl and cotyledon of cauliflower (Brassica oleracea L. var. botrytis) seedlings;Meijuan Geng等;《Planta》;20131030;第239卷;第341-356页 * |
miR390, Arabidopsis TAS3 tasiRNAs, and their AUXIN RESPONSE FACTOR targets define an autoregulatory network quantitatively regulating lateral root growth;Elena Marin等;《Plant Cell》;20100430;第22卷;第1104-1117页 * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN107446928A (zh) | 2017-12-08 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Wang et al. | Ectopic expression of miR156 represses nodulation and causes morphological and developmental changes in Lotus japonicus | |
US11155827B2 (en) | Methods for generating transgenic plants | |
CN107446928B (zh) | 一个花椰菜器官发育调控miRNA序列及其应用 | |
CN105198976B (zh) | 一种与植物抗逆性相关蛋白GsERF6及其编码基因与应用 | |
Horn et al. | Composite potato plants with transgenic roots on non-transgenic shoots: a model system for studying gene silencing in roots | |
CN117106820A (zh) | 一种通过基因组编辑创制番茄少侧枝的方法及其应用 | |
CN115960189B (zh) | 一种文冠果蛋白及其编码基因在提高植物花瓣中花青素的含量中的应用 | |
KR101209121B1 (ko) | 제초제 저항성 백합의 제조방법 및 상기 방법에 의해 제조된 제초제 저항성 백합 | |
CN109055371B (zh) | 光皮桦miR169c的前体基因及其在提前植物开花中的应用 | |
CN110106171B (zh) | 长链非编码rna及其在调控植物耐低温中的应用 | |
CN115925848A (zh) | 一种石斛ERF类转录因子基因DoERF5及其应用 | |
CN112430260B (zh) | 胚胎发育晚期丰富蛋白DoLEA36或其编码基因在调控植物愈伤组织形成中的应用 | |
Jafarzadeh-Bajestani et al. | Genetic transformation of olive somatic embryos through Agrobacterium tumefaciens and regeneration of transgenic plants | |
CN107488669B (zh) | 花椰菜BoTLP1基因的编码序列及其在培育耐盐抗旱转基因植物中的应用 | |
CN110106172B (zh) | 一种长链非编码rna及其在调控植物耐低温中的应用 | |
CN108165555B (zh) | 栽培茄SmHQT基因核心片段及其RNAi表达载体和应用 | |
CN107177602B (zh) | 与植物耐旱相关的NtDR1基因及其应用 | |
CN114561387B (zh) | 花生启动子及其应用 | |
US20110265225A1 (en) | Transgenic plant having increased seed size | |
CN114149993B (zh) | 一种调控植物可溶性糖含量的lncRNA及其应用 | |
CN116179590B (zh) | 一种春兰miR396基因在调控植物茎增粗中的应用 | |
CN102676538B (zh) | 桉树wpgs1或wpgs2基因及其过量表达具有增加植物生物量功能 | |
JP5871222B2 (ja) | 植物に耐塩性を付与するabcトランスポーター遺伝子 | |
CN107417778B (zh) | 抗病转TaOMT-A基因小麦的培育方法及相关生物材料与应用 | |
Anjala | Editing of rice transcription factor OsMADS26 for drought tolerance through CRISPR/Cas9 system |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PB01 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
GR01 | Patent grant | ||
GR01 | Patent grant |