CN107137704A - 一种鸭2型腺病毒灭活疫苗 - Google Patents

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Abstract

本发明提供一种鸭2型腺病毒灭活疫苗,其中抗原为灭活后的GD株病毒;GD株病毒于2016年6月5日保藏在武汉大学的中国典型培养物保藏中心,保藏编号为CCTCC No:V201633。本发明制备的鸭2型腺病毒灭活疫苗安全性良好,未出现由疫苗引起的任何局部和全身不良反应。保存期试验中经过性状、安全性试验、效力试验数据的分析,各项指标均稳定有效;利用血清学方法和免疫攻毒法评估疫苗的免疫效果,结果显示,本发明中制备的灭活疫苗对鸭群能够提供有效的免疫保护,具有很好的商品化开发前景。

Description

一种鸭2型腺病毒灭活疫苗
技术领域
本发明属于兽用生物制品技术领域,具体涉及一种鸭2型腺病毒灭活疫苗。
技术背景
腺病毒是家禽常见的传染性病原体。禽腺病毒分为三个群:Ⅰ群是从鸡、火鸡、鹅和鸭的呼吸道感染分离出来的禽腺病毒,有共同的群特异性抗原,可分为A、B、C、D、E5个种和12个血清型;Ⅱ群包括火鸡出血性肠炎病毒、雉大理石皮病病毒和鸡大脾病病毒;Ⅲ群是从鸡产蛋综合征和鸭分离到的腺病毒。鸭2型腺病毒属于Ⅰ群禽腺病毒,是1977年法国匈牙利人从患病番鸭上分离出来的,感染鸭主要表现精神沉郁,下痢,消瘦等症状。病毒一旦带入鸭群很难清除,主要有传播方式决定的,即水平传播和垂直传播,给饲养业造成严重的经济损失。
通过对Ⅰ群鸭2型腺病毒的流行病学调查,发现该病在我国鸭群中发病率日益上升趋势。基于目前,国内外没有预防该病的商品化灭活疫苗,该病还在不断蔓延。研制安全有效的灭活疫苗迫在眉睫,必须通过创新技术克服这一问题。
发明内容
本发明的目的是提供一种鸭2型腺病毒灭活疫苗,用于预防Ⅰ群鸭2型腺病毒疾病,从而弥补现有技术的不足。
本发明提供一种鸭2型腺病毒灭活疫苗,其中抗原为灭活后的GD株病毒;
所使用的鸭2型腺病毒GD株,于2016年6月5日保藏在武汉大学的中国典型培养物保藏中心,保藏编号为CCTCC No:V201633。
所述的疫苗为灭活疫苗。
上述的灭活疫苗,其中病毒的灭活采用甲醛灭活;
本发明的灭活疫苗的制备方法是将GD株病毒液中加入终浓度0.2%的甲醛,37℃搅拌灭活16h,灭活的病毒液与油佐剂1:2混合乳化,得到鸭2型腺病毒灭活疫苗。
本发明制备的鸭2型腺病毒灭活疫苗安全性良好,未出现由疫苗引起的任何局部和全身不良反应。保存期试验中经过性状、安全性试验、效力试验数据的分析,各项指标均稳定有效;利用血清学方法和免疫攻毒法评估疫苗的免疫效果,结果显示,本发明中制备的灭活疫苗对鸭群能够提供有效的免疫保护,具有很好的商品化开发前景。
附图说明
图1:筛选病毒的接种图。
具体实施方式
下面结合实施例对本发明进行详细的描述。
实施例1
GD株的分离与鉴定
1、流行病学调查 自2014年以来,广东、浙江等地区的部分番鸭出现了一种以死亡率高的Ⅰ群鸭2型腺病毒疾病。对病死的番鸭剖检后,主要的病理变化如下:肝脏肿大、肝坏死,脾脏肿大出血点,胰腺坏死等多器官发生病变为特点的疾病,经临床调查和实验室检测,初步诊断为Ⅰ群鸭2型腺病毒。2015年发明人成功从广东某养鸭场的鸭群中分离出一株病毒。
2、病毒分离 取病鸭的肝脏、脾脏、心包液、胰腺、法氏囊的组织50~100g,用研钵研磨组织,其间不断加入液氮,直至研磨成粉末状(无明显的可见颗粒),按1:5(w/v)比例与无菌生理盐水匀浆,反复冻融3次后6000r/min离心10分钟,取上清液加入青霉素和链霉素各10000IU/ml,4℃过夜,经0.22μm微孔滤器过滤,无菌检验合格后保存备用。将含1%病毒过滤液接种鸭胚成纤维细胞,无血清的M199培养液进行培养,37℃静置培养60~78h,可出现明显的细胞病变,如图1所示,收毒。
3、病毒的鉴定
3.1 血凝特性鉴定 无菌采集SPF鸡和鸭血液,制备成0.8%、1%和2%浓度血红细胞,4℃保存备用。按常规方法检测分离毒株是否具有凝集这些红细胞的特性。同时设Ⅲ群鸭1型腺病毒(EDSV-76)为凝集反应阳性对照。结果:分离毒不能凝集SPF鸡和鸭红细胞,即使改变红细胞的浓度,也不能使之凝集。Ⅲ群鸭1型腺病毒(EDSV-76)能够凝集鸡、鸭的红细胞。
3.2 理化特性检验 病毒液分别经盐酸(pH3)、氢氧化钠(pH10)、温度(60℃、1h)、氯仿、乙醚处理后,接种鸭胚成纤维细胞(0.2ml/T25方瓶),另设生理盐水处理组作为对照。接种72h后观察细胞病变。结果:分离毒经乙醚、氯仿和盐酸(pH3)处理的毒株,不影响病毒在细胞中的增殖,出现明显的细胞病变,PCR检测结果阳性。表明病毒没有囊膜,对乙醚和氯仿有抵抗力,耐酸。而经氢氧化钠(pH10)和温度(50℃、1h)处理后,接种细胞,无细胞病变,PCR检测阴性。表明分离毒株的核酸类型为DNA,病毒不耐碱,对热敏感,60℃,1h可被灭活。
3.4 PCR检测 取病鸭的肝脏、脾脏、心包液、胰腺、法氏囊的组织无菌研磨,反复冻融3次,利用组织细胞基因组DNA快速提取试剂盒提取病毒DNA,进行PCR检测。1%琼脂糖凝胶电泳观察结果。
PCR反应体系:总体积25ul
在0.5m1PCR管中依次加入
10×Taq聚合酶缓冲液------------5u1
2.5mmo1 4dNTP-------------------4u1
上游引物(20pmol)---------------1u1
下游引物(20pmol)----------------1u1
Taq DNA聚合酶(1-2U)----------0.3ul
DNA--------------------------------4ul
用灭菌去离子水9.7ul补足至总体积25u1,PCR反应在PTC-100基因扩增仪内进行。PCR反应参数:预变性条件为95℃,5min,变性条件为94℃,30Sec,退火温度和时间为53℃,30Sec,延伸温度为72℃延伸35Sec,35个循环,最后72℃延伸10min。
经扩增,分离毒株扩增出了相应的目的片段,与预期的目的片段大小相符。对扩增的片段进行测序、拼接后,通过NCBI BLAST比对分析,分离毒与Ⅰ群禽腺病毒属于同一分支,是鸭2型腺病毒序列。与NCBI公布的序列同源性最接近,但也存在序列上的差异。
实施例2
GD株毒种的制备
挑选已长满单层的鸭胚成纤维细胞,弃掉原培养液,加入终浓度1%毒种(GD株原始毒种第3代)无血清的M199维持液,37℃静置培养60~78h,可出现明显的细胞病变,当细胞病变达80%以上时收获。按此方法连传10代,分别标记为C3~C10代。测定每代次病毒含量。将检验无菌且病毒含量≥106.0TCID50病毒液混合,定量分装,冻干保存。
实施例3
GD株抗原的制备
1 制苗材料选择 鸭胚成纤维细胞、GD株病毒液的制备。
2 细胞制备 取11~13日龄的SPF鸭胚,用0.25%胰酶进行消化,加入适量含10%血清的M199培养液进行培养。
3 接毒 挑选已长满单层的鸭胚成纤维细胞,弃掉原培养液,加入终浓度为1%毒种的维持液,置37℃培养箱继续培养。
4 收获 接毒后,每日观察2次,记录细胞病变情况。当细胞病变达80%以上时收获,冻融2次,收获的细胞毒灭活前在-20℃保存。
实施例4
GD株病毒液的灭活及半成品检验与疫苗的制备
1 灭活 将GD细胞病毒液导入灭活罐内,计量加入10%甲醛溶液,开启搅拌机搅拌,使其充分混合,甲醛的最终浓度为0.2%。加甲醛溶液后导入另一灭活罐中,以避免罐口附近粘附的病毒未能接触灭活剂。37℃灭活16小时(以罐内温度达到37℃开始计时,开启搅拌机连续搅拌)后取出,放2~8℃保存,应不超过1个月。
2 半成品检验
2.1 无菌检验 取灭活的病毒液,按现行《中国兽药典》附录进行检验,应无菌生长。
2.2 灭活检验 将灭活后的病毒液作10倍稀释,接种已长满单层的鸭胚成纤维细胞(24孔细胞板)4孔,每孔0.2ml,补充维持液至2.0ml;同时设未接种的鸭胚成纤维细胞作空白对照,37℃、5%CO2培养箱培养,观察168小时。将培养物收获反复冻融后盲传一代,继续培养120小时。观察是否出现CPE。
2.3 病毒含量测定 将毒种用细胞维持液进行10倍系列稀释,取10-6、10-7、10-8 3个稀释度,分别接种于已长满单层的鸭胚成纤维细胞(96孔细胞板),每个稀释度接种6孔,每孔0.1ml。同时设病毒阳性对照孔和细胞阴性对照孔,37℃培、5%CO2培养箱培养和观察168小时,出现CPE者判为感染,计算TCID50
3 灭活疫苗的制备
3.1 油相制备:
取矿物油94份,硬脂酸铝2份(g),边加边搅拌,直到完全透明为止,再加入司班-80(Span-80)6份(mL),充分混匀后,121℃高压蒸气灭菌备用。
3.2 水相制备:
在96份(mL)灭活的抗原液中加入4份(mL)灭菌吐温-80(Tween-80),充分振摇,直到Tween-80彻底溶解。
3.3 乳化
取油相2份导入乳化罐中,开动电机低速搅拌,同时徐徐加入水相1份后,1000r/min,乳化30分钟,即成油乳剂灭活疫苗。
4 分装 定量分装,加盖密封,并粘贴标签,置2~8℃保存。
实施例5
疫苗成品检验
1 性状
外观 乳白色乳剂。
剂型 油包水型。取一清洁吸管,吸取少量疫苗滴入冷水中,除第1滴外,均应不扩散。
稳定性 吸取疫苗10ml加入离心管中,以3000r/min离心15分钟,管底析出的水相应不多于0.5ml。
黏度 按现行《中国兽药典》附录进行,应符合规定。
2 装量检查 按现行《中国兽药典》附录进行检查,应符合规定。
3 无菌检验 按现行《中国兽药典》附录进行检验,应无菌生长。
4 安全检验 皮下免疫21日龄SPF鸭10只,每只颈部皮下分点注射疫苗1.0ml,观察21d,生长发育均正常,精神状态良好,剖检注射部位疫苗吸收良好,无红肿、组织坏死等炎症反应。
实施例6
疫苗免疫效果检测
1 血清学方法 用21日龄SPF鸭20只,10只各颈部皮下或肌肉注射疫苗0.2ml,另10只不免疫作对照。免疫后7日~6个月,每只鸭分别采血,分离血清,用琼扩试验检测免疫鸭和对照鸭的鸭2型腺病毒抗体,记录抗体结果。
2 免疫攻毒法 用21日龄SPF鸭20只,10只各颈部皮下或肌肉注射疫苗0.2ml,另10只不免疫作对照。免疫后21~28日,所有免疫鸭和对照鸭,肌肉注射病毒液(约含106.0TCID50/0.1ml),每只0.2ml。观察并详细记录免疫鸭和对照鸭的发病情况。
结果显示:5批疫苗免疫组21日及以后琼扩抗体均≥8/10阳性,对照组鸭全部为阴性;攻毒保护结果:5批疫苗免疫鸭攻毒后观察14日,保护数均不少于9只;对照鸭攻毒7日内全部发病,死亡9只,死亡鸭(死亡后剖检)及发病鸭(攻毒后7日剖检)剖检病理变化:均出现典型的肝脏肿大和坏死,脾脏、肾脏等多个器官坏死。详见下表1、2。
而且,对比实验表明,用目前市场上出售的Ⅰ群鸭2型腺病毒疫苗进行免疫,再用本发明筛选的GD株进行攻毒实验;结果表明目前市场上出售的疫苗的免疫效果远低于本发明的GD株制备的灭活疫苗的效果;推测是由于GD株基因发生变异导致目前疫苗的免疫效果不好。
表1:疫苗免疫后抗体效价检测结果
表2:5批疫苗效力检验结果
综上,本发明筛选的GD株疫苗一种免疫效果比较理想的灭活苗,能够有效的预防Ⅰ群鸭2型腺病毒的发生。

Claims (5)

1.一种鸭2型腺病毒灭活疫苗,其特征在于,所述的疫苗,其中抗原为灭活后的GD株病毒。
2.如权利要求1所述的灭活疫苗,其特征在于,所述的GD株病毒的保藏编号为CCTCCNo:V201633。
3.如权利要求1所述的灭活疫苗,其特征在于,所述的GD株病毒采用甲醛进行灭活。
4.权利要求1或2所述的灭活疫苗在预防Ⅰ群鸭2型腺病毒疾病中的应用。
5.权利要求1所述的灭活疫苗的制备方法,其特征在于,所述的制备方法,是将GD株病毒液中加入终浓度0.2%的甲醛,37℃搅拌灭活16h,灭活的病毒液与油佐剂1:2混合乳化,得到灭活疫苗。
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Denomination of invention: An inactivated duck adenovirus type 2 vaccine

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Denomination of invention: A Inactivated vaccine of Duck Adenovirus Type 2

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