CN107085093B - 重组人白细胞介素1受体拮抗剂滴眼液生物学活性的检测方法 - Google Patents
重组人白细胞介素1受体拮抗剂滴眼液生物学活性的检测方法 Download PDFInfo
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Abstract
本发明公开了重组人白细胞介素1受体拮抗剂滴眼液生物学活性的检测方法,它包括以下步骤:①、制备标准品溶液;②、制备供试品溶液;③、测定吸光度,记录测定结果,试验数据采用计算机程序或四参数回归计算法进行处理,计算供试品的生物学活性。本发明提供的重组人白细胞介素1受体拮抗剂滴眼液生物学活性的检测方法,操作简便,容易观察,且具有良好的线性关系,重复性好,特异性强,为监控其产品质量提供了一种行之有效的技术手段。
Description
技术领域
本发明属于生物药物活性的检测领域,具体涉及重组人白细胞介素1受体拮抗剂滴眼液生物学活性的检测方法。
背景技术
IL-1ra能与IL-1在T淋巴细胞上的受体竞争性结合,从而抑制IL-1的生物学活性,根据这一原理建立了IL-1ra生物学活性的多种检测方法:IL-1ra抑制IL-1诱导的小鼠胸腺细胞增生实验;IL-1ra抑制IL-1诱导的人皮成纤维细胞分泌PGE2实验及抑制其他T淋巴细胞株如D10AG4.1和D10(N4)增殖的实验。
但以上方法存在有很多不足之处,如PGE2的检测步骤较多;小鼠胸腺细胞法由于活体个体差异,使结果很不稳定;其他T淋巴细胞除对IL-1有增殖作用外,对其他细胞因子同样有作用,特异性较差。
发明内容
本发明的目的在于提供重组人白细胞介素1受体拮抗剂滴眼液生物学活性的检测方法,具有良好的线性关系,重复性好,特异性强,为监控其产品质量提供了一种行之有效的技术手段。
本发明提供的重组人白细胞介素1受体拮抗剂滴眼液生物学活性的检测方法,它包括以下步骤:
①、制备标准品溶液;
②、制备供试品溶液;
③、在加有标准品溶液和供试品溶液的培养板中,每孔加入A375-s2细胞悬液100μl,于37℃、5%二氧化碳条件下培养96小时~108小时;每孔用Hank's液洗细胞1次,加50μl无血清DMEM,每孔再加入20μl噻唑蓝溶液,继续培养5小时;取出培养板,吸出培养液,然后加入150μl裂解液,吹打以充分溶解还原物;
所述裂解液是由以下方法制成:取1ml盐酸、5ml Triton X-100,加异丙醇,配制成100ml的溶液;
将培养板放入酶标仪,以630nm为参比波长,在波长570nm处测定吸光度,记录测定结果;试验数据采用计算机程序或四参数回归计算法进行处理,并按下式计算供试品的生物学活性:
式中,
Pr为标准品的生物学活性,U/ml;
Ds为供试品预稀释倍数;
Dr为标准品预稀释倍数;
Es为供试品相当于标准品半效量的稀释倍数;
Er为标准品半效量的稀释倍数。
进一步的,步骤①中,所述标准品溶液是由以下方法制成:将rhIL-1ra标准品10μg用1.25ml水溶解,然后用培养液B2稀释10倍,使其浓度为800ng/ml,在培养板中,做3倍系列稀释,共11个稀释度,每个稀释度做2孔或3孔,每孔分别留50μl标准品溶液,弃去孔中多余溶液;所述培养液B2是培养液A加入rhIL-1β至1ng/ml,所述培养液A为含10%新生牛血清的DMEM培养液。
进一步的,所述rhIL-1ra标准品的比活性为1U/mg;所述rhIL-1β的比活性≥1×107U/mg。
进一步的,步骤②中,所述供试品溶液是由以下方法制成:取rhIL-1ra滴眼液,加培养液B2,至rhIL-1ra浓度为800ng/ml,在培养板中,做3倍系列稀释,共11个稀释度,每个稀释度做2孔或3孔,每孔分别留50μl供试品溶液,弃去孔中多余溶液;所述培养液B2是培养液A加入rhIL-1β至1ng/ml,所述培养液A为含10%新生牛血清的DMEM培养液。
进一步的,所述rhIL-1ra滴眼液是由以下方法制成:rhIL-1ra 50mg、人血白蛋白1g、甘露醇60g、氯化钠70g、氯化钾2g、磷酸氢二钠14.4g、磷酸二氢钾2.4g,加水,配制成1000ml的溶液。
进一步的,步骤③中,所述A375-s2细胞悬液的细胞浓度为6×104个/ml~7×104个/ml;优选的,所述A375-s2细胞悬液的细胞浓度为7×104个/ml。
进一步的,所述A375-s2细胞悬液是由以下方法制成:取对数生长期的A375-s2细胞,胰蛋白酶消化计数后,用培养液A调细胞浓度为6×104个/ml~7×104个/ml;所述培养液A为含10%新生牛血清的DMEM培养液。
进一步的,步骤③中,所述噻唑蓝溶液是由以下方法制成:取噻唑蓝0.1g,加PBS溶解并稀释至20ml,经0.22μm滤膜过滤除菌,即得。
进一步的,所述PBS是由以下方法制成:取氯化钠8g、氯化钾0.2g、磷酸氢二钠1.44g、磷酸二氢钾0.24g,加水溶解并稀释至1000ml,经121℃、15分钟灭菌,即得。
进一步的,步骤③中,所述的盐酸含HCl为36%~38%。
本发明提供的重组人白细胞介素1受体拮抗剂滴眼液生物学活性的检测方法,操作简便,容易观察,且具有良好的线性关系,重复性好,特异性强,为监控其产品质量提供了一种行之有效的技术手段。
关于本发明使用的术语的定义:除非另有说明,本文中术语提供的初始定义,适用于全文的该术语;对于本文没有具体定义的术语,应当根据公开内容、上下文以及本领域的常识,给出本领域技术人员能够给予它们的含义。
例如:3倍系列稀释,即在96孔培养板中每孔预先加入100μl培养液,取50μl标准品溶液或供试品溶液加入其中,成为1:3稀释度,充分混合后,吸取50μl加入下一孔100μl培养液中,成为1:9稀释度,如此系列稀释若干孔至适宜稀释度(参见:《中华人民共和国药典》三部.国家药典委员会编.中国医药科技出版社.)。
噻唑蓝(MTT)法的基本原理是:活细胞线粒体中的琥珀酸脱氢酶能使外源性的MTT还原为难溶性的蓝色结晶物(Formazan),并沉积在细胞中,而死细胞无此功能;并且,Formazan的产量与线粒体的数量和细胞活跃程度呈线性关系,用裂解液溶解结晶物后可用酶标仪测定其光吸收值。
显然,根据本发明的上述内容,按照本领域的普通技术知识和惯用手段,在不脱离本发明上述基本技术思想前提下,还可以做出其它多种形式的修改、替换或变更。
以下通过实施例形式的具体实施方式,对本发明的上述内容再作进一步的详细说明。但不应将此理解为本发明上述主题的范围仅限于以下的实例。凡基于本发明上述内容所实现的技术均属于本发明的范围。
附图说明
图1为本发明实施例1的生物学活性测定曲线。
图2为本发明实施例1的线性拟合。
具体实施方式
本发明具体实施方式中使用的原料、设备均为已知产品,通过购买市售产品获得。
材料:
A375-s2细胞(人黑色素瘤细胞:购于ATCC,CRL-1872);
rhIL-1β(重组人白细胞介素-1β:比活性≥1×107U/mg,R&D生产);
rhIL-1ra标准品(1U/mg,NIBSC);
培养液A:含10%新生牛血清(NBS)的DMEM培养液;
培养液B1:培养液A加入rhIL-1β至0.5ng/ml;
培养液B2:培养液A加入rhIL-1β至1ng/ml;
培养液B3:培养液A加入rhIL-1β至4ng/ml;
PBS:称取氯化钠8g、氯化钾0.2g、磷酸氢二钠1.44g、磷酸二氢钾0.24g,加水溶解并稀释至1000ml,经121℃、15分钟灭菌;
噻唑蓝(MTT)溶液:5mg/ml,配制方法如下:称取噻唑蓝(MTT)0.1g,加PBS溶解并稀释至20ml,经0.22μm滤膜过滤除菌,4℃避光保存;
Triton X-100:液体,Sigma-Aldrich公司;
盐酸:含HCl为36%~38%(参见:《中华人民共和国药典》三部.国家药典委员会编.中国医药科技出版社.)。
重组人白细胞介素1受体拮抗剂(rhIL-1ra)滴眼液的制备
配方:rhIL-1ra(通过购买市售产品获得,或者,按照现有的方法制备获得)50mg、人血白蛋白1g、甘露醇60g、氯化钠70g、氯化钾2g、磷酸氢二钠14.4g、磷酸二氢钾2.4g,加水,配制成1000ml的溶液,即得rhIL-1ra滴眼液。
实施例1
标准品溶液的制备:将rhIL-1ra标准品(1U/mg,NIBSC)10μg用1.25ml水溶解,分装冻存,使用前用培养液B2稀释10倍,使其浓度为800ng/ml,在96孔培养板中,做3倍系列稀释,共11个稀释度,每个稀释度做3孔,每孔分别留50μl标准品溶液,弃去孔中多余溶液。以上操作在无菌条件下进行。
供试品溶液的制备:取上述制备的rhIL-1ra滴眼液,加培养液B2,至rhIL-1ra浓度为800ng/ml,在96孔培养板中,做3倍系列稀释,共11个稀释度,每个稀释度做3孔,每孔分别留50μl供试品溶液,弃去孔中多余溶液。以上操作在无菌条件下进行。
测定法:
在加有标准品溶液和供试品溶液的96孔培养板中,每孔加入A375-s2细胞悬液(取对数生长期的A375-s2细胞,胰蛋白酶消化计数后,用培养液A调细胞浓度为7×104个/ml)100μl,于37℃、5%二氧化碳条件下培养96小时;每孔用Hank's液洗细胞1次,加50μl无血清DMEM,每孔再加入20μl噻唑蓝(MTT)溶液(5mg/ml),继续培养5小时;取出培养板,吸出培养液,然后加入150μl裂解液(取1ml盐酸、5ml Triton X-100,加异丙醇,配制成100ml的溶液,室温避光保存),吹打以充分溶解还原物(Formazan)。以上操作在无菌条件下进行。
将培养板放入酶标仪(550型,Bio-Rad),以630nm为参比波长,在波长570nm处测定吸光度,记录测定结果。
试验数据采用计算机程序或四参数回归计算法进行处理,并按下式计算供试品的生物学活性:
式中,
Pr为标准品的生物学活性,U/ml;
Ds为供试品预稀释倍数;
Dr为标准品预稀释倍数;
Es为供试品相当于标准品半效量的稀释倍数;
Er为标准品半效量的稀释倍数。
实施例2
标准品溶液的制备:将rhIL-1ra标准品(1U/mg,NIBSC)10μg用1.25ml水溶解,分装冻存,使用前用培养液B2稀释10倍,使其浓度为800ng/ml,在96孔培养板中,做3倍系列稀释,共11个稀释度,每个稀释度做2孔,每孔分别留50μl标准品溶液,弃去孔中多余溶液。以上操作在无菌条件下进行。
供试品溶液的制备:取上述制备的rhIL-1ra滴眼液,加培养液B2,至rhIL-1ra浓度为800ng/ml,在96孔培养板中,做3倍系列稀释,共11个稀释度,每个稀释度做2孔,每孔分别留50μl供试品溶液,弃去孔中多余溶液。以上操作在无菌条件下进行。
测定法:
在加有标准品溶液和供试品溶液的96孔培养板中,每孔加入A375-s2细胞悬液(取对数生长期的A375-s2细胞,胰蛋白酶消化计数后,用培养液A调细胞浓度为6×104个/ml)100μl,于37℃、5%二氧化碳条件下培养102小时;每孔用Hank's液洗细胞1次,加50μl无血清DMEM,每孔再加入20μl噻唑蓝(MTT)溶液(5mg/ml),继续培养5小时;取出培养板,吸出培养液,然后加入150μl裂解液(取1ml盐酸、5ml Triton X-100,加异丙醇,配制成100ml的溶液,室温避光保存),吹打以充分溶解还原物(formazan)。以上操作在无菌条件下进行。
将培养板放入酶标仪(550型,Bio-Rad),以630nm为参比波长,在波长570nm处测定吸光度,记录测定结果。
试验数据采用计算机程序或四参数回归计算法进行处理,并按下式计算供试品的生物学活性:
式中,
Pr为标准品的生物学活性,U/ml;
Ds为供试品预稀释倍数;
Dr为标准品预稀释倍数;
Es为供试品相当于标准品半效量的稀释倍数;
Er为标准品半效量的稀释倍数。
对比例1
标准品溶液的制备:将rhIL-1ra标准品(1U/mg,NIBSC)10μg用1.25ml水溶解,分装冻存,使用前用培养液B1稀释10倍,使其浓度为800ng/ml,在96孔培养板中,做3倍系列稀释,共11个稀释度,每个稀释度做3孔,每孔分别留50μl标准品溶液,弃去孔中多余溶液。以上操作在无菌条件下进行。
供试品溶液的制备:取上述制备的rhIL-1ra滴眼液,加培养液B1,至rhIL-1ra浓度为800ng/ml,在96孔培养板中,做3倍系列稀释,共11个稀释度,每个稀释度做3孔,每孔分别留50μl供试品溶液,弃去孔中多余溶液。以上操作在无菌条件下进行。
测定法:
在加有标准品溶液和供试品溶液的96孔培养板中,每孔加入A375-s2细胞悬液(取对数生长期的A375-s2细胞,胰蛋白酶消化计数后,用培养液A调细胞浓度为4×104个/ml)100μl,于37℃、5%二氧化碳条件下培养96小时;每孔用Hank's液洗细胞1次,加50μl无血清DMEM,每孔再加入20μl噻唑蓝(MTT)溶液(5mg/ml),继续培养5小时;取出培养板,吸出培养液,然后加入150μl裂解液(DMSO,二甲基亚砜),吹打以充分溶解还原物(formazan)。以上操作在无菌条件下进行。
将培养板放入酶标仪(550型,Bio-Rad),以630nm为参比波长,在波长570nm处测定吸光度,记录测定结果。
试验数据采用计算机程序或四参数回归计算法进行处理,并按下式计算供试品的生物学活性:
式中,
Pr为标准品的生物学活性,U/ml;
Ds为供试品预稀释倍数;
Dr为标准品预稀释倍数;
Es为供试品相当于标准品半效量的稀释倍数;
Er为标准品半效量的稀释倍数。
对比例2
标准品溶液的制备:将rhIL-1ra标准品(1U/mg,NIBSC)10μg用1.25ml水溶解,分装冻存,使用前用培养液B2稀释10倍,使其浓度为800ng/ml,在96孔培养板中,做3倍系列稀释,共11个稀释度,每个稀释度做3孔,每孔分别留50μl标准品溶液,弃去孔中多余溶液。以上操作在无菌条件下进行。
供试品溶液的制备:取上述制备的rhIL-1ra滴眼液,加培养液B2,至rhIL-1ra浓度为800ng/ml,在96孔培养板中,做3倍系列稀释,共11个稀释度,每个稀释度做3孔,每孔分别留50μl供试品溶液,弃去孔中多余溶液。以上操作在无菌条件下进行。
测定法:
在加有标准品溶液和供试品溶液的96孔培养板中,每孔加入A375-s2细胞悬液(取对数生长期的A375-s2细胞,胰蛋白酶消化计数后,用培养液A调细胞浓度为2×104个/ml)100μl,于37℃、5%二氧化碳条件下培养102小时;每孔用Hank's液洗细胞1次,加50μl无血清DMEM,每孔再加入20μl噻唑蓝(MTT)溶液(5mg/ml),继续培养5小时;取出培养板,吸出培养液,然后加入150μl裂解液(15%十二烷基硫酸钠溶液),吹打以充分溶解还原物(formazan)。以上操作在无菌条件下进行。
将培养板放入酶标仪(550型,Bio-Rad),以630nm为参比波长,在波长570nm处测定吸光度,记录测定结果。
试验数据采用计算机程序或四参数回归计算法进行处理,并按下式计算供试品的生物学活性:
式中,
Pr为标准品的生物学活性,U/ml;
Ds为供试品预稀释倍数;
Dr为标准品预稀释倍数;
Es为供试品相当于标准品半效量的稀释倍数;
Er为标准品半效量的稀释倍数。
对比例3
标准品溶液的制备:将rhIL-1ra标准品(1U/mg,NIBSC)10μg用1.25ml水溶解,分装冻存,使用前用培养液B2稀释10倍,使其浓度为800ng/ml,在96孔培养板中,做3倍系列稀释,共11个稀释度,每个稀释度做2孔,每孔分别留50μl标准品溶液,弃去孔中多余溶液。以上操作在无菌条件下进行。
供试品溶液的制备:取上述制备的rhIL-1ra滴眼液,加培养液B2,至rhIL-1ra浓度为800ng/ml,在96孔培养板中,做3倍系列稀释,共11个稀释度,每个稀释度做2孔,每孔分别留50μl供试品溶液,弃去孔中多余溶液。以上操作在无菌条件下进行。
测定法:
在加有标准品溶液和供试品溶液的96孔培养板中,每孔加入A375-s2细胞悬液(取对数生长期的A375-s2细胞,胰蛋白酶消化计数后,用培养液A调细胞浓度为4×104个/ml)100μl,于37℃、5%二氧化碳条件下培养96小时;每孔用Hank's液洗细胞1次,加50μl无血清DMEM,每孔再加入20μl噻唑蓝(MTT)溶液(5mg/ml),继续培养5小时;取出培养板,吸出培养液,然后加入150μl裂解液(10%十二烷基硫酸钠溶液,盐酸调节pH至4~5),吹打以充分溶解还原物(formazan)。以上操作在无菌条件下进行。
将培养板放入酶标仪(550型,Bio-Rad),以630nm为参比波长,在波长570nm处测定吸光度,记录测定结果。
试验数据采用计算机程序或四参数回归计算法进行处理,并按下式计算供试品的生物学活性:
式中,
Pr为标准品的生物学活性,U/ml;
Ds为供试品预稀释倍数;
Dr为标准品预稀释倍数;
Es为供试品相当于标准品半效量的稀释倍数;
Er为标准品半效量的稀释倍数。
对比例4
标准品溶液的制备:将rhIL-1ra标准品(1U/mg,NIBSC)10μg用1.25ml水溶解,分装冻存,使用前用培养液B3稀释10倍,使其浓度为800ng/ml,在96孔培养板中,做3倍系列稀释,共11个稀释度,每个稀释度做3孔,每孔分别留50μl标准品溶液,弃去孔中多余溶液。以上操作在无菌条件下进行。
供试品溶液的制备:取上述制备的rhIL-1ra滴眼液,加培养液B3,至rhIL-1ra浓度为800ng/ml,在96孔培养板中,做3倍系列稀释,共11个稀释度,每个稀释度做3孔,每孔分别留50μl供试品溶液,弃去孔中多余溶液。以上操作在无菌条件下进行。
测定法:
在加有标准品溶液和供试品溶液的96孔培养板中,每孔加入A375-s2细胞悬液(取对数生长期的A375-s2细胞,胰蛋白酶消化计数后,用培养液A调细胞浓度为2×104个/ml)100μl,于37℃、5%二氧化碳条件下培养96小时;每孔用Hank's液洗细胞1次,加50μl无血清DMEM,每孔再加入20μl噻唑蓝(MTT)溶液(5mg/ml),继续培养5小时;取出培养板,吸出培养液,然后加入150μl裂解液(取2.8ml盐酸、10ml Triton X-100,加异丙醇,配制成100ml的溶液,室温避光保存),吹打以充分溶解还原物(formazan)。以上操作在无菌条件下进行。
将培养板放入酶标仪(550型,Bio-Rad),以630nm为参比波长,在波长570nm处测定吸光度,记录测定结果。
试验数据采用计算机程序或四参数回归计算法进行处理,并按下式计算供试品的生物学活性:
式中,
Pr为标准品的生物学活性,U/ml;
Ds为供试品预稀释倍数;
Dr为标准品预稀释倍数;
Es为供试品相当于标准品半效量的稀释倍数;
Er为标准品半效量的稀释倍数。
1、检测方法的线性关系
试验结果表明,对比例1~4检测方法的线性关系较差,其线性相关系数R2分别为0.954、0.945、0.952、0.968;并且,对比例1检测方法的本底数字较大,而对比例2~3检测方法会产生很多的泡沫,给操作和观察带来很大的困难和不便,对比例4检测方法的测定数值波动较大,都会影响检测结果的重复性以及准确性。
本发明实施例1检测方法的线性关系好,线性方程:y=-0.043x+0.480,R2=0.998(X轴为蛋白浓度,Y轴为OD值),见图1和图2;而且,本发明实施例1检测方法的本底数字小,也不会产生较多泡沫,便于操作和观察,测定数值的波动很小,检测结果的重复性和准确性好。
同样,本发明实施例2检测方法的线性关系也很好,R2=0.992。
2、检测方法的重复性
分别采用实施例1~2、对比例1~4的检测方法,对同一rhIL-1ra滴眼液样品分别进行6次重复试验,所得检测结果的RSD%,见表1。
表1、检测方法的重复性结果
供试品的生物学活性均值(6次) | 重复性(RSD%) | |
实施例1 | 50.84×10<sup>-3</sup> | 2.25 |
实施例2 | 49.95×10<sup>-3</sup> | 2.32 |
对比例1 | 45.58×10<sup>-3</sup> | 16.35 |
对比例2 | 62.36×10<sup>-3</sup> | 12.45 |
对比例3 | 58.47×10<sup>-3</sup> | 10.64 |
对比例4 | 57.29×10<sup>-3</sup> | 9.86 |
上述结果表明,本发明检测方法稳定,重复性好,RSD%在3%以内,能够用于重组人白细胞介素1受体拮抗剂滴眼液生物学活性的测定,从而可以更好地监控其产品质量的稳定性。
此外,本发明检测方法的特异性强,不受IL-2、IL-6、TNF-α、IFN-α、IFN-γ、M-CSF等其它细胞因子的影响,也不受有丝分裂原PWM、LPS、ConA、PGE2等影响,检测方法简便、稳定,非常适合用于重组人白细胞介素1受体拮抗剂滴眼液生物学活性的测定。
综上所述,本发明提供了一种重组人白细胞介素1受体拮抗剂滴眼液生物学活性的检测方法,操作简便,容易观察,且具有良好的线性关系,重复性好,特异性强,为监控其产品质量提供了一种行之有效的技术手段。
Claims (5)
1.重组人白细胞介素1受体拮抗剂滴眼液生物学活性的检测方法,其特征在于:它包括以下步骤:
①、制备标准品溶液;
所述标准品溶液制备方法为:将rhIL-1ra标准品10μg用1.25ml水溶解,然后用培养液B2稀释10倍,使其浓度为800ng/ml,在培养板中,做3倍系列稀释,共11个稀释度,每个稀释度做2孔或3孔,每孔分别留50μl标准品溶液,弃去孔中多余溶液;所述培养液B2是培养液A加入rhIL-1β至1ng/ml,所述培养液A为含10%新生牛血清的DMEM培养液;所述rhIL-1ra标准品的比活性为1U/mg;所述rhIL-1β的比活性≥1×107U/mg;
②、制备供试品溶液;
所述供试品溶液是由以下方法制成:取rhIL-1ra滴眼液,加培养液B2,至rhIL-1ra浓度为800ng/ml,在培养板中,做3倍系列稀释,共11个稀释度,每个稀释度做2孔或3孔,每孔分别留50μl供试品溶液,弃去孔中多余溶液;所述培养液B2是培养液A加入rhIL-1β至1ng/ml,所述培养液A为含10%新生牛血清的DMEM培养液;
所述rhIL-1ra滴眼液是由以下方法制成:rhIL-1ra50mg、人血白蛋白1g、甘露醇60g、氯化钠70g、氯化钾2g、磷酸氢二钠14.4g、磷酸二氢钾2.4g,加水,配制成1000ml的溶液;
③、在加有标准品溶液和供试品溶液的培养板中,每孔加入A375-s2细胞悬液100μl,于37℃、5%二氧化碳条件下培养96小时~108小时;每孔用Hank's液洗细胞1次,加50μl无血清DMEM,每孔再加入20μl噻唑蓝溶液,继续培养5小时;取出培养板,吸出培养液,然后加入150μl裂解液,吹打以充分溶解还原物;所述A375-s2细胞悬液的细胞浓度为6×104个/ml~7×104个/ml;
所述裂解液是由以下方法制成:取1ml盐酸、5ml Triton X-100,加异丙醇,配制成100ml的溶液;所述的盐酸含HCl为36%~38%;
将培养板放入酶标仪,以630nm为参比波长,在波长570nm处测定吸光度,记录测定结果;试验数据采用计算机程序或四参数回归计算法进行处理,并按下式计算供试品的生物学活性:
式中,
Pr为标准品的生物学活性,U/ml;
Ds为供试品预稀释倍数;
Dr为标准品预稀释倍数;
Es为供试品相当于标准品半效量的稀释倍数;
Er为标准品半效量的稀释倍数。
2.根据权利要求1所述的检测方法,其特征在于:所述A375-s2细胞悬液的细胞浓度为7×104个/ml。
3.根据权利要求2所述的检测方法,其特征在于:所述A375-s2细胞悬液是由以下方法制成:取对数生长期的A375-s2细胞,胰蛋白酶消化计数后,用培养液A调细胞浓度为7×104个/ml;所述培养液A为含10%新生牛血清的DMEM培养液。
4.根据权利要求1~3任意一项所述的检测方法,其特征在于:步骤③中,所述噻唑蓝溶液是由以下方法制成:取噻唑蓝0.1g,加PBS溶解并稀释至20ml,经0.22μm滤膜过滤除菌,即得。
5.根据权利要求4所述的检测方法,其特征在于:所述PBS是由以下方法制成:取氯化钠8g、氯化钾0.2g、磷酸氢二钠1.44g、磷酸二氢钾0.24g,加水溶解并稀释至1000ml,经121℃、15分钟灭菌,即得。
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---|---|---|---|---|
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CN1471969A (zh) * | 2002-07-29 | 2004-02-04 | 北京北医联合生物工程公司 | 重组人白细胞介素-1受体拮抗剂的药物用途 |
CN1822849A (zh) * | 2003-03-24 | 2006-08-23 | 塞阔伊亚药品公司 | 长效生物活性缀合物 |
CN1837237A (zh) * | 2005-02-25 | 2006-09-27 | 四川恒星生物医药有限公司 | 一种低热原重组人白细胞介素1受体拮抗剂(rhIL-1ra)及其高效制备方法 |
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融合人血清白蛋白的白介素1受体拮抗剂的药效学和药代动力学研究;黄毅;《中国优秀硕士学位论文全文数据库 医药卫生科技辑》;20130715(第07期);摘要,正文第19页第2.4.3节,第23-25页第3.4节,第27页 |
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