CN106995853B - 筛选与少根紫萍叶生长相关的分子标记的方法 - Google Patents

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Abstract

本发明公开了一种筛选少根紫萍叶生长相关的分子标记的方法,包括克隆体培养、基因组DNA提取、设计微卫星引物、PCR扩增和数据统计与分析。有益效果为:本发明可快速得到大量的经微卫星引物标记的少根紫萍的DNA序列,微卫星标记检测速度快,可快速获得少根紫萍Sp10、Sp14、Sp42、Sp47、Sp51、Sp52和Sp53遗传标记基因座呈现高度遗传变异的多态性图谱。少根紫萍叶长和叶宽均与Sp10、Sp14、Sp42、Sp47、Sp51、Sp52和Sp53显著相关(除Sp51位点P<0.05,其余P<0.001)。了解基因型差异对紫萍生长以及污染物净化能力的影响,提高废水的生物治理效率。

Description

筛选与少根紫萍叶生长相关的分子标记的方法
技术领域
本发明涉及DNA分子标记技术领域,具体是一种筛选少根紫萍叶生长相关的分子标记的方法。
背景技术
在自然环境中,少根紫萍基本以无性生殖进行繁殖,当环境条件适宜时2天即可克隆出一代,种群遗传多样性水平较低。
现有技术提供多种卫星标记的检测方法,例如,中国发明授权专利文献一种锈斑蟳微卫星标记的快速检测方法授权公告号CN 103305611 B该发明涉及一种锈斑蟳微卫星标记的快速检测方法,包括:(1)锈斑蟳基因组DNA的提取;(2)根据GeneBank数据库中锈斑蟳的功能基因序列,获得含有微卫星重复的基因序列;(3)微卫星标记引物的设计;(4)锈斑蟳不同个体的基因组DNA的PCR扩增;(5)PCR产物的变性聚丙烯酰胺凝胶电泳检测。该发明的检测方法具有快速、准确、灵敏等优点,能够直观地检测出锈斑蟳不同个体的基因型,从而快速获得锈斑蟳在功能基因微卫星位点遗传变异的多态性图谱,该微卫星标记可应用于锈斑蟳遗传变异与种群遗传多样性分析等领域,但微卫星标记检测速度还有提升空间。
发明内容
本发明的目的在于提供一种快速筛选与少根紫萍叶生长相关的分子标记方法,清晰少根紫萍的叶数/株、叶长和叶宽与相关DNA位点的关系。
本发明针对背景技术中提到的问题,采取的技术方案为:筛选少根紫萍叶生长相关的分子标记的方法,包括克隆体培养、基因组DNA提取、设计微卫星引物、PCR扩增和数据统计与分析。
作为优选,植株克隆体培养的营养液成份及其浓度为:氮0.3~0.4g/L、磷酐0.1~0.15g/L、氧化钾0.16~0.23g/L、氧化镁0.01~0.015g/L和硫0.012~0.02g/L。上述营养液能全面提供少根紫萍生长所需的大量元素和微量元素,无性繁殖速度快,基因突变的概率低,可得到大量基因相同的植株,样本量足。
作为优选,植株克隆体在光照培养箱中进行室内培养50~70d,培养条件为22.5~23.5℃,湿度73~83%,光照强度为1800~2200lux,光暗时间14~16h:10~8h。上述培养条件下,少根紫萍的光合作用强,生长速度快。
作为优选,微卫星引物为:Sp 10:F:CCATCTGTCGTCCTTTTTCCC;R:CGCCCCATCACTTATTTCGTA;Sp14:F:GTCCATCCTTCTCAGCACAAT;R:CCGTACAAGATCTAAGCCTTT;Sp42:F:TGAGATCAGGCTGGAGCAGTG;R:GTTTACGTGGGCTACCAAACA;Sp47:F:TGGGCCTATGGCGATTAGGGG;R:GCGGCATCCACGGAGAAAATG;Sp51:F:CTCGCACATCAGTTCACAGGA;R:TCAGACATCTGGCGCAGTAGA;Sp52:F:GTCCTCCCTTTGATTGCTCGTC;R:AAGCATCATGGGCTCTTCAGG;Sp53:F:AGGACGACGACCTCTACTGCC;R:TACGAGTTCTGCGGACCATCA。
作为优选,PCR扩增体系为18~22ul,其中包括3.4~4.2U Taq DNA聚合酶(Sangon)、1.6~2.2ul10×PCRbuffer、0.7~0.9mMdNTP、上游引物0.3mM、下游引物0.3mM、50~100ng DNA模板,ddH2O补至终体积20ul;在Bio-Rad PCR扩增仪上进行扩增,扩增程序为92~96℃预变性4.5~5.6min;93~96℃变性28~33s,52~56℃复性33~37s,70~75℃延伸36~43s,共33~38个循环;最终70~75℃延伸2.5~3.4min。上述PCR扩增可快速得到大量的经微卫星引物标记的少根紫萍的DNA序列。
作为优选,数据统计与分析为对紫萍克隆的叶数/株、叶长和叶宽进行统计描述,应用单因素方差分析和最小显著差数法或Dunnett T3非参数多重比较两两基因型生长性状特征之间的差异性;应用一般线性模型过程对叶数/株、叶长和叶宽性状与微卫星位点的关联性进行最小二乘分析,并对同一位点的各基因型进行多重比较。少根紫萍叶长和叶宽均与Sp10、Sp14、Sp42、Sp47、Sp51、Sp52和Sp53显著相关(除Sp51位点P<0.05,其余P<0.001)。
与现有技术相比,本发明的优点在于:本发明可快速得到大量的经微卫星引物标记的少根紫萍的DNA序列,微卫星标记检测速度快,可快速获得少根紫萍Sp10、Sp14、Sp42、Sp47、Sp51、Sp52和Sp53遗传标记基因座呈现高度遗传变异的多态性图谱。少根紫萍叶长和叶宽均与Sp10、Sp14、Sp42、Sp47、Sp51、Sp52和Sp53显著相关(除Sp51位点P<0.05,其余P<0.001)。了解基因型差异对紫萍生长以及污染物净化能力的影响,提高废水的生物治理效率。
具体实施例
下面通过实施例对本发明方案作进一步说明:
实施例1:
筛选少根紫萍叶生长相关的分子标记的方法,包括克隆体培养、基因组DNA提取、设计微卫星引物、PCR扩增和数据统计与分析。
植株克隆体培养的营养液成份及其浓度为:氮0.3~0.4g/L、磷酐0.1~0.15g/L、氧化钾0.16~0.23g/L、氧化镁0.01~0.015g/L和硫0.012~0.02g/L。上述营养液能全面提供少根紫萍生长所需的大量元素和微量元素,无性繁殖速度快,基因突变的概率低,可得到大量基因相同的植株,样本量足。
植株克隆体在光照培养箱中进行室内培养50~70d,培养条件为22.5~23.5℃,湿度73~83%,光照强度为1800~2200lux,光暗时间14~16h:10~8h。上述培养条件下,少根紫萍的光合作用强,生长速度快。
微卫星引物为:Sp 10:F:CCATCTGTCGTCCTTTTTCCC;R:CGCCCCATCACTTATTTCGTA;Sp14:F:GTCCATCCTTCTCAGCACAAT;R:CCGTACAAGATCTAAGCCTTT;Sp42:F:TGAGATCAGGCTGGAGCAGTG;R:GTTTACGTGGGCTACCAAACA;Sp47:F:TGGGCCTATGGCGATTAGGGG;R:GCGGCATCCACGGAGAAAATG;Sp51:F:CTCGCACATCAGTTCACAGGA;R:TCAGACATCTGGCGCAGTAGA;Sp52:F:GTCCTCCCTTTGATTGCTCGTC;R:AAGCATCATGGGCTCTTCAGG;Sp53:F:AGGACGACGACCTCTACTGCC;R:TACGAGTTCTGCGGACCATCA。
PCR扩增体系为18~22ul,其中包括3.4~4.2U Taq DNA聚合酶(Sangon)、1.6~2.2ul10×PCRbuffer、0.7~0.9mMdNTP、上游引物0.3mM、下游引物0.3mM、50~100ng DNA模板,ddH2O补至终体积20ul;在Bio-Rad PCR扩增仪上进行扩增,扩增程序为92~96℃预变性4.5~5.6min;93~96℃变性28~33s,52~56℃复性33~37s,70~75℃延伸36~43s,共33~38个循环;最终70~75℃延伸2.5~3.4min。上述PCR扩增可快速得到大量的经微卫星引物标记的少根紫萍的DNA序列。
数据统计与分析为对紫萍克隆的叶数/株、叶长和叶宽进行统计描述,应用单因素方差分析和最小显著差数法或Dunnett T3非参数多重比较两两基因型生长性状特征之间的差异性;应用一般线性模型过程对叶数/株、叶长和叶宽性状与微卫星位点的关联性进行最小二乘分析,并对同一位点的各基因型进行多重比较。少根紫萍叶长和叶宽均与Sp10、Sp14、Sp42、Sp47、Sp51、Sp52和Sp53显著相关(除Sp51位点P<0.05,其余P<0.001)。
实施例2:
筛选少根紫萍叶生长相关的分子标记的方法,包括克隆体培养、基因组DNA提取、设计微卫星引物、PCR扩增和数据统计与分析。
植株克隆体培养的营养液成份及其浓度为:氮0.32g/L、磷酐0.12g/L、氧化钾0.19g/L、氧化镁0.012g/L和硫0.016g/L。上述营养液能全面提供少根紫萍生长所需的大量元素和微量元素,无性繁殖速度快,基因突变的概率低,可得到大量基因相同的植株,样本量足。
植株克隆体在光照培养箱中进行室内培养60d,培养条件为23℃,湿度78%,光照强度为2000lux,光暗时间16:8h。上述培养条件下,少根紫萍的光合作用强,生长速度快。
微卫星引物为:Sp 10:F:CCATCTGTCGTCCTTTTTCCC;R:CGCCCCATCACTTATTTCGTA;Sp14:F:GTCCATCCTTCTCAGCACAAT;R:CCGTACAAGATCTAAGCCTTT;Sp42:F:TGAGATCAGGCTGGAGCAGTG;R:GTTTACGTGGGCTACCAAACA;Sp47:F:TGGGCCTATGGCGATTAGGGG;R:GCGGCATCCACGGAGAAAATG;Sp51:F:CTCGCACATCAGTTCACAGGA;R:TCAGACATCTGGCGCAGTAGA;Sp52:F:GTCCTCCCTTTGATTGCTCGTC;R:AAGCATCATGGGCTCTTCAGG;Sp53:F:AGGACGACGACCTCTACTGCC;R:TACGAGTTCTGCGGACCATCA。
PCR扩增体系为20ul,其中包括4U Taq DNA聚合酶(Sangon)、2ul10×PCRbuffer、0.8mMdNTP、上游引物0.3mM、下游引物0.3mM、50-100ng DNA模板,ddH2O补至终体积20ul。在Bio-Rad PCR扩增仪上进行扩增,扩增程序为94℃预变性5min;94℃变性30s,54℃复性35s,72℃延伸40s,共35个循环;最终72℃延伸3min。PCR扩增产物在3730XL测序仪上进行毛细管电泳检测。上述PCR扩增可快速得到大量的经微卫星引物标记的少根紫萍的DNA序列。
数据统计与分析为对紫萍克隆的叶数/株、叶长和叶宽进行统计描述,应用单因素方差分析和最小显著差数法或Dunnett T3非参数多重比较两两基因型生长性状特征之间的差异性;应用一般线性模型过程对叶数/株、叶长和叶宽性状与微卫星位点的关联性进行最小二乘分析,并对同一位点的各基因型进行多重比较。少根紫萍叶长和叶宽均与Sp10、Sp14、Sp42、Sp47、Sp51、Sp52和Sp53显著相关(除Sp51位点P<0.05,其余P<0.001)。
实施例3:
筛选少根紫萍叶生长相关的分子标记的方法,包括克隆体培养、基因组DNA提取、设计微卫星引物、PCR扩增和数据统计与分析。
植株克隆体培养的营养液成份及其浓度为:氮0.32g/L、磷酐0.12g/L、氧化钾0.2g/L、氧化镁0.013g/L和硫0.017g/L。上述营养液能全面提供少根紫萍生长所需的大量元素和微量元素,无性繁殖速度快,基因突变的概率低,可得到大量基因相同的植株,样本量足。
对不同培养系中的每一植株(叶片相连)计数叶片的数量,使用游标卡尺测量叶片的叶长(叶片最长长度)、叶宽(叶片最短长度)及每条根的长度。
微卫星引物为:Sp 10:F:CCATCTGTCGTCCTTTTTCCC;R:CGCCCCATCACTTATTTCGTA;Sp14:F:GTCCATCCTTCTCAGCACAAT;R:CCGTACAAGATCTAAGCCTTT;Sp42:F:TGAGATCAGGCTGGAGCAGTG;R:GTTTACGTGGGCTACCAAACA;Sp47:F:TGGGCCTATGGCGATTAGGGG;R:GCGGCATCCACGGAGAAAATG;Sp51:F:CTCGCACATCAGTTCACAGGA;R:TCAGACATCTGGCGCAGTAGA;Sp52:F:GTCCTCCCTTTGATTGCTCGTC;R:AAGCATCATGGGCTCTTCAGG;Sp53:F:AGGACGACGACCTCTACTGCC;R:TACGAGTTCTGCGGACCATCA。
采用改良的CTAB方法提取少根紫萍和少根紫萍基因组DNA。PCR扩增体系为20ul,其中包括4U Taq DNA聚合酶(Sangon)、2ul10×PCRbuffer、0.8mMdNTP、上游引物0.3mM、下游引物0.3mM、50-100ng DNA模板,ddH2O补至终体积20ul。在Bio-Rad PCR扩增仪上进行扩增,扩增程序为94℃预变性5min;94℃变性30s,54℃复性35s,72℃延伸40s,共35个循环;最终72℃延伸3min。PCR扩增产物在3730XL测序仪上进行毛细管电泳检测。
数据统计与分析为采用SPSS19.0对实验数据进行统计分析。对紫萍克隆的叶数/株、叶长和叶宽进行统计描述,应用单因素方差分析(One-way ANOVA)和最小显著差数法(Least-significant difference,LSD)或Dunnett T3非参数多重比较两两基因型生长性状特征之间的差异性;应用一般线性模型(General linear models,GLM)过程对叶数/株、叶长和叶宽性状与微卫星位点的关联性进行最小二乘分析,并对同一位点的各基因型进行多重比较。少根紫萍叶长和叶宽均与Sp10、Sp14、Sp42、Sp47、Sp51、Sp52和Sp53显著相关(除Sp51位点P<0.05,其余P<0.001)。
微卫星标记扫描:
用毛细管电泳检测2个微卫星标记的少根紫萍。结果显示,3个少根紫萍克隆为3个不同的MLGs。
表1少根紫萍3个克隆在2个微卫星位点的基因型
Figure GDA0002555059520000061
表2七个微卫星位点不同基因型在少根紫萍叶生长性状的多重比较
Figure GDA0002555059520000062
少根紫萍3个克隆经培养获得143~165个分株,叶片总数为448~581。由表2可看出少根紫萍叶长和叶宽均与Sp10、Sp14、Sp42、Sp47、Sp51、Sp52和Sp53显著相关(除Sp51位点P<0.05,其余P<0.001)。
本发明的操作步骤中的常规操作为本领域技术人员所熟知,在此不进行赘述。
以上所述的实施例对本发明的技术方案进行了详细说明,应理解的是以上所述仅为本发明的具体实施例,并不用于限制本发明,凡在本发明的原则范围内所做的任何修改、补充或类似方式替代等,均应包含在本发明的保护范围之内。
SEQUENCE LISTING
<110> 浙江海洋大学
<120> 筛选与少根浮萍叶生长相关的分子标记的方法
<130> 1
<160> 14
<170> PatentIn version 3.5
<210> 1
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工合成
<400> 1
ccatctgtcg tcctttttcc c 21
<210> 2
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工合成
<400> 2
cgccccatca cttatttcgt a 21
<210> 3
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工合成
<400> 3
gtccatcctt ctcagcacaa t 21
<210> 4
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工合成
<400> 4
ccgtacaaga tctaagcctt t 21
<210> 5
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工合成
<400> 5
tgagatcagg ctggagcagt g 21
<210> 6
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工合成
<400> 6
gtttacgtgg gctaccaaac a 21
<210> 7
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工合成
<400> 7
tgggcctatg gcgattaggg g 21
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<211> 21
<212> DNA
<213> 人工合成
<400> 8
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<211> 21
<212> DNA
<213> 人工合成
<400> 9
ctcgcacatc agttcacagg a 21
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<211> 21
<212> DNA
<213> 人工合成
<400> 10
tcagacatct ggcgcagtag a 21
<210> 11
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<212> DNA
<213> 人工合成
<400> 11
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<211> 21
<212> DNA
<213> 人工合成
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<211> 21
<212> DNA
<213> 人工合成
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<210> 14
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工合成
<400> 14
tacgagttct gcggaccatc a 21

Claims (1)

1.与少根紫萍叶生长相关的分子标记的微卫星引物,其特征在于,所述微卫星引物为:Sp10:F: CCATCTGTCGTCCTTTTTCCC;R: CGCCCCATCACTTATTTCGTA;Sp14:F:GTCCATCCTTCTCAGCACAAT;R: CCGTACAAGATCTAAGCCTTT;Sp42:F: TGAGATCAGGCTGGAGCAGTG;R: GTTTACGTGGGCTACCAAACA;Sp47:F: TGGGCCTATGGCGATTAGGGG;R:GCGGCATCCACGGAGAAAATG ;Sp51:F: CTCGCACATCAGTTCACAGGA;R: TCAGACATCTGGCGCAGTAGA和Sp52:F: GTCCTCCCTTTGATTGCTCGTC;R: AAGCATCATGGGCTCTTCAGG。
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