CN106613995A - 一种利用抑菌培养基培育金线莲的组培方法 - Google Patents

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Abstract

本发明涉及一种利用抑菌培养基培育金线莲的组培方法，包括培养容器消毒、培养基配制、无菌水制备、诱导培养、增殖培养、生根培养和瓶苗移栽。本发明的金线莲抑菌组培过程中，培养容器和培养基都无需高温高压灭菌，减少了工作量和能源消耗，简化了金线莲组培技术环节，降低了金线莲组培成本；而且操作简单，只需按不同的培养基配方配制后即可使用，实用性强，推广性好。本发明的金线莲抑菌组培方法与常规的金线莲组培方法相比，可以降低成本10％以上。

Description

一种利用抑菌培养基培育金线莲的组培方法
技术领域 本发明涉及一种植物组织培养方法，具体涉及一种利用抑菌培养基培育金线莲的组培方法，属生物技术领域。
背景技术 金线莲(Anoectochilus roxburghii(Wall.)Lindl.)，又名金线兰、金丝草，为兰科开唇兰属多年生名贵中药材，主产于福建、浙江、台湾、江西、贵州等地，具有清热凉血、除湿解毒等功效，用于治疗糖尿病、肾炎、急慢性肝炎等，在民间享有“药王”的美称。现代研究表明金线莲中含有金线莲苷等活性成分，具有修复受损胰岛细胞，恢复正常胰岛素分泌的药理活性，以金线莲为主要原料的中成药，如复方金线莲胶囊，在临床上已用于糖尿病的治疗。由于金线莲种子微小，胚胎发育不完全，自然条件下繁殖率极低，经多年开发，目前野生资源已濒临枯竭。用组培快繁和移栽技术大量培育金线莲，已成为保护及合理开发利用其野生资源的有效途径。
金线莲组织培养的成本主要包括组培苗生产所需的培养基、设施设备、供电成本、耗材和人工成本。常规的金线莲组织培养方法要求外植体接种在高温高压灭菌后的无菌培养基中才能正常生长，耗能大，人工操作成本高。如果能通过药物抑菌的方法来改造培养基，使培养基在不需要进行高温高压灭菌，就能够获得金线莲的正常生长。然而，针对不同的植物品种要找到一种合适的抗菌剂是比较困难的，往往是当培养基抗菌时，植物组织的生长就受到抑制；而植物组织正常生长，就无法获得满意的抗菌效果。其原因，一是还没有一种抗生素对所有的菌类都有效，而且抗生素的药效期短；二是有些抗菌素、防腐剂在有效的浓度下，其杀菌、抗菌离子对植物组织直接产生伤害，有些则产生盐害。必须选择与植物组织亲和、友好，药效期长(至少一个生长周期)，不产生盐害并具有杀菌、抗菌活性的物质作为抗菌剂。因此，筛选合适的抗菌药剂是抑菌组培技术得以应用的关键。
本发明就是为金线莲组织培养提供一种抑菌培养方法。一方面可以降低金线莲组织培养对设施设备的要求，尤其不需要高温高压灭菌所需配置的高压锅设备，缩减了投资成本，电能消耗也将大幅度降低；另一方面，采用这种培养基开展金线莲组织培养，组培环节大为简化，人工操作的速度大幅提高，从而降低了人工成本。此外，由于改造后的培养基自身具有杀菌、抗菌或抑菌作用，能有效控制组织培养过程中的污染问题，又不会对金线莲生长产生毒害或抑制，即不影响金线莲的正常生长，从根本上简化了金线莲组织培养。
发明内容 本发明的目的是提供一种利用抑菌培养基培育金线莲的组培方法。
本发明的目的是通过以下方法实现的。
本发明的一种利用抑菌培养基培育金线莲的组培方法，包括培养容器消毒、培养基配制、无菌水的制备、诱导培养、增殖培养、生根培养和瓶苗移栽，其特征在于：
1.培养容器消毒：将培养瓶、瓶盖及接种用的塑料盘在100mg/L次氯酸钠+10mg/L环丝氨酸+0.5mg/L十二烷基磺酸钠的水溶液中浸泡不少于10h，保存备用；
2.培养基配制：诱导培养基为：MS+1～5mg/L 6-BA+0.5～1.5mg/L NAA+40～100mg/L次氯酸钠+1～5mg/L环丝氨酸+50～100mg/L丙酸钙+25g/L蔗糖+3.0g/L琼脂粉，pH5.8；增殖培养基为：MS+1～3mg/L 6-BA+0.5～1mg/L NAA+40～100mg/L次氯酸钠+1～5mg/L环丝氨酸+50～100mg/L丙酸钙+25g/L蔗糖+3.0g/L琼脂粉，pH5.8；生根培养基为：MS+0.5～2mg/L NAA+40～100mg/L次氯酸钠+1～5mg/L环丝氨酸+50～100mg/L丙酸钙+25g/L蔗糖+3.0g/L琼脂粉，pH5.8；所述MS，为1962年，Murashige和Skoog公开的MS培养基；所述6-BA，指6-苄氨基嘌呤；所述NAA，指α-萘乙酸；配制培养基时，先称各培养基配方中蔗糖和琼脂粉，加培养基总重量1/2的自来水，加热至琼脂粉完全溶解，再按各培养基配方配齐其他原料后，定容，然后用1mol/L的NaOH或1mol/L的HCl调pH值至5.8，分装到消毒过的培养容器中，封口，冷却凝固，备用；
3.无菌水的制备：采用次氯酸钠、环丝氨酸、十二烷基磺酸钠和水配制无菌水，终浓度为100mg/L次氯酸钠、10mg/L环丝氨酸、0.5mg/L十二烷基磺酸钠，现配现用；
4.诱导培养：取无病虫害生长健壮的植株，剪去根和叶片后,用洗衣粉浸泡冲洗15min后，剪成2～3cm长的带腋芽茎段，用体积比为75％酒精消毒30s,再用重量体积比为0.1％升汞浸泡消毒10min，再用无菌水反复冲洗不少于3次；消毒后的茎段在无菌条件下接种于诱导培养基上，培养30d～60d后长出新芽；培养室温度为26℃，光照8h，光照强度为1000Lx；
5.增殖培养：将诱导出的新芽转入增殖培养基中,45d后逐步诱导出丛生芽；将丛生芽切开接种到增殖培养基上，每45d转接一次，可获得大量幼芽；培养室温度为26℃，光照8h，光照强度为1000Lx；
6.生根培养：取高度为3～5cm芽苗，接种到生根培养基上，培养25d后成为完整植株；培养室温度为26℃，光照12h，光照强度为1500Lx；
7.瓶苗移栽：将生根培养获得的完整植株取出，洗净根部的培养基，用800倍的多菌灵浸泡30min后，移栽至水草中或直接水培，大棚上层用80％遮光网遮盖，移栽的环境温度为22～28℃。
本发明的应用效果：本发明的一种利用抑菌培养基培育金线莲的组培方法，利用化学试剂添加到各种培养基中，达到灭菌或抑菌的作用。配制的培养基无需高温高压灭菌。因此，在金线莲诱导培养、增殖培养、生根培养各个阶段，除了要考虑常用的评价指标外，还要考虑外植体污染率的问题。
1.诱导培养：通过实验证实，本发明的金线莲抑菌组培方法与常规组培方法相比，结果如表1所示，在诱导培养阶段的外植体培养的成活率差异不显著。
表1 本发明的抑菌组培方法对金线莲腋芽诱导培养的影响
组培方式 外植体数 外植体污染数 成活率(％)
常规组培方法 82 25 69.5
抑菌组培方法 80 22 72.5
2.增殖培养：本发明的金线莲抑菌组培方法与常规组培的增殖倍数和污染率的比较，结果如表2所示，增殖倍数和污染率二个指标都没有太大差异。在瓶苗的生长状况看，本发明的抑菌组培方法的培养基由于不经过高温高压灭菌，激素和营养元素损失较少，其金线莲组培苗更绿，更壮。
表2 本发明的抑菌组培方法对金线莲增殖倍数和污染率的影响
组培方式 增殖倍数 污染率(％) 生长状况
常规组培方法 3,2 1.2 苗弱、叶色浅绿。
抑菌组培方法 3,4 0.8 苗壮、叶色绿。
3本发明的抑菌组培方法对金线莲生根率和污染率的影响：在生根过程中，本发明的抑菌组培方法与常规的金线莲组培方法相比，结果如表3所示，生根率和污染率都没有太大差异；从瓶苗的生长状况看，用本发明的方法，金线莲组培苗茎更粗，叶片更大。
表3 本发明金线莲抑菌组培的瓶苗生根情况
4.成本分析：本发明的抑菌组培方法与常规组培的成本分析见表4。本发明组培省去了高压灭菌环节，简化了组培程序，提高了工作效率。从直接费用计算，每年可以节约5.5万元左右(以每天配制50L培养基计算)。常规组培还需要添置高压锅等设备及日常维护，此外，常规组培还存在实验室安全等问题。
表4 本发明的金线莲简便组培方法与常规组培的成本分析表
本发明具有如下有益效果：
1.本发明的金线莲抑菌组培方法中，培养容器和培养基都无需高温高压灭菌，减少了工作量和能源消耗，简化了金线莲组培环节，降低了金线莲组培成本。
2.本发明的金线莲抑菌组培方法，操作简单，只要按不同的培养基配方配制后即可，实用性强，推广性好。
3.本发明的金线莲抑菌组培方法与常规的金线莲组培方法对比，可以降低成本10％以上。
具体实施方式 为了进一步阐明本发明而不是限制本发明，以下结合实施例加以说明。
实施例一：一种利用抑菌培养基培育金线莲的组培方法
一种利用抑菌培养基培育金线莲的组培方法，包括以下步骤：
1.培养容器消毒：将培养瓶、瓶盖及接种用的塑料盘在100mg/L次氯酸钠+10mg/L环丝氨酸+0.5mg/L十二烷基磺酸钠的水溶液中浸泡10h，保存备用；
2.培养基配制：诱导培养基为：MS+3mg/L 6-BA+1mg/L NAA+60mg/L次氯酸钠+3mg/L环丝氨酸+70mg/L丙酸钙+25g/L蔗糖+3.0g/L琼脂粉，pH5.8；增殖培养基为：MS+2mg/L 6-BA+0.75mg/L NAA+60mg/L次氯酸钠+3mg/L环丝氨酸+70mg/L丙酸钙+25g/L蔗糖+3.0g/L琼脂粉，pH5.8；生根培养基为：MS+1mg/L NAA+60mg/L次氯酸钠+3mg/L环丝氨酸+70mg/L丙酸钙+25g/L蔗糖+3.0g/L琼脂粉，pH5.8；配制培养基时，先称各培养基配方中的蔗糖和琼脂粉，加培养基总重量1/2的自来水，加热至琼脂粉完全溶解，再按各培养基配方配齐其他原料后，定容，然后用1mol/L的NaOH或1mol/L的HCl调pH值至5.8，分装到消毒过的培养容器中，封口，冷却凝固，备用。
3.无菌水的制备：采用次氯酸钠、环丝氨酸、十二烷基磺酸钠和水配制无菌水，终浓度为100mg/L次氯酸钠、10mg/L环丝氨酸、0.5mg/L十二烷基磺酸钠，现配现用；
4.诱导培养：取无病虫害生长健壮的植株，剪去根和叶片后,用洗衣粉浸泡冲洗15min后，剪成2～3cm长的带腋芽茎段，用体积比为75％酒精消毒30s，再用重量体积比为0.1％升汞浸泡消毒10min，再用无菌水反复冲洗3次。消毒后的茎段在无菌条件下接种于诱导培养基上，培养30d～60d后长出新芽；培养室温度为26℃，光照8h，光照强度为1000Lx。
5.增殖培养：将诱导出的新芽转入增殖培养基中,45d后逐步诱导出丛生芽。将丛生芽切开接种到增殖培养基上；每45d转接一次，可获得大量幼芽；培养室温度为26℃，光照8h，光照强度为1500Lx；
6.生根培养：取高度为3～5cm芽苗，接种到生根培养基上，培养25d后成为完整植株；培养室温度为26℃，光照12h，光照强度为1500Lx；
7.瓶苗移栽：将生根培养获得的完整植株取出，洗净根部的培养基，用800倍的多菌灵浸泡30min后，移栽至水草中或直接水培，大棚上层用80％遮光网遮盖，移栽的环境温度为22～28℃。

Claims (4)

1.一种利用抑菌培养基培育金线莲的组培方法，包括培养容器消毒、培养基配制、无菌水的制备、诱导培养、增殖培养、生根培养和瓶苗移栽，其特征在于：
(1)培养容器消毒：将培养瓶、瓶盖及接种用的塑料盘在100mg/L次氯酸钠+10mg/L环丝氨酸+0.5mg/L十二烷基磺酸钠的水溶液中浸泡不少于10h，保存备用；
(2)培养基配制：诱导培养基为：MS+1～5mg/L 6-BA+0.5～1.5mg/L NAA+40～100mg/L次氯酸钠+1～5mg/L环丝氨酸+50～100mg/L丙酸钙+25g/L蔗糖+3.0g/L琼脂粉，pH5.8；增殖培养基为：MS+1～3mg/L 6-BA+0.5～1mg/L NAA+40～100mg/L次氯酸钠+1～5mg/L环丝氨酸+50～100mg/L丙酸钙+25g/L蔗糖+3.0g/L琼脂粉，pH5.8；生根培养基为：MS+0.5～2mg/LNAA+40～100mg/L次氯酸钠+1～5mg/L环丝氨酸+50～100mg/L丙酸钙+25g/L蔗糖+3.0g/L琼脂粉，pH5.8；所述MS，为1962年，Murashige和Skoog公开的MS培养基；所述6-BA，指6-苄氨基嘌呤；所述NAA，指α-萘乙酸；配制培养基时，先称各培养基配方中蔗糖和琼脂粉，加培养基总重量1/2的自来水，加热至琼脂粉完全溶解，再按各培养基配方配齐其他原料后，定容，然后用1mol/L的NaOH或1mol/L的HCl调pH值至5.8，分装到消毒过的培养容器中，封口，冷却凝固，备用；
(3)无菌水的制备：采用次氯酸钠、环丝氨酸、十二烷基磺酸钠和水配制无菌水，终浓度为100mg/L次氯酸钠、10mg/L环丝氨酸、0.5mg/L十二烷基磺酸钠，现配现用；
(4)诱导培养：取无病虫害生长健壮的植株，剪去根和叶片后,用洗衣粉浸泡冲洗15min后，剪成2～3cm长的带腋芽茎段，用体积比为75％酒精消毒30s,再用重量体积比为0.1％升汞浸泡消毒10min，再用无菌水反复冲洗不少于3次；消毒后的茎段在无菌条件下接种于诱导培养基上，培养30d～60d后长出新芽；培养室温度为26℃，光照8h，光照强度为1000Lx；
(5)增殖培养：将诱导出的新芽转入增殖培养基中,45d后逐步诱导出丛生芽；将丛生芽切开接种到增殖培养基上，每45d转接一次，可获得大量幼芽；培养室温度为26℃，光照8h，光照强度为1000Lx；
(6)生根培养：取高度为3～5cm芽苗，接种到生根培养基上，培养25d后成为完整植株；培养室温度为26℃，光照12h，光照强度为1500Lx；
(7)瓶苗移栽：将生根培养获得的完整植株取出，洗净根部的培养基，用800倍的多菌灵浸泡30min后，移栽至水草中或直接水培，大棚上层用80％遮光网遮盖，移栽的环境温度为22～28℃。
2.根据权利要求1所述的一种利用抑菌培养基培育金线莲的组培方法，其特征在于所述诱导培养基为：MS+3mg/L 6-BA+1mg/L NAA+60mg/L次氯酸钠+3mg/L环丝氨酸+70mg/L丙酸钙+25g/L蔗糖+3.0g/L琼脂粉，pH5.8。
3.根据权利要求1所述的一种利用抑菌培养基培育金线莲的组培方法，其特征在于所述增殖培养基为：MS+2mg/L 6-BA+0.75mg/L NAA+60mg/L次氯酸钠+3mg/L环丝氨酸+70mg/L丙酸钙+25g/L蔗糖+3.0g/L琼脂粉，pH5.8。
4.根据权利要求1所述的一种利用抑菌培养基培育金线莲的组培方法，其特征在于所述生根培养基为：MS+1mg/L NAA+60mg/L次氯酸钠+3mg/L环丝氨酸+70mg/L丙酸钙+25g/L蔗糖+3.0g/L琼脂粉，pH5.8。
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Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101953307A (zh) * 2010-10-20 2011-01-26 福建省金草生物科技有限公司 通过植物组织培养生产福建道地金线莲的方法
CN102144566A (zh) * 2011-03-30 2011-08-10 贵州省亚热带作物研究所 兴仁金线莲试管苗的培育方法
CN103918714A (zh) * 2014-01-25 2014-07-16 漳州美利德生物工程有限公司 一种金线莲组培的培养基抗菌剂及其制备方法
CN104823847A (zh) * 2015-04-29 2015-08-12 福建省农业科学院农业生物资源研究所 一种浙江金线兰种子组织培养与快速育苗方法
CN104885942A (zh) * 2015-05-26 2015-09-09 福建农林大学 一种杜鹃花化学消毒组培方法

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101953307A (zh) * 2010-10-20 2011-01-26 福建省金草生物科技有限公司 通过植物组织培养生产福建道地金线莲的方法
CN102144566A (zh) * 2011-03-30 2011-08-10 贵州省亚热带作物研究所 兴仁金线莲试管苗的培育方法
CN103918714A (zh) * 2014-01-25 2014-07-16 漳州美利德生物工程有限公司 一种金线莲组培的培养基抗菌剂及其制备方法
CN104823847A (zh) * 2015-04-29 2015-08-12 福建省农业科学院农业生物资源研究所 一种浙江金线兰种子组织培养与快速育苗方法
CN104885942A (zh) * 2015-05-26 2015-09-09 福建农林大学 一种杜鹃花化学消毒组培方法

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
李莉: "《应用微生物学》", 30 September 2006, 武汉理工大学出版社 *

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