CN106605147A - 抗癌剂的感受性的判定标记 - Google Patents

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Abstract

本发明提供一种新的抗癌剂感受性判定标记。该抗癌剂感受性判定标记由选自PHB、ANXA5、ANXA1、TALDO、C1QBP、IPYR、CRBP1和COX5A中的1种以上的分子组成。

Description

抗癌剂的感受性的判定标记
技术领域
本发明涉及为了判定作为对象的患者的癌对所要使用的抗癌剂是否具有治疗反应性而使用的抗癌剂感受性判定标记及其利用。
背景技术
在抗癌剂中，有烷基化剂、铂制剂、代谢拮抗剂、抗癌性抗生物质、抗癌性植物生物碱等种类。并且，这些抗癌剂中，根据癌的种类不同，有时显示效果，有时不显示效果。然而，已知即使是被认为有效的种类的癌，根据各个患者也有时显示效果，有时不显示效果。将这样的抗癌剂针对各个患者的癌是否显示效果称为抗癌剂感受性。
奥沙利铂(SP－4－2)－[(1R,2R)－环己烷－1,2－二胺－κN，κN'][乙二酸(2－)－κO1，κO2]铂(IUPAC)是第三代铂配位化合物类抗恶性肿瘤药。被认为，其作用机理与作为现有药剂的顺铂(CDDP)和卡铂(CBDCA)相同，因与DNA碱基形成交联而导致DNA合成抑制、蛋白合成抑制，但即使是对CDDP和CBDCA无效的大肠癌，奥沙利铂(L－OHP)也显示抗肿瘤效果，显示与现有的铂配位化合物类抗恶性肿瘤药不同的抗肿瘤谱。美国已经在2004年1月承认通过其与氟尿嘧啶(5－FU)/左亚叶酸盐(LV)的并用作为转移性结肠–直肠癌的第一线(First line)治疗，日本在2005年4月在药价基准中也收录了对于“不能切除治愈的晚期–复发的结肠–直肠癌”，其与左亚叶酸盐和氟尿嘧啶的静脉内持续给药法的并用(FOLFOX4法)。对于晚期复发大肠癌的治疗而言，在二十世纪90年代前半叶之前已进行的5－FU/LV疗法的生存率为10～12个月，与之相对，加入了奥沙利铂的FOLFOX疗法的生存时间为19.5个月，达到了大约2倍。进一步而言，在2009年8月，作为效能、效果，同样追加了利用与左亚叶酸盐和氟尿嘧啶的静脉内持续给药法的并用的“结肠癌的术后辅助化疗法”，是能够在大肠癌患者中扩大使用并期待有益性的药剂。
然而，即便如此，针对晚期复发大肠癌的FOLFOX疗法的有效率也仅有50％左右，换言之，意味着接受治疗的患者的半数不能获得效果。另外，因奥沙利铂的使用除了表现出嗜中性粒细胞减少症还表现出高频率的末梢神经障碍，虽然这不是可以致死的副作用，但是也成为使继续治疗变得困难的因素。因此，在治疗开始前，利用对能够期待效果的患者(反应者)和不能期待效果的患者(无反应者)进行预测并能够对治疗反应性进行早期诊断的生物标记，实现有效性和安全性高的化疗法。
进一步而言，通常癌化疗法的疗程需要长期进行，因此通过继续治疗中对抗癌剂的感受性的经时监视，能够对是否继续治疗进行判定，从而，不仅与减轻患者负担和副作用有关，而且从医疗经济性的观点考虑，也是有用的。为了实现预测各个患者的治疗反应性而进行早期诊断并选择合适的药剂和治疗方案的“个体化治疗”，确立能够进行奥沙利铂等的抗癌剂的效果预测或者治疗应答性的早期诊断的生物标记是当务之急。
从以上的观点出发，本发明人培养多种人癌细胞株，对这些癌细胞株的药剂感受性进行测定，对这些药剂感受性不同的细胞株进行药剂暴露，使用表面增强型激光解吸离子化飞行时间型质量分析仪(SELDI－TOF MS)对药剂暴露后的细胞内蛋白质的经时表达变化进行全面地分析，与药剂感受性进行比较分析，由此进行抗癌剂感受性判定标记的探索，报告了几个标记(专利文献1～3)。
现有技术文献
专利文献
专利文献1：国际公开第2009/096196号
专利文献2：国际公开第2011/052748号
专利文献3：国际公开第2011/052749号
发明内容
发明所要解决的课题
然而，以前报告的标记作为抗癌剂的感受性判定标记还没有实用化，希望开发更加新的标记。
因此，本发明的课题在于提供更新的抗癌剂感受性判定标记。
用于解决课题的方法
因此，本发明人首先根据对抗癌剂(奥沙利铂：L－OHP)的感受性的程度将癌细胞株分为高感受性、中感受性和低感受性3种，利用双向荧光差异凝胶电泳(2D－DIGE)对在高感受性细胞株和低感受性细胞株中表达的蛋白质的表达量存在差异的蛋白质进行了研究。作为其结果，在高感受性细胞株和低感受性细胞株中，找出细胞内表达水平不同的点，利用LC－MS/MS对该点进行分析，并进行数据库检索，从而鉴定出10种蛋白质。接着，对在高感受性、中感受性和低感受性的3种细胞株中这些蛋白质的表达量与对于抗癌剂的IC50值的相关性进行确认时，发现在抗增殖蛋白(Prohibitin)(PHB)、膜联蛋白A5(Annexin A5)(ANXA5)、膜联蛋白A1(Annexin A1)(ANXA1)、转醛醇酶(Transaldolase)(TALDO)、补体成分1Q亚成分结合蛋白(Complement component 1Q subcomponent－binding protein)(C1QBP)和无机焦磷酸酶(Inorganic Pyrophosphatase)(IPYR)6种蛋白质中确认有高的相关性。
还利用表面增强型激光解吸离子化飞行时间型质量分析仪(SELDI－TOF MS)对在高感受性细胞株和低感受性细胞株中表达的蛋白质的表达量存在差异的蛋白质进行了研究。其中，为了广泛地探索表达量存在差异的蛋白质，在SELDI－TOF MS中，使用阳离子用、阴离子用两种芯片，使用高分子用的SPA(EAM：50％ACN/0.5％TFA溶液的芥子酸(sinapinicacid)饱和溶液)和低分子用的CHCA(α－氰基－4－羟基肉桂酸)作为基质进行了研究。另外，在细胞内蛋白质提取工序中，为了避免对细胞的刺激和细胞内蛋白质的活化，不使用乳胶刮刷(rubber policeman)剥落而原样使用细胞溶解液来提取细胞内蛋白质。作为其结果，获得了在高感受性细胞株和低感受性细胞株中细胞内表达量存在差异的蛋白质的推定的分子量和等电点的信息。通过对这些蛋白质进行数据库检索，鉴定出细胞色素c氧化酶亚基5A(Cytochrome c oxidase subunit 5A)(COX5A)。还进行了高感受性细胞株和低感受性细胞株的细胞提取液的双向电泳，找出处于推定的分子量和等电点的范围且表达量存在差异的点，利用LC－MS/MS对该点进行分析，并利用数据库进行检索，由此鉴定出视黄醇结合蛋白1(Retinol‐binding protein 1)(CRBP1)。
基于以上见解进一步研究，结果发现，如果对来自癌症患者的生物体试样中的该蛋白质的浓度进行测定，则能够对该癌症患者的癌是否具有对抗癌剂的感受性进行判定，另外，如果以这些物质的表达变化作为指标，则能够筛选抗癌剂感受性增强剂，进一步而言，如果并用该抗癌剂感受性增强剂和作为感受性增强的对象的抗癌剂，则该抗癌剂的治疗效果会飞跃性地提高，由此完成了本发明。
即，本发明提供如下的〔1〕～〔16〕的发明。
〔1〕一种由选自PHB、ANXA5、ANXA1、TALDO、C1QBP、IPYR、CRBP1和COX5A中的1种以上的分子组成的抗癌剂感受性判定标记。
〔2〕如〔1〕所述的抗癌剂感受性判定标记，其中，抗癌剂为铂配位化合物类抗癌剂。
〔3〕如〔1〕或〔2〕所述的抗癌剂感受性判定标记，其中，抗癌剂选自奥沙利铂或其盐。
〔4〕一种抗癌剂的感受性判定方法，其包括对来自癌症患者的生物体试样中的选自PHB、ANXA5、ANXA1、TALDO、C1QBP、IPYR、CRBP1和COX5A中的1种以上的分子的量进行测定的工序。
〔5〕如〔4〕所述的判定方法，其中，还包括通过将上述测定结果与对照水平进行比较来判定该癌症患者对抗癌剂的感受性的工序。
〔6〕如〔4〕或〔5〕所述的判定方法，其中，生物体试样为来自已投予抗癌剂的癌症患者的生物体试样。
〔7〕如〔4〕～〔6〕中任一项所述的判定方法，其中，抗癌剂为铂配位化合物类抗癌剂。
〔8〕如〔4〕～〔7〕中任一项所述的判定方法，其中，抗癌剂选自奥沙利铂或其盐。
〔9〕一种用于实施〔4〕～〔8〕中任一项所述的判定方法的试剂盒，其特征在于：包括用于对来自癌症患者的生物体试样中的选自PHB、ANXA5、ANXA1、TALDO、C1QBP、IPYR、CRBP1和COX5A中的1种以上的分子的量进行测定的方案。
〔10〕一种抗癌剂感受性增强剂的筛选方法，其中，在抗癌剂的存在下，以来自癌细胞株或荷瘤动物的生物体试样中的选自PHB、ANXA5、ANXA1、TALDO、C1QBP、IPYR、CRBP1和COX5A中的1种以上的分子的表达变化作为指标。
〔11〕如〔10〕所述的筛选方法，其中，抗癌剂为铂配位化合物类抗癌剂。
〔12〕如〔10〕或〔11〕所述的筛选方法，其中，抗癌剂选自奥沙利铂或其盐。
〔13〕一种利用〔10〕～〔12〕中任一项所述的方法得到的抗癌剂感受性增强剂。
〔14〕一种将〔13〕所述的感受性增强剂和作为感受性增强的对象的抗癌剂组合而成的癌治疗用组合物。
〔15〕如〔14〕所述的癌治疗组合物，其中，抗癌剂为铂配位化合物类抗癌剂。
〔16〕如〔14〕或〔15〕所述的癌治疗用组合物，其中，抗癌剂为奥沙利铂或其盐。
发明效果
利用本发明的抗癌剂感受性判定标记，能够在治疗开始前或者治疗开始后早期准确地判定各个患者的抗癌剂感受性，作为其结果，能够选择治疗效果高的抗癌剂。另外，由于能够避免得不到效果的抗癌剂的使用，因此能够避免不必要的副作用。另外，由于使用抗癌剂的疗程需要长期进行，因此在继续治疗中，通过在每个治疗周期对抗癌剂感受性进行判定，也能够进行抗癌剂对其癌的感受性的经时评价，能够判定是否应该继续治疗。作为其结果，能够防止伴随得不到治疗效果的抗癌剂的继续投予的癌进展、副作用的增大，也关系到患者的负担减轻、医疗费的削减。
另外，如果使用该标记，还能够筛选使抗癌剂感受性增强的药剂，如果并用作为其对象的抗癌剂和抗癌剂感受性增强剂，则癌症治疗效果会飞跃性地提高。本发明的抗癌剂感受性判定标记的测定试剂作为抗癌剂感受性判定试剂是有用的。
附图说明
图1表示2D－DIGE的结果。图中的框表示所选出的16个点。
图2表示PHB的表达量与奥沙利铂对癌细胞的感受性(IC50值)的关系。IC50值从左向右绘制了SW480、Ls174T、Lovo、SW620、HCT116、HCT15、HT29、DLD－1、WiDr的结果。
图3表示C1QBP的表达量与奥沙利铂对癌细胞的感受性(IC50值)的关系。IC50值从左向右绘制了SW480、Ls174T、Lovo、SW620、HCT116、HCT15、HT29、DLD－1、WiDr的结果。
图4表示ANXA5的表达量与奥沙利铂对癌细胞的感受性(IC50值)的关系。IC50值从左向右绘制了SW480、Ls174T、Lovo、SW620、HCT116、HCT15、HT29、DLD－1、WiDr的结果。
图5表示ANXA1的表达量与奥沙利铂对癌细胞的感受性(IC50值)的关系。IC50值从左向右绘制了SW480、Ls174T、Lovo、SW620、HCT15、HT29、DLD－1、WiDr的结果。
图6表示TALDO的表达量与奥沙利铂对癌细胞的感受性(IC50值)的关系。IC50值从左向右绘制了SW480、Ls174T、Lovo、SW620、HCT116、HCT15、HT29、DLD－1、WiDr的结果。
图7表示IPYR的表达量与奥沙利铂对癌细胞的感受性(IC50值)的关系。IC50值从左向右绘制了SW480、Ls174T、Lovo、SW620、HCT116、HCT15、HT29、DLD－1、WiDr的结果。
图8表示候补蛋白质A的SELDI－TOF MS结果。
图9表示候补蛋白质A的等电点的预测。
图10表示候补蛋白质B的SELDI－TOF MS结果。
图11表示候补蛋白质B的等电点的预测。
图12表示为了鉴定由SELDI－TOF MS推定的分子量和等电点而进行的对L－OHP高感受性株和低感受性株的双向电泳的结果。
图13表示m/z 15,850(CRBP1)的蛋白质印迹法与SELDI－TOF MS的各种峰强度分析结果的比较。
图14表示m/z 12,506(COX5A)的蛋白质印迹法与SELDI－TOF MS的各种峰强度分析结果的比较。
具体实施方式
本发明的抗癌剂感受性判定标记为PHB、ANXA5、ANXA1、TALDO、C1QBP、IPYR、CRBP1和COX5A的8种蛋白质。对于这些蛋白质而言，如后述实施例所示，使用2D－DIGE或SELDI－TOF MS研究了在对抗癌剂高感受性的细胞株和低感受性的细胞株中表达的蛋白质的表达量的差，结果确认到，PHB、C1QBP、CRBP1和COX5A的4种蛋白质在高感受性株中表达量增大了。还确认到，ANXA5、ANXA1、TALDO和IPYR的4种蛋白质在低感受性株中表达量增大了。因此，这8种蛋白质作为抗癌剂感受性判定标记、特别是作为奥沙利铂的抗癌剂感受性判定标记是有用的。
关于PHB，已知其是癌抑制基因(日本特开平5-271294号公报)，并能够作为前列腺癌标记使用(日本特开2012-196211号公报)，但完全不知道其能够作为抗癌剂的感受性判定标记使用并且在抗癌剂感受性高的癌细胞中PHB的浓度上升。
关于ANXA5和ANXA1，其能够用于泌尿生殖道、肠道的癌的诊断等(日本特表2008-545634号公报)，但完全不知道其能够作为抗癌剂感受性判定标记使用并且在抗癌剂感受性低的癌细胞中ANXA5、ANXA1的浓度上升。
关于TALDO，没有关于癌标记的报告，完全不知道其能够作为抗癌剂感受性判定标记使用并且在抗癌剂感受性低的癌细胞中TALDO的浓度上升。
关于C1QBP，已知其能够作为肾细胞癌的诊断标记使用(日本特表2006-514554号公报)，但完全不知道其能够作为抗癌剂感受性判定标记使用并且在抗癌剂感受性高的癌细胞中C1QBP的浓度上升。
关于IPYR，已知其能够在体外(in vitro)用于对结肠直肠癌进行诊断的方法中(日本特表2008-502889号公报)，但完全不知道其能够作为抗癌剂感受性判定标记使用并且在抗癌剂感受性低的癌细胞中IPYR的浓度上升。
关于CRBP1，已知其在乳腺癌和大肠癌中，促进视黄醇(Retinol)的细胞增殖抑制作用(Kaleagasioglu F，et.al.，Arzneimittelforschung(1993)43(4)：487－90)，但完全不知道其能够作为抗癌剂感受性判定标记使用并且在抗癌剂感受性高的癌细胞中CRBP1的浓度上升。
关于COX5A，已知在小鼠大肠癌模型中，在癌细胞中其表达与正常细胞相比低(Yasui Y，et.al.，J Carcinog(2009)8：10)。另外，在上述专利文献3的段落(0068)中，COX5A作为蛋白质G的候补之一列举。然而，在专利文献3中，蛋白质G在抗癌剂低感受性细胞株中与高感受性株相比，其浓度上升，显示了与本案相反的结果，所以认为专利文献3的蛋白质G不是COX5A。因此，可以说完全不知道COX5A能够作为抗癌剂感受性判定标记使用并且在抗癌剂感受性高的癌细胞中COX5A的浓度上升。
作为成为本发明的抗癌剂感受性判定标记的对象的抗癌剂，没有特别地限定，例如可以列举奥沙利铂、环磷酰胺(cyclophosphamide)、异磷酰胺(ifosfamide)、噻替哌(thiotepa)、美法仑(melphalan)、白消安(busulfan)、尼莫司汀(nimustine)、雷莫司汀(ranimustine)、达卡巴嗪(dacarbazine)、丙卡巴肼(procarbazine)、替莫唑胺(temozolomide)、顺铂(cisplatin)、卡铂(carboplatin)、奈达铂(nedaplatin)、甲氨蝶呤(methotrexate)、培美曲塞(pemetrexed)、氟尿嘧啶(fluorouracil)、替加氟/尿嘧啶(tegaful/uracil)、脱氧氟尿苷(doxifluridine)、替加氟/吉美拉西/奥替拉西(tegaful/gimeracil/oteracil)、卡培他滨(capecitabine)、阿糖胞苷(cytarabine)、依诺他滨(enocitabine)、吉西他滨(gemcitabine)、6－巯基嘌呤(6－mercaptopurine)、氟达拉滨(fuludarabin)、喷司他汀(pentostatin)、克拉屈滨(cladribine)、羟基脲(hydroxyurea)、多柔比星(doxorubicin)、表柔比星(epirubicin)、佐柔比星(daunorubicin)、依达比星(idarubicine)、吡柔比星(pirarubicin)、米托蒽醌(mitoxantrone)、氨柔比星(amurubicin)、放线菌素D(actinomycin D)、博来霉素(bleomycine)、派来霉素(pepleomycin)、丝裂霉素C(mytomycin C)、阿柔比星(aclarubicin)、净司他丁(zinostatin)、长春新碱(vincristine)、长春地辛(vindesine)、长春碱(vinblastine)、长春瑞滨(vinorelbine)、紫杉醇(paclitaxel)、多西紫杉醇(docetaxel)、伊立替康(irinotecan)、伊立替康活性代谢物(SN－38)、托泊替康(nogitecan、topotecan)、依托泊苷(etoposide)、泼尼松龙(prednisolone)、地塞米松(dexamethasone)、他莫昔芬(tamoxifen)、托瑞米芬(toremifene)、甲羟孕酮(medroxyprogesterone)、阿那曲唑(anastrozole)、依西美坦(exemestane)、来曲唑(letrozole)、利妥昔单抗(rituximab)、伊马替尼(imatinib)、吉非替尼(gefitinib)、吉姆单抗–奥佐米星(gemtuzumabozogamicin)、硼替佐米(bortezomib)、厄洛替尼(erlotinib)、西妥昔单抗(cetuximab)、贝伐单抗(bevacizumab)、舒尼替尼(sunitinib)、索拉非尼(sorafenib)、达沙替尼(dasatinib)、帕尼单抗(panitumumab)、门冬酰胺酶(asparaginase)、维甲酸(tretinoin)、三氧化二砷(arsenic trioxide)、或它们的盐、或它们的活性代谢物等。其中，优选铂配位化合物类抗癌剂，特别优选奥沙利铂或其盐。
在使用本发明的抗癌剂感受性判定标记对抗癌剂感受性进行判定时，能够通过对来自癌症患者的生物体试样(检测体)中的选自PHB、ANXA5、ANXA1、TALDO、C1QBP、IPYR、CRBP1和COX5A中的1种以上的分子的量进行测定而进行，详细而言，能够通过进一步将该测定结果与对照水平(标准浓度、抗癌剂投予前的本发明的抗癌剂感受性判定标记的浓度等)进行比较而进行。
其中，作为癌症患者，包含患有癌症的被验者或患有过癌症的被验者。作为生物体试样，例如可以列举血液、血清、血浆、癌组织活检检测体、肿瘤摘除手术标本、便、尿、腹水、胸水、脑脊髄液、痰等，特别优选血清。
另外，作为本发明的对象的癌，可以列举以咽癌为代表的口唇、口腔和咽癌；以食管癌、胃癌、胰癌、结肠–直肠癌等为代表的消化器官癌；以肺癌为代表的呼吸器官和胸腔内脏器官癌；骨及关节软骨癌；皮肤的恶性黑色素瘤；鳞状细胞癌及其他的皮肤癌；以间皮瘤为代表的间皮和软组织癌；以乳腺癌、子宫癌、卵巢癌为代表的女性生殖器官癌；以前列腺癌为代表的男性生殖器官癌；以膀胱癌为代表的尿道癌；以脑肿瘤为代表的眼、脑和中枢神经系统癌；甲状腺及其他的内分泌腺癌；以非霍奇金淋巴瘤和淋巴细胞性白血病为代表的淋巴组织、造血组织和关联组织癌；和以这些为原发病灶的转移组织的癌等，特别是能够针对胃癌、胰癌和大肠癌(结肠–直肠癌)适当地利用，特别是能够在大肠癌中适当地利用。
检测体中的选自PHB、ANXA5、ANXA1、TALDO、C1QBP、IPYR、CRBP1和COX5A的分子的测定方法能够利用例如电泳法(2D－DIGE等)、质量分析法(SELDI－TOF MS、LC/MS、LC/MS/MS等)、免疫学的测定方法(免疫印迹法、ELISA等)等进行测定。
其中，利用2D－DIGE和SELDI－TOF MS的测定能够通过后述实施例所记载的方法进行。另外，利用LC/MS、LC/MS/MS等质量分析法的测定能够通过对选自PHB、ANXA5、ANXA1、TALDO、C1QBP、IPYR、CRBP1和COX5A的分子按照常用方法进行定量分析而进行测定。另外，在免疫学的测定方法中，优选使用针对选自PHB、ANXA5、ANXA1、TALDO、C1QBP、IPYR、CRBP1和COX5A的分子的抗体的测定方法。所使用的针对选自PHB、ANXA5、ANXA1、TALDO、C1QBP、IPYR、CRBP1和COX5A的分子的抗体既可以为单克隆抗体，也可以为多克隆抗体。更具体而言，例如可以列举放射免疫测定法、酶免疫测定法、荧光免疫测定法、发光免疫测定法、免疫沉淀法、免疫比浊法、蛋白质印迹法、免疫染色法、免疫扩散法等，优选为蛋白质印迹法或酶免疫测定法，特别优选为蛋白质印迹法、酶联免疫吸附定量法(enzyme－linked immunosorbentassay：ELISA)(例如，夹心ELISA(sandwich ELISA))。
关于ANXA5、ANXA1、TALDO和IPYR，在作为对象的抗癌剂为奥沙利铂或其盐的情况下，在判定对抗癌剂的感受性时，在抗癌剂投予前或投予后早期的阶段，可以对来自癌症患者的生物体试样中的ANXA5、ANXA1、TALDO和/或IPYR的量、例如浓度进行测定。在具有判断浓度比规定的标准浓度低的浓度的情况下，能够判定该癌对于作为对象的抗癌剂是感受性的，因此，这些抗癌剂感受性判定标记对于能够期待治疗效果的患者能够作为用于积极地继续治疗的标记使用。另一方面，在具有判断浓度比规定的标准浓度高的浓度的情况下，能够判定该癌对于作为对象的抗癌剂不是感受性的。在对于作为对象的抗癌剂不具有感受性的情况下，不能期待其药效，进行这样的不能期待药效的抗癌剂的投予或持续时，有癌进展、副作用增大的危险。这样，本发明的抗癌剂感受性判定标记除了能够对于能够期待治疗效果的患者作为用于积极地继续治疗的标记使用以外，还能够作为用于避免伴随不能期待药效的抗癌剂的继续投予的癌进展和副作用的增大的标记而使用。
关于PHB、C1QBP、CRBP1和COX5A，在作为对象的抗癌剂为奥沙利铂或其盐的情况下，在判定对抗癌剂的感受性时，在抗癌剂投予前或投予后早期的阶段，可以对来自癌症患者的生物体试样中的PHB、C1QBP、CRBP1和/或COX5A的量、例如浓度进行测定。在具有判断浓度比规定的标准浓度高的浓度的情况下，能够判定该癌对于作为对象的抗癌剂是感受性的，因此，这些抗癌剂感受性判定标记对于能够期待治疗效果的患者能够作为用于积极地继续治疗的标记使用。另一方面，在具有判断浓度比规定的标准浓度低的浓度的情况下，能够判定该癌对于作为对象的抗癌剂不是感受性的。在对于作为对象的抗癌剂不具有感受性的情况下，不能期待其药效，进行这样的不能期待药效的抗癌剂的投予或持续时，有癌进展、副作用增大的危险。这样，本发明的抗癌剂感受性判定标记除了能够对于能够期待治疗效果的患者作为用于积极地继续治疗的标记使用以外，还能够作为用于避免伴随不能期待药效的抗癌剂的继续投予的癌进展和副作用的增大的标记而使用。
在实施本发明的抗癌剂感受性的判定方法时，优选使用包括用于对检测体中的选自PHB、ANXA5、ANXA1、TALDO、C1QBP、IPYR、CRBP1和COX5A中的1种以上的分子进行测定的方案的试剂盒。该试剂盒包括选自PHB、ANXA5、ANXA1、TALDO、C1QBP、IPYR、CRBP1和COX5A中的1种以上的分子的测定试剂和方案(测定试剂的使用方法和用于判定抗癌剂感受性的有无的基准等)。该基准包括选自PHB、ANXA5、ANXA1、TALDO、C1QBP、IPYR、CRBP1和COX5A中的1种以上的分子的标准浓度、判断为高的浓度、判断为低的浓度、对测定结果产生影响的主要因素及其影响的程度等，这些浓度能够对作为对象的每种抗癌剂进行设定。使用该基准，能够如上所述进行判定。
另外，通过在抗癌剂的存在下、以来自癌细胞株或荷瘤动物的生物体试样中的选自PHB、ANXA5、ANXA1、TALDO、C1QBP、IPYR、CRBP1和COX5A中的1种以上的分子的表达变化作为指标，能够进行抗癌剂感受性增强剂的筛选。
即，通过进行向癌细胞株或荷瘤动物添加或投予抗癌剂和试验物质并对来自癌细胞株或荷瘤动物的生物体试样中的选自PHB、ANXA5、ANXA1、TALDO、C1QBP、IPYR、CRBP1和COX5A中的1种以上的分子的表达量在基因水平或蛋白质水平上进行测定的工序；和根据该表达量的变化，对增强上述癌细胞株或荷瘤动物的对上述抗癌剂的感受性的试验物质进行选择的工序，能够筛选对于上述抗癌剂的感受性增强剂。
例如，对于ANXA5、ANXA1、TALDO和IPYR，在作为对象的抗癌剂为奥沙利铂或其盐的情况下，如果将这些蛋白质的表达变化、具体而言将表达抑制作为指标，则能够对抗癌剂感受性增强剂进行筛选。即，在体外(in vitro)或体内(in vivo)，抑制这些蛋白质的表达的物质增强抗癌剂感受性。例如，在体外(in vitro)，在各种癌细胞株中，在抗癌剂的存在下使这些蛋白质的浓度下降的物质是增强该癌细胞株的该抗癌剂感受性的物质(抗癌剂感受性增强剂)。另外，在体内(in vivo)，在荷瘤动物的抗癌剂投予前后，使这些蛋白质的浓度下降的物质是增强该荷瘤动物的该抗癌剂感受性的物质(抗癌剂感受性增强剂)。
另外，例如对于PHB、C1QBP、CRBP1和COX5A，在作为对象的抗癌剂为奥沙利铂或其盐的情况下，如果将这些蛋白质的表达变化具体而言将表达上升作为指标，则能够对抗癌剂感受性增强剂进行筛选。即，在体外(in vitro)或体内(in vivo)，使这些蛋白质的表达上升的物质增强抗癌剂感受性。例如，在体外(in vitro)，在各种癌细胞株中，在抗癌剂的存在下使这些蛋白质的浓度上升的物质是增强该癌细胞株的该抗癌剂感受性的物质(抗癌剂感受性增强剂)。另外，在体内(in vivo)，在荷瘤动物的抗癌剂投予前后，使这些蛋白质的浓度上升的物质是增强该荷瘤动物的该抗癌剂感受性的物质(抗癌剂感受性增强剂)。
如果并用这样得到的抗癌剂感受性增强剂和作为感受性增强的对象的抗癌剂，该抗癌剂的治疗效果就会飞跃性地提高。作为将抗癌剂感受性增强剂和作为感受性增强的对象的抗癌剂组合的方式，可以是包含这些成分的两者的一种组合物，也可以是各自分开的制剂的组合。另外，这些成分也可以分别经由不同的投予路径。
作为此处所使用的作为对象的抗癌剂，与上述相同，可以列举奥沙利铂、环磷酰胺(cyclophosphamide)、异磷酰胺(ifosfamide)、噻替哌(thiotepa)、美法仑(melphalan)、白消安(busulfan)、尼莫司汀(nimustine)、雷莫司汀(ranimustine)、达卡巴嗪(dacarbazine)、丙卡巴肼(procarbazine)、替莫唑胺(temozolomide)、顺铂(cisplatin)、卡铂(carboplatin)、奈达铂(nedaplatin)、甲氨蝶呤(methotrexate)、培美曲塞(pemetrexed)、氟尿嘧啶(fluorouracil)、替加氟/尿嘧啶(tegaful-uracil)、脱氧氟尿苷(doxifluridine)、替加氟/吉美拉西/奥替拉西(tegaful-gimeracil-oteracil)、卡培他滨(capecitabine)、阿糖胞苷(cytarabine)、依诺他滨(enocitabine)、吉西他滨(gemcitabine)、6－巯基嘌呤(6－mercaptopurine)、氟达拉滨(fuludarabin)、喷司他汀(pentostatin)、克拉屈滨(cladribine)、羟基脲(hydroxyurea)、多柔比星(doxorubicin)、表柔比星(epirubicin)、佐柔比星(daunorubicin)、依达比星(idarubicine)、吡柔比星(pirarubicin)、米托蒽醌(mitoxantrone)、氨柔比星(amurubicin)、放线菌素D(actinomycin D)、博来霉素(bleomycine)、派来霉素(pepleomycin)、丝裂霉素C(mytomycin C)、阿柔比星(aclarubicin)、净司他丁(zinostatin)、长春新碱(vincristine)、长春地辛(vindesine)、长春碱(vinblastine)、长春瑞滨(vinorelbine)、紫杉醇(paclitaxel)、多西紫杉醇(docetaxel)、伊立替康(irinotecan)、伊立替康活性代谢物(SN－38)、托泊替康(nogitecan、topotecan)、依托泊苷(etoposide)、泼尼松龙(prednisolone)、地塞米松(dexamethasone)、他莫昔芬(tamoxifen)、托瑞米芬(toremifene)、甲羟孕酮(medroxyprogesterone)、阿那曲唑(anastrozole)、依西美坦(exemestane)、来曲唑(letrozole)、利妥昔单抗(rituximab)、伊马替尼(imatinib)、吉非替尼(gefitinib)、吉姆单抗–奥佐米星(gemtuzumab ozogamicin)、硼替佐米(bortezomib)、厄洛替尼(erlotinib)、西妥昔单抗(cetuximab)、贝伐单抗(bevacizumab)、舒尼替尼(sunitinib)、索拉非尼(sorafenib)、达沙替尼(dasatinib)、帕尼单抗(panitumumab)、门冬酰胺酶(asparaginase)、维甲酸(tretinoin)、三氧化二砷(arsenictrioxide)、或它们的盐、或它们的活性代谢物等。其中，优选铂配位化合物类抗癌剂，特别优选奥沙利铂或其盐。
实施例
接着，列举实施例对本发明进行更详细的说明。
试验例1
人大肠癌细胞株的奥沙利铂感受性的测定
(1)方法
(a)使用细胞
9种人大肠癌细胞株(SW480、Ls174T、Lovo、SW620、HCT116、HCT15、HT29、DLD－1和WiDr)由以下(表1)获得。
培养在以下条件下进行，即，/组织培养皿(Tissue Culture Dish)(IWAKI)、培养基(D－MEM、2mM谷氨酰胺(Glutamine)、10％胎牛血清(Fetal BovineSerum))、37℃、5％CO2。
[表1]
9种人大肠癌细胞株
(b)药剂
奥沙利铂(L-OHP)原药粉末由和光纯药工业和株式会社益力多本社获得。
(c)人大肠癌细胞株的奥沙利铂感受性的测定方法
将上述9种人大肠癌细胞株以1500个/孔接种在96孔板中，24小时后添加奥沙利铂。利用MTS assay(CellTiter96TMAQueous单溶液细胞增殖检测试剂盒(One SolutionCell Proliferation Assay)、Promega)对药剂暴露48小时后的细胞生存率进行评价，由吸光度求出IC50值。药剂暴露条件使用对照(Control)(0μM)、0.001μM、0.01μM、0.1μM、0.3μM、1μM、3μM、10μM、30μM、100μM、1000μM的11个条件。关于感受性的评价，在1次试验中，对于各自的细胞株、药剂暴露时间、药剂暴露条件，各测定3个样品，用不同继代数的细胞实施3次。分析以由MTS assay的结果算出的生存率为基础进行。
(2)结果
IC50值成为表2所示的值。根据表2，将SW480、Ls174T和Lovo分类为奥沙利铂高感受性株，将SW620、HCT116和HCT15分类为奥沙利铂中感受性株，将HT29、DLD-1和WiDr分类为奥沙利铂低感受性株。
[表2]
大肠癌细胞株 IC50值(μM)
SW480 0.43±0.13
Ls174T 0.61±0.11
Lovo 0.79±0.18
SW620 1.14±0.74
HCT116 1.15±0.34
HCT15 1.45±0.44
HT29 7.99±2.66
DLD-1 13.88±6.29
WiDr 17.71±8.39
实施例1
利用2D－DIGE的奥沙利铂感受性预测生物标记的探索
(1)使用细胞
使用试验例1中分类为奥沙利铂高感受性株的SW480、Ls174T和Lovo以及分类为奥沙利铂低感受性株的HT29、DLD－1和WiDr。
(2)细胞内蛋白质提取方法
从皿(dish)中除去培养基，用冰冷PBS清洗3次后，为了避免对细胞的刺激和细胞内蛋白质的活化，直接加入细胞溶解液(2M硫脲(thiourea)，7M脲(Urea)，4％CHAPS，50mMTris－HCl pH9)溶解细胞，移至1.5mL微型管中。在冰冷下进行超声波破碎处理后，在4℃以13,000×rpm离心10分钟，回收上清。使用2D定量试剂盒(Quant kit)(GE Healthcare)，进行蛋白质定量，用细胞溶解液调制成5mg/mL后，分注并在－80℃保存到分析。
(3)利用CyDyeTM DIGE Flour最小标记染料(minimal dyes)的蛋白质的标记
使用CyDye DIGE fluors最小标记试剂盒(minimal labeling kit)(GEHealthcare)对细胞内蛋白质进行标记。对于各自的细胞溶解液50μg用400pmol试剂(Cy2、Cy3、Cy5)进行标记，充分混合。用离心机轻微离心，在4℃暗处下静置30分钟。添加10mM赖氨酸，停止反应。将溶液混合，轻微离心，在4℃暗处下静置10分钟。在－80℃保存至使用。
(4)等电点电泳(第一向)
将施加于各凝胶的样品表示在表3中。
内部标准使用将全部的细胞溶解液等量混合后的溶液。
作为各自的凝胶用，将(3)中所标记的蛋白质样品各50μg(12μL)加入1.5mL微型管并进行混合。将36μL的2x样品缓冲液(2M硫脲(thiourea)、7M脲(urea)、4％CHAPS、2％Pharmalyte pH3－10、2％Destreak试剂)添加到混合后的蛋白质样品中，在冰上静置10分钟。用膨润液(2M硫脲(thiourea)、7M脲(urea)、4％CHAPS、2％Pharmalyte pH3－10、1％Destreak试剂)将各样品150μg溶液调整成450μL，在4℃以13,000×rpm离心10分钟。向各条状电泳槽中加入样品的上清450μL，将胶条(Immunobiline DryStrip)pH3-10NL、24cm(GEHealthcare)设置于条状电泳槽后，使用Ettan IPGphor2，进行等电点电泳。将等电点电泳的条件表示在表4中。
[表3]
凝胶编号 Cy2 Cy3 Cy5
1 内部标准 SW480 HT29
2 内部标准 Ls174T DLD-1
3 内部标准 Lovo WiDr
4 内部标准 DLD-1 SW480
5 内部标准 WiDr LS174T
6 内部标准 HT29 Lovo
[表4]
(5)SDS－PAGE(第二向)
作为SDS－PAGE用，制作24cm的15％丙烯酰胺凝胶。将第一向泳动完的胶条(Immunobiline DryStrip)加入10cm皿(dish)中，用平衡化缓冲液A(50mM Tris－HClpH8.8、6M脲(Urea)、30％甘油、1％SDS、0.25％DTT、BPB)充满，一边振荡15分钟，一边使其平衡化。变换为平衡化缓冲液B(50mM Tris－HCl pH8.8、6M脲(Urea)、30％甘油、1％SDS、4.5％碘乙酰胺、BPB)，一边振荡15分钟，一边使其平衡化。将平衡化后的胶条(Immunobiline DryStrip)设置于SDS－PAGE用凝胶中，在泳动层(Tris/Tricin/SDS缓冲液(buffer))中以7mA进行泳动。
用Typhoon Trio(GE Healthcare)进行摄影，用DeCyder 2D软件(Software)Ver6.5(GE Healthcare)进行分析，对P＜0.001且表达量的差在1.3倍以上的点进行分析。
(6)点的回收
对未标记的内部标准150μg与(4)、(5)同样进行双向电泳。
接着，为了回收(5)中得到的点，用PlusOneTM蛋白银染试剂盒(Silver StainingKit,Protein)(GE Healthcare)对凝胶进行银染色。
首先，向凝胶中添加固定液(Fixing solution)(30％乙醇(Ethanol)、10％冰醋酸(Glacial acetic acid))250mL，静置60分钟。重复该操作2次，将凝胶固定。向固定后的凝胶中添加敏化液(Sensitizing solution)(30％乙醇(Ethanol)、4％硫代硫酸钠(SodiumThiosulphate)(5％w/v)、6.8％乙酸钠(Sodium acetate))250mL，静置120分钟，由此使凝胶敏化，利用Milli－QTM水清洗8分钟，重复该清洗5次。向清洗后的凝胶中添加银溶液(Silver soluton)(10％硝酸银溶液(Silver nitrate solution)(2.5％w/v))250mL，进行60分钟银反应，利用Milli－Q水清洗1分钟，重复该清洗4次。向清洗后的凝胶中添加显影液(Developing soluion)(2.5％碳酸钠(Sodium carbonate)、0.08％甲醛(formaldehyde)(37％w/v))250mL，显影2～5分钟，添加停止液(Stop solution)(1.46％EDTA－Na2·2H2O)250mL，静置45分钟，终止反应。用Milli－Q水清洗30分钟，重复该清洗2次后，用点切取仪(spot picker)(Gene World)采取分析的目的的点，向1.5mL微型管中移入4个点。
(7)点的分析
对在(6)之前的操作中回收的16个点(图1的框)按照公知的方法进行蛋白质的凝胶内胰蛋白酶消化后，使用LCMS－IT－TOF(液相色谱质量分析仪、Shimadzu)进行分析(MS/MS测定)，对得到的结果进行MASCOT数据库检索。
根据数据库检索的结果，鉴定出以下6种蛋白质，即抗增殖蛋白(Prohibitin(PHB))、膜联蛋白A5(Annexin A5(ANXA5))、膜联蛋白A1(Annexin A1(ANXA1))、转醛醇酶(Transaldolase(TALDO))、补体成分1Q亚成分结合蛋白(Complement component 1Qsubcomponent－binding protein(C1QBP))和无机焦磷酸酶(Inorganic Pyrophosphatase(IPYR))。
实施例2
6种蛋白质的大肠癌细胞株中的表达量与IC50值的相关性
关于实施例1所鉴定的6种蛋白质，确认了在试验例1所使用的9种大肠癌细胞株中的表达量与试验例1中算出的IC50值的相关性。
(1)方法
(a)使用细胞
使用试验例1所记载的9种大肠癌细胞株。
(b)细胞内蛋白质的提取
从皿(dish)中除去培养基，用冰冷PBS清洗3次后，为了避免对细胞的刺激和细胞内蛋白质的活化，直接加入细胞溶解液(9M脲(Urea)，2％CHAPS，50mM Tris－HCl pH9)对细胞进行溶解，移入1.5mL微型管中。在冰冷下进行超声波破碎处理后，在4℃以13,000×rpm离心10分钟，回收上清。使用BCA蛋白定量试剂盒(Protein Assay Kit)(Thermo)，进行蛋白质定量，用细胞溶解液调制成5mg/mL后，分注并在－80℃保存至分析。
(c)蛋白质印迹(Western blotting)
向10％丙烯酰胺凝胶中添加试验例1所记载的9种大肠癌细胞株各10μL/Lane(50μg/Lane)，在泳动层(Tris/Glycin/SDS缓冲液(buffer))中，以1块20mM进行SDS－PAGE。使用半干燥式印迹装置(BIO－RAD)，以每1块72mA、30分钟，转移(transfer)至PVDF膜(GE-Healthcare)，使用5％脱脂乳(skim milk)/TBS-T(Tris缓冲盐水(Buffered Saline)withTween20)在室温下封闭(blokking)一小时，添加表5所示的一抗，以4℃反应过夜(overnight)。
[表5]
一抗名称 购入方 添加量
抗增殖蛋白-线粒体标记兔多克隆 abcam，ab28172 ×1/10000
膜联蛋白A5兔多克隆 abcam.ab14196 ×1/5000
膜联蛋白A1[5E4/1]小鼠单克隆 abcam，ab2487 ×1/200
转醛醇酶1小鼠多克隆 abcam，ab67467 ×1/200
补体成分1Q-结合蛋白山羊多克隆 santa cruz.sc-10258 ×1/10000
焦磷酸酶1兔多克隆 abcam，ab96099 ×1/10000
GAPDH小鼠单克隆(6C5) santa cruz.sc-32233 ×1/10000
用TBS-T清洗3次后，添加表6所示的二抗，室温下振荡一小时。用TBS-T清洗后，与ELC Prime蛋白质印迹检测试剂(Western Blotting Detection)(GE Healthcare)反应，用LAS4000mini(GE Healthcare)摄影并进行分析。
[表6]
二抗名称 购入方 添加量
抗小鼠IgG GE Healthcare ×1/20000
抗兔IgG GE Healthcare ×1/20000
抗山羊IgG Abcam ×1/20000
(2)结果
关于PHB和C1QBP，在奥沙利铂高感受性株中其表达量多，在低感受性株中表达量少，显示高的正相关(图2、图3)。
关于ANXA5、ANXA1、TALDO和IPYR，在奥沙利铂高感受性株中其表达量少，在低感受性株中表达量多，显示高的负相关(图4～图7)。
实施例3
使用SELDI－TOF MS的奥沙利铂感受性预测生物标记的探索
(1)方法
(a)使用细胞
使用试验例1中分类为奥沙利铂高感受性株的SW480、Ls174T和Lovo以及分类为奥沙利铂低感受性株的HT29、DLD－1和WiDr。
(b)细胞内蛋白质的提取
利用与实施例2的(1)方法(b)细胞内蛋白质的提取相同的方法进行。
(c)用于蛋白质表达分析的样品制备和蛋白质芯片的制作、细胞内蛋白质的表达分析
利用pH4的稀释/清洗缓冲液(50mM乙酸钠缓冲液(sodium acetate buffer))(以下，pH4缓冲液)将细胞溶解缓冲液调制成0.5mg/mL，得到样品，将得到的样品100μL施加(apply)于利用pH4缓冲液进行前处理的阳离子交换芯片阵列(CM10、Bio－Rad)的点，孵育30分钟进行反应后，利用pH4缓冲液清洗3次，利用milliQ水洗涤2次。风干后，将能量吸收分子(energy absorbing molecule)(使用SPA(EAM：50％ACN/0.5％TFA溶液的芥子酸(sinapinic acid)饱和溶液)作为高分子侧的确认用，使用CHCA(α－氰基－4－羟基肉桂酸)作为低分子侧的确认用)1.0μL分2次各为0.5μL施加(apply)于各点，点表面干燥后，进行蛋白质芯片阵列的分析。
另外，与上述同样地，将利用pH8的稀释/清洗缓冲液(50mM Tris－HCl缓冲液(buffer))(以下，pH8缓冲液)调制成0.5mg/mL的样品100μL施加(apply)于利用pH8缓冲液进行前处理的阴离子交换芯片阵列(Q10、Bio－Rad)的点，孵育1小时进行反应后，利用pH8缓冲液清洗3次，利用Milli－Q水洗涤2次。风干后，将能量吸收分子(energy absorbingmolecule)(使用EAM和CHCA)1.0μL分2次各为0.5μL并施加(apply)于各点，点表面干燥后，进行蛋白质芯片阵列的分析。
蛋白质表达分析利用表面增强型激光解吸离子化飞行时间型质量分析仪(surface－enhanced laser desorption/ionization time－of－flightmassspectrometry：SELDI－TOF MS)进行。作为分析仪器，使用ProteinChipTM Reader(型号PCS4000Personal Edition、Bio－Rad)。
在使用SPA作为基质的情况下，在以下条件下进行分析，即质量范围(Mass Range)10,000～50,000道尔顿(Daltons)、聚焦质量(Focus Mass)18,000道尔顿(Dalton)、能量(Energy)4,000nJ、每1个样品合计265个点(shots)。
在使用CHCA作为基质的情况下，在以下条件下进行分析，即质量范围(MassRange)2,000～20,000道尔顿(Daltons)、聚焦质量(Focus Mass)7,700道尔顿(Dalton)、能量(Energy)1,500nJ、每1个样品合计265个点(shots)。
信噪比(signal－to－noise ratio(S/N比))在5以上的峰的提取和蛋白质表达比较分析使用CiphergenExpress TM Data Manager 3.0进行。
(d)候补峰的选择
在将奥沙利铂高感受性株与低感受性株的蛋白质峰进行比较时，最终提取出2种p＜0.001且表达量存在不同的峰(候补蛋白质A和B)。另外，从因pH的变动而产生的表达量变化推定候补蛋白质A和B的等电点。
(2)结果
如图8所示，使用CM10作为芯片时所发现的候补蛋白质A在奥沙利铂高感受性株中与低感受性株相比，表达量增加了。关于候补蛋白质A，将奥沙利铂高感受性株与低感受性株的蛋白质峰进行比较时，p值为p＝7.9×10-6，m/z为15847Da，等电点(PI)为4.5～5.5(图9)。
另外，如图10所示，使用Q10作为芯片时所发现的候补蛋白质B在奥沙利铂高感受性株中与低感受性株相比，表达量增加了。关于候补蛋白质B，将奥沙利铂高感受性株与低感受性株的蛋白质峰进行比较时，p值为p＝1.0×10-4，m/z为12506Da，等电点(PI)为4.0～5.0(图11)。
关于上述所得到的候补蛋白质B，由SELDI-TOF MS分析所得到的分子量和等电点，使用数据库(Swiss Prot；瑞士生物信息科学机构)对蛋白质B进行推测，作为其结果，细胞色素c氧化酶亚基5A(cytochrome c oxygenase subunit Va(COX5A))(分子量12，501、等电点4.88)被推定为候补蛋白质B。
实施例4
利用候补蛋白质A的双向电泳的分析
以候补蛋白质A的鉴定为目的，进一步进行利用双向电泳的分析。
使用作为奥沙利铂高感受性株的SW480和作为低感受性株的WiDr，用与实施例2的(1)方法(b)细胞内蛋白质的提取相同的方法提取细胞内蛋白质，调整成5mg/mL后，在-80℃保存至分析。
用膨润液(2M硫脲(thiourea)、7M脲(urea)、4％CHAPS、2％Pharmalyte pH3-10、1％Destreak试剂)将细胞溶解液50μg调整成125μL。将调整后的样品溶液在4℃以13,000×rpm离心10分钟，将上清添加到胶条(Immobiline DryStrip gel)(pH3～10非线性(non-linear)、13cm、GE healthscare Biosciences)中，进行凝胶的膨润之后，进行等电点电泳。将电泳的条件表示在表7中。
[表7]
步骤 电压变化模式 电压(V) 时间(hr) kVhr
1 分步并保持 300 0：30 0.2
2 梯度 1000 0：30 0.3
3 梯度 5000 1：20 4
4 分步并保持 5000 0：50
5 分步并保持 500 2：00
等电点电泳结束后，将胶条(Immobiline DryStrip gel)加入10mL管中，用平衡化缓冲液A(50mM Tris-HCl pH8.8、6M脲(Urea)、30％甘油、1％SDS、0.25％DTT、BPB)充满，一边振荡15分钟一边使之平衡化。变换为平衡化缓冲液B(50mM Tris-HCl pH8.8、6M脲(Urea)、30％甘油、1％SDS、4.5％碘乙酰胺、BPB)，一边振荡15分钟一边使之平衡化。利用20mA的恒定电流对平衡化结束后的胶条(Immobiline DryStrip gel)进行电泳。凝胶使用10～20％、16×16cm聚丙烯酰胺梯度凝胶(Bio-Craft)。
接着，为了回收得到的点，用PlusOne蛋白银染试剂盒(Silver Staining Kit,Protein)(GE Healthcare)对凝胶进行银染色。银染色的点的回收利用与实施例1(6)点的回收相同的方法进行。
根据实施例3中得到的候补蛋白质A相关的信息(分子量和等电点)，将利用双向电泳展开的凝胶上的在分子量10,000～30,000Da和大约pH4.5～6.5的范围内分离的点(图12的框内)作为对象，从中选择将SW480和WiDr进行比较时表达量存在差异的8个点，并回收这些点。
对回收的点按照公知的方法进行蛋白质的凝胶内胰蛋白酶消化后，使用LCMS－IT－TOF(液相色谱质量分析仪、Shimadzu)进行分析(MS/MS测定)，对得到的结果进行MASCOT数据库检索。
根据数据库检索的结果，细胞视黄醇结合蛋白1(Cellular retinol bindingprotein 1(CRBP1))(分子量15,850、等电点4.99)被鉴定。由于分子量、等电点均大致一致，因此推定其为候补蛋白质A。
实施例5
利用蛋白质印迹(Western blot)的蛋白质表达的确认
(1)CRBP1的确认
利用与实施例2的(1)方法(b)细胞内蛋白质的提取相同的方法提取奥沙利铂高感受性株和低感受性株的细胞内蛋白质后，在15％聚丙烯酰胺凝胶中每1泳道施加(apply)蛋白量50μg，利用20mA恒定电流进行SDS－PAGE。泳动后，使用干式印迹系统(iBlotTM、invitrogen)在PVDF膜将蛋白质进行印迹，进行封闭后，使用抗CRBP1单克隆抗体(sc－53989、santa cruz)(×1/200)，并对于内源性蛋白质使用抗GAPDH单克隆抗体(anti－GAPDH monoclonal antibody,Ambion)(×1/10000)进行一抗反应。与碱性磷酸酶标记抗小鼠IgG抗体(×1/20000)发生二抗反应后，添加作为反应基质的CDP－StarTM化学发光底物(chemiluminescent substrate)，使其发光，利用发光成像分析仪(lumino imageanalyzer)(LAS－4000mini、富士Film)进行检测。封闭试剂、二抗和反应基质使用化学发光蛋白质印迹免疫检测试剂盒(Chemiluminescent Western Blot Immunodetection Kit)(WesternBreezeTM、invitrogen)。
奥沙利铂高感受性株的CRBP1的表达通过使用抗CRBP1抗体的蛋白质印迹法进行确认(图13)。
(2)COX5A的确认
使用抗COX5A单克隆抗体(sc－376907、santa cruz)(×1/200添加)作为一抗，除此以外，利用与上述(1)CRBP1的确认相同的方法进行。作为其结果，奥沙利铂高感受性株的COX5A的表达通过使用抗COX5A抗体的蛋白质印迹法进行确认(图14)。
实施例6
siRNA的导入引起的人大肠癌细胞株的奥沙利铂感受性的变化
(1)方法
(a)使用细胞
使用Ls174T作为试验例1所记载的9种大肠癌细胞株的奥沙利铂高感受性株，使用HCT116作为中感受性株，使用HT29和DLD－1作为低感受性株。
(b)药剂
使用试验例1所记载的奥沙利铂原药粉末。
(c)向人大肠癌细胞株导入siRNA
将上述人大肠癌细胞株以1×105个/孔接种在6孔板中，24小时后交换为无血清的DMEM培养基(Wako，044-29765)。混合将相对于每1孔150pmol的表8所示的各siRNA溶解于250μL Opti MEM(GIBCO，No.319985)而得到的溶液和将4.5μL的Lipofectamin RNAiMAX试剂(invitrogen，No.13778－150)与250μL Opti MEM(GIBCO，No.319985)混合而得到的溶液，孵育10～20分钟。孵育后，向培养人大肠癌细胞株的6孔板的各孔中分别添加500μL，在添加的4～6小时后将各孔交换为添加了血清的DMEM培养基(Wako,044-29765)。在添加siRNA后24小时后，回收细胞。
另外，将所使用的人大肠癌细胞株和所导入的siRNA的组合表示在表9中。其中，对照(Control)siRNA使用life technologies公司的No.4390843。
[表8]
[表9]
siRNA名称 导入siRNA的人大肠癌细胞株名称
PHB siRNA Ls174T、HCT116、HT29、DLD-1
ANXA5 siRNA HCT116、HT29
TALDO siRNA Ls174T、HCT116、HT29
C1QBP siRNA HCT116
IPYR siRNA Ls174T
(d)导入siRNA的人大肠癌细胞株的奥沙利铂感受性的测定方法
利用试验例1(1)(c)所记载的方法进行导入siRNA的人大肠癌细胞株的奥沙利铂感受性的测定(IC50值的测定)。
(2)结果
(a)PHB siRNA
将结果表示在表10中。通过导入siRNA，敲除了PHB的Ls174T、HCT116、HT29、DLD-1的各人大肠癌细胞株与各自的对照(Control)siRNA相比，IC50值上升，对奥沙利铂的感受性下降。该结果也与显示PHB在奥沙利铂高感受性株中表达量多而在低感受性株中表达量少的实施例2的结果一致。
[表10]
*:p＜0.05
(b)ANXA5 siRNA
将结果表示在表11中。通过导入siRNA，敲除了ANXA5的HCT116、HT29的各人大肠癌细胞株与各自的对照(Control)siRNA相比，IC50值降低，对奥沙利铂的感受性增强。该结果也与显示ANXA5在奥沙利铂高感受性株中表达量少而在低感受性株中表达量多的实施例2的结果一致。
[表11]
*：P＜0.05
(c)TALDO siRNA
将结果表示在表12中。通过导入siRNA，敲除了TALDO的Ls174T、HCT116、HT29的各人大肠癌细胞株与各自的对照(Control)siRNA相比，IC50值降低，对奥沙利铂的感受性增强。该结果也与显示TALDO在奥沙利铂高感受性株中表达量少而在低感受性株中表达量多的实施例2的结果一致。
[表12]
*：p＜0.05 **:p＜0.01 ***：p＜0.005
(d)C1QBP siRNA
将结果表示在表13中。通过导入siRNA，敲除了C1QBP的HCT116与对照(Control)siRNA相比，IC50值上升，对奥沙利铂的感受性下降。该结果也与显示C1QBP在奥沙利铂高感受性株中表达量多而在低感受性株中表达量少的实施例2的结果一致。
[表13]
**:p＜0.0l
(e)IPYR siRNA
将结果表示在表14中。通过导入siRNA，敲除了IPYR的Ls174T与对照(Control)siRNA相比，IC50值低下，对奥沙利铂的感受性增强。该结果也与显示IPYR在奥沙利铂高感受性株中表达量少而在低感受性株中表达量多的实施例2的结果一致。
[表14]
**：p＜0.01。
序列表
<110> 学校法人庆应义塾
株式会社益力多本社
<120> 抗癌剂的感受性的判定标记
<130> YK0084
<150> JP 2014-171729
<151> 2014-08-26
<160> 5
<170> PatentIn version 3.5
<210> 1
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> 人工合成 siRNA
<220>
<221> misc_feature
<222> (1)..(19)
<223> RNA
<400> 1
cguggguaca gaaaccaaut t 21
<210> 2
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> 人工合成 siRNA
<220>
<221> misc_feature
<222> (1)..(19)
<223> RNA
<400> 2
guacaugacu auaucaggat t 21
<210> 3
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> 人工合成 siRNA
<220>
<221> misc_feature
<222> (1)..(19)
<223> RNA
<400> 3
ugcuauugau aaacuuuuut t 21
<210> 4
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> 人工合成 siRNA
<220>
<221> misc_feature
<222> (1)..(19)
<223> RNA
<400> 4
ggccuuauau gaccaccuat t 21
<210> 5
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> 人工合成 siRNA
<220>
<221> misc_feature
<222> (1)..(19)
<223> RNA
<400> 5
ggaaucaguu gcaugaauat t 21

Claims (16)

1.一种由选自PHB、ANXA5、ANXA1、TALDO、C1QBP、IPYR、CRBP1和COX5A中的1种以上的分子组成的抗癌剂感受性判定标记。
2.如权利要求1所述的抗癌剂感受性判定标记，其特征在于：
抗癌剂为铂配位化合物类抗癌剂。
3.如权利要求1或2所述的抗癌剂感受性判定标记，其特征在于：
抗癌剂选自奥沙利铂或其盐。
4.一种抗癌剂的感受性判定方法，其特征在于：
包括对来自癌症患者的生物体试样中的选自PHB、ANXA5、ANXA1、TALDO、C1QBP、IPYR、CRBP1和COX5A中的1种以上的分子的量进行测定的工序。
5.如权利要求4所述的判定方法，其特征在于：
还包括通过将所述测定结果与对照水平进行比较来判定该癌症患者对抗癌剂的感受性的工序。
6.如权利要求4或5所述的判定方法，其特征在于：
生物体试样为来自已投予抗癌剂的癌症患者的生物体试样。
7.如权利要求4～6中任一项所述的判定方法，其特征在于：
抗癌剂为铂配位化合物类抗癌剂。
8.如权利要求4～7中任一项所述的判定方法，其特征在于：
抗癌剂选自奥沙利铂或其盐。
9.一种用于实施权利要求4～8中任一项所述的判定方法的试剂盒，其特征在于：
包括用于对来自癌症患者的生物体试样中的选自PHB、ANXA5、ANXA1、TALDO、C1QBP、IPYR、CRBP1和COX5A中的1种以上的分子的量进行测定的方案。
10.一种抗癌剂感受性增强剂的筛选方法，其特征在于：
在抗癌剂的存在下，以来自癌细胞株或荷瘤动物的生物体试样中的选自PHB、ANXA5、ANXA1、TALDO、C1QBP、IPYR、CRBP1和COX5A中的1种以上的分子的表达变化作为指标。
11.如权利要求10所述的筛选方法，其特征在于：
抗癌剂为铂配位化合物类抗癌剂。
12.如权利要求10或11所述的筛选方法，其特征在于：
抗癌剂选自奥沙利铂或其盐。
13.一种利用权利要求10～12中任一项所述的方法得到的抗癌剂感受性增强剂。
14.一种将权利要求13所述的感受性增强剂和作为感受性增强的对象的抗癌剂组合而成的癌治疗用组合物。
15.如权利要求14所述的癌治疗组合物，其特征在于：
抗癌剂为铂配位化合物类抗癌剂。
16.如权利要求14或15所述的癌治疗用组合物，其特征在于：
抗癌剂为奥沙利铂或其盐。
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