CN106497892A - 带KT3标签的重组病毒rPCV2‑KT3的构建方法 - Google Patents
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Abstract
带KT3标签的重组病毒rPCV2‑KT3的构建方法,涉及检测PCV2病毒的克隆体的构建方法,包括KT3标签引物的设计、感染性克隆(rPCV2‑KT3)的构建。本发明建立的感染性克隆(rPCV2‑KT3)可用作PCV2感染PCR诊断的标准阳性对照;用于疫苗免疫效果评价中抗体水平测定的靶抗原及临床诊断中PCV2病毒分离的阳性对照。
Description
技术领域
本发明涉及检测PCV2病毒的克隆体的构建方法。
背景技术
猪圆环病毒病(Porcine circovirus disease,简称PCVD)是由猪圆环病毒2型(PCV2)引起的一类猪病的总称,主要包括断奶仔猪多系统衰竭综合征、猪皮炎肾病综合征、猪呼吸道疾病综合征和母猪的繁殖障碍。PCVD现已在全世界范围内发生和流行,其发病率可达60%,死亡率3%-10%,发病严重地区猪场在暴发本病时死淘率达到40%左右,给世界养猪业带来了巨大的损失。为控制猪圆环病毒病的流行,目前,商品化全病毒灭活疫苗和亚单位疫苗已在世界各地养猪场应用,并取得较好的效果。但是这些疫苗接种成本较高,并不能完全阻断PCV2的传播。
临床上最常用的检测PCV2病毒的方法是PCR方法,该方法往往需要阳性对照,通常的做法是使用PCV2强毒作为阳性对照,该做法存在两个问题,一是可能散毒,且一旦散毒后无法区分扩散的是检测用强毒还是流行的野毒;二是目标DNA难以定量;同样,测定猪圆环病毒病免疫效果,间接免疫荧光是常用方法,通常以PCV2强毒感染的PK-15细胞作为检测抗原,与PCV2病毒检测方法相似,该方法同样存在两个问题,一是存在散毒风险;二是作为目标抗原的PCV2病毒缺乏识别标记,当存在PCV2、PCV1污染时,难以区分测得的抗体是针对PCV1、还是PCV2的抗体。
发明内容
为了避免野生病毒制作的诊断抗原可能存在的污染、难以标准化等问题,本发明目的是提出构建带KT3标签的PCV2感染性克隆和带KT3标签的PCV2病毒。
本发明包括以下步骤:
1)引物设计:设计PCV2全长引物,所述PCV2全长引物的上、下游引物的5’端插入病毒基因组自带的Sac II限制性内切酶酶切位点;
设计在PCV2全基因组的ORF2的羧基端(C端)插入含猿猴病毒40大T抗原(KT3)标签(含11个aa:KPPTPPPEPET)的引入KT3的上下游引物引物;
以PCV2唯一的酶切位点Nco I设计一对鉴定pSK-KT3-dPCV2双拷贝重组质粒用引物;
2)PCV2病毒DNA的提取;
3)将步骤2)中获得的病毒DNA使用步骤1)设计的引物利用重叠延伸PCR的方法,扩增带KT3标签的PCV2全基因组;
4)胶回收PCR产物并连接至pMD®19-T Vector,获得重组质粒pSK-KT3-dPCV2;
5)将重组质粒pSK-KT3-dPCV2转化大肠杆菌DH5α,获得重组质粒T-sPCV2-KT3;
6)构建pSK-KT3-sPCV2单拷贝重组质粒;
7)构建pSK-KT3-dPCV2双拷贝重组质粒;
8)电转化Dulac细胞并进行传代培养,获得带KT3标签的rPCV2-KT3重组病毒。
本发明目设计一对引物在PCV2全基因组的ORF2的羧基端(C端)插入含猿猴病毒40大T抗原(KT3)标签(含11个aa:KPPTPPPEPET),利用重叠延伸PCR方法,获得含KT3标签的全长序列,将其连接至pMD®19-T Vector,重组质粒转化大肠杆菌DH5α,获得重组质粒T-sPCV2-KT3。利用SacII限制性内切酶对重组质粒T-sPCV2-KT3进行酶切和胶回收,pBluescript II SK(+) 载体以同样限制性内切酶酶切、去磷酸化并回收,将两者的回收产物利用T4连接酶进行过夜连接、转化,获得pSK-KT3-sPCV2单拷贝重组质粒。利用PCV2基因组中唯一的限制性内切酶Sac II、Nco I与Nde I进行酶切,获得三个目的片段,T4连接酶连接,获得首尾依次串联的双拷贝重组质粒pSK-KT3-dPCV2。以电转染的方法转入Dulac细胞,经传代培养最终获得含KT3标签的rPCV2-KT3重组病毒。
本发明借助分子克隆技术,在体外构建含猿猴病毒40大T抗原(KT3)的感染性克隆;感染性克隆电转化无PCV污染的PK-15细胞,获得带KT3标签的PCV2病毒。感染性克隆可用作PCV2感染PCR诊断的标准阳性对照;带KT3标签的PCV2病毒既可用于临床诊断中PCV2病毒分离的阳性对照,也可用于疫苗免疫效果评价中抗体水平测定的靶抗原。由于感染性克隆完全在体外构建,电转化过程也在完全可控的条件下进行,因此所获纯净的带KT3标签的PCV2病毒,避免了野生病毒制作的诊断抗原可能存在的污染、难以标准化等问题。
本发明以上步骤1)中所述PCV2全长引物为:
P1-SacII-F 5’-GAATCACCGCGGGCTGGCTGAACTTTTGAAAGT-3’ ;
Sac II
P2-SacII-R 5’-GCAACTCCGCGGAAATTTCTGACAAACGTTACA-3’ 。
Sac II
所述引入KT3的上下游引物为:
所述鉴定pSK-KT3-dPCV2双拷贝重组质粒用引物为:
PCV2 -Nco I-F1 5’-CATACCATGGTGAAGAAGTGGTTGTTATTG-3’ ;
Nco I
PCV2 -Nco I-R1 5’-CATACCATGGTAACCATCCCACCACTTG-3’ 。
Nco I
以提取的DNA为模板,利用高保真酶与上游引物P1-SacII-F、下游引物P2-SacII-R扩增PCV2的全基因组(长度1767 bp)。用引物P1-SacII-F/ P4-KT3-Rp1扩增出一条580 bp的片段,用P3-KT3-Fp1/P2-SacII-R扩增出一条1200 bp的片段。将两个PCR的产物,用PCR产物回收试剂盒回收目的片段。利用重叠延伸的方法,再以全长引物P1-SacII-F/P2-SacII-R扩增出带有KT3标签的1800 bp的全长基因组。
步骤4)中通过连接pMD®19-T Vector,利用感受态细胞大肠杆菌DH5α转化,获得重组质粒T-sPCV2-KT3。重组质粒T-sPCV2-KT3利用SacII限制性内切酶进行酶切和胶回收,pBluescript II SK(+) 载体同样用限制性内切酶SacII进行酶切、去磷酸化并回收,将两者的回收产物利用T4连接酶进行过夜连接、转化,获得pSK-KT3-sPCV2单拷贝重组质粒。利用PCV2上唯一的限制性内切酶Sac II、Nco I与Nde I进行酶切,获得三个目的片段,T4连接酶连接,获得首尾依次串联的双拷贝重组质粒pSK-KT3-dPCV2。
步骤8)中所述将大量提取的双拷贝重组质粒pSK-KT3-dPCV2电转化Dulac细胞,进行传代获得感染性克隆rPCV2-KT3,进行PCR鉴定和TCID50/mL的测定。
本发明的有益效果:猪圆环病毒病是我国养猪业最重要的传染病之一,造成的经济损失难以估量。PCV2感染的实验室诊断,主要以PCR方法为主,因此,诊断用标准化核酸的需求量巨大;同时,PCV2疫苗免疫效果的评价,间接免疫荧光方法又是最常用的方法之一,纯净、标准化、带标签的PCV2自然具有巨大的市场需求,而带KT3标签的PCV2病毒正好满足了这一需求。本专利内容为PCV2感染的确诊、疫苗的评价提供了无可替代的新型工具,对我国猪圆环病毒病的防控将带来革命性的影响。
附图说明
图1为重组质粒pSK-KT3-dPCV2双拷贝感染性克隆的构建图。
图2为KT3-PCV2全基因组的PCR扩增产物在琼脂糖凝胶中的电泳条带图。
图3为重组质粒T-KT3-PCV2的PCR鉴定与酶切鉴定图。
图4为单拷贝重组质粒pSK-KT3-sPCV2的PCR鉴定与酶切鉴定图。
图5为双拷贝重组质粒pSK-KT3-dPCV2的PCR鉴定与酶切鉴定图。
图6为 rPCV2-KT3拯救病毒的PCR检测结果图。
图7为以rPCV2-KT3克隆毒株接种Dulac细胞后的荧光鉴定照片。
图8为以rPCV2-KT3克隆毒株接种Dulac细胞后的荧光鉴定照片。
图9为以 rPCV2-KT3克隆毒株接种Dulac细胞后的荧光鉴定照片。
图10为以PCV2阳性对照接种接种Dulac细胞后的荧光鉴定照片。
具体实施方式
本发明的具体技术方案如下:
(1)引物的设计:
根据PCV2基因序列,设计PCV2全长引物,其上、下游引物的5’端插入病毒基因组自带的Sac II限制性内切酶酶切位点:
P1-SacII-F 5’-GAATCACCGCGGGCTGGCTGAACTTTTGAAAGT-3’ ;
Sac II
P2-SacII-R 5’-GCAACTCCGCGGAAATTTCTGACAAACGTTACA-3’ 。
Sac II
另外一对引物在PCV2全基因组的ORF2的羧基端(C端)插入含猿猴病毒40大T抗原(KT3)标签(含11个aa:KPPTPPPEPET):
以PCV2唯一的酶切位点Nco I设计一对鉴定pSK-KT3-dPCV2双拷贝重组质粒:
PCV2 -Nco I-F1 5’-CATACCATGGTGAAGAAGTGGTTGTTATTG-3’ ;
Nco I
PCV2 -Nco I-R1 5’-CATACCATGGTAACCATCCCACCACTTG-3’ 。
Nco I
以上第一对引物可以扩增出PCV2的全长DNA序列1800 bp;P1-SacII-F/ P4-KT3-Rp1可扩增出一条580 bp的片段,P3-KT3-Fp1/P2-SacII-R扩增出一条1200 bp的片段。
将两个PCR产物,用PCR产物回收试剂盒回收目的片段。经核酸测定仪测出回收片段浓度,利用重叠延伸PCR方法,重新利用全长引物P1-SacII-F/P2-SacII-R扩增出带有KT3标签的1800 bp的全长基因组,重组质粒(pSK-KT3-dPCV2)双拷贝感染性克隆的构建图如图1所示。
(2)PCV2病毒DNA的提取:
取培养离心后的细胞培养液上清或反复冻融后的组织研磨液上清100 μL于1.5 mL指形管中,依次加入400 μL超纯水、92 μL 10% SDS溶液和8 μL蛋白酶K(20 mg/mL),涡旋混匀后置58℃金属浴30 min。再加入体积比为1:1的苯酚:氯仿600 μL,剧烈震荡混匀,12000 r/min离心15 min,小心吸取上清400 μL,加入-20℃预冷的无水乙醇800 μL,反复颠倒数次,-20℃静置20-30 min,12000 r/min离心10 min。弃上清,加入70%乙醇800 μL洗涤,12000 r/min离心5 min,弃上清,瞬离,弃残液并晾干,加入30 μLRTE,37℃作用30 min,立刻使用或-20℃保存备用。
(3)利用重叠延伸PCR的方法,扩增带KT3标签的PCV2全基因组:
①病毒DNA的扩增
在PCR管中分别加入下列试剂,组成50 μL的扩增反应体系:
A、PCR扩增580 bp的目的片段
B、PCR扩增1200 bp的目的片段
C、将A和B的PCR扩增产物纯化回收后,利用重叠延伸PCR的方法引入KT3标签,扩增1800bp的PCV2全长序列:
PCR扩增参数:98℃预变性10 s,98℃变性5 s,55℃退火1 min,72℃延伸2 min,30个循环;72℃延伸10 min。PCR反应结束后,于10℃保存。将扩增的PCR产物在琼脂糖凝胶中进行电泳检测(浓度:1%,含溴化乙锭0.5 μg/mL)电泳,结果如图2所示。
图2中:
M:DL5000 DNA marker;
1: PCR product of PCV2b1B/121108YZ by P1-SacII-F/P4-KT3-Rp1 (580 bp)
2: PCR product of PCV2b1B/121108YZ by P3-KT3-Fp1/P2-SacII-R (1200 bp)
3: PCR product of rPCV2-KT3 by P1-SacII-F/P2-SacII-R (1800 bp)
4: Positive control: PCR product of rPCV2 by P1-SacII-F/P2-SacII-R (1767bp)
5: Negative control。
从图2可见:将PCV2b1B/121108YZ的DNA模板,利用设计的引物P1-SacII-F/P4-KT3-Rp1和P3-KT3-Fp1/P2-SacII-R 分别进行PCR扩增,分别可以扩增出580 bp和1200 bp的目的片段。然后将扩增出的目的片段利用全长引物P1-SacII-F/P2-SacII-R,通过重叠延伸PCR技术再次进行PCR扩增,最后可扩增出带有KT3标签的1800 bp的目的片段,而阴性对照孔显示阴性,说明PCV2b1B/121108YZ中的KT3标签引入成功。
②DNA片段的纯化回收
PCR产物电泳鉴定正确后,切下目的条带于1.5 mL指形管中,用Agarose gel DNAextraction kit(Axygen公司产品)按产品说明书回收目的片段,最后用15 μL超纯水或缓冲液洗脱并测定DNA浓度,-20℃保存。
③回收产物连接pMD®19-T Vector
10 μL的连接体系:5 μL超纯水,1 μL10×Rapid ligation buffer,2 μL胶回收DNA片段,1 μL载体,1 μL T4DNA连接酶,混匀后4℃连接过夜。
④重组质粒转化
用CaCl2法制备感受态大肠杆菌DH5α,冰浴4 h后供转化试验用。将200 μL感受态细胞与连接产物轻轻吹匀,冰浴30 min,42℃热休克不超过90 s,立即冰浴3 min,补加37℃预热的LB培养基至1 mL,上下缓慢颠倒数次,置37℃摇床100 rpm,45-60 min,5000 rpm离心5min,弃去800 μL培养基,将剩余200 μL培养基重悬菌体,均匀涂布AIX平板,置37℃培养箱中培养过夜。
⑤质粒DNA小量制备
于AIX平板上无菌挑取单个白色菌落,接种于Amp/LB液体培养基并置37℃摇床220rpm,培养14 h左右。用碱裂解法小提质粒,取1 mL培养物,12000 rpm离心1 min,弃上清,加入100 μL预冷的溶液Ⅰ重悬细菌沉淀,加入200 μL现配的溶液Ⅱ,上下颠倒数次混匀后,冰浴不超过5 min,再加入150 μL预冷的溶液Ⅲ,上下颠倒混匀,冰浴3-5 min。12000 rpm离心10 min,小心吸取400 μL上清,用等体积的酚:氯仿(1:1)抽提一次,取上清,加入2倍体积的-20℃预冷的无水乙醇,上下轻柔颠倒数次后,-20℃静置15-30 min,12000 rpm离心10min,弃上清,用70%的乙醇洗涤一次,离心弃上清,瞬离,吸干。待乙醇挥发干净后,加入30 μL含RNase A(20 μg/mL)的TE buffer(pH8.0),37℃水浴30 min,溶解DNA沉淀,-20℃冻存备用。
按照步骤①中C的方法,取步骤⑤提取的质粒进行PCR扩增,通过限制性内切酶SacII酶切鉴定。经1%的琼脂糖凝胶电泳,若为阳性质粒则可扩增出一条1800 bp的条带,经限制性内切酶Sac II酶切可观察到1800 bp和3000 bp的两个条带,如图3所示。将阳性质粒送至测序,测序结果证实含KT3标签的PCV2片段已成功克隆到pMD®19-T Vector上。
酶切鉴定:在指形管中,配制总体积为20 μL 的酶切体系:
图3中:
M: DL5000 DNA marker;
1:PCR product of T-KT3-PCV2 by P1-SacII-F/P2-SacII-R (1800 bp);
2:T-KT3-PCV2 plasmid by SacII enzyme digestion (1800 bp、3000 bp);
3:Negative control。
由图3可见:重组阳性质粒T-KT3-PCV2通过全长引物 P1-SacII-F/P2-SacII-R进行PCR鉴定,可扩增出一条1800 bp的目的片段。另外,通过限制性内切酶SacII进行酶切作进一步鉴定,可以酶切出1800 bp和3000 bp的两条目的片段,而阴性对照无条带,说明重组质粒T-KT3-PCV2构建成功。
(4)单拷贝重组质粒pSK-KT3-sPCV2的构建
①将鉴定正确的T-KT3-PCV2重组质粒利用限制性内切酶Sac II进行酶切,重组质粒通过0.8% 琼脂糖凝胶电泳,用Agarose gel DNA extraction kit (Axygen公司) 按产品说明书进行目的片段的回收,最后用20 μL缓冲液或超纯水洗脱回收,并测定DNA的浓度。
②pBluescript II SK(+) 载体的酶切及去磷酸化
pBluescript II SK(+) 质粒用限制性内切酶Sac II酶切,将酶切后的线性质粒用CIAP(Taraka公司)进行去磷酸化,用10 μL灭菌超纯水洗脱回收。然后将①和②回收的目的片段用T4连接酶进行连接。
10 μL连接体系:
16℃金属浴过夜连接,按照步骤(3)中④的方法进行转化。
③单拷贝重组质粒pSK-KT3-sPCV2的PCR鉴定与酶切鉴定
按照用步骤(3)中⑤的方法,小量制备质粒,用步骤(1)中设计的PCV2全长引物P1-SacII-F /P2-SacII-R 进行PCR鉴定,并用限制性内切酶Bgl II和
Hind III酶切鉴定,配制总量为20 μL 的酶切体系。
A、Sac II限制性内切酶酶切
B、Hind Ⅲ 限制性内切酶酶切
如图4所示,将鉴定正确的质粒送至测序并进行序列的比对。
图4中:
M: DL5000 DNA marker;
1:PCR product of pSK-KT3-sPCV2 by P1-SacII-F/P2-SacII-R (1800 bp);
2:Recombinant plasmid (pSK-KT3-sPCV2) by BglII enzyme digestion (1800 bp、2692 bp);
3:Recombinant plasmid (pSK-KT3-sPCV2) by HindIII enzyme digestion (4492bp);
4: Negative control。
由图4可见:单拷贝重组阳性质粒pSK-KT3-sPCV2通过PCR鉴定,利用全长引物 P1-SacII-F/P2-SacII-R可以扩增出一条1800 bp的目的片段。同时,利用限制性内切酶BglII和HindIII分别酶切作进一步鉴定,其中限制性内切酶BglII可以酶切出1800 bp和2692 bp的两条目的片段,而限制性内切酶HindIII进行单酶切出现一条4492 bp的条带,而阴性对照无条带,说明重组质粒pSK-KT3-sPCV2构建成功。
(5)单拷贝重组质粒pSK-KT3-sPCV2的大量制备
取阳性菌液,接种于500 mL Amp/LB液体培养基于37℃摇床220 rpm,培养16 h左右,按照 碱裂解法大量提取质粒DNA,用聚乙二醇沉淀法纯化质粒DNA,测定质粒DNA浓度及纯度后分装,-70℃保存备用。
(6)双拷贝重组质粒pSK-KT3-dPCV2的构建
①单拷贝重组质粒pSK-KT3-sPCV2的酶切及目的片段的回收
利用PCV2上唯一的三个酶切位点(限制性内切酶Sac II、Nco I与Nde I)进行酶切,具体步骤如下:
A、Nco I与Nde I进行双酶切,酶切体系(50 μL):
B、Sac II与Nco I进行双酶切,酶切体系(50 μL):
C、Sac II与Nde I进行双酶切,酶切体系(50 μL):
37℃反应2 h后,在0.8%的琼脂糖凝胶电泳,用Agarose gel DNA extraction kit(Axygen公司) 按产品说明书进行目的片段的回收,最后用30 μL缓冲液或超纯水洗脱回收,并测定核酸DNA的浓度。
②连接反应
回收目的片段4491 bp、483 bp和1626 bp三个片段用T4 DNA Ligation(Takara公司)进行连接,16℃过夜连接。
③转化连接产物
将10 μL连接产物转化DH5α感受态细胞,将培养物均匀地涂布于LB平板(100 μg/mLIPTG、200 μg/mL X-Gal),置37℃培养箱中15 min,待涂抹物充分吸收后,将平板倒置于培养箱中继续培养。挑选白色单菌落接种到Amp/LB液体培养基进行少量扩增培养。
(7)双拷贝重组质粒pSK-KT3-dPCV2的PCR鉴定和酶切鉴定
①双拷贝重组质粒pSK-KT3-dPCV2的PCR鉴定
将过夜培养的菌液,通过菌液PCR的方法,利用PCV2-NcoI-F1/ PCV2-NcoI-R1引物进行PCR初步鉴定。
PCR反应体系(25 μL):
PCR扩增参数:94℃预变性5 min;94℃变性1 min,55℃退火1 min,72℃延伸2 min,30个循环;72℃延伸10 min。PCR反应结束后,于10℃保存。将扩增的PCR产物在琼脂糖凝胶中进行电泳检测(浓度:1%,含溴化乙锭0.5 μg/mL)电泳,结果如图5所示。
②双拷贝重组质粒pSK-KT3-dPCV2的酶切鉴定
为了进一步确定构建的双拷贝重组质粒的正确性,分别用限制性内切酶
Bgl II与Hind III进行进一步的酶切鉴定。阳性质粒经限制性内切酶Bgl II酶切后会出现两条带,分别为1800 bp和4800 bp。限制性内切酶Hind III酶切重组质粒pSK-KT3-dPCV2,会出现一条6600 bp的单条带,如图5所示。
图5中:
M: DL5000 DNA marker;
1:PCR product of pSK-KT3-dPCV2 by P1-SacII-F/P2-SacII-R (1800 bp);
2: Recombinant plasmid (pSK-KT3-dPCV2) by BglIIenzyme digestion (1800 bp、4800 bp);
3: Recombinant plasmid (pSK-KT3-dPCV2) by HindIII enzyme digestion (6600bp);
4: Negative control。
由图5可见:重组阳性质粒 pSK-KT3-dPCV2通过PCR方法进行初步鉴定,利用全长引物P1-SacII-F/P2-SacII-R可以扩增出一条1800 bp的目的片段。此外,利用限制性内切酶BglII和HindIII分别酶切作进一步鉴定,通过限制性内切酶BglII可以酶切出1800 bp和4800 bp的两条目的片段,限制性内切酶HindIII可以切出一条6600 bp的目的片段,而阴性对照孔显示阴性,说明重组质粒 pSK-KT3-dPCV2构建成功。
(8)双拷贝重组质粒pSK-KT3-dPCV2的大量制备
按照碱裂解法大量提取质粒DNA,本步骤与本部分步骤(5)中单拷贝重组质粒pSK-KT3-sPCV2的大量制备方法相同,-70℃保存备用。
(9)双拷贝重组质粒pSK-KT3-dPCV2的电转染
用大量提取的pSK-KT3-dPCV2的重组质粒,待Dulac细胞长至汇合度为90%左右时进行DNA 质粒的电转染。步骤如下:
将生长状态良好、待长至汇合度90%左右的Dulac细胞,用0.25%胰酶消化后转入离心管中,小心吹打混匀,1000 rpm离心5 min,弃去离心后的上清液,再用PBS洗涤3次,于最后一次洗涤后,将离心管瞬离,吸去管底少量的PBS。将10 μg质粒DNA与800 μL低渗液充分混匀后作为转染液,然后用转染液将离心在管底的细胞轻柔重悬并吹打混匀,室温静置2min。将细胞悬液加入到电转杯中,放入电穿孔转染仪中进行电击,电击完成后,静置5 min后取出。设定电转参数:电压为350 V,时间为400 μs,脉冲数为2。将电转杯中的转染液加入6 mL的细胞培养液中,混匀后转入6孔细胞板,在37℃,5% CO2培养箱中培养。同时设健康的Dulac细胞作为阴性对照。
(10)感染性克隆(rPCV2-KT3)的PCR检测及间接免疫荧光(IFA)检测
①感染性克隆rPCV2-KT3的PCR检测
将转染的细胞进行连续传代,盲传至第8代与第12代时,收取病毒液提取病毒核酸DNA进行PCR检测,提取方法与步骤(2)相同,运用步骤(1)设计的PCV2全长引物进行进行PCR的扩增,结果如图6所示。
图6中:
M:DL5000 DNA marker;
1:PCR product of rPCV2-KT3 (F8) by P1-SacII-F/P2-SacII-R (1800 bp);
2:PCR product of rPCV2-KT3 (F12) by P1-SacII-F/P2-SacII-R (1800 bp);
3:Negative control。
由图6可见:将盲传至第8代和第12代的感染性克隆rPCV2-KT3通过PCR方法进行检测,利用全长引物by P1-SacII-F/P2-SacII-R均可扩增出1800 bp的目的条带,而阴性对照孔显示阴性,说明感染性克隆rPCV2-KT3已克隆成功。
②感染性克隆rPCV2-KT3的间接免疫荧光(IFA)检测
收取第8代和第12代的感染性克隆rPCV2-KT3病毒液经反复冻融3次后,-70℃超低温冰箱保存备用。
将无PCV1污染且长势良好的健康Dulac细胞,消化后取适量分装到96孔板中,于5% CO2的37℃恒温培养箱中,培养18-24 h至细胞的对数生长期,弃去培养基,PBS洗涤3次,将PCV2细胞毒进行连续10倍稀释 (10-1-10-6) ,100 μL/孔,每个稀释度做8孔,以PCV2 (本实验室保存的PCV2b1B/Yangzhou/JS/121108YZ毒株)感染的Dulac细胞为阳性对照、健康的Dulac细胞为阴性对照,37℃吸附作用1.5 h,补加4% 胎牛血清(FBS)的DMEM培养基继续培养。60 h后结束培养并弃去培养液,5 min/次,用PBS洗涤96孔板,共洗涤3次,拍干或自然晾干,冷甲醇-20℃固定20 min,弃去固定液,自然晾干。
用PBS稀释猪源PCV2阳性血清 (1:1000) 与兔抗KT3多克隆抗体 (1:250),加入96孔板各孔中,50 μL/孔,37℃孵育温箱1 h,PBS洗涤3次/5 min,吸水纸上拍干;避光加入25μL的1:200稀释的FITC标记的羊抗猪荧光二抗 (IgG),37℃温箱避光孵育45 min后,PBS洗涤三次后拍干,再加入1:100稀释的Anti-Rabbit IgG (Fc specific)-Texas RedTM,antibody produced in donkey二抗25 μL,37℃温箱避光孵育45 min再洗涤3次,将96孔板放在倒置荧光显微镜下观察结果,第8代和第12代的拯救病毒rPCV2-KT3与亲本株PCV2的TCID50结果相似,TCID50/mL分别为105.8、106.0和106.0,可看到特异性的绿色荧光斑。
拯救病毒rPCV2-KT3的IFA结果可观察到能与PCV2血清发生特异性反应的绿色荧光斑,也能与KT3标签发生特异性反应的红色荧光斑,而对照的阴性健康细胞中无荧光,如图7至10所示。说明拯救病毒rPCV2-KT3在盲传的Dulac细胞中存在PCV2的病毒粒子,且KT3标签可随着PCV2的滾环复制得到表达。
从图7的以rPCV2-KT3克隆毒株接种Dulac细胞后的荧光鉴定照片可见:有绿色荧光。
从图8的以rPCV2-KT3克隆毒株接种Dulac细胞后的荧光鉴定照片可见:有抗KT3标签--红色荧光。
从图9的以 rPCV2-KT3克隆毒株接种Dulac细胞后的荧光鉴定照片可见:有以上两种组合的黄绿色荧光。
从图10的以PCV2阳性对照接种Dulac细胞后的荧光鉴定照片可见:有绿色荧光。
而阴性对照即健康的Dulac细胞后的荧光鉴定后,照片中则无荧光。
<110>扬州大学
<120>带KT3标签的重组病毒rPCV2-KT3的构建方法
<160>6
<210>1
<211>33
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>根据PCV2全长基因设计
<400>1
gaatcaccgc gggctggctg aacttttgaa agt
<210>2
<211>33
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>根据PCV2全长基因设计
<400>2
gcaactccgc ggaaatttct gacaaacgtt aca
<210>3
<211>57
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>根据KT3基因设计
<400>3
cattaggttt ccggttccgg cggcggggtc ggcggtttag ggttaagtgg ggggtct
<210>4
<211>57
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>根据KT3基因设计
<400>4
accctaaacc gccgaccccg ccgccggaac cggaaaccta atgaataata aaaacca
<210>5
<211>30
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>根据鉴定pSK-KT3-dPCV2双拷贝重组质粒设计
<400>5
cataccatgg tgaagaagtg gttgttattg
<210>6
<211>28
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>根据鉴定pSK-KT3-dPCV2双拷贝重组质粒设计
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cataccatgg taaccatccc accacttg
<110>扬州大学
<120>带KT3标签的重组病毒rPCV2-KT3的构建方法
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<223>根据PCV2全长基因设计
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Claims (4)
1.带KT3标签的重组病毒rPCV2-KT3的构建方法,其特征在于,包括以下步骤:
1)引物设计:设计PCV2全长引物,所述PCV2全长引物的上、下游引物的5’端插入病毒基因组自带的Sac II限制性内切酶酶切位点;
设计在PCV2全基因组的ORF2的羧基端插入含猿猴病毒40大T抗原标签的引入KT3的上下游引物;
以PCV2唯一的酶切位点Nco I设计一对鉴定pSK-KT3-dPCV2双拷贝重组质粒用引物;
2)PCV2病毒DNA的提取;
3)将步骤2)中获得的病毒DNA使用步骤1)设计的引物利用重叠延伸PCR的方法,扩增带KT3标签的PCV2全基因组;
4)胶回收PCR产物并连接至pMD®19-T Vector,获得重组质粒pSK-KT3-dPCV2;
5)将重组质粒pSK-KT3-dPCV2转化大肠杆菌DH5α,获得重组质粒T-sPCV2-KT3;
6)构建pSK-KT3-sPCV2单拷贝重组质粒;
7)构建pSK-KT3-dPCV2双拷贝重组质粒;
8)电转化Dulac细胞并进行传代培养,获得带KT3标签的rPCV2-KT3重组病毒。
2.根据权利要求1所述的构建方法,其特征在于所述步骤1)所述PCV2全长引物为:
P1-SacII-F
5’-GAATCACCGCGGGCTGGCTGAACTTTTGA AAGT-3’ ;
P2-SacII-R
5’-GCAACTCCGCGGAAATTTCTGACAAACGTTACA-3’ ;
所述引入KT3的上下游引物为:
P3-KT3-Fp1:
P4-KT3-Rp1:
所述鉴定pSK-KT3-dPCV2双拷贝重组质粒用引物为:
PCV2 -Nco I-F1
5’-CATACCATGGTGAAGAAGTGGTTGTTATTG-3’
PCV2 -Nco I-R1
5’-CATACCATGGTAACCATCCCACCACTTG-3’ ;
以提取的DNA为模板,利用高保真酶与上游引物P1-SacII-F、下游引物P2-SacII-R扩增出1767 bp的 PCV2全基因组;
用引物P1-SacII-F/ P4-KT3-Rp1扩增出580 bp的片段;
用P3-KT3-Fp1/P2-SacII-R扩增出1200 bp的片段;
将上述后两个PCR的产物,用PCR产物回收试剂盒回收目的片段,利用重叠延伸PCR的方法,以全长引物P1-SacII-F和P2-SacII-R扩增出带有KT3标签的1800 bp的全长基因组。
3.根据权利要求1所述的构建方法,其特征在于所述步骤4)中通过连接pMD®19-TVector,重组质粒转化大肠杆菌DH5α,获得重组质粒T-sPCV2-KT3;然后利用SacII限制性内切酶对重组质粒T-sPCV2-KT3进行酶切和胶回收,pBluescript II SK(+) 载体以同样限制性内切酶酶切、去磷酸化并回收,将两者的回收产物利用T4连接酶进行过夜连接、转化,获得pSK-KT3-sPCV2单拷贝重组质粒;再利用PCV2基因组中唯一的限制性内切酶Sac II、NcoI与Nde I进行酶切,获得三个目的片段,T4连接酶连接,获得首尾依次串联的双拷贝重组质粒pSK-KT3-dPCV2。
4.根据权利要求3所述的构建方法,其特征在于所述步骤8)中,将大量提取的双拷贝重组质粒pSK-KT3-dPCV2电转化Dulac细胞,进行传代获得带KT3标签的rPCV2-KT3重组病毒。
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