CN106366197B - 一种HER2、EGFR、EpCAM、MUC1多重抗体免疫磁珠及其制备方法 - Google Patents

一种HER2、EGFR、EpCAM、MUC1多重抗体免疫磁珠及其制备方法 Download PDF

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Abstract

本发明提供了一种HER2、EGFR、EpCAM多重抗体免疫磁珠及其制备方法，所述多重抗体免疫磁珠由HER2免疫磁珠、EGFR免疫磁珠和EpCAM免疫磁珠组成，其中HER2免疫磁珠、EGFR免疫磁珠和EpCAM免疫磁珠分别为HER2抗体、EGFR抗体和EpCAM抗体和磁性微球偶联得到的免疫磁珠。将本发明的多重抗体免疫磁珠用于捕获CTC，不仅特异性、敏感性好，而且磁响应迅速、富集时间短，捕获效率高。而且免疫磁珠的性质稳定，同时粒径小，磁响应性好，分散性好。并且制备方法简单，具有很强的实用性。

Description

一种HER2、EGFR、EpCAM、MUC1多重抗体免疫磁珠及其制备方法
技术领域
本发明涉及免疫磁珠的制备领域，具体地说是一种HER2、EGFR、EpCAM、MUC1多重抗体免疫磁珠及其制备方法。
背景技术
上皮组织包括覆盖上皮、腺上皮和导管上皮，发生的肿瘤称为上皮性肿瘤，人类的恶性肿瘤大部分来源于上皮组织。虽然我国对于肿瘤的早期诊断和治疗手段已经取得了明显的进步，但是复发和转移仍然是影响患者5年生存率的主要原因。因此有必要对肿瘤细胞进行进一步的分析，以了解其发生、发展和转移的机制。
免疫磁珠分选法(Immunomagnetic separation，IMS)是近年来兴起的一种用于细胞分选的方法，它是在磁珠表面包被具免疫反应性的抗体进行抗原-抗体反应，在细胞表面形成“抗原-抗体-磁珠”免疫复合物。这些结合了磁珠的细胞一旦置于强大的磁场下，就会定向移动，使免疫复合物与其他未被结合的细胞分群。当具超顺磁性的磁珠脱离磁场后，磁性立即消失，从而达到阳性或阴性选择特定细胞的目的。
将免疫磁珠分选法应用于肿瘤细胞的分选是本领域近年来兴起的技术。但是利用免疫磁珠分选法从复杂的环境中分选出肿瘤细胞，需要免疫磁珠具有特异性、敏感性的生物标志物，而且稳定性、分散性好，不能团聚。同时，免疫磁珠的粒径不能过大，过大会压迫肿瘤细胞；免疫磁珠的粒径也不能过小，粒径过小磁响应性也小，容易无法达到肿瘤细胞分选的效果。
EpCAM(上皮细胞粘附分子)可以区分上皮和非上皮来源的组织，作为肿瘤细胞表面的生物标志物(倪亚平.EpCAM与肿瘤关系的研究进展[J].医学综述,2012,18(21):3579-3582.)。然而基于EpCAM的检测在阴性EpCAM癌症的时候敏感性却很低，因此转移性上皮性肿瘤高达70％不能将EpCAM作为生物标志物分选。特别是当侵袭性肿瘤细胞，在丢失某些上皮细胞的表型，发生上皮-间质转化的过程时，EpCAM的表达通常下调。为了能够有效的捕获和分选上皮性肿瘤细胞，可以采用多生物标志物联用的方式增加捕获效率，如公开日为2014年9月26日，公开号为CN105087493A的中国专利中公开了一种将HLA-G、EpCAM和CK8/18联合作为生物标志物，将抗体与磁珠偶联后用于肿瘤细胞的分选。但是该方法不针对上皮性肿瘤细胞，而且采用美天旎公司、Kisker公司生产的磁珠，需要采用配套的分选器，成本过高。
发明内容
本发明的主要目的是针对现有技术存在的不足提供一种HER2、EGFR、EpCAM、MUC1多重抗体免疫磁珠，磁珠粒径小，磁响应性好，而且用本发明的免疫磁珠进行肿瘤细胞捕获，富集时间短，捕获的肿瘤细胞富集率高，减少了结果的假阴性，同时多重抗体免疫磁珠的制备过程简单，成本低。
在本发明的一方面，本发明是通过如下技术方案实现的：一种HER2、EGFR、EpCAM、MUC1多重抗体免疫磁珠，所述多重抗体免疫磁珠由HER2免疫磁珠、EGFR免疫磁珠、EpCAM免疫磁珠和MUC1免疫磁珠组成，其中HER2免疫磁珠、EGFR免疫磁珠、EpCAM免疫磁珠和MUC1免疫磁珠分别为HER2抗体、EGFR抗体、EpCAM抗体和MUC1抗体与磁性微球偶联得到的免疫磁珠。
进一步的，所述HER2免疫磁珠、EGFR免疫磁珠、EpCAM免疫磁珠和MUC1免疫磁珠的结构式为：A-NH-N＝CH-B，其中A表示磁性微球，B表示HER2、EGFR、EpCAM、MUC1抗体，或者A表示HER2、EGFR、EpCAM、MUC1抗体，B表示磁性微球。
优选的，所述磁性微球为核壳结构的无机或有机高分子包裹的磁性微球。比如二氧化硅包裹的磁性四氧化三铁、或者葡聚糖包裹的磁性四氧化三铁等。最优选的，所述磁性微球为二氧化硅包裹的磁性四氧化三铁。
在本发明的第二方面，提供了一种制备所述HER2、EGFR、EpCAM、MUC1多重抗体免疫磁珠的方法，其步骤包括：
s1.磁性纳米簇的制备；
s2.氨基修饰的磁性微球的制备；
s3.肼基修饰的A部分的制备；
s4.醛基修饰的B部分的制备；
s5.免疫磁珠的制备：将步骤s3所述肼基修饰的A部分与步骤s4所述醛基修饰的B部分混合，在4～25℃下进行偶联反应2～24小时，得到HER2免疫磁珠、EGFR免疫磁珠、EpCAM免疫磁珠和MUC1免疫磁珠。
在本发明的一种实施方式中，对氨基修饰的磁性微球部分进行醛基修饰，并且对HER2抗体、EGFR抗体、EpCAM抗体和MUC1抗体分别进行肼基修饰。或者对氨基修饰的磁性微球进行肼基修饰，并且对HER2抗体、EGFR抗体、EpCAM抗体和MUC1抗体分别进行醛基修饰，均可以实现上述结构的免疫磁珠。
进一步的，所述步骤s3中的肼基修饰的A部分是通过：将氨基修饰的磁性微球或抗体用摩尔当量为10～50倍的SANH进行肼基修饰后得到的。所述SANH为对-丙腙基吡啶甲酸N-羟基琥珀酰亚胺酯(CAS：362522-50-7)，在室温条件下可以温和的将氨基转换为肼基。所述SANH一般溶解在DMF溶液中进行反应，浓度可以根据磁性微球或抗体的浓度进行调整，不影响反应结果。该反应过程可以在15～25℃室温条件下进行，反应时间根据本领域技术人员常规的检测技术判断，本发明一般采用对磁性微球的修饰反应时间16～24h，对抗体的修饰反应时间2～4h。
进一步的，所述步骤s4中的醛基修饰的B部分是通过：将氨基修饰的磁性微球或抗体用摩尔当量为5～20倍的SFB进行醛基修饰后得到的。所述SFB为4-甲酰苯甲酸N-琥珀酰亚胺酯(CAS：60444-78-2)，在室温条件下可以温和的将氨基转换为醛基。所述SFB一般溶解在DMF溶液中进行反应，浓度可以根据磁性微球部分或抗体的浓度进行调整，不影响反应结果。该反应过程可以在15～25℃室温条件下进行，反应时间根据本领域技术人员常规的检测技术判断，本发明一般采用对磁性微球的修饰反应时间16～24h，对抗体的修饰反应时间2～4h。
所述步骤s1中的磁性纳米簇是通过水热法、溶剂热法或共沉淀法制备得到，也可以采用市售商品。制备磁性纳米簇的方法为本领域技术人员所熟知的技术，得到的产品只需要满足具有良好的磁性，并且可以与无机或有机高分子形成核壳结构即可。
作为优选的，所述步骤s1中的磁性纳米簇是通过如下方法制备得到：
1)在空气中，向二价铁盐的水溶液中加入氨水，然后搅拌使溶液变成黑色，得到黑色Fe3O4颗粒；
2)向步骤1)中加入油酸，混合均匀后转移至密闭的反应釜中，在60～130℃下加热反应3～5小时，即可得到所述磁性纳米簇。
进一步的，所述步骤s2中的氨基修饰的磁性微球部分为核壳结构的二氧化硅包裹的磁性微球，效果更加优于直接在磁性纳米簇粒子表面进行氨基修饰得到的磁性微球，可以采用市售商品或者按照本领域技术人员所知的常规方法制备，均不影响本发明的结果。可以使纳米簇聚集在二氧化硅内部，形成核壳结构，增大粒径，并且增加磁性和稳定性即可。优选的，本发明采用如下方法制备氨基修饰的二氧化硅包裹的磁性微球：向含有磁性纳米簇的溶液中加入氨水、硅烷化试剂和氨基硅烷偶联剂，反应1～3天后得到氨基修饰的磁性微球部分；所述磁性纳米簇、氨水、硅烷化试剂、氨基硅烷偶联剂加入的质量比为：1:(12.5～40):(2～8):(0.5～3)。其中氨水的质量百分浓度为25～28％。其中，硅烷化试剂可以为正硅酸四乙酯(CAS：562-90-3)，氨基硅烷偶联剂可以为(3-氨基丙基)三乙氧基硅烷(CAS：919-30-2)。本领域技术人员在选择其他的硅烷化试剂与氨基硅烷偶联剂时，可以对反应原料的比例进行调整，均不超出本发明的保护范围。
优选的，所述步骤s5中，磁性微球和抗体的质量比为1：(0.01～1)。抗体与磁性微球的质量比越高越有利于磁性微球表面偶联抗体，但是考虑到抗体的成本因素，本发明采用磁性微球和抗体的质量比为1：(0.01～0.2)。
在本发明的第三方面，提供了一种用于捕获上皮性肿瘤细胞的试剂盒，所述试剂盒中含有上述多重抗体免疫磁珠，其中，多重抗体免疫磁珠为HER2免疫磁珠、EGFR免疫磁珠、EpCAM免疫磁珠和MUC1免疫磁珠混合得到。由于不同的肿瘤干细胞表达的表面抗原量不同，因此HER2免疫磁珠、EGFR免疫磁珠、EpCAM免疫磁珠和MUC1免疫磁珠混合的比例可以根据肿瘤的类型不同进行选择，本发明采用1:1:1:1。
本发明的有益效果为：
(1)将本发明的多重抗体免疫磁珠用于捕获上皮性肿瘤细胞，可以扩大捕获和富集肿瘤细胞的覆盖范围，同时特异性、敏感性好，而且磁响应迅速、富集时间短，捕获效率高。避免了捕获的肿瘤细胞损伤，肿瘤细胞可以用于进一步的分析和培养。可以用于外泌体、体液或活检组织的肿瘤细胞捕获与分析。
(2)本发明的免疫磁珠，其磁性微球部分和抗体部分通过腙键结构相连，得到的免疫磁珠在弱碱性条件下(血液中)性质稳定，同时粒径小，磁响应性好、分散性好。
(3)本发明的制备方法简单，反应条件温和，氨基、醛基和肼基修饰的过程均可以在室温下进行，不容易造成抗体的变质、降解等，同时避免了使用还原剂，使抗体可以在低温下与细胞孵育，保持抗体和细胞的活性。
(4)本发明原料简单易得，成本低，工艺步骤简单，抗体包被量大，具有很强的实用性。
附图说明
图1为本发明多重抗体免疫磁珠分选的肿瘤细胞免疫荧光图。
具体实施方式
以下通过具体实施例来进一步说明本发明：下列实施例中未注明具体条件的实验方法，按照常规方法和条件，或按照商品说明书选择。
实施例1多重抗体免疫磁珠的制备
(1)磁性纳米簇的制备：
a.在空气中，将7g FeCl2·4H2O加入到50mL去离子水中，得到浓度为0.14g/mL的FeCl2水溶液。向50mL FeCl2水溶液中加入氨水30mL，搅拌45min后，颜色逐渐变为浅绿色，再变深绿色，最后变为黑色；
b.向步骤a中加入1.1g油酸，混合均匀后将混合液置于密闭的反应釜中，在110℃下加热反应4小时，然后用去离子水和乙醇交替洗涤各一次，磁分离后分散在正己烷中，即可得到黑色的磁性纳米簇Fe3O4。
(2)氨基修饰的磁性微球的制备：向10mg磁性纳米簇Fe3O4 1的溶液中加入125mg氨水、30mg正硅酸四乙酯和30mg(3-氨基丙基)三乙氧基硅烷，反应1天后进行磁分离，并且用乙醇和水交替洗涤各两次，并用0.1M的pH 7～8的磷酸缓冲液分散后得到浓度为5mmol/L的氨基修饰的磁性微球1。
(3)肼基修饰的EpCAM抗体的制备：将5μL SANH的DMF溶液(浓度为5mmol/L)加入到100μL EpCAM抗体溶液(浓度为10μmol/L)中，在室温反应2h后，用超滤柱纯化得到肼基修饰的EpCAM抗体(简写为EpCAM-SANH)1。
检测EpCAM-SANH的浓度：通过BCA法计算修饰后的EpCAM-SANH的浓度为0.86mg/mL。
检测肼基修饰率：用定量的2-甲酰苯磺酰钠盐溶液检测肼基修饰率。取纯化后的EpCAM-SANH加入到的2-甲酰苯磺酰钠盐溶液中，涡旋混匀后于37℃反应1h，Nanodrop检测348nm处的吸光值为0.22。通过348nm处的吸光值和EpCAM-SANH的浓度计算出EpCAM-SANH的肼基修饰率为3.6。
(4)醛基修饰的磁性微球的制备：将5μL的氨基修饰的磁性微球1加入到SFB的DMF溶液(浓度为5mmol/L)50μL中，在室温反应20h后，进行磁分离纯化，得到醛基修饰的磁性微球1。
(5)免疫磁珠的制备：将1mg步骤(4)中的醛基修饰的磁性微球与0.01mg步骤(3)中的肼基修饰的EpCAM抗体混合，在25℃下PBS缓冲液中混合4小时后，进行磁分离得到EpCAM免疫磁珠。
按照上述步骤(1)～(5)制备得到HER2免疫磁珠、EGFR免疫磁珠和MUC1免疫磁珠。将HER2免疫磁珠、EGFR免疫磁珠、EpCAM免疫磁珠和MUC1免疫磁珠按照质量比1:1:1:1混合得到多重抗体免疫磁珠。
实施例2多重抗体免疫磁珠的敏感性检测
取人非小细胞肺癌细胞A549、人乳腺腺癌细胞SK-BR-3和人乳腺腺癌细胞MDA-MB-436(均购自中国科学院细胞库)，每组肿瘤细胞分别按照1:103、1:104、1:105、1:106的比例加入到PBMCs(5×106)中。将单独的抗体免疫磁珠以及多重抗体免疫磁珠分别加入到上述各混合细胞悬液中，在4℃下孵育30分钟。在2分钟内进行磁分选并用PBS洗涤2-3次，得到用免疫磁珠捕获并回收的肿瘤细胞。统计回收的肿瘤细胞占加入的肿瘤细胞总数的比例，计算免疫磁珠的捕获率，结果如表1所示：
表1不同免疫磁珠的捕获率
Figure BDA0001103384350000101
表1的结果表明，在不同的细胞系中，用单独的磁珠捕获肿瘤细胞，捕获率明显不同，但是用多重抗体免疫磁珠捕获肿瘤细胞，在各种细胞系中的捕获效率相近，并且均高于单独的抗体磁珠捕获效率。同时，随着肿瘤细胞添加比例的增加，捕获肿瘤细胞的数量呈线性。
实施例3模拟血液中肿瘤细胞的捕获
采集健康志愿者血样，将A549细胞与健康人的外周血混合，配成混合细胞悬液，调节A549细胞的浓度为1、10、20、50、500、1000个/mL，然后将多重抗体免疫磁珠依次加入到上述各混合细胞悬液中，在4℃下孵育30分钟。在1分钟内进行磁分选并用PBS洗涤2-3次，得到用免疫磁珠捕获并回收的A549细胞。统计回收的A549细胞占捕获前细胞总数的比例，计算免疫磁珠捕获血液样品中A549细胞的捕获效率。
从实施例2-3的捕获结果来看，免疫磁珠在单纯环境中(实施例2)的捕获效率能够精确到1：106，免疫磁珠在复杂环境中(实施例3)也可以检测到1个/mL的A549细胞，可以满足目前液体活检的要求。
对上述孵育后的磁珠用无钙镁的PBS缓冲液重悬，将洗脱得到的磁珠-细胞用PicoPure RNA Isolation Kit试剂盒(Thermo Cat No：KIT0214)提取纯化总RNA，采用了PrimeScriptTMRT reagent Kit with gDNA Eraser(TAKARA,Cat No：RR047A)，按说明书要求去除基因组DNA以及进行cDNA链合成。接下来涉及相应Taqman引物，进行qPCR检测，以GAPDH为内标比较qPCR检测结果，在相同条件下，与A549细胞的qPCR检测结果一致。说明用本发明的免疫磁珠捕获循环肿瘤细胞不会损伤细胞，可以用于后续细胞分析。并且说明，用本发明的免疫磁珠捕获到的细胞几乎没有PBMCs细胞，PBMCs细胞则基本不与免疫磁珠结合。
实施例4癌症病人的CTC细胞捕获
取健康人和不同癌症病人的外周血血液，对血液中的CTC进行捕获。要求受试者血常规白细胞值位于2×106～1.2×107个/mL之间，全血样本未出现溶血或血块凝结。并且受试者相关信息完整，样本采集、保存方法规范，实验操作规范，具体步骤如下：取不同癌症病人血液3ml，加入多重抗体免疫磁珠依次加入到上述各混合细胞悬液中，在4℃下孵育30分钟，然后在1分钟内进行磁分选并用PBS洗涤2-3次，将孵育回收的CTC进行抗体染色、并在载玻片上固定、然后进行细胞核DAPI染色、封片后，用荧光显微镜鉴定，结果如图1所示，细胞膜表面显示有荧光，在荧光显微镜下为绿光荧光，说明捕获到的细胞表面呈HER2、EGFR、EpCAM、MUC1中间至少一种阳性，说明为肿瘤细胞。而正常人的血液中没有捕获到肿瘤细胞。作为对照的，对同样的病人血液中加入EpCAM抗体免疫磁珠，然后进行同样的孵育与染色，同样用荧光显微镜鉴定计数，计数结果如表2所示：
表2捕获的CTC的荧光检测结果
Figure BDA0001103384350000121
从表2可以看出，用本发明的多重抗体免疫磁珠捕获到的CTC细胞数量更多，捕获效率更高。
如果先对血液进行红细胞裂解，并且用CD45抗体免疫磁珠去除血液中的白细胞后再用多重抗体免疫磁珠进行肿瘤细胞的捕获，捕获效率更高。
以上所述的实施例只是本发明的一种较佳的方案，并非对本发明作任何形式上的限制，对于本技术领域的普通技术人员来说，在不脱离本发明实施例原理以及权利要求的前提下，还可以做出若干改进和润饰，这些改进和润饰也视为本发明实施例的保护范围。

Claims (7)

1.一种HER2、EGFR、EpCAM、MUC1多重抗体免疫磁珠，其特征在于：所述多重抗体免疫磁珠由HER2免疫磁珠、EGFR免疫磁珠、EpCAM免疫磁珠和MUC1免疫磁珠组成，其中HER2免疫磁珠、EGFR免疫磁珠、EpCAM免疫磁珠和MUC1免疫磁珠分别为HER2抗体、EGFR抗体、EpCAM抗体和MUC1抗体与磁性微球偶联得到的免疫磁珠；
所述HER2免疫磁珠、所述EGFR免疫磁珠、所述EpCAM免疫磁珠和所述MUC1免疫磁珠的结构式为：A-NH-N＝CH-B，其中A表示磁性微球，B表示HER2、EGFR、EpCAM或MUC1抗体，或者A表示HER2、EGFR、EpCAM或MUC1抗体，B表示磁性微球；
所述免疫磁珠通过如下步骤制备获得：
s1.磁性纳米簇的制备；
s2.氨基修饰的磁性微球的制备；
s3.肼基修饰的A部分的制备；
s4.醛基修饰的B部分的制备；
s5.免疫磁珠的制备：将步骤s3所述肼基修饰的A部分与步骤s4所述醛基修饰的B部分混合，在4～25℃下进行偶联反应2～24小时，得到HER2免疫磁珠、EGFR免疫磁珠、EpCAM免疫磁珠或MUC1免疫磁珠；
所述步骤s1中的磁性纳米簇是通过如下方法制备得到：
a.在空气中，将7g FeCl2·4H2O加入到50mL去离子水中，得到浓度为0.14g/mL的FeCl2水溶液；向50mL FeCl2水溶液中加入氨水30mL，搅拌45min后，颜色逐渐变为浅绿色，再变深绿色，最后变为黑色；
b.向步骤a中加入1.1g油酸，混合均匀后将混合液置于密闭的反应釜中，在110℃下加热反应4小时，然后用去离子水和乙醇交替洗涤各一次，磁分离后分散在正己烷中，即可得到黑色的磁性纳米簇Fe3O4。
2.根据权利要求1所述的HER2、EGFR、EpCAM、MUC1多重抗体免疫磁珠，其特征在于：所述磁性微球为核壳结构的无机或有机高分子包裹的磁性微球。
3.一种制备权利要求1或2所述HER2、EGFR、EpCAM、MUC1多重抗体免疫磁珠的方法，其步骤包括：
s1.磁性纳米簇的制备；
s2.氨基修饰的磁性微球的制备；
s3.肼基修饰的A部分的制备；
s4.醛基修饰的B部分的制备；
s5.免疫磁珠的制备：将步骤s3所述肼基修饰的A部分与步骤s4所述醛基修饰的B部分混合，在4～25℃下进行偶联反应2～24小时，得到HER2免疫磁珠、EGFR免疫磁珠、EpCAM免疫磁珠或MUC1免疫磁珠；
所述步骤s1中的磁性纳米簇是通过如下方法制备得到：
a.在空气中，将7g FeCl2·4H2O加入到50mL去离子水中，得到浓度为0.14g/mL的FeCl2水溶液；向50mL FeCl2水溶液中加入氨水30mL，搅拌45min后，颜色逐渐变为浅绿色，再变深绿色，最后变为黑色；
b.向步骤a中加入1.1g油酸，混合均匀后将混合液置于密闭的反应釜中，在110℃下加热反应4小时，然后用去离子水和乙醇交替洗涤各一次，磁分离后分散在正己烷中，即可得到黑色的磁性纳米簇Fe3O4。
4.根据权利要求3所述HER2、EGFR、EpCAM、MUC1多重抗体免疫磁珠的制备方法，其特征在于：所述步骤s3中的肼基修饰的A部分是通过：将氨基修饰的磁性微球或抗体用摩尔当量为10～50倍的SANH进行肼基修饰后得到的。
5.根据权利要求3所述HER2、EGFR、EpCAM、MUC1多重抗体免疫磁珠的制备方法，其特征在于：所述步骤s4中的醛基修饰的B部分是通过：将氨基修饰的磁性微球或抗体用摩尔当量为5～20倍的SFB进行醛基修饰后得到的。
6.根据权利要求3所述HER2、EGFR、EpCAM、MUC1多重抗体免疫磁珠的制备方法，其特征在于：所述步骤s2中的氨基修饰的磁性微球部分为核壳结构的二氧化硅包裹的磁性微球，通过如下方法制备得到：向含有磁性纳米簇的溶液中加入氨水、硅烷化试剂和氨基硅烷偶联剂，反应1～3天后得到氨基修饰的磁性微球部分；所述磁性纳米簇、氨水、硅烷化试剂、氨基硅烷偶联剂加入量的质量比为：1:(12.5～40):(2～8):(0.5～3)。
7.一种用于捕获上皮性肿瘤细胞的试剂盒，其特征在于：所述试剂盒中含有权利要求1所述的多重抗体免疫磁珠，其中，多重抗体免疫磁珠为HER2免疫磁珠、EGFR免疫磁珠、EpCAM免疫磁珠和MUC1免疫磁珠混合得到。
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* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN106996971A (zh) * 2017-04-28 2017-08-01 江南大学 检测人外周血EVs‑TRPC5含量的试剂盒及方法
CN107153021B (zh) * 2017-05-10 2020-07-07 亚能生物技术（深圳）有限公司 循环肿瘤细胞染色的质控品及其制备方法
CN107828779B (zh) * 2017-10-25 2020-04-21 武汉大学 前列腺癌特异性外泌体、lncRNA及其制备方法和应用
CN111487404B (zh) * 2019-01-28 2024-01-05 猎源（上海）生物医药科技有限公司 体液肿瘤细胞dna提取试剂盒
CN111551732A (zh) * 2020-05-29 2020-08-18 武汉大学 定量检测体液中肿瘤来源细胞外囊泡pd-l1含量的方法、elisa试剂盒及使用方法

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN103100358A (zh) * 2012-12-20 2013-05-15 华南理工大学 一种磁性纳米离子液体复合微粒及其制备方法和应用
CN103756967A (zh) * 2013-12-31 2014-04-30 卢英 抗hla-g的单克隆抗体偶联免疫磁珠在肿瘤细胞分选中的应用
CN104781007A (zh) * 2012-11-09 2015-07-15 霍夫曼-拉罗奇有限公司 循环肿瘤细胞的体外捕获和分析
CN105087493A (zh) * 2014-09-26 2015-11-25 卢英 联用三种单克隆抗体偶联免疫磁珠在肿瘤细胞分选中应用

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104781007A (zh) * 2012-11-09 2015-07-15 霍夫曼-拉罗奇有限公司 循环肿瘤细胞的体外捕获和分析
CN103100358A (zh) * 2012-12-20 2013-05-15 华南理工大学 一种磁性纳米离子液体复合微粒及其制备方法和应用
CN103756967A (zh) * 2013-12-31 2014-04-30 卢英 抗hla-g的单克隆抗体偶联免疫磁珠在肿瘤细胞分选中的应用
CN105087493A (zh) * 2014-09-26 2015-11-25 卢英 联用三种单克隆抗体偶联免疫磁珠在肿瘤细胞分选中应用

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Fe3O4纳米材料的制备、改性及应用;王娟;《中国优秀硕士学位论文全文数据库工程科技I辑》;CNKI;20101115(第11期);第21-46页 *
SureLINKTM Conjugation Chemistry: Phosphatase Conjugates and Their Use in Immunodetection;Danielle Russell等;《KPL APPLICATION NOTE》;pubmed;20061231;第1-2页、第5页右栏第3段，图1-图3 *
Technologies for detection of circulating tumor cells: facts and vision;Catherine Alix-Panabières等;《Lab on a Chip》;PUBMED;20130923;第14卷(第1期);第59页右栏第3段 *

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