CN106332777A - 一种红花槭的组培方法 - Google Patents

Abstract

本发明提供一种红花槭的组培方法，包括以下步骤：切取红花槭植株个体的休眠芽进行预处理，然后接种到含诱导培养基上，获得无菌芽苗；将获得的无菌芽苗接种到诱导培养基上，获得丛生芽苗；挑选健壮的丛生芽苗，接种到壮苗培养基上，获得健壮芽苗；挑选健壮芽苗接种到生根培养基上，获得再生植株；将再生植株在炼苗室内敞口炼苗3d，然后洗净根系附着的培养基，再移植到栽培基质中并浇透水，下用塑料薄膜覆盖容器口培养至长出的新叶完全展开后，去掉覆盖的塑料薄膜，获得红花槭苗木。本发明红花槭的组培方法步骤科学、合理，具有简便高效，成本低，诱导率高，增殖系数高，成活率高的优点。

Description

一种红花槭的组培方法

技术领域

本发明涉及组培技术，尤其涉及一种红花槭的组培方法。

背景技术

美国红枫(学名：Acer rubrum L.)：又名红花槭，原产美国东海岸，主要来自于美国北部以及加拿大大部分地区。是落叶大乔木。生长较快，成年高树12-18米，冠幅12米，能适应多种范围的土壤类型生长。春天开花，花红色。因其秋季色彩夺目，树冠整洁，被广泛应用于公园、小区、街道栽植，既可以园林造景又可以做行道树，深受人们的喜爱，是近几年引进的美化、绿化城市园林的理想珍稀树种之一。也是唯一可以用做行道树的彩叶树种。该树种生长迅速，是所有红枫品种中生长最快的品种。美国红枫有许多改良园艺品种，比较有代表的如：秋焰槭、十月光辉、落日红枫、夕阳红、秋天烈火、阿姆斯郎、北木等。

由于利用种子进行播种繁殖存在变异，而红花槭年生长量小，因此扦插、嫁接繁殖不足以满足量化生产的需求。目前我国对于红花槭“十月光辉”组培的研究尚无，因此加强其无性繁殖的研究，建立无性繁殖技术体系，提高我国红花槭苗木的生产能力，能为其广泛应用于城市园林中提供技术保障。

发明内容

本发明的目的在于，针对上述问题，提出一种红花槭的组培方法，该方法简便高效，成本低，诱导率高，增殖系数高，成活率高。

为实现上述目的，本发明采用的技术方案是：一种红花槭的组培方法，包括以下步骤：

步骤一、切取红花槭植株个体的休眠芽进行预处理，然后接种到含0.01～0.1mg/L细胞分裂素、0.01～0.1mg/L生长素、20～40g/L蔗糖和5～7g/L琼脂的诱导培养基上，在温度为20～30℃、湿度为40％～80％、光照强度为20～100μmol·m^-2·s^-1、每天光照12～24h、20～30天获得无菌芽苗；

步骤二、将获得的无菌芽苗切割成1.5～3.0cm的带顶芽的茎段，接种到含0.01～0.1mg/L细胞分裂素、0.01～0.1mg/L生长素、20～40g/L蔗糖和5～7g/L琼脂的诱导培养基上，在温度为20～30℃、湿度为40％～80％、光照强度为20～100μmol·m^-2·s^-1、每天光照12～24h、每20～30天更换新鲜培养基的条件下培养1～3个月，获得丛生芽苗；

步骤三、由于本专利的诱导培养基诱导率高，组培苗分化旺盛，需壮苗，因此该步骤为壮苗过程。挑选健壮的丛生芽苗，以单个芽苗为单位进行切离，将切离后的单个芽苗切割成长度为1.5～3.0cm的带顶芽的茎段，然后将带顶芽的茎段接种到含有0.01～0.1mg/L生长素、0.1～1mg/L细胞分裂素、20～40g/L蔗糖和5～7g/L琼脂的壮苗培养基上，在温度为20～30℃、湿度为40％～80％、光照强度为20～100μmol·m^-2·s^-1、每天光照12～24h条件下培养10～30天，获得健壮芽苗；

步骤四、挑选健壮芽苗，切割成长度为2.0～3.0cm的带顶芽的茎段，然后将茎段接种到含有0.1～0.5mg/L生长素(两种生长素，浓度均为0.1-0.5mg/L)、20～40g/L蔗糖和5～7g/L琼脂的生根培养基上，在温度为20～30℃、湿度为40％～80％、光照强度为20～100μmol·m^-2·s^-1、每天光照12～24h条件下培养10～30天，获得再生植株；

步骤五、将株高达4cm、根系发达、叶片展开的再生植株在炼苗室内敞口炼苗3d，然后洗净根系附着的培养基，再移植到栽培基质中并浇透水，在温度为20～30℃、湿度为60％～80％、光照强度为40～100μmol·m^-2·s^-1、每天光照12～18h的条件下用塑料薄膜覆盖容器口培养至长出的新叶完全展开后，去掉覆盖的塑料薄膜，获得红花槭苗木，即完成红花槭的微繁方法。

进一步地，红花槭的组培方法，包括以下步骤：

步骤一、切取红花槭植株个体的休眠芽进行预处理，然后接种到含0.01-0.04mg/L细胞分裂素、0.02-0.05mg/L生长素、25～35g/L蔗糖和5～7g/L琼脂的诱导培养基上，在温度为25～30℃、湿度为60％～80％、光照强度为40～80μmol·m^-2·s^-1、每天光照15～20h、20～30天获得无菌芽苗；

步骤二、将获得的无菌芽苗切割成1.5～3.0cm的带顶芽的茎段，接种到含0.08-0.1mg/L细胞分裂素、0.02-0.05mg/L生长素、25～40g/L蔗糖和5～7g/L琼脂的诱导培养基上，在温度为25～30℃、湿度为40％～60％、光照强度为50～100μmol·m^-2·s^-1、每天光照20～24h、每20～30天更换新鲜培养基的条件下培养1～3个月，获得丛生芽苗；

步骤三、挑选健壮的丛生芽苗，以单个芽苗为单位进行切离，将切离后的单个芽苗切割成长度为1.5～3.0cm的带顶芽的茎段，然后将带顶芽的茎段接种到含有0.02-0.05mg/L生长素、0.3-0.6mg/L细胞分裂素、20～30g/L蔗糖和5～7g/L琼脂的壮苗培养基上，在温度为20～30℃、湿度为40％～60％、光照强度为20～70μmol·m^-2·s^-1、每天光照12～24h条件下培养10～30天，获得健壮芽苗；

步骤四、挑选健壮芽苗，切割成长度为2.0～3.0cm的带顶芽的茎段，然后将茎段接种到含有0.3-0.5mg/L生长素(两种生长素，浓度均为0.3-0.5mg/L)、20～40g/L蔗糖和5～7g/L琼脂的生根培养基上，在温度为20～30℃、湿度为60％～80％、光照强度为50～100μmol·m^-2·s^-1、每天光照12～20h条件下培养10～30天，获得再生植株；

步骤五、将株高达4cm、根系发达、叶片展开的再生植株在炼苗室内敞口炼苗3d，然后洗净根系附着的培养基，再移植到栽培基质中并浇透水，在温度为20～30℃、湿度为60％～80％、光照强度为40～80μmol·m^-2·s^-1、每天光照12～15h的条件下用塑料薄膜覆盖容器口培养至长出的新叶完全展开后，去掉覆盖的塑料薄膜，获得红花槭苗木，即完成红花槭的微繁方法。

进一步地，步骤一中所述预处理包括以下步骤：(大连地区)5-6月份，晴天上午，选生长健壮、树形优美、无病虫害的优良母本，采集一年生枝条，剪成长约1.5-2.5cm的带腋芽茎段(优选为2cm)，用中性洗涤剂漂洗后，流水冲洗2h以上，后置于工作台备用；在超净工作台上，先用70％乙醇处理10-30s，后用0.1％升汞处理1-5min，然后用无菌水漂洗5次。

进一步地，步骤一中所述诱导培养基为MS培养基、1/2MS培养基、DKW培养基、WPM培养基或QL培养基，pH值为5～6；细胞分裂素为苄基腺嘌呤、玉米素、激动素或氯吡苯脲，所述生长素为萘乙酸或吲哚丁酸。

进一步地，步骤二中所述增殖培养基为MS培养基、DKW培养基、WPM培养基或QL培养基，pH值为5～6；所述细胞分裂素为苄基腺嘌呤、玉米素、激动素或氯吡苯脲，所述生长素为萘乙酸或吲哚丁酸；

进一步地，步骤三中所述壮苗培养基为MS培养基、DKW培养基或WPM培养基，pH值为5～6；所述细胞分裂素为苄基腺嘌呤、玉米素或激动素，所述生长素为萘乙酸或吲哚丁酸。

进一步地，步骤四中所述生根培养基为生长素为MS培养基、1/2MS培养基或1/3MS培养基，pH值均为5～6；所述生长素为萘乙酸和/或吲哚丁酸；

进一步地，步骤五中所述栽培基质包含体积比如下的各组分：3份的草炭土、1-3份的珍珠岩。优选为3份的草炭土、2份的珍珠岩；

本发明红花槭的组培方法步骤科学、合理，与现有技术相比较具有以下优点：

1、预处理简便，污染率低，褐化率低，无菌材料的保存率高，可达95％以上。

2、初代培养基的诱导率高，可达90％以上。

3、增殖培养基的增殖速度快、增殖系数高，可达7.0.

4、壮苗过程培养的苗长势一致，苗生长量大，健壮有效，生根率高，可达100％。

5、驯化移栽过程简便，成活率高，可达90％以上。

具体实施方式

以下结合实施例对本发明进一步说明：

实施例1

本实施例公开了一种红花槭的组培方法，包括以下步骤：

步骤一、切取红花槭植株个体的休眠芽进行预处理，然后接种到含0.05mg/L细胞分裂素、0.05mg/L生长素、30g/L蔗糖和6g/L琼脂的诱导培养基上，在温度为25℃、湿度为60％、光照强度为50μmol·m^-2·s^-1、每天光照20h、20天获得无菌芽苗；

步骤二、将获得的无菌芽苗切割成1.5～3.0cm的带顶芽的茎段，接种到含0.05mg/L细胞分裂素、0.05mg/L生长素、30g/L蔗糖和6g/L琼脂的诱导培养基上，在温度为25℃、湿度为60％、光照强度为800μmol·m^-2·s^-1、每天光照18h、每25天更换新鲜培养基的条件下培养2个月，获得丛生芽苗；

步骤三、挑选健壮的丛生芽苗，以单个芽苗为单位进行切离，将切离后的单个芽苗切割成长度为1.5～3.0cm的带顶芽的茎段，然后将带顶芽的茎段接种到含有0.5mg/L生长素、0.5mg/L细胞分裂素、30g/L蔗糖和6g/L琼脂的壮苗培养基上，在温度为25℃、湿度为60％、光照强度为70μmol·m^-2·s^-1、每天光照20h条件下培养20天，获得健壮芽苗；

步骤四、挑选健壮芽苗，切割成长度为2.0～3.0cm的带顶芽的茎段，然后将茎段接种到含有0.3mg/L生长素、30g/L蔗糖和6g/L琼脂的生根培养基上，在温度为25℃、湿度为60％、光照强度为70μmol·m^-2·s^-1、每天光照20h条件下培养20天，获得再生植株；

步骤五、将株高达4cm、根系发达、叶片展开的再生植株在炼苗室内敞口炼苗3d，然后洗净根系附着的培养基，再移植到栽培基质中并浇透水，在温度为25℃、湿度为60％、光照强度为70μmol·m^-2·s^-1、每天光照16h的条件下用塑料薄膜覆盖容器口培养至长出的新叶完全展开后，去掉覆盖的塑料薄膜，获得红花槭苗木健壮长势一致，主茎笔直。即完成红花槭的微繁方法。

上述预处理以大连地区为例，包括以下步骤：5-6月份，晴天上午，选生长健壮、树形优美、无病虫害的优良母本，采集一年生枝条，剪成长1.5-2.5cm的带腋芽茎段，用中性洗涤剂漂洗后，流水冲洗2h以上，后置于工作台备用；在超净工作台上，先用70％乙醇处理10-30s，后用0.1％升汞处理1-5min，然后用无菌水漂洗5次。

其中步骤一中诱导培养基为MS培养基，pH值为5，细胞分裂素为苄基腺嘌呤，生长素为萘乙酸；步骤二中增殖培养基为MS培养基，pH值为5，细胞分裂素为苄基腺嘌呤，生长素为萘乙酸；步骤三中壮苗培养基为MS培养基，pH值均为5，细胞分裂素为苄基腺嘌呤；步骤四中生根培养基为生长素为MS培养基，pH值均为5，生长素为萘乙酸和吲哚丁酸；步骤五中栽培基质按体积份数比为3份的草炭土、2份的珍珠岩。

实施例2

本实施例公开了一种红花槭的组培方法，包括以下步骤：

步骤一、切取红花槭植株个体的休眠芽进行预处理，然后接种到含0.1mg/L细胞分裂素、0.08mg/L生长素、20g/L蔗糖和7g/L琼脂的诱导培养基上，在温度为20℃、湿度为60％、光照强度为20μmol·m^-2·s^-1、每天光照12h、30天获得无菌芽苗；

步骤二、将获得的无菌芽苗切割成1.5～3.0cm的带顶芽的茎段，接种到含0.03mg/L细胞分裂素、0.05mg/L生长素、20g/L蔗糖和7g/L琼脂的诱导培养基上，在温度为30℃、湿度为80％、光照强度为20μmol·m^-2·s^-1、每天光照12h、每30天更换新鲜培养基的条件下培养1～3个月，获得丛生芽苗；

步骤三、挑选健壮的丛生芽苗，以单个芽苗为单位进行切离，将切离后的单个芽苗切割成长度为1.5～3.0cm的带顶芽的茎段，然后将带顶芽的茎段接种到含有0.02mg/L生长素、0.6mg/L细胞分裂素、20～40g/L蔗糖和5g/L琼脂的壮苗培养基上，在温度为25℃、湿度为60％、光照强度为60μmol·m^-2·s^-1、每天光照18h条件下培养30天，获得健壮芽苗；

步骤四、挑选健壮芽苗，切割成长度为2.0～3.0cm的带顶芽的茎段，然后将茎段接种到含有0.1mg/L生长素、20g/L蔗糖和7g/L琼脂的生根培养基上，在温度为20℃、湿度为80％、光照强度为100μmol·m^-2·s^-1、每天光照24h条件下培养10天，获得再生植株；

步骤五、将株高达4cm、根系发达、叶片展开的再生植株在炼苗室内敞口炼苗3d，然后洗净根系附着的培养基，再移植到栽培基质中并浇透水，在温度为20℃、湿度为70％、光照强度为80μmol·m^-2·s^-1、每天光照18h的条件下用塑料薄膜覆盖容器口培养至长出的新叶完全展开后，去掉覆盖的塑料薄膜，获得红花槭苗木，即完成红花槭的微繁方法。

上述预处理以大连地区为例，包括以下步骤：5-6月份，晴天上午，选生长健壮、树形优美、无病虫害的优良母本，采集一年生枝条，剪成长1.5-2.5cm的带腋芽茎段，用中性洗涤剂漂洗后，流水冲洗2h以上，后置于工作台备用；在超净工作台上，先用70％乙醇处理10-30s，后用0.1％升汞处理1-5min，然后用无菌水漂洗5次。

其中步骤一中诱导培养基为DKW培养基，pH值为6，细胞分裂素为激动素，生长素为萘乙酸；步骤二中增殖培养基为WPM培养基，pH值为5，细胞分裂素为玉米素，生长素为吲哚丁酸；步骤三中壮苗培养基为WPM培养基，pH值为5，细胞分裂素为苄基腺嘌呤；步骤四中生根培养基为生长素为MS培养基，pH值为6，生长素为吲哚丁酸；步骤五中栽培基质按体积份数比为3份的草炭土、2份的珍珠岩。

实施例3

本实施例公开了一种红花槭的组培方法，包括以下步骤：

步骤一、切取红花槭植株个体的休眠芽进行预处理，然后接种到含0.02mg/L细胞分裂素、0.05mg/L生长素、20g/L蔗糖和5g/L琼脂的诱导培养基上，在温度为20℃、湿度为70％、光照强度为20μmol·m^-2·s^-1、每天光照24h、30天获得无菌芽苗；

步骤二、将获得的无菌芽苗切割成1.5～3.0cm的带顶芽的茎段，接种到含0.06mg/L细胞分裂素、0.08mg/L生长素、35g/L蔗糖和5g/L琼脂的诱导培养基上，在温度为25℃、湿度为50％、光照强度为80μmol·m^-2·s^-1、每天光照15h、每30天更换新鲜培养基的条件下培养2个月，获得丛生芽苗；

步骤三、挑选健壮的丛生芽苗，以单个芽苗为单位进行切离，将切离后的单个芽苗切割成长度为1.5～3.0cm的带顶芽的茎段，然后将带顶芽的茎段接种到含有0.05mg/L生长素、0.1～1mg/L细胞分裂素、25g/L蔗糖和5g/L琼脂的壮苗培养基上，在温度为25℃、湿度为45％、光照强度为20～100μmol·m^-2·s^-1、每天光照20h条件下培养18天，获得健壮芽苗；

步骤四、挑选健壮芽苗，切割成长度为2.0～3.0cm的带顶芽的茎段，然后将茎段接种到含有0.3mg/L生长素、26g/L蔗糖和6g/L琼脂的生根培养基上，在温度为25℃、湿度为50％、光照强度为50μmol·m^-2·s^-1、每天光照15条件下培养20天，获得再生植株；

步骤五、将株高达4cm、根系发达、叶片展开的再生植株在炼苗室内敞口炼苗3d，然后洗净根系附着的培养基，再移植到栽培基质中并浇透水，在温度为28℃、湿度为80％、光照强度为90μmol·m^-2·s^-1、每天光照15h的条件下用塑料薄膜覆盖容器口培养至长出的新叶完全展开后，去掉覆盖的塑料薄膜，获得红花槭苗木，即完成红花槭的微繁方法。

上述预处理以大连地区为例，包括以下步骤：5-6月份，晴天上午，选生长健壮、树形优美、无病虫害的优良母本，采集一年生枝条，剪成长1.5-2.5cm的带腋芽茎段，用中性洗涤剂漂洗后，流水冲洗2h以上，后置于工作台备用；在超净工作台上，先用70％乙醇处理10-30s，后用0.1％升汞处理1-5min，然后用无菌水漂洗5次。

其中步骤一中诱导培养基为QL培养基，pH值为6，细胞分裂素为氯吡苯脲，生长素为吲哚丁酸；步骤二中增殖培养基为QL培养基，pH值为6，细胞分裂素为玉米素，生长素为萘乙酸；步骤三中壮苗培养基为MS培养基、DKW培养基或WPM培养基，pH值为6，细胞分裂素为苄基腺嘌呤；步骤四中生根培养基为生长素为1/3MS培养基，pH值为5，生长素为吲哚丁酸；步骤五中栽培基质按体积份数比为3份的草炭土、2份的珍珠岩。

最后应说明的是：以上各实施例仅用以说明本发明的技术方案，而非对其限制；尽管参照前述各实施例对本发明进行了详细的说明，本领域的普通技术人员应当理解：其依然可以对前述各实施例所记载的技术方案进行修改，或者对其中部分或者全部技术特征进行等同替换；而这些修改或者替换，并不使相应技术方案的本质脱离本发明各实施例技术方案的范围。

Claims (8)

1.一种红花槭的组培方法，其特征在于，包括以下步骤：

步骤一、切取红花槭植株个体的休眠芽进行预处理，然后接种到含0.01～0.1mg/L细胞分裂素、0.01～0.1mg/L生长素、20～40g/L蔗糖和5～7g/L琼脂的诱导培养基上，在温度为20～30℃、湿度为40％～80％、光照强度为20～100μmol·m^-2·s^-1、每天光照12～24h、20～30天获得无菌芽苗；

步骤二、将获得的无菌芽苗切割成1.5～3.0cm的带顶芽的茎段，接种到含0.01～0.1mg/L细胞分裂素、0.01～0.1mg/L生长素、20～40g/L蔗糖和5～7g/L琼脂的诱导培养基上，在温度为20～30℃、湿度为40％～80％、光照强度为20～100μmol·m^-2·s^-1、每天光照12～24h、每20～30天更换新鲜培养基的条件下培养1～3个月，获得丛生芽苗；

步骤三、挑选健壮的丛生芽苗，以单个芽苗为单位进行切离，将切离后的单个芽苗切割成长度为1.5～3.0cm的带顶芽的茎段，然后将带顶芽的茎段接种到含有0.01～0.1mg/L生长素、0.1～1mg/L细胞分裂素、20～40g/L蔗糖和5～7g/L琼脂的壮苗培养基上，在温度为20～30℃、湿度为40％～80％、光照强度为20～100μmol·m^-2·s^-1、每天光照12～24h条件下培养10～30天，获得健壮芽苗；

步骤四、挑选健壮芽苗，切割成长度为2.0～3.0cm的带顶芽的茎段，然后将茎段接种到含有0.1～0.5mg/L生长素、20～40g/L蔗糖和5～7g/L琼脂的生根培养基上，在温度为20～30℃、湿度为40％～80％、光照强度为20～100μmol·m^-2·s^-1、每天光照12～24h条件下培养10～30天，获得再生植株；

步骤五、将株高达4cm、根系发达、叶片展开的再生植株在炼苗室内敞口炼苗3d，然后洗净根系附着的培养基，再移植到栽培基质中并浇透水，在温度为20～30℃、湿度为60％～80％、光照强度为40～100μmol·m^-2·s^-1、每天光照12～18h的条件下用塑料薄膜覆盖容器口培养至长出的新叶完全展开后，去掉覆盖的塑料薄膜，获得红花槭苗木。

2.根据权利要求1所述红花槭的组培方法，其特征在于，包括以下步骤：

步骤一、切取红花槭植株个体的休眠芽进行预处理，然后接种到含0.01-0.04mg/L细胞分裂素、0.02-0.05mg/L生长素、25～35g/L蔗糖和5～7g/L琼脂的诱导培养基上，在温度为25～30℃、湿度为60％～80％、光照强度为40～80μmol·m^-2·s^-1、每天光照15～20h、20～30天获得无菌芽苗；

步骤二、将获得的无菌芽苗切割成1.5～3.0cm的带顶芽的茎段，接种到含0.08-0.1mg/L细胞分裂素、0.02-0.05mg/L生长素、25～40g/L蔗糖和5～7g/L琼脂的诱导培养基上，在温度为25～30℃、湿度为40％～60％、光照强度为50～100μmol·m^-2·s^-1、每天光照20～24h、每20～30天更换新鲜培养基的条件下培养1～3个月，获得丛生芽苗；

步骤三、挑选健壮的丛生芽苗，以单个芽苗为单位进行切离，将切离后的单个芽苗切割成长度为1.5～3.0cm的带顶芽的茎段，然后将带顶芽的茎段接种到含有0.02-0.05mg/L生长素、0.3-0.6mg/L细胞分裂素、20～30g/L蔗糖和5～7g/L琼脂的壮苗培养基上，在温度为20～30℃、湿度为40％～60％、光照强度为20～70μmol·m^-2·s^-1、每天光照12～24h条件下培养10～30天，获得健壮芽苗；

步骤四、挑选健壮芽苗，切割成长度为2.0～3.0cm的带顶芽的茎段，然后将茎段接种到含有0.3-0.5mg/L生长素、20～40g/L蔗糖和5～7g/L琼脂的生根培养基上，在温度为20～30℃、湿度为60％～80％、光照强度为50～100μmol·m^-2·s^-1、每天光照12～20h条件下培养10～30天，获得再生植株；

步骤五、将株高达4cm、根系发达、叶片展开的再生植株在炼苗室内敞口炼苗3d，然后洗净根系附着的培养基，再移植到栽培基质中并浇透水，在温度为20～30℃、湿度为60％～80％、光照强度为40～80μmol·m^-2·s^-1、每天光照12～15h的条件下用塑料薄膜覆盖容器口培养至长出的新叶完全展开后，去掉覆盖的塑料薄膜，获得红花槭苗木，即完成红花槭的微繁方法。

3.根据权利要求1或2所述红花槭的组培方法，其特征在于，步骤一中所述预处理包括以下步骤：

5-6月份，晴天上午，选生长健壮、树形优美、无病虫害的优良母本，采集一年生枝条，剪成长1.5-2.5cm的带腋芽茎段，用中性洗涤剂漂洗后，流水冲洗2h以上，后置于工作台备用；在超净工作台上，先用70％乙醇处理10-30s，后用0.1％升汞处理1-5min，然后用无菌水漂洗5次。

4.根据权利要求1或2所述红花槭的组培方法，其特征在于，步骤一中所述诱导培养基为MS培养基、1/2MS培养基、DKW培养基、WPM培养基或QL培养基，pH值为5～6；细胞分裂素为苄基腺嘌呤、玉米素、激动素或氯吡苯脲，所述生长素为萘乙酸或吲哚丁酸。

5.根据权利要求1或2所述红花槭的组培方法，其特征在于，步骤二中所述增殖培养基为MS培养基、DKW培养基、WPM培养基或QL培养基，pH值为5～6；所述细胞分裂素为苄基腺嘌呤、玉米素、激动素或氯吡苯脲，所述生长素为萘乙酸或吲哚丁酸。

6.根据权利要求1或2所述红花槭的组培方法，其特征在于，步骤三中所述壮苗培养基为MS培养基、DKW培养基或WPM培养基，pH值为5～6；所述细胞分裂素为苄基腺嘌呤、玉米素或激动素，所述生长素为萘乙酸或吲哚丁酸。

7.根据权利要求1或2所述红花槭的组培方法，其特征在于，步骤四中所述生根培养基为生长素为MS培养基、1/2MS培养基或1/3MS培养基，pH值均为5～6；所述生长素为萘乙酸和/或吲哚丁酸。

8.根据权利要求1或2所述红花槭的组培方法，其特征在于，步骤五中所述栽培基质包含体积比如下的各组分：3份的草炭土、1-3份的珍珠岩。