CN106318976A - 一种人类circRNA过表达载体框架、过表达载体及其制备方法 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及一种人类circRNA过表达载体框架、过表达载体及其制备方法。所述人类circRNA过表达载体框架,包含启动子‑反向互补反应上游元件‑多克隆位点‑反向互补反应下游元件‑终止子,所述反向互补反应上游元件的序列如SEQ ID NO:1所示,所述反向互补反应下游元件的序列如SEQ ID NO:2所示。以目的circRNA的基因序列替换上述人类circRNA过表达载体中的填充序列,即得人类circRNA过表达载体。本发明中构建的人类circRNA过表达载体,可以通用表达所有人类circRNA,反向互补上、反向互补反应下游元件各有多个ALU序列,更能保证环化效率,提高circRNA表达效率。
Description
技术领域
本发明属于生物技术领域,尤其涉及一种人类circRNA过表达载体框架、过表达载体及其制备方法。
背景技术
环状RNA(circRNA)广泛且多样地存在于多种生物细胞中,是具有调控基因表达作用的一类内源性ncRNA分子。最早于20世纪70年代在RNA病毒中被发现。之后几十年,人们在一些转录本中也发现了一些由外显子构成的circRNA,如结肠直肠癌缺失基因转录本、人类Ets-1基因转录本等,但当时它们被认为是转录的“噪音”,未引起人们太多的关注。而近年来,随着生物信息学技术的快速发展,Salzman等、Jeck等、Memczak等及Guo等分别在人类和小鼠的多种细胞中发现了成千上万种circRNA。目前发现的circRNA,根据其在基因组中的来源及其构成序列的不同,可以分为3类:外显子来源的环形RNA分子,内含子来源的环形RNA分子和由外显子和内含子共同组成的环形RNA分子。
CircRNA具有以下特征:表达水平差异较大;具有序列保守性;偏好于细胞浆中;不易被核酸外切酶RNase R降解;外显子来源为主;属于ncRNA;可充当ceRNA的角色调控靶基因的表达;在转录或转录后水平发挥调控作用。这些特征使得circRNA在研究疾病发生机制、干预靶点和生物学标志物等方面显示显著优势。
研究表明,circRNA在转录及转录后水平具有以下非常重要的基因表达调控作用。(1)miRNA海绵作用:小脑变性相关蛋白1反义转录物(antisense to the cerebellardegeneration-related protin 1transcript,CDR1as)是一种circRNA,拥有至少60个与微小RNA-7(microRNA-7,miR-7)相结合的保守结合位点,从而充当miR-7海绵,有效影响miR-7靶基因活性。此外,研究发现,睾丸特异性基因Sry的circRNA具有16个微小RNA-138的靶位点,可与miR-138相互作用,充当miR-138海绵。(2)调控基因转录:Zhang等鉴定出一种来源于基因内含子区域的circRNA,发现这种circRNA分子在细胞核内含量丰富,可参与基因转录调控。(3)调控RNA结合蛋白:Bohjanen等设计了一种能够特异地结合反式激活调控蛋白(transactivating regulatory protein,Tat)的circRNA分子,从而抑制I型人类免疫缺陷病毒1(HIV-1)基因的表达。(4)参与部分蛋白质翻译:丁型肝炎病毒(hepatitis D virusantigen,HDAg)在疾病发展中起到重要的作用。另外,研究发现,人头骨瘤细胞U2OS中,circRNA具有翻译功能,尽管其翻译效率非常低。
近年来,随着高通量测序技术及基因芯片技术的高速发展,研究者们在真核生物体内发现了越来越多的circRNA。如Salzman等发现了数以百计的与人类基因表达相关的circRNA。Jeck等在人类成纤维细胞中检测到了高达25000多种circRNA。Danan等又发现了生物体内circRNA的各种特性。同时,人们在认识circRNA的结构时候,发现它们在疾病的发生和发展中发挥了重要作用。如circRNA与肿瘤、神经系统疾病、动脉粥样硬化、糖尿病及病毒性肝炎等有关,因此,circRNA作为分子标记物的诊断价值在疾病的发现和治疗中发挥着巨大作用。然而,circRNA在生物体内发挥的功能及分子作用机制的研究却非常少。目前的研究中,仅仅明确了circRNA具有吸附miRNA的海绵作用、调控基因转录等作用。
研究发现,在敲除或干扰调控circRNA相关基因时,机体内circRNA的表达水平受到不同程度的抑制。Agnieszka等(2015)研究发现,随着人和小鼠大脑神经元的分化,机体内circRNA水平均能上调。同时,敲除了circRNA负调控基因ADAR1能提高circRNA的表达量。Xu等(2015)利用毛喉素和PMA较长时间诱导处理人和小鼠胰岛细胞,发现Cdr1as呈现不同程度的高表达,相反,用高糖溶液处理却使Cdr1as表达水平降低。同时,在机体内加入pCDNA3-CIRS-7重组载体过表达Cdr1as能显著提高胰岛素的含量及分泌水平。Kramer等(2015)研究发现,内含子重复序列和反式拼接因子能提高果蝇laccase2环化水平,同时在人和小鼠细胞内也发现laccase 2侧翼内含子序列能够增加不同外显子的环化效率。虽然pCDNA3-CIRS-7外源表达载体已成功地运用到科学研究中,且Kramer等(2015)也初步阐述了circRNA环化的分子机制,但是想要进一步明确circRNA在生物体内的形成机制及发挥的功能仍需要更多的其他circRNA相关数据来佐证。
因此,circRNA过表达载体是研究circRNA功能机制的必不可少的工具。现有pCDNA3-CIRS-7过表达载体、laccase 2基因的过表达载体等,仅能用于一种circRNA的过表达,现有技术中并没有一个通用载体能表达人类的所有circRNA。因此,提供一种能过表达人类circRNA的通用载体有利于circRNA功能机制的研究。
发明内容
有鉴于此,有必要针对上述的问题,提供一种人类circRNA过表达载体框架、过表达载体及其制备方法。
一种人类circRNA过表达载体框架,包含启动子-反向互补反应上游元件-多克隆位点-反向互补反应下游元件-终止子,所述反向互补反应上游元件的序列如SEQ ID NO:1所示,所述反向互补反应下游元件的序列如SEQ ID NO:2所示。
优选地,所述启动子为pCMV,所述终止子为BGH pA。
优选地,所述多克隆位点依次包含第一酶切位点、填充序列和第二酶切位点。
优选地,第一酶切位点为BamHⅠ,第二酶切位点为EcoRⅠ。
一种人类circRNA过表达载体,以目的circRNA的基因序列替换上述人类circRNA过表达载体中的填充序列。
优选地,所述目的circRNA的基因序列的长度为100-5000bp。
所述人类circRNA过表达载体框架的制备方法,包含以下步骤:
S1、采用基因合成的方式直接合成反向互补反应上游元件-含第一、第二酶切位点的多克隆位点-反向互补反应下游元件,得到核心元件,在其上游添加第三酶切位点,在其下游添加第四酶切位点;
S2、双酶切pCDA 3.1载体和含有第三、四酶切位点的核心元件,用连接酶将核心元件连入pCDA 3.1载体中CMV启动子下游,测序验证正确得到人类circRNA过表达载体框架。
优选地,所述第三酶切位点为HindIII,所述第四酶切位点为Xhol。
所述人类circRNA过表达载体的制备方法,包含以下步骤:使用含有第一酶切位点、内含子AG受体的上游引物以及含有第二酶切位点、内含子GT供体的下游引物,PCR扩增目的circRNA的基因序列,双酶切人类circRNA过表达载体框架和目的circRNA的基因序列,用连接酶将目的circRNA的基因序列连入人类circRNA过表达载体框架。
与现有技术相比,本发明具有如下有益效果:
本发明中构建的人类circRNA过表达载体,可以通用表达所有人类circRNA。本发明中通过反向互补反应上、下游元件的反向互补环化,反向互补上、反向互补反应下游元件各有多个ALU序列,更能保证环化效率,提高circRNA表达效率。
附图说明
图1为circRNA过表达载体框架模式图。
图2为circRNA_100146基因结构模式图。
图3为circRNA_100146基因上下游ALU重复序列的系统发育树。
图4为实施例2中扩增后circRNA_2371的PCR产物电泳图。其中,maker采用1kbPlus DNA marker;a为circRNA_2371。
图5为实施例2中菌落PCR鉴定电泳图。其中,maker为DL500maker,a、b、c、d均为pcircRNA 1.1-circRNA_2371。
图6为实施例2中pcircRNA 1.1-circRNA_2371的qPCR相对定量图。
图7为实施例2中pcircRNA 1.1-circRNA_2371表达的circRNA_2371测序结果图。
图8为实施例3中扩增后circRNA_2373的PCR产物电泳图。其中,maker采用DL2000DNA marker;a为circRNA_2373。
图9为实施例3中菌落PCR鉴定电泳图。其中,maker为DL500maker,a、b、c、d均为pcircRNA 1.1-circRNA_2373。
图10为实施例3中pcircRNA 1.1-circRNA_2373的qPCR相对定量图。
图11为实施例3中pcircRNA 1.1-circRNA_2373表达的circRNA_2373测序结果图。
图12为实施例4中扩增后circRNA T的PCR产物电泳图。其中,maker采用DL5000DNAmarker;a为circRNA_T。
图13为实施例4中菌落PCR鉴定电泳图。其中,maker为DL5000maker,a、b、c、d、e均为pcircRNA 1.1-circRNA_T。
图14为实施例4中pcircRNA 1.1-circRNA_T的qPCR相对定量图。
图15为实施例4中pcircRNA 1.1-circRNA_T表达的circRNA_T测序结果图。
具体实施方式
为了更好的说明本发明,下面结合附图和具体实施方式做进一步说明。本发明中所用试剂或仪器均可由市场购得,使用的检测方法等都是本领域所熟知的,在此不再赘述。
实施例1、人类circRNA过表达载体框架及其制备方法
一种人类circRNA过表达载体框架,以pcDNA3.1为骨架构建,其结构如图1所示,包含pCMV(启动子)-反向互补反应上游元件-多克隆位点-反向互补反应下游元件-BGH pA(终止子)。所述反向互补反应上游元件的序列如SEQ ID NO:1所示,所述反向互补反应下游元件的序列如SEQ ID NO:2所示。
本实施例中反向互补反应上、下游元件是以hsa_circRNA_100146为研究目标开展,该circRNA宿主基因为Eukaryotic translation initiation factor 3subunit I(EIF3I);EIF3I是EIF3复合物的一种亚基。EIF3是最大的真核起始因子,也是最复杂的起始因子。在哺乳动物细胞中,EIF3是一个多亚基复合物,哺乳动物中存在13种不同的亚基(a、b、c、d、e、f、g、h、i、j、k、l和m),其分子量超过了600KDa,真核翻译起始进程中起着核心作用。
circRNA_100146是一个双外显子circRNA,对其两翼内含子序列分析共发现9个ALU重复序列(上游5个,下游4个),如图2所示。对9个ALU重复序列(上游5个,下游4个)开展序列比对分析发现ALU上游-2、-1与下游+1、+2序列(具体序列分别如SEQ ID NO:3-6所示)同源性较高,具备RNA前体并形成circRNA环化反应元件,系统发育树如图3所示。因此,本实施例在circRNA_100146ALU上游-1、-2与下游+1、+2序列的基础上设计得到本发明SEQ IDNO:1和SEQ ID NO:2所示的序列作为反向互补反应上、下游元件。
所述多克隆位点依次包含第一酶切位点、填充序列和第二酶切位点。第一酶切位点和第二酶切位点为pcDNA3.1中不含有的酶切位点。优选地,本实施例中第一酶切位点为BamHⅠ,第二酶切位点为EcoRⅠ。所示填充序列由任意核苷酸组成,后续被目的circRNA的基因序列所替换。所述填充序列不宜过短或过长,过短不利于酶切,过长会增加扩增时间。因此,本实施例中多克隆位点的具体序列如SEQ ID NO:7所示,具体为GGATCC(BamH I)GCGCAGGA CCG GAATTC(EcoR I)。
本实施例中circRNA过表达载体框架的制备方法,包含以下步骤:
S1、采用基因合成的方式直接合成反向互补反应上游元件-多克隆位点(含BamHI、EcoR I)-反向互补反应下游元件,得到核心元件,在其上游添加第三酶切位点,在其下游添加第四酶切位点;所述第三、四酶切位点为pCDA 3.1载体含有的多克隆位点,本实施例中优选为HindIII和Xhol;
S2、双酶切pCDA 3.1载体和含有第三、四酶切位点的核心元件,用连接酶将核心元件连入pCDA 3.1载体中CMV启动子下游,经测序鉴定成功,将构建的过表达载体框架命名为pcircRNA1.1。制得的pcircRNA1.1于大肠杆菌中保藏并扩增。
实施例2、pcircRNA1.1-circRNA_2371过表达载体及其制备方法
CircRNA_2371对应的基因序列如SEQ ID NO:8所示,采用传统酶切结合连接的方式将circRNA片段连接入pcircRNA1.1过表达载体中,即使用含有第一酶切位点(GCATCC)、内含子AG受体(TCCAG)、特异性基因序列的上游引物以及含有第二酶切位点(GAATTC)、内含子GT供体(GTAAGT)、特异性基因序列的下游引物,PCR扩增目的circRNA的基因序列,双酶切人类circRNA过表达载体框架和目的circRNA的基因序列,用连接酶将目的circRNA的基因序列连入人类circRNA过表达载体框架,便可得到pcircRNA1.1-circRNA_2371过表达载体。
具体制备方法如下:
(1)设计合成circRNA引物,扩增circRNA_2371
扩增体系如表1所示。
表1、扩增体系
扩增程序为:
预变性:94℃5min。变性:94℃10sec;退火:根据引物设定温度,30sec;延伸:72℃1kb/1min;共35循环。延伸:72℃10min。保存:12℃。
扩增产物进行琼脂糖凝胶电泳,目标条带约360bp,结果如图4所示。扩增产物回收、纯化按照上海美吉生物医药有限公司胶中DNA回收试剂盒(AE-HSCH)操作说明回收PCR产物。
(2)提取pcircRNA1.1过表达载体
按照生工生物工程有限公司SanPrep无内毒素质粒DNA小量提取试剂盒(B518161)操作说明从大肠杆菌提取pcircRNA1.1过表达载体。
(3)将扩增产物连接入pcircRNA1.1过表达载体中
将扩增产物连接入pcircRNA1.1过表达载体分别双酶切,酶切体系如表2所示。
表2、酶切体系
按照上海美吉生物医药有限公司胶中DNA回收试剂盒(AE-HSCH)操作说明回收双酶切产物。
连接扩增产物酶切片段及pcircRNA1.1-circRNA表达载体酶切片段,16℃连接1小时,连接体系如表3所示。
表3、连接体系
连接产物与50μL感受态细胞混合,冰上孵育30分钟;42℃热激45秒;瞬间转移至冰上孵育5分钟;将感受态细胞与1mL SOC培养基混合后37℃震荡培养1小时;涂板。挑取培养板上的单菌落(5个),溶于20μL的无菌水中,取4μL作为模板进行PCR。此外,分别设置一个阴性对照(加入感受态细胞)和阳性对照(加入目的基因片段)。PCR产物进行琼脂糖凝胶电泳,目标条带约360bp,电泳结果如图5所示。按照生工生物工程有限公司SanPrep无内毒素质粒DNA小量提取试剂盒(B518161)操作说明提取阳性克隆菌内的过表达载体,得到pcircRNA1.1-circRNA_2371过表达载体(pCMV启动子-反向互补反应上游元件-circRNA_2371-反向互补反应下游元件-BGH pA)。
将构建成功的过表达载体转染293T细胞,48h后使用qPCR技术以GAPDH为内参,以空载转染组为空白对照检测circRNA_2371表达上调比例。CircRNA qPCR引物为:上游引物AAACCTCGGACTTTGCTGAA(SEQ ID NO:9),下游引物ACAGTTTTGGTGCTGCTGTG(SEQ ID NO:10);内参基因GAPDH qPCR引物为:上游引物AACGGATTTGGTCGTATTGGG(SEQ ID NO:11),下游引物CCTGGAAGATGGTGATGGGAT(SEQ ID NO:12)。然后对qPCR扩增片段结果测序验证circRNA_2371表达定量分析及序列拼接定性分析的正确性,结果如图6和图7所示。由图6和图7可知,pcircRNA 1.1-circRNA_2371可以过表达circRNA,上调倍数为19.6,测序验证序列拼接定性分析正确。
实施例3、pcircRNA1.1-circRNA_2373过表达载体及其制备方法
CircRNA_2373对应的基因序列如SEQ ID NO:13所示,采用传统酶切结合连接的方式将circRNA片段连接入pcircRNA1.1过表达载体中,便可得到pcircRNA1.1-circRNA_2373过表达载体,具体方法与实施例2相同。扩增后及菌落鉴定的PCR产物琼脂糖凝胶电泳图如图8和图9所示,目的片段约129bp。
将构建成功的过表达载体转染293T细胞,48h后使用qPCR技术以GAPDH为内参,以空载转染组为空白对照检测circRNA_2373表达上调比例。CircRNA qPCR引物为:上游引物CCACCATCCCAGCTCAG(SEQ ID NO:14),下游引物ACAGTGCTGGTATCCGGTTC(SEQ ID NO:15);内参基因GAPDH qPCR引物为:上游引物AACGGATTTGGTCGTATTGGG(SEQ ID NO:11),下游引物CCTGGAAGATGGTGATGGGAT(SEQ ID NO:12)。然后对qPCR扩增片段结果测序验证circRNA_2373表达定量分析及序列拼接定性分析的正确性,结果如图10和图11所示。由图10和图11可知,pcircRNA 1.1-circRNA_2373可以过表达circRNA,上调倍数为32.2,测序验证序列拼接定性分析正确。
实施例4、pcircRNA1.1-circRNA_T过表达载体及其制备方法
CircRNA_T对应的基因序列如SEQ ID NO:16所示,采用传统酶切结合连接的方式将circRNA片段连接入pcircRNA1.1过表达载体中,便可得到pcircRNA1.1-circRNA_T过表达载体,具体方法与实施例2相同。扩增后及菌落鉴定的PCR产物琼脂糖凝胶电泳图如图12和图13所示,目的片段约766bp,其中含有载体344bp。
将构建成功的表达载体转染293T细胞,48h后使用qPCR技术以GAPDH为内参,以空载转染组为空白对照检测circRNA_T表达上调比例。然后对qPCR扩增片段结果测序验证circRNA_T表达定量分析及序列拼接定性分析的正确性,结果如图14和图15所示。由图14和图15可知,pcircRNA 1.1-circRNA_T可以过表达circRNA,上调倍数为29.3,测序验证序列拼接定性分析正确。
以上所述实施例仅表达了本发明的几种实施方式,其描述较为具体和详细,但并不能因此而理解为对本发明专利范围的限制。应当指出的是,对于本领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明构思的前提下,还可以做出若干变形和改进,这些都属于本发明的保护范围。因此,本发明专利的保护范围应以所附权利要求为准。
Claims (9)
1.一种人类circRNA过表达载体框架,其特征在于,包含启动子-反向互补反应上游元件-多克隆位点-反向互补反应下游元件-终止子,所述反向互补反应上游元件的序列如SEQID NO:1所示,所述反向互补反应下游元件的序列如SEQ ID NO:2所示。
2.根据权利要求1所述的人类circRNA过表达载体框架,其特征在于,所述启动子为pCMV,所述终止子为BGH pA。
3.根据权利要求1所述的人类circRNA过表达载体框架,其特征在于,所述多克隆位点依次包含第一酶切位点、填充序列和第二酶切位点。
4.根据权利要求1所述的人类circRNA过表达载体框架,其特征在于,第一酶切位点为BamH Ⅰ,第二酶切位点为EcoR Ⅰ。
5.一种人类circRNA过表达载体,其特征在于,以目的circRNA的基因序列替换上述人类circRNA过表达载体中的填充序列。
6.根据权利要求1所述的人类circRNA过表达载体,其特征在于,所述目的circRNA的基因序列的长度为100-5000bp。
7.一种人类circRNA过表达载体框架的制备方法,其特征在于,包含以下步骤:
S1、采用基因合成的方式直接合成反向互补反应上游元件-含第一、第二酶切位点的多克隆位点-反向互补反应下游元件,得到核心元件,在其上游添加第三酶切位点,在其下游添加第四酶切位点;
S2、双酶切pCDA 3.1载体和含有第三、四酶切位点的核心元件,用连接酶将核心元件连入pCDA 3.1载体中CMV启动子下游,测序验证正确得到人类circRNA过表达载体框架。
8.根据权利要求7所述的人类circRNA过表达载体框架的制备方法,其特征在于,所述第三酶切位点为HindIII,所述第四酶切位点为Xhol。
9.一种人类circRNA过表达载体的制备方法,包含以下步骤:使用含有第一酶切位点、内含子AG受体的上游引物以及含有第二酶切位点、内含子GT供体的下游引物,PCR扩增目的circRNA的基因序列,双酶切人类circRNA过表达载体框架和目的circRNA的基因序列,用连接酶将目的circRNA的基因序列连入人类circRNA过表达载体框架。
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Cited By (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN108103100A (zh) * | 2018-02-28 | 2018-06-01 | 中南大学 | 一种表达环状rna的真核表达载体 |
CN108165549A (zh) * | 2017-12-26 | 2018-06-15 | 上海锐赛生物技术有限公司 | 人工环状rna的通用表达框架及其应用 |
CN109082441A (zh) * | 2018-08-29 | 2018-12-25 | 广州伯信生物科技有限公司 | 一种环状rna表达载体及使用所述表达载体的trap方法 |
CN109097395A (zh) * | 2018-09-05 | 2018-12-28 | 广州伯信生物科技有限公司 | 一种人类环状rna过表达载体框架、过表达载体及其制备方法 |
CN109355290A (zh) * | 2018-09-27 | 2019-02-19 | 四川农业大学 | 一种植物环状rna表达框架及其应用 |
CN114480499A (zh) * | 2022-03-04 | 2022-05-13 | 中国人民解放军陆军军医大学 | 环状RNA分子表达元件以及环状RNA分子的表达载体circEXPRO |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN105087570A (zh) * | 2015-09-07 | 2015-11-25 | 广州吉赛生物科技有限公司 | 一种环状rna人工过表达框架及其表达载体及构建方法 |
CN105176981A (zh) * | 2015-09-17 | 2015-12-23 | 广州永诺生物科技有限公司 | 用于环状rna表达的dna序列和表达载体及其应用 |
CN105755042A (zh) * | 2016-03-25 | 2016-07-13 | 广州吉赛生物科技有限公司 | 筛选鉴定环状rna翻译蛋白质的荧光报告系统及其构建方法 |
-
2016
- 2016-09-14 CN CN201610826732.5A patent/CN106318976A/zh active Pending
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN105087570A (zh) * | 2015-09-07 | 2015-11-25 | 广州吉赛生物科技有限公司 | 一种环状rna人工过表达框架及其表达载体及构建方法 |
CN105176981A (zh) * | 2015-09-17 | 2015-12-23 | 广州永诺生物科技有限公司 | 用于环状rna表达的dna序列和表达载体及其应用 |
CN105755042A (zh) * | 2016-03-25 | 2016-07-13 | 广州吉赛生物科技有限公司 | 筛选鉴定环状rna翻译蛋白质的荧光报告系统及其构建方法 |
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
STEVEN P. BARRETT ET AL.: "Circular RNAs: analysis, expression and potential functions", 《DEVELOPMENT》 * |
THOMAS B. HANSEN ET AL.: "Natural RNA circles function as efficient microRNA sponges", 《NATURE》 * |
Cited By (9)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN108165549A (zh) * | 2017-12-26 | 2018-06-15 | 上海锐赛生物技术有限公司 | 人工环状rna的通用表达框架及其应用 |
CN108165549B (zh) * | 2017-12-26 | 2021-06-29 | 浙江自贸区锐赛生物医药科技有限公司 | 人工环状rna的通用表达框架及其应用 |
CN108103100A (zh) * | 2018-02-28 | 2018-06-01 | 中南大学 | 一种表达环状rna的真核表达载体 |
CN108103100B (zh) * | 2018-02-28 | 2020-07-03 | 中南大学 | 一种表达环状rna的真核表达载体 |
CN109082441A (zh) * | 2018-08-29 | 2018-12-25 | 广州伯信生物科技有限公司 | 一种环状rna表达载体及使用所述表达载体的trap方法 |
CN109097395A (zh) * | 2018-09-05 | 2018-12-28 | 广州伯信生物科技有限公司 | 一种人类环状rna过表达载体框架、过表达载体及其制备方法 |
CN109355290A (zh) * | 2018-09-27 | 2019-02-19 | 四川农业大学 | 一种植物环状rna表达框架及其应用 |
CN109355290B (zh) * | 2018-09-27 | 2021-12-14 | 四川农业大学 | 一种植物环状rna表达框架及其应用 |
CN114480499A (zh) * | 2022-03-04 | 2022-05-13 | 中国人民解放军陆军军医大学 | 环状RNA分子表达元件以及环状RNA分子的表达载体circEXPRO |
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