CN106282282A - 一种同时提取辣木籽中油脂和蛋白和/或糖苷的方法 - Google Patents

一种同时提取辣木籽中油脂和蛋白和/或糖苷的方法 Download PDF

Info

Publication number
CN106282282A
CN106282282A CN201610651994.2A CN201610651994A CN106282282A CN 106282282 A CN106282282 A CN 106282282A CN 201610651994 A CN201610651994 A CN 201610651994A CN 106282282 A CN106282282 A CN 106282282A
Authority
CN
China
Prior art keywords
extraction
glucosides
albumen
fats
enzyme
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CN201610651994.2A
Other languages
English (en)
Inventor
吴雪辉
龙婷
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
South China Agricultural University
Original Assignee
South China Agricultural University
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by South China Agricultural University filed Critical South China Agricultural University
Priority to CN201610651994.2A priority Critical patent/CN106282282A/zh
Publication of CN106282282A publication Critical patent/CN106282282A/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P21/00—Preparation of peptides or proteins
    • C12P21/06—Preparation of peptides or proteins produced by the hydrolysis of a peptide bond, e.g. hydrolysate products
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C11—ANIMAL OR VEGETABLE OILS, FATS, FATTY SUBSTANCES OR WAXES; FATTY ACIDS THEREFROM; DETERGENTS; CANDLES
    • C11B—PRODUCING, e.g. BY PRESSING RAW MATERIALS OR BY EXTRACTION FROM WASTE MATERIALS, REFINING OR PRESERVING FATS, FATTY SUBSTANCES, e.g. LANOLIN, FATTY OILS OR WAXES; ESSENTIAL OILS; PERFUMES
    • C11B1/00—Production of fats or fatty oils from raw materials
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C11—ANIMAL OR VEGETABLE OILS, FATS, FATTY SUBSTANCES OR WAXES; FATTY ACIDS THEREFROM; DETERGENTS; CANDLES
    • C11B—PRODUCING, e.g. BY PRESSING RAW MATERIALS OR BY EXTRACTION FROM WASTE MATERIALS, REFINING OR PRESERVING FATS, FATTY SUBSTANCES, e.g. LANOLIN, FATTY OILS OR WAXES; ESSENTIAL OILS; PERFUMES
    • C11B1/00—Production of fats or fatty oils from raw materials
    • C11B1/02—Pretreatment
    • C11B1/04—Pretreatment of vegetable raw material
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C11—ANIMAL OR VEGETABLE OILS, FATS, FATTY SUBSTANCES OR WAXES; FATTY ACIDS THEREFROM; DETERGENTS; CANDLES
    • C11B—PRODUCING, e.g. BY PRESSING RAW MATERIALS OR BY EXTRACTION FROM WASTE MATERIALS, REFINING OR PRESERVING FATS, FATTY SUBSTANCES, e.g. LANOLIN, FATTY OILS OR WAXES; ESSENTIAL OILS; PERFUMES
    • C11B1/00—Production of fats or fatty oils from raw materials
    • C11B1/06—Production of fats or fatty oils from raw materials by pressing
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C11—ANIMAL OR VEGETABLE OILS, FATS, FATTY SUBSTANCES OR WAXES; FATTY ACIDS THEREFROM; DETERGENTS; CANDLES
    • C11B—PRODUCING, e.g. BY PRESSING RAW MATERIALS OR BY EXTRACTION FROM WASTE MATERIALS, REFINING OR PRESERVING FATS, FATTY SUBSTANCES, e.g. LANOLIN, FATTY OILS OR WAXES; ESSENTIAL OILS; PERFUMES
    • C11B1/00—Production of fats or fatty oils from raw materials
    • C11B1/10—Production of fats or fatty oils from raw materials by extracting
    • C11B1/104—Production of fats or fatty oils from raw materials by extracting using super critical gases or vapours
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00—Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00—Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/14—Preparation of compounds containing saccharide radicals produced by the action of a carbohydrase (EC 3.2.x), e.g. by alpha-amylase, e.g. by cellulase, hemicellulase
    • Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02P—CLIMATE CHANGE MITIGATION TECHNOLOGIES IN THE PRODUCTION OR PROCESSING OF GOODS
    • Y02P20/00—Technologies relating to chemical industry
    • Y02P20/50—Improvements relating to the production of bulk chemicals
    • Y02P20/54—Improvements relating to the production of bulk chemicals using solvents, e.g. supercritical solvents or ionic liquids

Abstract

本发明公开了一种同时提取辣木籽中油脂和蛋白和/或糖苷的方法。本发明将提取辣木籽油后的残渣加入碱液，经过超声波处理和针对性的酶处理后再经膜分离、等电点沉淀等处理手段，分别回收得到粗蛋白和糖苷粗制品。本发明方法通过多种优化处理手段的有机结合，实现高效提取辣木籽中有效成分，其中，油脂提取率超过90%，蛋白和糖苷回收率最高可达85%以上。本发明方法所得辣木籽油脂品质优，蛋白功能性质好，糖苷纯度高，创造性地实现了辣木籽中油脂、蛋白和糖苷的同时提取。

Description

一种同时提取辣木籽中油脂和蛋白和/或糖苷的方法
技术领域
本发明涉及木本油脂深加工与综合利用领域，更具体地，涉及一种同时提取辣木籽中油脂和蛋白和/或糖苷的方法。
背景技术
辣木(Moringa)又称鼓槌树(Drumstick tree)，是多年生热带落叶乔木，原产印度北部，全世界约有14个品种，目前较常食用的品种有以下两种：印度传统辣木(Moringaoleifera Lam.)、非洲辣木(Moringastenopetala)。
辣木的种子，俗称辣木籽，口感清脆香甜，且甜味持久。辣木籽营养价值极高，含有30％～37％油脂，35～40％蛋白含量，15～18％可溶性糖类，以及丰富的矿物质元素。经常食用辣木籽可增强免疫力、排毒、塑身、抗老化、抗癌，并对多种慢性疾病都有极大的改良功效。
近年来，随着辣木引种的扩大，辣木籽逐渐为消费者熟知。目前，关于辣木籽的加工研究不多，主要集中在油脂的提取上，中国专利CN105154207A公开了一种从辣木种子中提取辣木油的方法，采用水酶法提取油脂。专利CN105418787A公开了一种辣木籽中多糖的提取方法，采用简单的水提法提取辣木籽多糖。但对辣木籽中其他成分，例如蛋白和/或糖苷等的开发利用研究极少，尤其是同时提取辣木籽中油脂与其他多种成分的研究报道比较鲜见。
发明内容
本发明要解决的技术问题是针对现有技术同时提供辣木籽中多种成分的技术不足，提供一种同时提取辣木籽中油脂和蛋白和/或糖苷的方法，并同时解决辣木籽油脂提取率低、蛋白、碳水化合物综合利用不足等问题。
本发明的目的通过以下技术方案予以实现：
提供一种同时提取辣木籽中油脂和蛋白和/或糖苷的方法，包括以下步骤：
S1.提取辣木籽油：将辣木籽脱壳粉碎进行油脂提取，得辣木籽油和残渣Ⅰ；
S2.超声波处理：取残渣Ⅰ，按照1:5～1:20(g/mL)的料液比加入pH为8.0～12.0的稀碱溶液，进行超声波处理；
S3.酶解：超声波处理后，将混合物进行离心分离，得到上清液和残渣Ⅱ；将残渣Ⅱ与水按照1:8～1:18(g/mL)的料液比混合，向混合液中加入酶，酶的添加量为辣木籽粉质量的0.1％～3.0％，然后在30～80℃下酶解提取2.0～6.0h，得到酶解液；
S4.灭酶：将酶解液在80～95℃下进行灭酶处理5～30min后，离心分离得到水解液和残渣Ⅲ；
S5.蛋白和/或糖苷的回收。本发明可以在提取油脂的基础上，分别回收得到蛋白或者糖苷，也可以同时获得蛋白和糖苷。
将步骤S3所得的上清液与步骤S4所得的水解液合并后通过膜分离浓缩，得到浓缩液；然后用稀酸调节浓缩液的pH至4.0～5.0，沉淀蛋白，过滤得到溶液和沉淀物，分别处理所得的溶液和沉淀物就可以分别获得糖苷和蛋白。具体是将沉淀物干燥得到粗蛋白；将过滤得到的溶液经分离纯化，减压浓缩，干燥即可得到糖苷粗制品。
步骤S1所述的提取方法包括压榨法、溶剂浸提法、水酶法、超声波辅助法、微波辅助法、水剂法、超临界CO2萃取法、亚临界流体萃取法。
结合本发明思路，为达到更好的效果，优选地，步骤S1所述的提取方法采用亚临界流体萃取法或者超临界CO2萃取法。
如果采用亚临界流体萃取法，本发明萃取剂优选为丁烷或丙烷。进一步优选地，萃取压力为0.3～0.6MPa，料液比为1:2～1:5(g/mL)，萃取温度30～50℃，萃取时间20～40min，萃取次数1～5次。
更优选地，萃取压力为0.45MPa。
更优选地，料液比为1:4(g/mL)。
更优选地，萃取温度为35℃。
更优选地，萃取时间为30min。
更优选地，萃取次数为3次。
如果采用超临界CO2萃取法，本发明优选萃取压力20～35MPa，萃取温度30～50℃，萃取时间1.5～3.5h，CO2流量6～12L/h，解析压力和温度分别为6～10MPa和40～60℃，每次投料量为萃取釡容量的50％～80％。
更优选地，萃取压力为28MPa。
更优选地，萃取温度为40℃。
更优选地，萃取时间为2.8h。
更优选地，CO2流量为10L/h。
优选地，步骤S2所述稀碱溶液为氢氧化钠溶液。
优选地，步骤S2所述的超声波处理条件为：超声频率25～40kHz，功率100～700W，作用温度30～75℃，处理时间10～60min。
更优选地，超声频率25kHz。
更优选地，功率为300～500W。
更优选地，作用温度为50～60℃。
更优选地，处理时间为40～50min。
优选地，步骤S3所述加入酶是加入单一酶或或按照一定顺序加入不同配比的复合酶。
进一步优选地，步骤S3中所述的一定顺序是指先加入一种酶，反应0.5～2.5h后加入另一种酶，以此类推；或者同时加入多种酶。
优选地，步骤S3所述的酶包括蛋白酶、果胶酶、纤维素酶中的一种或者多种；蛋白酶包括酸性蛋白酶、中性蛋白酶或碱性蛋白酶中的一种。更优选地，所述酶为碱性蛋白酶和纤维素酶组成的复合酶。
优选地，所述碱性蛋白酶和纤维素酶的加入顺序为先加碱性蛋白酶，反应1.0～2.0h后再加纤维素酶，继续反应2.0～3.0h。
优选地，所述碱性蛋白酶和纤维素酶的配比为3:1～1:3，总的用量为残渣Ⅱ质量的1.0％～1.5％。
优选地，所述酶解提取的温度为55～65℃；
优选地，步骤S5所述的稀酸为0.05mol/L稀盐酸。
优选地，所述酶为碱性蛋白酶和纤维素酶组成的复合酶。
步骤S5所述的膜分离可以是超滤、纳滤、微滤或反渗透。
优选地，纳滤采用的膜为MWCO300～600Dalton。
步骤S5所述干燥的干燥方式可以是热风干燥、微波干燥、真空干燥、冷冻干燥或喷雾干燥。
优选地，采用喷雾干燥，优选的工艺条件为进口温度为170～200℃，风量为90～120m3/h，出口温度为80～100℃。
优选地，步骤S5所述的分离纯化是采用大孔树脂进行分离纯化。
进一步地，所述大孔吸附树脂可以是HPD-T01、HPD-M、HPD-M、HZ818、RS-8、AB-8、AD-8、ADS-7、CD-8、M-35或PYR。
步骤S5中所述大孔树脂分离纯化的条件为：大孔吸附树脂柱径高比为1:7～1:15，吸附液体积为3～10BV，吸附液的流速为1～5BV/h；解析液为体积分数30％～90％的乙醇溶液，体积为5～20BV，流速为1～5BV/h。
优选地，步骤S5中所述的解析液为60％～80％的乙醇，解析液流速为1.2～2.4BV/h。
本发明的有益效果如下：
本发明首次实现了辣木籽中油脂和蛋白、油脂和糖苷、或者三种成分的同时提取，大大提高了副产物的利用率，提升了辣木籽的附加值，有效避免了资源的浪费，保证了辣木籽价值的充分利用。
进一步地，本发明在科学设计超声波辅助碱法提取辣木籽油的工艺步骤和条件基础上，继续合理加入酶提取残渣中的蛋白和糖苷。在第一步提取辣木籽油的过程中，采用超声波有助于细胞壁的破裂，可缩短提取时间，增加得率，还可减少后续提取蛋白和糖苷步骤中的酶用量，降低经济成本。
进一步地，在提取辣木籽油的步骤，本发明提供了一种优选的、基于亚/超临界流体萃取技术提取辣木籽油的方法，针对辣木籽这种提取对象，本发明总结出适合的工艺，相比压榨、浸出等常规油脂提取方法，本发明提取率显著提高，达97％以上，所得油脂品质好，营养成分含量高，保健功能强。同时，萃取过程温度低，不会导致蛋白变性、糖苷分解，后续操作，回收后可得优质的蛋白和糖苷，提升了辣木籽的综合利用价值。
进一步地，在提取残渣中的蛋白和糖苷过程中，本发明通过对不同种类的酶进行复配，并按照不同的添加顺序对残渣进行酶解，充分发挥各种酶的作用，使细胞中蛋白、糖苷等成分最大程度溶出，进一步提高蛋白和糖苷的回收率。
进一步地，基于本发明科学的提取工艺打下的基础，本发明后续利用膜分离技术浓缩提取液，在等电点下沉淀蛋白，保障最终回收率达90％以上，且所得蛋白乳化性、起泡性、持水性和持油性等功能性质较好。
进一步地，基于本发明科学的提取工艺打下的基础，本发明后续采用大孔树脂纯化糖苷提取液，保障最终糖苷回收率均在80％以上，高达85.90％；纯度均在68.62％以上，可高达77.72％。
本发明操作简单，条件温和，易于推广。
附图说明
图1超声波辅助水酶法同时提取辣木籽油脂、蛋白和糖苷工艺路线图。
图2亚临界提取温度对辣木籽油提取率的影响。
图3亚临界提取时间对辣木籽油提取率的影响。
图4亚临界提取料溶比对辣木籽油提取率的影响。
图5亚临界提取次数对辣木籽油提取率的影响。
图6超声功率对蛋白回收率的影响。
图7超声功率对糖苷回收率的影响。
图8超声时间对蛋白回收率的影响。
图9超声时间对糖苷回收率的影响。
图10单一酶种类对蛋白回收率的影响。
图11单一酶种类对糖苷回收率的影响。
图12不同复合酶对蛋白回收率的影响。
图13不同复合酶对糖苷回收率的影响。
图14酶添加顺序对蛋白回收率的影响。
图15酶添加顺序对糖苷回收率的影响。
图16碱性蛋白酶与纤维素酶的配比对蛋白回收率的影响。
图17碱性蛋白酶与纤维素酶的配比对糖苷回收率的影响。
具体实施方式
以下结合附图和具体实施例对本发明作进一步说明，所列举的实施例仅是本发明代表性的实验例，并不因此限定本发明范围。除非特别说明，本发明采用的原料和设备为本技术领域常规的原料和设备。
实施例1油脂和粗蛋白制备
S1.提取辣木籽油：将辣木籽脱壳粉碎采用亚临界流体萃取法进行油脂提取，得辣木籽油和残渣Ⅰ；萃取剂为丁烷，料液比为1:2(g/mL)，萃取温度为30℃，萃取时间40min，萃取次数2次；
S2.超声波处理：取步骤S1提取辣木籽油后的残渣Ⅰ，按照1:5(g/mL)的料液比加入pH为8.0的氢氧化钠溶液，然后在300W、50℃下超声处理15min。
S3.酶解：超声波处理后，将混合物进行离心分离，得到上清液和残渣。将残渣与水按照1:8(g/mL)的料液比混合。向混合液中加入纤维素酶，添加量为残渣Ⅱ质量的0.1％，然后在30℃下提取2.0h，得到酶解液。
S4.灭酶：将酶解液在95℃下进行灭酶处理5min后，以4000r/min转速离心分离得到水解液和残渣Ⅲ。
S5.粗蛋白回收：将步骤S2的上清液与S4中的水解液合并后通过截留分子量MWCO300Dalton的纳滤膜，得到浓缩液；然后用0.05mol/L的盐酸调节浓缩液的pH至4.0，过滤得到蛋白质沉淀；将蛋白质沉淀在50℃热风中进行干燥，得到辣木籽粗蛋白，称量其质量，并测定其吸水性、吸油性、乳化性以及起泡性。
本实施例中，粗蛋白回收率达83.44％，其吸水性、吸油性、乳化性、起泡性分别为2.01mL/g、2.78mL/g、71％、64.28％。
实施例2油脂和粗蛋白制备
S1.提取辣木籽油：将辣木籽脱壳粉碎采用亚临界流体萃取法进行油脂提取，得辣木籽油和残渣Ⅰ；萃取剂为丙烷，料液比为1:3(g/mL)，萃取温度为50℃，萃取时间20min，萃取次数3次；
S2.超声波处理：取S1提取辣木籽油后的残渣Ⅰ，按照1:10(g/mL)的料液比加入pH为9.0的氢氧化钠溶液，然后在400W、60℃下超声20min。
S3.酶解：超声波处理后，将混合物进行离心分离，得到上清液和残渣。将残渣与水按照1:12(g/mL)的料液比混合。向混合液中加入蛋白酶，添加量为残渣Ⅱ质量的0.5％，然后在40℃下提取3.0h，得到酶解液。
S4.灭酶：将酶解液在95℃下进行灭酶处理5min后，以4000r/min转速离心分离得到水解液和残渣。
S5.粗蛋白回收：将步骤S2的上清液与S4中的水解液合并后通过截留分子量MWCO600Dalton的纳滤膜，得到浓缩液；然后用0.05mol/L的盐酸调节浓缩液的pH至5.0，过滤得到蛋白质沉淀；将蛋白质沉淀在150W下进行微波干燥，得到辣木籽粗蛋白，称量其质量，并测定其吸水性、吸油性、乳化性以及起泡性。
本实施例中，粗蛋白回收率达90.41％，其吸水性、吸油性、乳化性、起泡性分别为2.45mL/g、2.79mL/g、67.39％、64.78％。
实施例3油脂和粗蛋白制备
S1.提取辣木籽油；参照常规进行溶剂提取，得到油脂和残渣Ⅰ。
S2.超声波处理：取经溶剂提取辣木籽油后的残渣Ⅰ，按照1:15(g/mL)的料液比加入pH为10.0的氢氧化钠溶液，然后在500W、75℃下超声15min。
S3.酶解：超声波处理后，将混合物进行离心分离，得到上清液和残渣。将残渣与水按照1:15(g/mL)的料液比混合。向混合液中先加入碱性蛋白酶，酶解1.5h后再加入纤维素酶，两种酶的添加总量为残渣Ⅱ质量的1.0％，配比为碱性蛋白酶:纤维素酶＝1:2(w/w)，然后在50℃下搅拌提取6.0h，得到酶解液。
S4.灭酶：将酶解液在90℃下进行灭酶处理8min后，以4000r/min转速离心分离得到水解液和残渣。
S5.粗蛋白回收：将步骤S2的上清液与S4中的水解液合并后通过截留分子量MWCO300Dalton的纳滤膜，得到浓缩液；然后用0.05mol/L的盐酸调节浓缩液的pH至4.0，过滤得到蛋白质沉淀；将蛋白质沉淀经冷冻干燥得辣木籽粗蛋白，称量其质量，并测定其吸水性、吸油性、乳化性以及起泡性。
本实施例中，粗蛋白回收率达95.26％，其吸水性、吸油性、乳化性、起泡性分别为3.21mL/g、3.12mL/g、73.11％、69.28％。
实施例4油脂和粗蛋白制备
S1.提取辣木籽油；参照常规进行水酶法提取，得到油脂和残渣Ⅰ。
S2.超声波处理：取经水酶法提取辣木籽油后的残渣，按照1:20(g/mL)的料液比加入pH为11.0的氢氧化钠溶液，然后在600W、45℃下超声30min。
S3.酶解：超声波处理后，将混合物进行离心分离，得到上清液和残渣。将残渣与水按照1:18(g/mL)的料液比混合。向混合液中先加入纤维素酶，酶解1.5h后再加入碱性蛋白酶，两种酶的添加总量为残渣Ⅱ质量的1.5％，配比为碱性蛋白酶:纤维素酶＝1:2(w/w)，然后在80℃下搅拌提取2.5h，得到酶解液。
S4.灭酶：将酶解液在85℃下进行灭酶处理20min后，以4000r/min转速离心分离得到水解液和残渣。
S5.粗蛋白回收：将步骤S2的上清液与S4中的水解液合并后通过截留分子量MWCO600Dalton的纳滤膜，得到浓缩液；然后用0.05mol/L的盐酸调节浓缩液的pH至4.5，过滤得到蛋白质沉淀；将蛋白质沉淀经真空干燥得辣木籽粗蛋白，称量其质量，并测定其吸水性、吸油性、乳化性以及起泡性。
本实施例中，粗蛋白回收率达93.27％，其吸水性、吸油性、乳化性、起泡性分别为2.77mL/g、2.81mL/g、78.92％、70.78％。
实施例5油脂和粗蛋白制备
S1.提取辣木籽油；参照常规进行压榨法提取，得到油脂和残渣Ⅰ。
S2.超声波处理：取经压榨法提取辣木籽油后的残渣，按照1:16(g/mL)的料液比加入pH为12.0的氢氧化钠溶液，然后在100W、75℃下超声40min。
S3.酶解：超声波处理后，将混合物进行离心分离，得到上清液和残渣。将残渣与水按照1:14(g/mL)的料液比混合。向混合液中同时加入纤维素酶和碱性蛋白酶，两种酶的添加总量为残渣Ⅱ质量的1.5％，配比为碱性蛋白酶:纤维素酶＝1:2(w/w)，然后在55℃下搅拌提取3.5h，得到酶解液。
S4.灭酶：将酶解液在80℃下进行灭酶处理30min后，以4000r/min转速离心分离得到水解液和残渣。
S5.粗蛋白回收：将步骤S2的上清液与S4中的水解液合并后通过截留分子量MWCO800Dalton的纳滤膜，得到浓缩液；然后用0.05mol/L的盐酸调节浓缩液的pH至4.0，过滤得到蛋白质沉淀；将蛋白质沉淀经喷雾干燥(进口温度150℃，风量为80m3/h，出口温度为60℃)得辣木籽粗蛋白，称量其质量，并测定其吸水性、吸油性、乳化性以及起泡性。
本实施例中，粗蛋白回收率达94.37％，其吸水性、吸油性、乳化性、起泡性分别为2.69mL/g、2.85mL/g、73.32％、67.48％。
实施例6油脂和粗蛋白制备
S1.提取辣木籽油；将辣木籽脱壳粉碎采用亚临界流体萃取法进行油脂提取，得辣木籽油和残渣Ⅰ；萃取剂为丁烷，料液比为1:4(g/mL)，萃取温度为35℃，萃取时间30min，萃取次数3次；
S2.超声波处理：取经亚临界流体提取辣木籽油后的残渣，按照1:12(g/mL)的料液比加入pH为10.0的氢氧化钠溶液，然后在200W、35℃下超声60min。
S3.酶解：超声波处理后，将混合物进行离心分离，得到上清液和残渣。将残渣与水按照1:11(g/mL)的料液比混合。向混合液中同时加入纤维素酶和碱性蛋白酶，两种酶的添加总量为残渣Ⅱ质量的2.5％，配比为碱性蛋白酶:纤维素酶＝1:1(w/w)，然后在55℃下搅拌提取4.5h，得到酶解液。
S4.灭酶：将酶解液在80℃下进行灭酶处理30min后，以4000r/min转速离心分离得到水解液和残渣。
S5.粗蛋白回收：将步骤S2的上清液与S4中的水解液合并后通过截留分子量MWCO400Dalton的纳滤膜，得到浓缩液；然后用0.05mol/L的盐酸调节浓缩液的PH至5.0，过滤得到蛋白质沉淀；将蛋白质沉淀经喷雾干燥(进口温度220℃，风量为150m3/h，出口温度为120℃)得辣木籽粗蛋白，称量其质量，并测定其吸水性、吸油性、乳化性以及起泡性。
本实施例中，粗蛋白回收率达92.67％，其吸水性、吸油性、乳化性、起泡性分别为2.48mL/g、2.69mL/g、70.82％、64.18％。
实施例7油脂和粗蛋白制备
S1.提取辣木籽油；将辣木籽脱壳粉碎采用亚临界流体萃取法进行油脂提取，得辣木籽油和残渣Ⅰ；萃取剂为丁烷，料液比为1:5(g/mL)，萃取温度为50℃，萃取时间20min，萃取次数4次；
S2.超声波处理：取经亚临界流体脱脂后的辣木籽残渣，按照1:18(g/mL)的料液比加入pH为10.0的氢氧化钠溶液，然后在300W、45℃下超声45min。
S3.酶解：超声波处理后，将混合物进行离心分离，得到上清液和残渣。将残渣与水按照1:14(g/mL)的料液比混合。向混合液中同时加入纤维素酶和碱性蛋白酶，两种酶的添加总量为残渣Ⅱ质量的2.0％，配比为碱性蛋白酶:纤维素酶＝3:1(w/w)，然后在65℃下搅拌提取3.5h，得到酶解液。
S4.灭酶：将酶解液在90℃下进行灭酶处理30min后，以4000r/min转速离心分离得到水解液和残渣。
S5.粗蛋白回收：将步骤S2的上清液与S4中的水解液合并后通过截留分子量MWCO700Dalton的纳滤膜，得到浓缩液；然后用0.05mol/L的盐酸调节浓缩液的PH至4.8，过滤得到蛋白质沉淀；将蛋白质沉淀经喷雾干燥(进口温度180℃，风量为100m3/h，出口温度为100℃)得辣木籽粗蛋白，称量其质量，并测定其吸水性、吸油性、乳化性以及起泡性。
本实施例中，粗蛋白回收率达90.36％，其吸水性、吸油性、乳化性、起泡性分别为2.77mL/g、2.88mL/g、75.91％、68.28％。
实施例8油脂和粗蛋白制备
S1.提取辣木籽油；将辣木籽脱壳粉碎采用亚临界流体萃取法进行油脂提取，得辣木籽油和残渣Ⅰ；萃取剂为丁烷，料液比为1:2(g/mL)，萃取温度为40℃，萃取时间40min，萃取次数3次；
S2.超声波处理：取经亚临界流体脱脂后的辣木籽残渣，按照1:18(g/mL)的料液比加入pH为10.0的氢氧化钠溶液，然后在300W、45℃下超声45min。
S3.酶解：超声波处理后，将混合物进行离心分离，得到上清液和残渣。将残渣与水按照1:14(g/mL)的料液比混合。向混合液中同时加入纤维素酶和碱性蛋白酶，两种酶的添加总量为残渣Ⅱ质量的2.0％，配比为碱性蛋白酶:纤维素酶＝3:1(w/w)，然后在65℃下搅拌提取3.5h，得到酶解液。
S4.灭酶：将酶解液在90℃下进行灭酶处理30min后，以4000r/min转速离心分离得到水解液和残渣。
S5.粗蛋白回收：将步骤S2的上清液与S4中的水解液合并后通过超滤膜得到浓缩液；然后用0.05mol/L的盐酸调节浓缩液的PH至4.8，过滤得到蛋白质沉淀；将蛋白质沉淀经喷雾干燥(进口温度200℃，风量为120m3/h，出口温度为80℃)得辣木籽粗蛋白，称量其质量，并测定其吸水性、吸油性、乳化性以及起泡性。
本实施例中，粗蛋白回收率达88.36％，其吸水性、吸油性、乳化性、起泡性分别为2.82mL/g、2.84mL/g、80.91％、73.28％。
实施例9油脂和粗蛋白制备
S1.提取辣木籽油；将辣木籽脱壳粉碎采用亚临界流体萃取法进行油脂提取，得辣木籽油和残渣Ⅰ；萃取剂为丙烷，料液比为1:3(g/mL)，萃取温度为45℃，萃取时间25min，萃取次数5次；
S2.超声波处理：取经亚临界流体脱脂后的辣木籽残渣，按照1:17(g/mL)的料液比加入pH为10.0的氢氧化钠溶液，然后在400W、45℃下超声55min。
S3.酶解：超声波处理后，将混合物进行离心分离，得到上清液和残渣。将残渣与水按照1:14(g/mL)的料液比混合。向混合液中同时加入纤维素酶和碱性蛋白酶，两种酶的添加总量为残渣Ⅱ质量的3.0％，配比为碱性蛋白酶:纤维素酶＝1:3(w/w)，然后在45℃下搅拌提取4.0h，得到酶解液。
S4.灭酶：将酶解液在90℃下进行灭酶处理30min后，以4000r/min转速离心分离得到水解液和残渣。
S5.粗蛋白回收：将步骤S2的上清液与S4中的水解液合并后经过微滤膜得到浓缩液；然后用0.05mol/L的盐酸调节浓缩液的PH至4.5，过滤得到蛋白质沉淀；将蛋白质沉淀经冷冻干燥后得辣木籽粗蛋白，称量其质量，并测定其吸水性、吸油性、乳化性以及起泡性。
本实施例中，粗蛋白回收率达86.36％，其吸水性、吸油性、乳化性、起泡性分别为2.62mL/g、2.68mL/g、72.91％、69.28％。
实施例10油脂和粗蛋白制备
S1.提取辣木籽油；将辣木籽脱壳粉碎采用亚临界流体萃取法进行油脂提取，得辣木籽油和残渣Ⅰ；萃取剂为丙烷，料液比为1:2(g/mL)，萃取温度为30℃，萃取时间40min，萃取次数2次；
S2.超声波处理：取经亚临界流体脱脂后的辣木籽残渣，按照1:13(g/mL)的料液比加入pH为10.5的氢氧化钠溶液，然后在500W、55℃下超声25min。
S3.酶解：超声波处理后，将混合物进行离心分离，得到上清液和残渣。将残渣与水按照1:17(g/mL)的料液比混合。向混合液中同时加入纤维素酶和碱性蛋白酶，两种酶的添加总量为残渣Ⅱ质量的0.8％，配比为碱性蛋白酶:纤维素酶＝1:1(w/w)，然后在45℃下搅拌提取3.5.0h，得到酶解液。
S4.灭酶：将酶解液在90℃下进行灭酶处理30min后，以4000r/min转速离心分离得到水解液和残渣。
S5.粗蛋白回收：将步骤S2的上清液与S4中的水解液合并后经过反渗透浓缩得到浓缩液；然后用0.05mol/L的盐酸调节浓缩液的pH至4.2，过滤得到蛋白质沉淀；将蛋白质沉淀经真空干燥后得辣木籽粗蛋白，称量其质量，并测定其吸水性、吸油性、乳化性以及起泡性。
本实施例中，粗蛋白回收率达85.36％，其吸水性、吸油性、乳化性、起泡性分别为2.93mL/g、2.83mL/g、75.71％、70.28％。
实施例11油脂和粗糖苷制备
将实施例1至10任一例经步骤S1制备得到辣木籽油，然后将步骤S5过滤得到的滤液加水稀释10倍制得吸附液，取3倍树脂床体积的吸附液，以1.0BV/h的流速通过HPD-T01大孔吸附树脂柱(径高比为1:7)进行吸附。吸附完成后用5BV的水冲洗大孔吸附树脂柱，将水洗脱液弃去；然后用5BV的50％的乙醇以1.0BV/h流速解析大孔吸附树脂柱，收集解析液；解析液经旋转蒸发浓缩后于40℃烘箱中进行干燥，得到辣木籽粗糖苷，称量其质量，检测其纯度。
实施例12油脂和粗糖苷制备
将实施例1至10任一例经步骤S1制备得到辣木籽油，然后将步骤S5过滤得到的滤液加水稀释10倍制得吸附液，取5倍树脂床体积的吸附液，以2.0BV/h的流速通过HZ818大孔吸附树脂柱(径高比为1:8)进行吸附。吸附完成后用10BV的水冲洗大孔吸附树脂柱，将水洗脱液弃去；然后用10BV的60％的乙醇以1.5BV/h流速解析大孔吸附树脂柱，收集解析液；解析液经旋转蒸发浓缩后于40℃烘箱中进行干燥，得到辣木籽粗糖苷，称量其质量，检测其纯度。
实施例13油脂和粗糖苷制备
将实施例1至10任一例经步骤S1制备得到辣木籽油，然后将步骤S5过滤得到的滤液加水稀释10倍制得吸附液，以3.0BV/h的流速通过RS-8大孔吸附树脂柱(径高比为1:9)进行吸附。吸附完成后用15BV的水冲洗大孔吸附树脂柱，将水洗脱液弃去；然后用15BV的70％的乙醇以5.0BV/h流速解析大孔吸附树脂柱，收集解析液；解析液经旋转蒸发浓缩后于40℃烘箱中进行干燥，得到辣木籽粗糖苷，称量其质量，检测其纯度。
实施例14油脂和粗糖苷制备
将实施例1至10任一例经步骤S1制备得到辣木籽油，然后将步骤S5过滤得到的滤液加水稀释10倍制得吸附液，以4.0BV/h的流速通过AB-8大孔吸附树脂柱(径高比为1:10)进行吸附。吸附完成后用20BV的水冲洗大孔吸附树脂柱，将水洗脱液弃去；然后用18BV的80％的乙醇以3.5BV/h流速解析大孔吸附树脂柱，收集解析液；解析液经旋转蒸发浓缩后于40℃烘箱中进行干燥，得到辣木籽粗糖苷，称量其质量，检测其纯度。
实施例15油脂和粗糖苷制备
将实施例1至10任一例经步骤S1制备得到辣木籽油，然后将步骤S5过滤得到的滤液加水稀释10倍制得吸附液，以4.0BV/h的流速通过M-35大孔吸附树脂柱(径高比为1:10)进行吸附。吸附完成后用16BV的水冲洗大孔吸附树脂柱，将水洗脱液弃去；然后用20BV的90％的乙醇以2.4BV/h流速解析大孔吸附树脂柱，收集解析液；解析液经旋转蒸发浓缩后于40℃烘箱中进行干燥，得到辣木籽粗糖苷，称量其质量，检测其纯度。
实施例11至实施15所制得的糖苷，糖苷回收率为81.39％～85.90％；将所得粗糖苷配成0.2g/L的溶液，采用HPLC测定其中糖苷的含量，计算所得粗糖苷的纯度为68.62％～77.72％。
实施例16油脂、蛋白和粗糖苷的同时制备
S1.提取辣木籽油；将辣木籽脱壳粉碎采用亚临界流体萃取法进行油脂提取，得辣木籽油和残渣Ⅰ；萃取剂为丁烷，料液比为1:4(g/mL)，萃取温度为35℃，萃取时间30min，萃取次数3次。
S2.超声波处理：取经溶剂提取辣木籽油后的残渣，按照1:15(g/mL)的料液比加入pH为10.0的氢氧化钠溶液，然后在500W、75℃下超声15min。
S3.酶解：超声波处理后，将混合物进行离心分离，得到上清液和残渣。将残渣与水按照1:15(g/mL)的料液比混合。向混合液中先加入碱性蛋白酶，酶解1.5h后再加入纤维素酶，两种酶的添加总量为残渣Ⅱ质量的1.0％，配比为碱性蛋白酶:纤维素酶＝1:2(w/w)，然后在50℃下搅拌提取6.0h，得到酶解液。
S4.灭酶：将酶解液在90℃下进行灭酶处理8min后，以4000r/min转速离心分离得到水解液和残渣。
S5.粗蛋白回收：将步骤S2的上清液与S4中的水解液合并后通过截留分子量MWCO300Dalton的纳滤膜，得到浓缩液；然后用0.05mol/L的盐酸调节浓缩液的pH至4.0，过滤分别得到滤液和沉淀；将沉淀经冷冻干燥得辣木籽粗蛋白，称量其质量，并测定其吸水性、吸油性、乳化性以及起泡性。
本实施例中，粗蛋白回收率达95.26％，其吸水性、吸油性、乳化性、起泡性分别为3.21mL/g、3.12mL/g、73.11％、69.28％。
将步骤S5得到的滤液加水稀释10倍制得吸附液，以4.0BV/h的流速通过M-35大孔吸附树脂柱(径高比为1:10)进行吸附。吸附完成后用16BV的水冲洗大孔吸附树脂柱，将水洗脱液弃去；然后用20BV的90％的乙醇以2.4BV/h流速解析大孔吸附树脂柱，收集解析液；解析液经旋转蒸发浓缩后于40℃烘箱中进行干燥，得到辣木籽粗糖苷，称量其质量。本实施例中，糖苷回收率为83.75％；将所得粗糖苷配成0.2g/L的溶液，采用HPLC测定其中糖苷的含量，计算所得粗糖苷的纯度为68.62％。
实施例17油脂、蛋白和粗糖苷的同时制备
S1.提取辣木籽油；将辣木籽脱壳粉碎采用亚临界流体萃取法进行油脂提取，得辣木籽油和残渣Ⅰ；萃取剂为丁烷，料液比为1:4(g/mL)，萃取温度为35℃，萃取时间30min，萃取次数3次。
S2.超声波处理：取经溶剂提取辣木籽油后的残渣，按照1:15(g/mL)的料液比加入pH为10.0的氢氧化钠溶液，然后在500W、75℃下超声15min。
S3.酶解：超声波处理后，将混合物进行离心分离，得到上清液和残渣。将残渣与水按照1:15(g/mL)的料液比混合。向混合液中先加入碱性蛋白酶，酶解1.5h后再加入纤维素酶，两种酶的添加总量为残渣Ⅱ质量的1.0％，配比为碱性蛋白酶:纤维素酶＝1:2(w/w)，然后在50℃下搅拌提取6.0h，得到酶解液。
S4.灭酶：将酶解液在90℃下进行灭酶处理8min后，以4000r/min转速离心分离得到水解液和残渣。
S5.粗蛋白回收：将步骤S2的上清液与S4中的水解液合并后通过截留分子量MWCO300Dalton的纳滤膜，得到浓缩液；然后用0.05mol/L的盐酸调节浓缩液的pH至4.0，过滤分别得到滤液和沉淀；将沉淀经冷冻干燥得辣木籽粗蛋白，称量其质量，并测定其吸水性、吸油性、乳化性以及起泡性。
本实施例中，粗蛋白回收率达95.26％，其吸水性、吸油性、乳化性、起泡性分别为3.21mL/g、3.12mL/g、73.11％、69.28％。
将步骤S5得到的滤液加水稀释10倍制得吸附液，取5倍树脂床体积的吸附液，以2.0BV/h的流速通过HZ818大孔吸附树脂柱(径高比为1:8)进行吸附。吸附完成后用10BV的水冲洗大孔吸附树脂柱，将水洗脱液弃去；然后用10BV的60％的乙醇以1.5BV/h流速解析大孔吸附树脂柱，收集解析液；解析液经旋转蒸发浓缩后于40℃烘箱中进行干燥，得到辣木籽粗糖苷，称量其质量。
本实施例中，糖苷回收率为81.39％；将所得粗糖苷配成0.2g/L的溶液，采用HPLC测定其中糖苷的含量，计算所得粗糖苷的纯度为75.67％。
实施例18油脂、蛋白和粗糖苷的同时制备
S1.提取辣木籽油；将辣木籽脱壳粉碎采用亚临界流体萃取法进行油脂提取，得辣木籽油和残渣Ⅰ；萃取剂为丁烷，料液比为1:4(g/mL)，萃取温度为35℃，萃取时间30min，萃取次数3次；
S2.超声波处理：取经溶剂提取辣木籽油后的残渣，按照1:15(g/mL)的料液比加入pH为10.0的氢氧化钠溶液，然后在500W、75℃下超声15min。
S3.酶解：超声波处理后，将混合物进行离心分离，得到上清液和残渣。将残渣与水按照1:15(g/mL)的料液比混合。向混合液中先加入碱性蛋白酶，酶解1.5h后再加入纤维素酶，两种酶的添加总量为残渣Ⅱ质量的1.0％，配比为碱性蛋白酶:纤维素酶＝1:2(w/w)，然后在50℃下搅拌提取6.0h，得到酶解液。
S4.灭酶：将酶解液在90℃下进行灭酶处理8min后，以4000r/min转速离心分离得到水解液和残渣。
S5.粗蛋白回收：将步骤S2的上清液与S4中的水解液合并后通过截留分子量MWCO300Dalton的纳滤膜，得到浓缩液；然后用0.05mol/L的盐酸调节浓缩液的pH至4.0，过滤分别得到滤液和沉淀；将沉淀经冷冻干燥得辣木籽粗蛋白，称量其质量，并测定其吸水性、吸油性、乳化性以及起泡性。
本实施例中，粗蛋白回收率达95.26％，其吸水性、吸油性、乳化性、起泡性分别为3.21mL/g、3.12mL/g、73.11％、69.28％。
将步骤S5得到的滤液加水稀释10倍制得吸附液，取7倍树脂床体积的吸附液，以3.0BV/h的流速通过RS-8大孔吸附树脂柱(径高比为1:9)进行吸附。吸附完成后用15BV的水冲洗大孔吸附树脂柱，将水洗脱液弃去；然后用15BV的70％的乙醇以5.0BV/h流速解析大孔吸附树脂柱，收集解析液；解析液经旋转蒸发浓缩后于40℃烘箱中进行干燥，得到辣木籽粗糖苷，称量其质量。
本实施例中，糖苷回收率为85.48％；将所得粗糖苷配成0.2g/L的溶液，采用HPLC测定其中糖苷的含量，计算所得粗糖苷的纯度为77.72％。
实施例19油脂、蛋白和粗糖苷的同时制备
S1.提取辣木籽油；参照常规进行水酶法提取，得到油脂和残渣Ⅰ。
S2.超声波处理：取经水酶法提取辣木籽油后的残渣，按照1:20(g/mL)的料液比加入pH为11.0的氢氧化钠溶液，然后在600W、45℃下超声30min。
S3.酶解：超声波处理后，将混合物进行离心分离，得到上清液和残渣。将残渣与水按照1:18(g/mL)的料液比混合。向混合液中先加入纤维素酶，酶解1.5h后再加入碱性蛋白酶，两种酶的添加总量为残渣Ⅱ质量的1.5％，配比为碱性蛋白酶:纤维素酶＝1:2(w/w)，然后在80℃下搅拌提取2.5h，得到酶解液。
S4.灭酶：将酶解液在85℃下进行灭酶处理20min后，以4000r/min转速离心分离得到水解液和残渣。
S5.粗蛋白回收：将步骤S2的上清液与S4中的水解液合并后通过截留分子量MWCO600Dalton的纳滤膜，得到浓缩液；然后用0.05mol/L的盐酸调节浓缩液的PH至4.5，过滤得到蛋白质沉淀；将蛋白质沉淀经真空干燥得辣木籽粗蛋白，称量其质量，并测定其吸水性、吸油性、乳化性以及起泡性。
本实施例中，粗蛋白回收率达93.27％，其吸水性、吸油性、乳化性、起泡性分别为2.77mL/g、2.81mL/g、78.92％、70.78％。
将步骤S5得到的滤液加水稀释10倍制得吸附液，取10倍树脂床体积的吸附液，以4.0BV/h的流速通过AB-8大孔吸附树脂柱(径高比为1:10)进行吸附。吸附完成后用20BV的水冲洗大孔吸附树脂柱，将水洗脱液弃去；然后用18BV的80％的乙醇以3.5BV/h流速解析大孔吸附树脂柱，收集解析液；解析液经旋转蒸发浓缩后于40℃烘箱中进行干燥，得到辣木籽粗糖苷，称量其质量。
本实施例中，糖苷回收率为82.75％；将所得粗糖苷配成0.2g/L的溶液，采用HPLC测定其中糖苷的含量，计算所得粗糖苷的纯度为76.72％。
实施例20油脂、蛋白和粗糖苷的同时制备
S1.提取辣木籽油；参照常规进行水酶法提取，得到油脂和残渣Ⅰ。
S2.超声波处理：取经水酶法提取辣木籽油后的残渣，按照1:20(g/mL)的料液比加入pH为11.0的氢氧化钠溶液，然后在600W、45℃下超声30min。
S3.酶解：超声波处理后，将混合物进行离心分离，得到上清液和残渣。将残渣与水按照1:18(g/mL)的料液比混合。向混合液中先加入纤维素酶，酶解1.5h后再加入碱性蛋白酶，两种酶的添加总量为残渣Ⅱ质量的1.5％，配比为碱性蛋白酶:纤维素酶＝1:2(w/w)，然后在80℃下搅拌提取2.5h，得到酶解液。
S4.灭酶：将酶解液在85℃下进行灭酶处理20min后，以4000r/min转速离心分离得到水解液和残渣。
S5.粗蛋白回收：将步骤S2的上清液与S4中的水解液合并后通过截留分子量MWCO600Dalton的纳滤膜，得到浓缩液；然后用0.05mol/L的盐酸调节浓缩液的pH至4.5，过滤得到蛋白质沉淀；将蛋白质沉淀经真空干燥得辣木籽粗蛋白，称量其质量，并测定其吸水性、吸油性、乳化性以及起泡性。
本实施例中，粗蛋白回收率达93.27％，其吸水性、吸油性、乳化性、起泡性分别为2.77mL/g、2.81mL/g、78.92％、70.78％。
将步骤S5得到的滤液加水稀释10倍制得吸附液，取10倍树脂床体积的吸附液，以4.0BV/h的流速通过M-35大孔吸附树脂柱(径高比为1:10)进行吸附。吸附完成后用16BV的水冲洗大孔吸附树脂柱，将水洗脱液弃去；然后用20BV的90％的乙醇以2.4BV/h流速解析大孔吸附树脂柱，收集解析液；解析液经旋转蒸发浓缩后于40℃烘箱中进行干燥，得到辣木籽粗糖苷，称量其质量。
本实施例中，糖苷回收率为83.75％；将所得粗糖苷配成0.2g/L的溶液，采用HPLC测定其中糖苷的含量，计算所得粗糖苷的纯度为68.62％。
实施例21本发明优选工艺条件的验证试验
1.亚临界流体萃取最佳工艺条件的确定
为证实本发明优选工艺的优越性，本实施例通过正交试验进行验证。单因素试验结果见附图2至附图5所示。从单因素试验结果可以看出，采用亚临界流体萃取时，提取温度(℃)、提取时间(min)、料液比(g/mL)、提取次数4个因素对油脂提取率影响较显著。在此基础上，进行4因素3水平正交试验，优化提取工艺条件，优化试验结果如表1所示。
表1正交试验结果
综合考虑设备利用率、生产周期、提取效果等因素，亚临界流体萃取辣木籽油的较佳工艺条件为：提取次数3次，每次提取30min，提取温度35℃，料液比(g/mL)1:4。
表2不同提取方法对辣木籽油提取率的影响
2.超声波辅助提取工艺条件的确定
为证实本发明工艺的优越性，本实施例通过正交试验进行验证。单因素试验结果见附图6至附图9所示，从单因素试验结果可以看出，采用超声波辅助提取时，超声波功率、超声温度和提取时间3个因素对蛋白、糖苷回收率的影响较显著。在此基础上，进行4因素3水平正交试验，优化提取工艺条件，优化试验结果如表3所示。
表3正交试验结果
对表3的数据进行极差分析，可以优化得到超声波辅助提取蛋白的最佳工艺条件为：超声波功率300W，超声温度50℃，超声时间50min；超声波辅助提取糖苷的最佳工艺条件为：超声波功率500W，超声温度60℃，超声时间40min。
综合考虑蛋白质和糖苷的提取效果，结合其它因素的单因素实验结果，得出超声波辅助提取的最优条件为：超声频率25kHz，超声波功率300～500W，超声温度为50～60℃，提取时间为40～50min。
3.酶法提取工艺条件的确定
为证实本发明工艺的优越性，本实施例通过正交试验进行验证。单因素试验结果见附图10至17所示，从单因素试验结果可以看出，采用超声波辅助水酶法提取时，复合酶(碱性蛋白酶和纤维素酶)添加量、酶解温度和酶解时间3个因素对辣木籽油得率的影响较显著。在此基础上，进行3因素3水平正交试验，优化酶法提取工艺条件，优化试验结果如表4所示。
表4酶法提取条件优化试验结果
对表4的数据进行极差分析，可以优化得到酶法提取蛋白的最佳工艺条件为：复合酶添加量1.0％，酶解温度55℃，酶解时间3h；提取糖苷的最佳工艺条件为：复合酶添加量1.5％，酶解温度65℃，酶解时间4h。
综合考虑蛋白和糖苷的提取效果，结合其它单因素实验结果，得出酶法提取的最优条件为：碱性蛋白酶和纤维素酶按照1:2进行复配，先加入碱性蛋白酶，在55～65℃下反应1.0～2.0h后再加纤维素酶，继续反应2.0～3.0h，复合酶添加量1.0％～1.5％。
4.不同干燥方式对蛋白质功能性质的影响试验
试验结果见表5所示：
表5不同干燥方式对蛋白质功能性质的影响

Claims (10)

1.一种同时提取辣木籽中油脂和蛋白和/或糖苷的方法，其特征在于，包括以下步骤：
S1.提取辣木籽油：将辣木籽脱壳粉碎进行油脂提取，得辣木籽油和残渣Ⅰ；
S2.超声波处理：取残渣Ⅰ，以g/mL计，按照1:5～1:20的料液比加入pH为8.0～12.0的稀碱溶液，进行超声波处理；
S3.酶解：超声波处理后，将混合物进行离心分离，得到上清液和残渣Ⅱ；以g/mL计，将残渣Ⅱ与水按照1:8～1:18的料液比混合，向混合液中加入酶，酶的添加量为辣木籽粉质量的0.1％～3.0％，然后在30～80℃下酶解提取2.0～6.0h，得到酶解液；
S4.灭酶：将酶解液在80～95℃下进行灭酶处理5～30min后，离心分离得到水解液和残渣Ⅲ；
S5.回收蛋白和/或糖苷。
2.根据权利要求1所述同时提取辣木籽中油脂和蛋白和/或糖苷的方法，其特征在于，步骤S1所述提取采用的方法包括压榨法、溶剂浸提法、水酶法、超声波辅助法、微波辅助法、水剂法、超临界CO2萃取法或亚临界流体萃取法。
3.根据权利要求2所述同时提取辣木籽中油脂和蛋白和/或糖苷的方法，其特征在于，步骤S1所述提取采用采用亚临界流体萃取法或者超临界CO2萃取法；所述亚临界流体萃取法，萃取压力为0.3～0.6MPa，萃取剂优选为丁烷或丙烷；料液比以g/mL计，为1:2～1:5；萃取温度为30～50℃；萃取时间为20～40min；萃取次数为1～5次；
或者，所述超临界CO2萃取法优选萃取压力20～35MPa；萃取温度为30～50℃；萃取时间为1.5～3.5h；CO2流量为6～12L/h；解析压力和温度分别为6～10MPa和40～60℃；每次投料量为萃取釡容量的50％～80％。
4.根据权利要求1所述同时提取辣木籽中油脂和蛋白和/或糖苷的方法，其特征在于，步骤S2所述的超声波处理条件为：超声频率25～40kHz，功率100～700W，作用温度30～75℃，处理时间10～60min。
5.根据权利要求1所述同时提取辣木籽中油脂和蛋白和/或糖苷的方法，其特征在于，步骤S3所述加入酶是加入单一酶或或按照一定顺序加入不同配比的复合酶；优选所述的一定顺序是指先加入一种酶，反应0.5～2.5h后加入另一种酶，以此类推；或者同时加入多种酶；
优选的，步骤S3所述的酶包括蛋白酶、果胶酶、纤维素酶中的一种或者多种；所述蛋白酶包括酸性蛋白酶、中性蛋白酶或碱性蛋白酶中的一种。
6.根据权利要求5所述同时提取辣木籽中油脂和蛋白和/或糖苷的方法，其特征在于，所述碱性蛋白酶和纤维素酶的加入顺序为先加碱性蛋白酶，反应1.0～2.0h后再加纤维素酶，继续反应2.0～3.0h；优选所述碱性蛋白酶和纤维素酶的配比为3:1～1:3，总的用量为残渣Ⅱ质量的1.0％～1.5％。
7.根据权利要求1所述同时提取辣木籽中油脂和蛋白和/或糖苷的方法，其特征在于，步骤S3所述酶解提取的温度为55～65℃。
8.根据权利要求1所述同时提取辣木籽中油脂和蛋白和/或糖苷的方法，其特征在于，步骤S5所述回收糖苷和蛋白的方法是：将步骤S3所得的上清液与步骤S4所得的水解液合并后通过膜分离浓缩，得到浓缩液；然后用稀酸调节浓缩液的pH至4.0～5.0，沉淀蛋白，过滤得到溶液和沉淀物；
将沉淀物干燥得到粗蛋白；
将过滤得到的溶液经分离纯化，减压浓缩，干燥，即得糖苷粗制品。
优选的，步骤S5所述的膜分离为超滤、纳滤、微滤或反渗透；进一步优选采用纳滤。
9.根据权利要求1或8所述同时提取辣木籽中油脂和蛋白和/或糖苷的方法，其特征在于，步骤S5所述干燥的干燥方式为热风干燥、微波干燥、真空干燥、冷冻干燥或喷雾干燥；
优选所述喷雾干燥的工艺条件为进口温度为170～200℃，风量为90～120m3/h，出口温度为80～100℃；
步骤S5所述的分离纯化是采用大孔树脂进行分离纯化；所述大孔吸附树脂为HPD-T01、HPD-M、HPD-M、HZ818、RS-8、AB-8、AD-8、ADS-7、CD-8、M-35或PYR；
优选步骤S5中所述大孔树脂分离纯化的条件为：大孔吸附树脂柱径高比为1:7～1:15，吸附液体积为3～10BV，吸附液的流速为1～5BV/h；解析液为体积分数30％～90％的乙醇溶液，体积为5～20BV，流速为1～5BV/h。
10.权利要求1至9任一项所述方法提取得到的辣木籽油脂和蛋白和/或糖苷。
CN201610651994.2A 2016-08-10 2016-08-10 一种同时提取辣木籽中油脂和蛋白和/或糖苷的方法 Pending CN106282282A (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201610651994.2A CN106282282A (zh) 2016-08-10 2016-08-10 一种同时提取辣木籽中油脂和蛋白和/或糖苷的方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201610651994.2A CN106282282A (zh) 2016-08-10 2016-08-10 一种同时提取辣木籽中油脂和蛋白和/或糖苷的方法

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN106282282A true CN106282282A (zh) 2017-01-04

Family

ID=57668001

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201610651994.2A Pending CN106282282A (zh) 2016-08-10 2016-08-10 一种同时提取辣木籽中油脂和蛋白和/或糖苷的方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN106282282A (zh)

Cited By (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN106800586A (zh) * 2017-01-22 2017-06-06 嵊州市派特普科技开发有限公司 一种辣木蛋白质高效提取的方法
CN106987611A (zh) * 2017-02-14 2017-07-28 广西肽王生物科技有限公司 一种微波辅助与膜过滤制备辣木叶蛋白多肽的方法
CN107012190A (zh) * 2017-02-14 2017-08-04 广西肽王生物科技有限公司 一种辣木籽蛋白多肽制备方法
CN107058438A (zh) * 2017-05-16 2017-08-18 华南理工大学 一种从辣木籽中提取辣木籽蛋白肽的方法
CN107541332A (zh) * 2017-09-25 2018-01-05 华南理工大学 一种辣木油及其制备方法
CN109181844A (zh) * 2018-09-14 2019-01-11 许昌鑫瑞德化工科技有限公司 一种改性动植物油提取方法
CN109329555A (zh) * 2018-11-15 2019-02-15 中国林业科学研究院资源昆虫研究所 一种辣木种子粗蛋白及蛋白粉的分离制取方法
CN109608514A (zh) * 2018-11-29 2019-04-12 河北中科汉禧生物科技有限公司 从蔓菁中提取蛋白质和多糖的方法
CN110856518A (zh) * 2018-08-22 2020-03-03 丁晓 一种综合处理辣木籽的工艺方法及其产品和应用
CN114231581A (zh) * 2021-10-28 2022-03-25 南京南域健康产业科技研究院有限公司 一种具有抑菌活性的蛋白质多肽类物质的制备方法

Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1443042A (zh) * 2000-05-15 2003-09-17 萨斯碦彻温大学科技公司 含油种子饼粉的分离与加工
CN101508729A (zh) * 2009-03-19 2009-08-19 中国林业科学研究院资源昆虫研究所 一种从辣木种子中提取辣木蛋白质的方法
CN101573129A (zh) * 2006-12-28 2009-11-04 科学发展实验室 用于皮肤病学用途的包含昆诺阿藜谷物提取物的组合物
CN105154504A (zh) * 2015-08-23 2015-12-16 任晓洁 从辣木中提取一种胶原蛋白肽的制备方法
CN105238831A (zh) * 2015-11-06 2016-01-13 潘爱国 一种从辣木子中提取的辣木子小分子肽及其提取方法
CN105623842A (zh) * 2015-12-23 2016-06-01 天津大学 亚临界萃取辣木籽油的方法及其甘油三酯位置分布测定的方法

Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1443042A (zh) * 2000-05-15 2003-09-17 萨斯碦彻温大学科技公司 含油种子饼粉的分离与加工
CN101573129A (zh) * 2006-12-28 2009-11-04 科学发展实验室 用于皮肤病学用途的包含昆诺阿藜谷物提取物的组合物
CN101508729A (zh) * 2009-03-19 2009-08-19 中国林业科学研究院资源昆虫研究所 一种从辣木种子中提取辣木蛋白质的方法
CN105154504A (zh) * 2015-08-23 2015-12-16 任晓洁 从辣木中提取一种胶原蛋白肽的制备方法
CN105238831A (zh) * 2015-11-06 2016-01-13 潘爱国 一种从辣木子中提取的辣木子小分子肽及其提取方法
CN105623842A (zh) * 2015-12-23 2016-06-01 天津大学 亚临界萃取辣木籽油的方法及其甘油三酯位置分布测定的方法

Non-Patent Citations (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
刘凤霞等: ""辣木中功能性成分提取及产品开发的研究进展"", 《食品科学》 *
彭志英主编: "《食品生物技术》", 31 August 1999, 北京：中国轻工业 *
曹龙奎主编: "《粮油深加工技术》", 30 June 2007, 哈尔滨：东北林业大学出版社 *
李爱科编: "《中国蛋白质饲料资源》", 31 January 2013, 北京：中国农业大学出版社 *
李翀等: ""辣木籽蛋白对水中浊度的去除研究"", 《华北水利水电大学学报( 自然科学版)》 *
王瑞元: "《现代油脂工业发展》", 31 December 2015, 北京：中国轻工业出版社 *
陈汝财: ""辣木蛋白超声辅助提取试验"", 《福建农业科技》 *
马李一等: ""水酶法提取辣木油的工艺研究"", 《林产化学与工业》 *

Cited By (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN106800586A (zh) * 2017-01-22 2017-06-06 嵊州市派特普科技开发有限公司 一种辣木蛋白质高效提取的方法
CN106987611A (zh) * 2017-02-14 2017-07-28 广西肽王生物科技有限公司 一种微波辅助与膜过滤制备辣木叶蛋白多肽的方法
CN107012190A (zh) * 2017-02-14 2017-08-04 广西肽王生物科技有限公司 一种辣木籽蛋白多肽制备方法
CN107058438A (zh) * 2017-05-16 2017-08-18 华南理工大学 一种从辣木籽中提取辣木籽蛋白肽的方法
CN107058438B (zh) * 2017-05-16 2021-03-30 华南理工大学 一种从辣木籽中提取辣木籽蛋白肽的方法
CN107541332A (zh) * 2017-09-25 2018-01-05 华南理工大学 一种辣木油及其制备方法
CN107541332B (zh) * 2017-09-25 2021-05-14 华南理工大学 一种辣木油及其制备方法
CN110856518A (zh) * 2018-08-22 2020-03-03 丁晓 一种综合处理辣木籽的工艺方法及其产品和应用
CN109181844A (zh) * 2018-09-14 2019-01-11 许昌鑫瑞德化工科技有限公司 一种改性动植物油提取方法
CN109329555A (zh) * 2018-11-15 2019-02-15 中国林业科学研究院资源昆虫研究所 一种辣木种子粗蛋白及蛋白粉的分离制取方法
CN109608514A (zh) * 2018-11-29 2019-04-12 河北中科汉禧生物科技有限公司 从蔓菁中提取蛋白质和多糖的方法
CN114231581A (zh) * 2021-10-28 2022-03-25 南京南域健康产业科技研究院有限公司 一种具有抑菌活性的蛋白质多肽类物质的制备方法

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN106282282A (zh) 一种同时提取辣木籽中油脂和蛋白和/或糖苷的方法
US10743573B2 (en) Method for extracting high-purity mogroside V from Siraitia grosvenorii
CN110684128B (zh) 一种黄精多糖的提取精制方法
CN104086614B (zh) 一种适用于工业生产的罗汉果提取物的制备方法
CN105669800B (zh) 一种从柑橘中联合提取精油、果胶、橙皮苷、辛弗林和柠檬苦素的方法
CN104311676B (zh) 一种从橡籽仁中提取食用淀粉并副产单宁酸的方法
CN102219866B (zh) 一种从灵芝子实体中提取分离灵芝多糖的方法
CN104086425A (zh) 一种同时提取并分离烟草绿原酸、茄尼醇、生物碱、芸香苷的方法
CN104031158B (zh) 一种从海带中提取硫酸酯多糖的工艺
CN105326876A (zh) 一种菊花总黄酮的提取方法
CN105053952B (zh) 一种无苦涩味的陈皮提取物的加工工艺
CN103467617A (zh) 一种连续逆流超声提取高纯度黄芪多糖的方法
CN111187366A (zh) 一种黄精多糖的双水相萃取方法
CN109295121A (zh) 一种酶解法制备淫羊藿苷的方法
CN105175566B (zh) 聚酰胺柱和大孔树脂柱联柱法去除西洋参多糖提取物中蛋白质和色素的方法
CN107098942B (zh) 一种亚临界水萃取萝卜叶中山奈苷的方法
CN104610417B (zh) 一种从山楂中提取熊果酸和齐墩果酸的方法
CN104306428A (zh) 一种从绞股蓝中提取纯化绞股蓝皂苷的方法
CN103224491A (zh) 以水为溶媒提取高纯葛根素的方法
CN109369733B (zh) 一种从苦荞叶中同时提取多种黄酮类化合物的方法
CN112266399B (zh) 一种淫羊藿提取物的高纯度分离提取方法
CN103923050A (zh) 利用芦丁制备槲皮素的方法
CN104119229A (zh) 一种制取纯品绿原酸的工艺
CN105287690A (zh) 一种欧洲越橘提取物及其制备方法
CN101736051B (zh) 美洲帘蛤多糖的制备方法

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
RJ01 Rejection of invention patent application after publication

Application publication date: 20170104

RJ01 Rejection of invention patent application after publication