CN106086203A - 一种小球藻核酸模板的制备方法及其应用 - Google Patents
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Abstract
本申请公开了一种小球藻核酸模板的制备方法及其应用。本申请的小球藻核酸模板制备方法,包括以下步骤,(1)将小球藻藻液在低温下离心,弃上清液;(2)双蒸水对小球藻沉淀重悬、洗涤、低温下离心,重复重悬、洗涤、低温下离心至少一次;(3)双蒸水重悬小球藻沉淀,在95℃~100℃热浴10~30min,即得核酸模板。本申请的小球藻核酸模板制备方法,用少量藻液就可制备出能直接用于PCR的核酸模板,与传统小球藻DNA提取相比,本申请的方法所需藻液量少,所需时间短,仅用双蒸水即可,无需额外试剂,操作简单方便,成本低。本申请为小球藻快速PCR扩增和核酸研究提供了一种简单、高效、稳定,且重复性好的核酸模板制备方法。
Description
技术领域
本申请涉及小球藻核酸研究领域,特别是涉及一种小球藻核酸模板的制备方法及其应用。
背景技术
聚合酶链式反应(缩写PCR),是一种分子生物学技术,其作用是体外酶促进合成特异DNA片段。PCR技术作为扩增目的DNA片段和检测鉴定的手段,广泛运用于生命科学、医学工程、遗传科学、法医鉴定等领域。PCR技术原理类似于DNA的天然复制过程,其特异性依赖于靶序列两端互补的寡核苷酸引物。PCR扩增反应由三个基本反应步骤构成:变性-退火-延伸。而进行PCR的基础是,基因组DNA的提取,以基因组DNA为扩增模板,利用人工设计的靶序列两端互补的寡核苷酸引物,进行特异DNA片段扩增。
小球藻(Chlorella spp.)是一类普生性单细胞绿藻,细胞形态呈球形或广椭圆形,直径3~12μm,无鞭毛。属于绿藻门(Chlorphyta)绿藻纲(Chlorophyceae)绿球藻目(Chlorococcales)卵囊藻科(Oocystaceae)小球藻属(Chlorella)。小球藻具有结构简单、分布广泛、生长迅速、富含油脂和蛋白质等优点,目前已逐渐成为藻类分子生物学和基因工程研究的热点,特别是在污水处理、生物柴油、饲料与食品、药用等方面。
小球藻基因工程研究的基础是基因组DNA提取和靶标序列PCR,但由于小球藻细胞壁的组分和结构较为特殊,细胞壁外层还含有可抑制多糖降解作用的孢粉质(sporopollenin),该结构很大地影响了细胞壁的破碎效果,使得小球藻基因组DNA提取和PCR扩增工序复杂,耗费时间,且效果不佳。
此外,采用试剂盒法提取小球藻基因组DNA时,所需样本量大,一般需要20mL浓度为2.0×107/mL的藻量;样本量小时,往往会发生小球藻基因组DNA提取失败,浪费样本的同时也影响了实验进程。
发明内容
本申请的目的是提供一种新的小球藻核酸模板的制备方法及其应用。
为了实现上述目的,本申请采用了以下技术方案:
本申请的一方面公开了一种小球藻核酸模板的制备方法,包括以下步骤,
(1)将培养的小球藻藻液在低温下离心,弃上清液;
(2)采用双蒸水对小球藻沉淀进行重悬、洗涤、低温下离心,重复双蒸水重悬、洗涤、低温下离心至少一次;
(3)双蒸水清洗后,再采用双蒸水重悬小球藻沉淀,并将重悬的藻液在95℃~100℃热浴10~30min,即获得核酸模板,存放4℃冰箱备用。
其中,步骤(2)中重复双蒸水重悬、洗涤、低温下离心至少一次是指,在进行了一次的双蒸水重悬、洗涤、低温下离心后,再进行至少一次的双蒸水重悬、洗涤、低温下离心,即采用双蒸水洗涤至少两次。
需要说明的是,本申请的小球藻核酸模板制备方法,所制备的核酸模板可以直接用于PCR扩增,但本申请并没有对DNA进行提取,相对于传统的DNA提取后进行PCR扩增而言,本申请的制备方法,第一,采用极其少量的藻液就可以实现PCR扩增,本申请的一种实现方式中,仅采用500μL浓度为2.0×107/mL小球藻藻液,就可以制备出用于PCR扩增的核酸模板,而传统的小球藻DNA提取,至少需要相同浓度的藻液20mL,否则可能导致DNA提取失败;第二,本申请的制备方法,与DNA提取相比,时间更短,更简单易操作,本申请的一种实现方式中制备核酸模板仅仅需要30-40分钟,而传统的DNA提取至少需要2-3小时。
还需要说明的是,相对于传统的原核细胞如大肠杆菌等的菌液PCR而言,本申请的小球藻属于真核生物,并且,如背景技术里面提到的,小球藻特殊的细胞壁结构,使其无法像菌液PCR那样直接采用培养的藻液进行PCR扩增。正是如此,本申请提出了将其藻液在低温下离心、洗涤后,再进行高温处理;经过大量的试验证实,通过这样的方法获得的样品,可以直接用于PCR扩增,从而提出了本申请的核酸模板制备方法。
优选的,核酸模板制备方法的步骤(1)和(2)中的低温下离心的温度为4℃。
可以理解,4℃离心只是实验室中一个比较常规的设定,在不影响核酸模板的情况下,可以在试验允许的范围内适当调整,例如4℃左右2℃,或更多,在此不做具体限定。
优选的,核酸模板制备方法的步骤(3)中,采用双蒸水重悬小球藻沉淀后,在重悬的藻液表面加一滴石蜡油,然后再进行热浴。
本申请的另一面公开了本申请的制备方法所获得的小球藻核酸模板。
可以理解,本申请的制备方法所获得的小球藻核酸模板,其可以直接用于PCR扩增,因此,也可以直接用于其它需要用到核酸模板的小球藻的核酸研究中,因此,本申请的再一面公开了本申请制备的小球藻核酸模板在小球藻PCR或核酸研究中的应用。其中,核酸研究包括但不仅限于DNA测序、基因克隆等。
本申请的再一面公开了一种小球藻快速PCR方法,包括以下步骤,
(1)采用少量的小球藻藻液,在低温下离心,弃上清液;采用双蒸水对小球藻沉淀进行重悬、洗涤、低温下离心,重复双蒸水重悬、洗涤、低温下离心至少一次;双蒸水清洗后,再采用双蒸水重悬小球藻沉淀,并将重悬的藻液在95℃~100℃热浴10~30min,获得小球藻核酸模板,存放4℃冰箱备用;
(2)采用人工设计的引物,对步骤(1)制备的小球藻核酸模板进行PCR扩增。
其中,步骤(1)中“采用少量的小球藻藻液”,其少量是针对于小球藻核酸提取所需要的量而言的,如前面提到的,为了保障小球藻核酸提取成功,通常需要采用浓度为2.0×107/mL的小球藻藻液至少20mL,而本申请的核酸模板制备方法仅需要相同浓度的小球藻藻液500μL即可,所以说“采用少量的小球藻藻液”,至于其具体量可以是浓度为2.0×107/mL的小球藻藻液500μL-2mL,其中经本申请的试验证明500μL是完全可以成功制备核酸模板的,并不排除少于500μL,同样也可以制备出符合使用需求的核酸模板。
可以理解,本申请的小球藻快速PCR方法,实际上就是在本申请的小球藻核酸模板制备方法的基础上提出的,至于PCR扩增所采用的引物,可以是已知的任意的常规PCR、实时荧光PCR等的引物。本申请的一种实现方式中,为了验证本申请的核酸模板,重新设计了PCR引物,这将在后续的方案中详细描述。
需要说明的是,本申请的小球藻快速PCR,是相对于传统的提取小球藻DNA,然后进行PCR而言的。本申请的小球藻快速PCR,其核酸模板制备方法简单,仅采用双蒸水即可,制备时间短,仅30-40分钟即可完成;而传统的DNA提取,不仅需要大量的藻液,而且需要特殊的试剂盒,操作繁琐,DNA提取试剂也相对较长,需要2-3小时。所以,相对而言,本申请提出了小球藻快速PCR。
优选的,本申请的人工设计的引物包括第一组引物和/或第二组引物;第一组引物的上下游引物分别为Seq ID No.1和Seq ID No.2所示序列,第二组引物的上下游引物分别为Seq ID No.3和Seq ID No.4所示序列;
Seq ID No.1:5’-ACTTGGACGACTGTATGGACTG-3’
Seq ID No.2:5’-AATACCGTGAGGAGGACCTTG-3’
Seq ID No.3:5’-AATAAGCATCGGCTAACTCTGTG-3’
Seq ID No.4:5’-CCCTCTGCCCCTACCAAAC-3’。
由于采用以上技术方案,本申请的有益效果在于:
本申请的小球藻核酸模板制备方法,采用少量的藻液就可以制备出能直接用于PCR的核酸模板,与传统的小球藻DNA提取方式相比,本申请的制备方法所需藻液量少,并且,所需时间短,仅仅采用双蒸水即可,无需额外的试剂,操作简单方便,成本低。本申请为小球藻快速PCR扩增和核酸研究提供了一种简单、高效、稳定,且重复性好的核酸模板制备方法,提高了相关研究的工作效率,节约研究成本。
附图说明
图1是本申请实施例中制备的小球藻核酸模板的琼脂糖凝胶电泳图;
图2是本申请实施例中采用制备的小球藻核酸模板进行PCR扩增的琼脂糖凝胶电泳图;
图3是本申请另一实施例中采用制备的小球藻核酸模板进行PCR扩增的琼脂糖凝胶电泳图;
图4是本申请另一实施例中采用制备的小球藻核酸模板进行PCR扩增的琼脂糖凝胶电泳图。
具体实施方式
现有技术中,小球藻DNA研究的基础就是DNA提取,但是,DNA提取不仅操作繁琐、复杂;而且还需要大量的小球藻藻液,研究显示,至少需要约20mL浓度为2.0×107/mL的藻液,否则很可能会导致DNA提取失败,DNA提取失败不仅造成资源的极大浪费,也耽误时间,影响科研进度。正是基于这样的研究背景,本申请的发明人提出,可否像菌液PCR那样,直接采用藻液进行PCR扩增的设想;但是,研究证实,小球藻特殊的细胞壁结构,使得该设想无法实现。基于这样的认识,本申请的发明人尝试了多种藻液处理方法,最终提出了,采用少量藻液在低温下离心,双蒸水洗涤后,重悬,在高温下热浴10~30min,由此获得的样品,可以直接用于PCR扩增,从而提出了本申请的核酸模板制备方法。
通过本申请的核酸模板制备方法,可以避免提取DNA,从而避免了因DNA提取失败而带来的风险。并且,本申请的制备方法,相对于DNA提取而言,所需藻液量小,仅500μL浓度为2.0×107/mL小球藻藻液即可,处理时间也较DNA提取短。本申请的核酸模板制备方法,为小球藻快速PCR扩增奠定了基础;同时也为其它基于核酸模板的研究提供了一种行之有效的方法。
下面通过具体实施例和附图对本申请作进一步详细说明。以下实施例仅对本申请进行进一步说明,不应理解为对本申请的限制。
实施例一
一、小球藻核酸模板的制备
本例采用培养的浓度为2.0×107/mL的小球藻藻液进行研究,同时制备了三个重复样本的小球藻核酸模板。本例的小球藻核酸模板制备方法,具体包括如下步骤:
1)离心机4℃预冷;
2)取3个1.5mL离心管,用于三个重复实验,各吸取500μL小球藻藻液,在4℃转速1394g离心5min,弃上清;
3)各离心管中加入1mL ddH2O,重悬,4℃1394g离心5min,弃上清;
4)重复步骤3)操作1次;
5)向各离心管的小球藻沉淀中,加入100μL ddH2O重悬,重悬的藻液转移至PCR管中,每个PCR管中加一滴石蜡油,防止加热过程中液体挥发;
6)将小球藻悬浮液置于PCR扩增仪或水浴锅中100℃热浴15min;
7)100℃热浴结束,取出PCR管,即获得本例的小球藻核酸模板,标记为CK藻液,置4℃冰箱中待用。
同时,本例按照传统的方法提取了小球藻DNA,用以对照。本例采用了20mL培养的浓度为2.0×107/mL的小球藻藻液进行DNA提取,DNA提取按照QIAGEN公司的DNeasy PlantMini Kit试剂盒操作说明书进行。提取后的基因组DNA(缩写gDNA)取1μL用NanoDrop-2000(Thermo SCIENIFIC)检测DNA浓度。结果显示,本例提取的gDNA浓度为17.9ng/μL。
取5μL提取的gDNA,用1%琼脂糖凝胶电泳检测DNA完整性。凝胶电泳结果如图1所示,图中第一泳道为空白、第二泳道为λDNA/Hind III、第三和第四泳道为对照、第五泳道为本例提取的其中一个核酸模板样品的电泳条带、第六泳道为DL2000、第七泳道为空白。其中λDNA/Hind III的电泳条带中,由上到下依序为23130bp、9416bp、6557bp、4361bp、2322bp、2027bp;DL2000的电泳条带中,由上到下依序为2000bp、1000bp、750bp、500bp、250bp和100bp。图1的结果显示,本例提取的核酸模板样品,在23K处有一明显条带,与预期相符;该条带有一些拖尾,从拖尾情况看表示样品有轻微降解,但不影响作为PCR模板等使用。
二、引物设计和合成
本例以小球藻基因组RbcL基因为靶标序列设计引物,引物设计采用软件PrimerPremier 5,设计好的引物交由上海Invitrogen公司合成。本例设计的RbcL基因扩增上下游引物分别如Seq ID No.1和Seq ID No.2所示序列。
Seq ID No.1:5’-ACTTGGACGACTGTATGGACTG-3’
Seq ID No.2:5’-AATACCGTGAGGAGGACCTTG-3’。
本例设计的引物扩增的片段理论上为273bp。
三、PCR扩增
采用本例设计的引物,对本例制备的三个小球藻核酸模板进行扩增,以验证本例的小球藻核酸模板是否可以直接进行PCR,同时,以提取的gDNA作为参考。具体的,设计3个CK藻液、3个gDNA重复和3个水空白对照,共计9个PCR反应。
本例的PCR反应体系为:10mmol/L上游引物0.5μL、10mmol/L下游引物0.5μL、2×Taq PCR Mastermix 5μL、扩增模板2μL,补充水至10μL。其中扩增模板即CK藻液或gDNA或水。
本例的PCR反应条件为,95℃预变性5min,然后进入35个循环:94℃变性30s、62℃退火30s、72℃延伸1min,循环结束后,72℃延伸5min,然后4℃待机。
PCR扩增产物采用1.5%的琼脂糖凝胶电泳检测,电泳时间约为0.5h。
琼脂糖凝胶液:用天平称取1.5g琼脂糖,置于干净的三角瓶中,加入100mL1×TAE缓冲液,在微波炉中加热1min,使之彻底融化。之后按照1:100000比例加入SYBR Safe DNAGel stain染料,即100mL凝胶液中加1μL染料,充分混匀。
凝胶板制备:将电泳装置所配备的塑料胶托放置在胶槽中,注意胶托的放置位置,在胶托的标有黑色条带的一端插上样品梳。将上述琼脂糖溶液放在室温下,或将三角瓶在冷水中浸泡待温度下降至60℃时,将琼脂糖溶液倒在胶托上,室温放置30min左右。待琼脂糖彻底凝固后,轻轻拔出样品梳。
加样:将凝胶连同胶托一起放到电泳槽中,加入1×TAE缓冲液,使缓冲液淹过凝胶表面约1mm。用移液器吸取5μL PCR扩增产物,按上样缓冲液:PCR扩增产物=1:5的体积比例,将两者混匀,混匀后小心地将混合液加到凝胶的加样孔中。并在其中一个加样孔中加入DNA Ladder,本例采用的是50bp ladder。
加样完成后,电泳约0.5h,当指标剂泳动到距凝胶前沿约1.5cm的位置上,停止电泳。
采用凝聚成像系统观察电泳情况,结果如图2所示,图中,泳道1-3为gDNA的泳道为三个gDNA平行试验的PCR产物电泳结果,泳道4-6为三个水空白平行试验的PCR产物电泳结果,第7泳道为50bp ladder,泳道8-10为三个CK藻液的PCR产物电泳结果;其中50bp ladder由上到下的条带分别代表500bp、400bp、350bp、300bp、250bp、200bp、150bp、100bp、50bp。由图2的结果可见,三个水空白对照都没有条带,证明PCR扩增结果是没问题的;而三个gDNA和三个CK藻液都有相同的扩增产物,根据50bp ladder判断,六个扩增产物的片段大小在250-300bp的中间约为275bp,与理论扩增片段273bp相符,证明本例制备的小球藻核酸模板与传统的提取的gDNA一样,可以用于小球藻PCR扩增,并且从亮度来看,六个PCR扩增效率相当,证明本例制备的小球藻核酸模板可以替换gDNA进行PCR扩增,且具有良好的扩增效率。
实施例二
本例的小球藻核酸模板制备方法与实施例一相同,唯一的区别在于,本例针对小球藻悬浮液在PCR扩增仪上热浴的温度改为95℃,并对热浴的时间设计了三个梯度,即对三组样品分别热浴10min、20min、30min,每个热浴组设计两个重复。最终获得了六个CK藻液,即两个热浴10min的CK藻液、两个热浴20min的CK藻液和两个热浴30min的CK藻液。
采用实施例一相同的引物和PCR扩增体系对本例的CK藻液进行检测。PCR扩增具体设计了两个热浴10min的CK藻液、两个热浴20min的CK藻液、两个热浴30min的CK藻液、两个水空白对照、两个gDNA平行试验,共计10个PCR反应。
PCR结束后,采用实施例一相同的方法对PCR产物进行琼脂糖凝胶电泳检测。检测结果如图3所示,图中,泳道1为50bp ladder,泳道2-7依序为两个热浴10min的CK藻液、两个热浴20min的CK藻液、两个热浴30min的CK藻液的PCR产物电泳结果,泳道8和9为水空白试验的PCR产物电泳结果,泳道10和11为两个gDNA平行试验的PCR产物电泳结果,泳道12空白没有点样。由图3的结果可见,两个水空白对照都没有条带,证明PCR扩增结果是没问题的;六个CK藻液和两个gDNA都有相似的条带,虽然从图中看来似乎有些倾斜,但是,应该是相同的扩增产物,产生倾斜的原因可能是胶板没放正或者电压不稳定,六个CK藻液和两个gDNA的扩增结果与理论预期相符,并且,六个CK藻液的扩增结果都很亮,与gDNA的扩增结果相当,可见,95℃热浴10min、20min或30min都可以制备出符合PCR扩增使用需求的核酸模板。
实施例三
本例设计了不同的引物,对实施例二制备的六个小球藻核酸模板进行扩增,PCR扩增条件和PCR反应个数设计与实施例二相同。本例的引物是针对小球藻16s基因全长序列设计的,同样采用用软件Primer Premier 5设计,设计好的引物交由上海Invitrogen公司合成。本例设计的16s基因扩增上下游引物分别如Seq ID No.3和Seq ID No.4所示序列。
Seq ID No.3:5’-AATAAGCATCGGCTAACTCTGTG-3’
Seq ID No.4:5’-CCCTCTGCCCCTACCAAAC-3’。
本例设计的引物扩增的片段理论上为180bp。
PCR结束后,采用实施例一相同的方法对PCR产物进行琼脂糖凝胶电泳检测。检测结果如图4所示,图中,泳道1为50bp ladder,泳道2-7依序为两个热浴10min的CK藻液、两个热浴20min的CK藻液、两个热浴30min的CK藻液的PCR产物电泳结果,泳道8和9为水空白试验的PCR产物电泳结果,泳道10和11为两个gDNA平行试验的PCR产物电泳结果,泳道12和13空白没有点样。由图4的结果可见,两个水空白对照都没有条带,证明PCR扩增结果是没问题的;六个CK藻液和两个gDNA都有相似的条带,虽然从图中看来似乎有些倾斜,但是,应该是相同的扩增产物,产生倾斜的原因可能是胶板没放正或者电压不稳定,六个CK藻液和两个gDNA的扩增结果在150-200bp之间,约180bp,与理论预期相符,并且,六个CK藻液的扩增结果都很亮,与gDNA的扩增结果相当,可见,95℃热浴10min、20min或30min都可以制备出符合PCR扩增使用需求的核酸模板。此外,本例采用了16s的扩增引物,同样可以扩增出与传统gDNA相同的靶标条带,可见本申请制备的小球藻核酸模板,可以适用于各种不同靶标的小球藻PCR扩增。
可以理解,虽然本申请没有穷举小球藻全基因组的所有靶标基因,但是,RbcL基因和16s基因,是小球藻基因工程研究中比较重要的两个基因,采用本申请的核酸模板,都可以扩增出符合预期的靶标序列,因此,有理由相信,本申请制备的小球藻核酸模板,可以替换传统的小球藻基因组DNA提取,用于小球藻PCR扩增或其它基因工程研究。
以上内容是结合具体的实施方式对本申请所作的进一步详细说明,不能认定本申请的具体实施只局限于这些说明。对于本申请所属技术领域的普通技术人员来说,在不脱离本申请构思的前提下,还可以做出若干简单推演或替换,都应当视为属于本申请的保护范围。
Claims (9)
1.一种小球藻核酸模板的制备方法,其特征在于:包括以下步骤,
(1)将培养的小球藻藻液在低温下离心,弃上清液;
(2)采用双蒸水对小球藻沉淀进行重悬、洗涤、低温下离心,重复双蒸水重悬、洗涤、低温下离心至少一次;
(3)双蒸水清洗后,再采用双蒸水重悬小球藻沉淀,并将重悬的藻液在95℃~100℃热浴10~30min,即获得所述核酸模板。
2.根据权利要求1所述的制备方法,其特征在于:所述步骤(1)和(2)中的低温下离心的温度为4℃。
3.根据权利要求1或2所述的制备方法,其特征在于:所述步骤(3)中,采用双蒸水重悬小球藻沉淀后,在重悬的藻液表面加一滴石蜡油,然后再进行热浴。
4.根据权利要求1-3任一项所述的制备方法获得的小球藻核酸模板。
5.根据权利要求4所述的小球藻核酸模板在小球藻PCR或核酸研究中的应用。
6.一种小球藻快速PCR方法,其特征在于:包括以下步骤,
(1)采用少量的小球藻藻液,在低温下离心,弃上清液;采用双蒸水对小球藻沉淀进行重悬、洗涤、低温下离心,重复双蒸水重悬、洗涤、低温下离心至少一次;双蒸水清洗后,再采用双蒸水重悬小球藻沉淀,并将重悬的藻液在95℃~100℃热浴10~30min,获得小球藻核酸模板,存放4℃冰箱备用;
(2)采用人工设计的引物,对步骤(1)制备的所述小球藻核酸模板进行PCR扩增。
7.根据权利要求6所述的方法,其特征在于:所述人工设计的引物包括第一组引物和/或第二组引物;所述第一组引物的上下游引物分别为Seq ID No.1和Seq ID No.2所示序列,所述第二组引物的上下游引物分别为Seq ID No.3和Seq ID No.4所示序列;
Seq ID No.1:5’-ACTTGGACGACTGTATGGACTG-3’
Seq ID No.2:5’-AATACCGTGAGGAGGACCTTG-3’
Seq ID No.3:5’-AATAAGCATCGGCTAACTCTGTG-3’
Seq ID No.4:5’-CCCTCTGCCCCTACCAAAC-3’。
8.根据权利要求6所述的方法,其特征在于:所述步骤(1)中的低温下离心的温度为4℃。
9.根据权利要求6所述的方法,其特征在于:所述步骤(1)中,采用双蒸水重悬小球藻沉淀后,在将重悬的藻液进行热浴之前,在重悬的藻液表面加一滴石蜡油,然后再进行热浴。
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CN (1) | CN106086203A (zh) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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CN113913504A (zh) * | 2021-09-30 | 2022-01-11 | 广西中医药大学 | 一种以三角褐指藻藻细胞为模板无需提取纯化dna的快速pcr检测方法 |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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CN1325458A (zh) * | 1998-09-30 | 2001-12-05 | 应用研究系统Ars股份公司 | 核酸扩增和测序方法 |
CN102337217A (zh) * | 2011-09-22 | 2012-02-01 | 天津师范大学 | 小球藻生物反应器的构建方法 |
CN103849678A (zh) * | 2012-12-05 | 2014-06-11 | 中国科学院大连化学物理研究所 | 一种快速微藻种属鉴定方法 |
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2016
- 2016-07-12 CN CN201610548285.1A patent/CN106086203A/zh active Pending
Patent Citations (3)
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Title |
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张炎等: "《一种快速制备甲藻细胞PCR扩增DNA模板的方法》", 《海洋科学》 * |
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