CN1056189C - 编码阿凡曼链霉菌支链α-酮酸脱氢酶复合物的基因 - Google Patents
编码阿凡曼链霉菌支链α-酮酸脱氢酶复合物的基因 Download PDFInfo
- Publication number
- CN1056189C CN1056189C CN94194516A CN94194516A CN1056189C CN 1056189 C CN1056189 C CN 1056189C CN 94194516 A CN94194516 A CN 94194516A CN 94194516 A CN94194516 A CN 94194516A CN 1056189 C CN1056189 C CN 1056189C
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- gly
- ala
- val
- leu
- pro
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Fee Related
Links
Images
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/0004—Oxidoreductases (1.)
- C12N9/0008—Oxidoreductases (1.) acting on the aldehyde or oxo group of donors (1.2)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/11—DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
- C12N15/52—Genes encoding for enzymes or proenzymes
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P19/00—Preparation of compounds containing saccharide radicals
- C12P19/44—Preparation of O-glycosides, e.g. glucosides
- C12P19/60—Preparation of O-glycosides, e.g. glucosides having an oxygen of the saccharide radical directly bound to a non-saccharide heterocyclic ring or a condensed ring system containing a non-saccharide heterocyclic ring, e.g. coumermycin, novobiocin
- C12P19/62—Preparation of O-glycosides, e.g. glucosides having an oxygen of the saccharide radical directly bound to a non-saccharide heterocyclic ring or a condensed ring system containing a non-saccharide heterocyclic ring, e.g. coumermycin, novobiocin the hetero ring having eight or more ring members and only oxygen as ring hetero atoms, e.g. erythromycin, spiramycin, nystatin
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Y—ENZYMES
- C12Y102/00—Oxidoreductases acting on the aldehyde or oxo group of donors (1.2)
- C12Y102/04—Oxidoreductases acting on the aldehyde or oxo group of donors (1.2) with a disulfide as acceptor (1.2.4)
- C12Y102/04004—3-Methyl-2-oxobutanoate dehydrogenase (2-methylpropanoyl-transferring) (1.2.4.4), i.e. branched-chain-alpha-ketoacid dehydrogenase
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Zoology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Plant Pathology (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
本发明涉及为链霉菌属微生物的支链α-酮酸脱氢酶复合物编码的新DNA序列,并涉及经该序列的表达产生的新多肽。本发明也涉及提高天然阿凡曼菌素产量的新方法、并涉及生产阿凡曼链霉菌bkdp突变体的新方法,还涉及经发酵生产新阿凡曼菌素的新方法。
Description
发明背景
本发明涉及为链霉菌属微生物的支链α-酮酸脱氢酶(BCKDH)复合物编码的新DNA序列。本发明也涉及通过基因工程技术生产阿凡曼链菌(
streptomyces avermitilis)支链α-酮酸脱氢酶(
bkd)-缺损突变体的方法。所述
bkd-缺损突变体缺乏支链α-酮酸脱氢酶活性,在发酵生产新(非天然)阿凡曼菌素(avermectins)上是有用的。
阿凡曼链霉菌天然产生被命名为阿凡曼菌素和8种不同的但密切相关的抗寄生虫聚酮化合物。由阿凡曼链霉菌产生的阿凡曼菌素复合物具有4种主要组分(A1a、A2a、B1a和B2a)和4种次要组分(A1b、A2b、B1b和B2b)。各组分的结构描述如下:阿凡曼菌素 R1 R2 X-YA1a 仲丁基 Me CH=CHA1b 异丙基 Me CH=CHA2a 仲丁基 Me CH2-CH(OH)A2b 异丙基 Me CH2-CH(OH)B1a 仲丁基 H CH=CHB1b 异丙基 H CH=CHB2a 仲丁基 H CH2-CH(OH)B2b 异丙基 H CH2-CH(OH)
阿凡曼菌素聚酮化合物的结构由7个乙酸分子、5个丙酸分子和一个α-支链脂肪酸(S(+)-2-甲基丁酸或异丁酸)分子衍生而成。符号“A”和“B”指其中5-取代基分别是甲氧基或羟基的阿凡曼菌素。数字“1”指其中双键在22-23位上的阿凡曼菌素。数字“2”指在22位具有氢且23位具有羟基的阿凡曼菌素。最后,C-25具有两种可能的取代基:存在于阿凡曼菌素“a”系列中的仲丁基取代基(得自S(+)-2-甲基丁酸的引入)和存在于阿凡曼菌素“b”系列的异丙基取代基(得自异丁酸的引入)(作为回顾,可参见Fisher,M.H.and Mrozik,H.1984,“MacrolideAntibiotics”,Academic Press,chapter 14)。
“天然”阿凡曼菌素指由阿凡曼链霉菌产生的其中25位取代基如上所述是异丙基或仲丁基的那些阿凡曼菌素。其中25位取代基不是异丙基或仲丁基的阿凡曼菌素这里称作新或非天然阿凡曼菌素。
以其CoA形式存在的天然α-支链脂肪酸的一条代谢途径是从α-支链氨基酸异亮氨酸和缬氨酸开始经支链氨基酸转氨酶反应,接着经支链α-酮酸脱氢酶反应(支链脂肪酸酰基-CoA衍生物也可以从由全程合成产生的支链α-酮酸产生)。这些代谢途径描述如下:
过去已分离到在最后提到的酶中不具有可检测的支链α-酮酸脱氢酶(BCKDH)活性的阿凡曼链霉菌突变体(Hafner
et al.,1988,欧洲专利EP284,176,1993年10月20日公布)。在从14C-1标记的2-氧代异己酸底物(亮氨酸类似物)不产生14CO2的筛选研究中,在阿凡曼链霉菌菌株ATCC31272的标准化学诱变后分离到该突变体。除了当S(+)-2-甲基丁酸或异丁酸或携带异丙基或仲丁基(S-型)基团的前体加入到该突变体的发酵培养基中之外,该突变体不能合成天然阿凡曼菌素。当在含水有氧条件下在含有外加可替换的羧酸(例如环己烷羧酸(CHC)或以上指出的其前体的营养培养基中发酵养时,所述突变体也能产生新(非天然)阿凡曼菌素。
克隆编码阿凡曼链霉菌支链α-酮酸脱氢酶复合物的基因是非常合乎需要的。用重组DNA技术操作这些基因应当有利于天然和新阿凡曼菌素的产生。就某些菌株而言,通过增加
bkd基因 的拷贝数可以预料天然阿凡曼菌素增加的滴度。此外,通过基因取代使BCKDH活性永久缺失或修饰产生的不可逆阻断的
bkd菌株会是以上提到的经化学诱变获得的
bkd突变体的改进的替换物。
α-酮酸脱氢酶多酶复合物-支链α-酮酸脱氢酶(BCKDH)复合物、丙酮酸脱氢酶(PDH)复合物和α-酮戊二酸脱氢酶(KGDH)复合物分别催化支链α-酮酸、丙酮酸和α-酮戊二酸的氧化脱羧反应,释放出CO2并产生相应的乙酰-CoA和NADH(Perham,R.N.,1991,
Biochemistry,
30:8501-8512)。每一种复合物由三种不同的催化酶组成:脱羧酶(E1)、二氢硫辛酰胺酰基转移酶(转酰基酶)(E2)和二氢硫辛酰胺脱氢酶(E3)。
支链α-酮酸脱氢酶(BCKDH)是由三种功能性组分E1(脱羧酶)、E2(转酰基酶)和E3(硫辛脱氢酶)组成的多酶复合物。得自恶臭假单胞菌、铜绿假单胞菌和枯草芽孢杆菌的纯净的复合物由4种多肽组成。纯净的哺乳动物复合物也由4种多肽(E1α、E1β、E2和E3)组成。已从具有丙酮酸和支链α-酮酸脱氢酶两种活性的枯草芽孢杆菌分离出α-酮酸脱氢酶复合物。这一双功能复合物氧化膜磷脂的丙酮酸和支链α-酮酸二者。
已报道了克隆假单胞菌和芽孢杆菌原核生物支链α-酮酸脱氢酶基因。在这些系统中发现编码BCKDH的基因群集在操纵子上。已克隆恶臭假单胞菌BCKDH复合物基因,并已测定了这一区的核苷酸序列(Sykes et al.,1987,J.Bacteriol.,169:1619-1625,和Burns etal.,1988,Eur.J.Biochem,176:165-169和176:311-317)。E1α的分子量是45289、E1β的是37138、E2的是45134、E3的是48164所述4种基因群集在E1α、E1β、E2和E3序列上。Northern印迹分析表明,这4种基因的表达从单mRNA发生,并且这些基因构成一个操纵子。有一种紧靠在E1α编码区(它允许假单胞菌
bkd基因的组成型表达)起始位点之前的典型的原核生物共有序列启动子。E1β编码区的起始密码子位于E1α开放读框(ORF)末端下游仅40个核苷酸处。相反,在E1β和E2 ORF之间没有基因间区,因为E1β ORF终止密码子是紧靠在E2 ORF起始密码子之前的三联体。E2和E3 ORF之间的基因间区降低到仅有2个核苷酸。因此,假单胞菌
bkd基因是紧密连接的。
类似地,已克隆了编码枯草芽孢杆菌BCKDH/PDH双重复合物的操纵子(Hemila
et al.,1990,
J.Bacteriol.,
172:5052-5063)。这一操纵子含有编码大小为42、36、43和50千道尔顿(kDa)的蛋白质的4个ORF,表明它高度同源于假单胞菌
bkd簇的E1α、E1β、E2和E3亚单位。编码嗜热脂肪芽孢杆菌双重BCKDH/PDH多酶复合物E1组分的α和β亚单位的基因也已被克隆和测序(估计α和β亚单位的分子量分别为约41,000和35,000(Hawkins
et al.,1990,
Eur.J.Biochem.,
191:337-346)。
此外,已公开了大量真核生物(人、牛和大鼠)E1α和βBCKDH亚单位的序列。最近,已通过计算机分析完成了得自多种物种的PDH和BCKDH复合物E1α和E1β组分两者的所有出版已知序列的氨基酸序列比较(Wexler
et al.,1991,
FEBS Letters,282:209-213)。令人感兴趣地是,认定了α和β亚单位的几个区不仅在迄今描述过的所有PDH中而且在原核生物和真核生物二者的BCKDH复合物中都是高度保守的。
最近,分别编码阿凡曼链霉菌BCKDH复合物E1组分的α(
bkd A)和β(
bkd B)亚单位及E2(
bkd C)组分的基因也被采用异源基因表达系统克隆、测序和分析(Denoya,C.D.,1993,“Cloned genes encoding branched-chain alpha-ketoacid dehydro-genase complex from Streptomyces avermitilis”,美国专利申请08/100,518,1993年7月30日申请)。DNA序列分析表明,存在按以下方式排列成簇的推定的转录启动子序列和
bkd结构基因:启动子序列,E1-α(
bkd A),E1-β(
bkd B)和E2(
bkdC)开放读框。此外,完整的阿凡曼链霉菌
bkd ABC基因簇被克隆到用于在大肠杆菌宿主中表达的强大肠杆菌T7启动子的下游。类似地,E1-α和E1-β开放读框(ORF)也被分别或同时克隆到T7启动子下游,且对每一构建体进行了表达试验。这些研究表明,当在大肠杆菌中表达时,至少2个阿凡曼链霉菌
bkd基因簇的开放读框(E1-α-〔
bkd A〕和E1-β〔
bkd B〕)是完全可翻译的。此外,旨在特定性分析BCKDH复合物E1组分的酶试验最后证实,两个重组大肠杆菌克隆(一个携带全部
bkd基因簇,另一个同时携带E1-α和E1-βORF)具有E1 BCKDH-特异性酶活性。
本发明涉及编码阿凡曼链霉菌支链α-酮酸脱氢酶(BCKDH)的第二簇新基因的分子克隆和分析,所述簇至少包含3种基因(
bkd F、
bkd G和
bkd H),这些基因分别为阿凡曼链霉菌BCKDH复合物的E1-α、E1-β和E2亚单位编码。这里公开的
bkd基因族位于最近报道(Denoya,C.D.,1993,美国专利申请08/100,518,1993年7月30日申请)的第一
bkd簇(
bkd A、
bkd B和bkd C基因)下游约12千碱基(kb)处。两簇都有类似的基因组构,且它们在阿凡曼链霉菌染色体中以相同的方向取向。两簇中相应的结构基因尽管高度同源,但是不同的。
此外,本发明也涉及用基因工程技术构建
bkd突变体的方法。所述
bkd突变体具有影响
bkdF基因的染色体缺失,缺乏支链α-酮酸脱氢酶活性,它在以异亮氨酸、亮氨酸和缬氨酸单独作碳源时不能生长,在缺少S-2-甲基丁酸和异丁酸二者的培养基中也不能产生天然阿凡曼菌素。本文公开的突变体在经发酵产生新(非天然)阿凡曼菌素上是有用的,所述的发酵是在含有合适的可变羧酸(例如环己烷羧酸(CHC))的培养基中进行。此外,本发明也涉及构建具有影响
bkd F基因和
bkd ABC基因簇二者的染色体缺失的突变体的方法。
链霉菌具有一个主要的遗传连锁群(一种染色体),它通常以每个菌丝分隔含多个拷贝的形式存在,但在孢子中仅以单拷贝存在。在原核生物中,链霉菌基因组特别大(5×103到7×103千碱基〔kb〕)(Gladek,A.,and Zakrzew sha,J.,1984,
FEMS Microbiol.lett.,
24:73-76),约是大肠杆菌基因组大小的2倍。
链霉菌遗传学特别有趣的一点是频繁的染色体重排,该重排涉及常常伴随强烈DNA扩增的广泛的缺失(Birch A.
et al.,1990,
J. Bacteriol.,
172:4138-4142)。链霉菌中扩增和缺失现象比大肠杆菌和枯草芽孢杆菌中的类似现象强2到3个数量级。已报道了18%染色体的缺失和45%基因组的扩增。尽管它们有遗传长期不稳定性,但某些基因的复制以104细胞中1次的出现次数出现。这种复制常常是由非常规交换现象(涉及分开的子染色体中DNA的短的、部分同源部分)产生的。由于在相同的染色体上产生新的DNA骨架,因此自然易于在这种复制现象之后出现进一步的基因扩增或消除现象。不仅相同基因而且具有高度相似结构的两种不同基因的多拷贝易于重组并产生缺失。这样,要求一种基因的遗传稳定性不能与任何其它基因的太相似。
链霉菌中基因或基因组的多拷贝的出现是不常见的。已报道了Saccharopoly spora erythraea中合成大环内酯抗生素红霉素的聚酮化合物部分所需的基因组件结构(Donadio
et al.,1991,
Science,252:675-679)。
我们已发现阿凡曼链霉菌具有至少两簇
bkd基因:一族包括
bkdA、
bkd B和
bkd C基因,另一簇包括
bkd F、
bkd G和
bkd H基因。我们推测
bkd ABC基因簇(以前在美国专利申请08/100,518(1993年7月30日)中公开,以上已提及)和这里公开的
bkd FGH基因簇两者在阿凡曼链霉菌中由基因复制产生,并且2个拷贝经突变获得了足以维持其存在(避免重组/缺失现象)的不同。
除了公开编码BCKDH的新的第二簇基因外,我们也公开了用基因工程技术构建阿凡曼链霉菌
bkd F突变体的方法。所述
bkd F突变体缺乏支链α-酮酸脱氢酶活性,在用异亮氨酸、亮氨酸和缬氨酸单独作为碳源时不能生长,在缺少S-2-甲基丁酸和异丁酸二者的培养基中也不能产生天然阿凡曼菌素。该
bkd F突变体在经发酵产生新阿凡曼菌素中是有用的,所述的发酵是在含有合适的可变羧酸(例如环己烷羧酸(CHC))的培养基中进行的。我们还公开了构建携带影响
bkd F基因和
bkd ABC基因簇二者的染色体缺失的突变体的方法。
用化学和物理方法诱变产生链霉菌突变体对分析基因功能和基因调节以及开发改进的工业菌株来说是一项重要的技术。链霉菌基因克隆最近的进展已使采用重组DNA技术操作大量克隆基因(如抗性基因、生物合成基因和调节基因)以及阐明基因组构和基因调节成为可能。另一种诱变方法-基因取代已成功地用于酿酒酵母、大肠杆菌种枯草芽孢杆菌(Scherer,S.and R.W.Davis,1979,
Proc. Natl.Acad.Sci.U.S.A.,76:4951-4955;Shortle,D.,
et.,al 1982,
Science, 217:371-373;Stahl,M.L.,and Ferrari,E.,1984,
J.Bacteriol.,158:411-418)、
Saccharopolyspora erythraea(Weber,J.M.,andLosick,R.,1988,
Gene,68:173-180)和几个种的链霉菌。这一技术使得携带在质粒上的体外产生的突变引入到宿主菌株的染色体中。这一方法是基于发现宿主染色体和含有同源区的质粒之间可发生重组。
阿凡曼链霉菌中的基因取代是用载体中携带的克隆序列和其染色体配对物之间的同源重组的方法进行的。可假定,引起整合和其后切除整合质粒的分离步骤的同时发生的双交换或单交换导致克隆序列和居留序列之间的相互交换。我们已观察到阿凡曼链霉菌中的双交换和单交换两种现象。双交换和单交换两种机制之后切除产生相同的产物。采用这一方法,我们可以破坏阿凡曼链霉菌
bkd F基因的E1-α开放读框。该破坏作用涉及约1.4kb的染色体缺失,该缺失影响编码BCKDH复合物E1-α亚单位的基因的5′-半边。所形成的突变株表现出
bkd突变体所有的特征性表型特征,它是稳定的并且能用于经发酵产生有价值的新阿凡曼菌素。
本文引用的所有文献以其整体在此一并作为参考文献。
术语解释
本说明书全文使用的技术术语对分子遗传学领域的技术人员是公知的。本发明中经常使用的术语定义如下:
扩增:指产生以染色体内或染色体外DNA被发现的染色体序列的额外拷贝。
抗生素抗性基因:当引入到天然对特定抗生素敏感的宿主细胞中时,使宿主细胞对该特定抗生素有抗性的DNA序列。也称作抗生素标记。
克隆:与单个始祖细胞相同的大量细胞或分子。
克隆载体:可插入待克隆的外源DNA的任何质粒,经转化后它将外源DNA携带到宿主细菌细胞中。
CoA:辅酶A。
粘端序列(CoS):允许体外包装的得自细菌噬菌体λ的DNA序列。
粘粒:已插入细菌噬菌体λCOS位点的质粒,其结果是该质粒DNA(携带外源DNA插入片段)可被在噬菌体包被中体外包装。
CRNA:与DNA互补的单链RNA,从前者经体外转录合成。
交换:指出现克隆序列和其染色体配对物之间物质的相互交换点。
道尔顿:与相当于1个氢原子分子大小相联系的通常使用的质量单位。
DNA连接:形成连接两个DNA片段的化学键。
双交换现象:同时或相继发生双交换。其结果是克隆序列与居留序列之间发生相互交换。
基因簇:在染色体上物理性相近的一组基因。
基因取代:将质粒上携带的体外衍生的突变引入到染色体中的技术。当宿主染色体和含有与其同源的区的质粒重组时发生该取代。
基因组:完整的染色体组。所有单个基因的总和。
杂交、菌落杂交:用来鉴别细菌菌落的技术,所说的菌落携带有其中插入的DNA类似于某些特定序列的嵌合载体。
菌丝:霉菌生长或营养形式的主要因素。菌丝是管状结构,直径约2到10微米,它形成称为菌丝体的大量缠绕在一起的链。
kb:DNA或RNA的1,000个碱基对的缩写。
接头:含有一种或多种限制酶靶位点的短的合成以链寡核苷酸。将其加入到载体上可产生新的多接头或多克隆位点(MCS)。
NADH:还原型烟酰胺腺嘌呤二核苷酸。
核苷酸:核酸的组成部分或单体单位。
寡核苷酸:短链核苷酸。
操纵子:细菌基因表达和调节的一个完整的单位,包括结构基因、调节基因和被调节基因产物识别的DNA中的调控元件。
质粒:自主、自身复制的染色体外环状DNA。
质粒拷贝数:保持在细菌中的每一宿主染色体的质粒分子数。
引物:与一个DNA链配对并提供自由的3′-羟基末端的短的DNA或RNA序列,在所述末端,DNA聚合酶开始合成脱氧核糖核酸链。
原核细胞:包括大多数微生物的小的相对简单的细胞。
启动子:引起转录开始的DNA区。
限制酶:识别并切割特定的短DNA序列的酶。
限制识别序列:被特定的限制酶特异性识别的DNA序列。也称作靶位点。
穿梭载体:能够在一种或多种可变宿主(例如大肠杆菌和链霉菌)中复制的双功能载体。
单交换现象:在单点发生的单相互基因重组,它导致新进入的环状质粒或噬菌体载体在同源染色体序列中的整合和复制。
Southern印迹法:将变性DNA从琼脂糖凝胶转移到硝酸纤维素滤膜上的方法,在所述滤膜上变性DNA可以与互补的核酸探针杂交。
亚克隆:将克隆的DNA片段从一种类型的载体转移到另一种类型的载体中(例如从重组粘粒转移到质粒中)。然后新的重组质粒转化进合适的宿主细胞中,产生亚克隆菌株。
细菌细胞的转化:经掺入添加的DNA获得新的遗传标记。
发明概述
本发明涉及一种为链霉菌属微生物支链α-酮酸脱氢酶复合物编码的分离的DNA区段。
本发明也涉及一种以上描述的分离的DNA区段,该区段还包含调节所述支链α-酮酸脱氢酶复合物表达的DNA区。
本发明也涉及一种为阿凡曼链霉菌支链α-酮酸脱氢酶复合物编码的分离的DNA区段。
本发明也涉及一种包含如以下描述的SEQENCE ID NO.1、SEQUENCE ID NO.2、SEQUENCE ID NO.3或SEQENCE IDNO.4的DNA序列或者其等位变异体的DNA区段。本发明也涉及一种为外源DNA区段亚组且其功能等同于外源DNA区段的DNA区段。
本发明也涉及:(a)包含SEQUENCE ID NO.1、SEQUENCEID NO.2、SEQUENCE ID NO.3或SEQUENCE ID NO.4的DNA序列或其等位变异体的重组DNA;(b)一种包含这种重组DNA的质粒;和(c)一种其中已掺入这种重组DNA的宿主细胞。
本发明也涉及包含在一种DNA区段中的为支链α-酮酸脱氢酶复合物编码的基因,其中所说的DNA区段选自由如以下定义的pCD713、pCD740、pCD747和pCD854组成的组。
本发明也涉及一种包含SEQUENCE ID NO.1、SEQUENCEID NO.2、SEQUENCE ID NO.3或SEQUENCE ID NO.4的DNA序列或其等位变异体的DNA区段。
本发明也涉及一种包含一种DNA序列的DNA区段,所述的DNA序列是SEQUENCE ID NO.1、SEQUENCE ID NO.2、SEQUENCE ID NO.3或SEQUENCE ID NO.4 DNA序列或其等位变异体的亚组,当该区段用作探针时,它可以分别杂交到SEQUENCE ID NO.1、SEQUENCE ID NO.2、SEQUENCE IDNO.3或SEQUENCE ID NO.4或其等位变异体上,当该区段用作聚合酶链反应引物时,它可以扩增全部或部分这种序列。
本发明也涉及一种基本上纯化的多肽,该多肽包含SEQUENCEID NO.5、SEQUENCE ID NO.6、SEQUENCE ID NO.7或SEQUENCE ID NO.8的氨基酸序列。
本发明也涉及一种生产天然阿凡曼菌素的方法,该方法包括在适于产生这种天然阿凡曼菌素的条件下和发酵培养基中,用包含
bkdF、
bkd G和
bkd H基因中一种或多种的基因组片段拷贝数在其中已增加的阿凡曼链霉菌进行发酵。
本发明涉及一种生产天然阿凡曼菌素的方法,该方法包括在适于产生这种天然阿凡曼菌素的条件下和发酵培养基中,用经操作或取代决定着调节包含
bkd F、
bkd G和
bkd H基因中一种或多种的基因组片段的表达的基因使这种表达在其中已增强的阿凡曼链霉菌进行发酵。
本发明也涉及一种生产新阿凡曼菌素的方法,该方法包括在适于产生这种新阿凡曼菌素的条件下和发酵培养基中,用包含
bkd F、bkdG和
bkd H基因中一种或多种的基因组片段的表达在其中已降低或消除的阿凡曼链霉菌进行发酵,其中所述的降低或消除是经对决定着这种表达的基因的缺失、灭活、取代或其它操作进行的。
本发明的一个优选的实施方案涉及前述的生产新阿凡曼菌素的方法,该方法包括在适于产生这种新阿凡曼菌素的条件下和发酵培养基中,用包含
bkd F、
bkd G和
bkd H基因中一种或多种的基因组片段在其中已缺失或灭活的阿凡曼链霉菌进行发酵。
本发明也涉及一种生产新阿凡曼菌素的方法,该方法包括在适于产生这种新阿凡曼菌素的条件下和发酵培养基中,用包含
bkdA、
bkd B和
bkd C基因中一种或多种和
bkd F、
bkd G和
bkd H基因中一种或多种的基因组片段的表达在其中已降低或消除的阿凡曼链霉菌进行发酵,其中所述的降低或消除是经对决定着这种表达的基因的缺失、灭活、取代或其它操作进行的。
本发明一个优选的实施方案涉及前述的生产新阿凡曼菌素的方法,该方法包括在适于产生这种新阿凡曼菌素的条件下和发酵培养基中,用包含
bkd A、
bkd B和
bkd C基因中一种或多种和
bkd F、bkd G和
bkd H基因中一种或多种的基因组片段在其中已缺失或灭活的阿凡曼链霉菌进行发酵。
附图简要说明
图1:用来克隆阿凡曼链霉菌
bkd F基因(E1α BCKDH)片段的聚合酶链反应(PCR)引物的核苷酸序列。用9个氨基酸长的保守区设计每一引物。相应于每一保守氨基酸的密码子表示在相应的DNA序列的上面。右引物用包含人E1-α BCKDH亚单位(用作E1-α BCKDE亚单位的代表性模型)的192-200位氨基酸的区设计。左引物用包含E1-α BCKDH亚单位的286-293位氨基酸的区设计。在右引物的5′末端,有两个额外的含腺嘌呤的核苷酸和两个限制酶识别序列(
EcoRI和
Sacl)(被添加以促进克隆PCR产物)。类似地,在左引物的5′末端,有两个额外的含腺嘌呤的核苷酸和两个限制酶识别序列(
BamHI和
XbaI)。
图2:阿凡曼链霉菌
bkd FGH基因簇的基因组限制性酶切图、位置和亚克隆。也表示了以前公开的
bkd ABC基因簇(参见Denoga,C.D.,美国专利申请08/100,518,以上已提及)的位置。图F的黑框表示用PCR克隆的起始E1-α-特异性阿凡曼链霉菌基因组片段的位置和取向。表示了基因组亚克隆(pGEM-3Z衍生物)。也表示了分别编码E1-α、E1-β和E2 BCKDH亚单位的
bkd F、
bkd G和
bkd H结构基因的位置和取向。鉴别的开放读框(以方框表示)的极性是从左到右。缩写字母B代表
BamHI;Bg代表
BgIII;P代表
PstI;S代表SphI;“X”指如下所述的用于DNA区测序的转座子小-γ-δ-1插入物的位置,所述DNA区位于bkdF开放读框下游。
图3:用图1所示的引物经PCR克隆的501-bp阿凡曼链霉菌基因组DNA片段(CD613)的核苷酸序列和推断的翻译产物。这一基因组片段含有部分
bkd F基因(E1-α BCKDH)。在每行序列的顶部对核苷酸编号。推断的氨基酸序列表示在相应的密码子序列下面。
图4:用SP6载体引物从pCD746亚克隆的PstI端测序的201-bp阿凡曼链霉菌基因组DNA区的核苷酸序列和推断的翻译产物。推断的翻译产物代表部分相应于
bkd G基因的BCKDH复合物的E1-β组分。在每行序列的顶部对核苷酸编号。推断的氨基酸序列表示在相应的密码子序列下面。
图5:从小-γ-δ-1插入物“A3”两端测序的194-bp阿凡曼链霉菌基因组DNA区的核苷酸序列(序列CD785)和推断的翻译产物。所述“A3”距
BamHI端约1.7kb,含有4.1kb
BamHI基因组片段中的
bkd F基因。推断的翻译产物代表相应于
bkd G基因的NCKDH复合物E1-β组分的C-末端。在每行序列的顶部对核苷酸编号。推断的氨基酸序列表示在相应的密码子序列下面。
图6:从小-γ-δ-1插入物“A5”两端测序的455-bp阿凡曼链霉菌基因组DNA区的核苷酸序列(序列CD 786)和推断的翻译产物。所述的“A5”距
BamHI端约3kb,含有4.1kb
BamHI基因组片段中的
bkd F基因。推断的翻译产物代表相应于
bkd H基因的NCKDH复合物E2组分的C-末端。在每行序列的顶部对核苷酸编号。推断的氨基酸序列表示在相应的密码子序列下面。
图7:基因取代载体pCD768的构建和阿凡曼链霉菌
bkd F突变株CD794的基因组限制图。质粒pCD768是穿梭载体pCD262的一种衍生物,pCD262携带有侧翼于emE标记(黑箭头)的2.3和4.1kb
BamHI阿凡曼链霉菌基因组片段。如以下所描述的,质粒pCD761是一种中间构建体。也显示出了含
bkd F基因的阿凡曼链霉菌染色体区的基因组限制图(野生型和取代型菌株)。这些图是从用5.0kb
PstI基因组片段为探针的Southern杂交分析推断的。BamHI缩写成B,PstI缩写成P。每一DNA片段上面的数字表示以千碱基(kb)为单位的片段长度。
图8:基因取代载体pCD768的限制图。有阴影的框表示:tsr-硫链丝菌肽抗性标记;amp-氨苄青霉素抗性标记;“2.3”-2.3kb
BamHI阿凡曼链霉菌基因组片段;erm-红霉素抗性标记;“4.1”-4.1kb
BamHI阿凡曼链霉菌基因组片段。也表示了链霉菌和大肠杆菌源复制区。白框表示大肠杆菌载体区。箭头表示转录和翻译的方向。
图9:
bkd ABCF突变体的构建。表示出了基因组限制图、载体构建体简图和靶基因组区。
bkd基因簇的位置及开放读框取向的表示法和缩写与图3说明中所述的相同。以灰色阴影区表示缺失的区段。连续的线和虚线分别表示染色体和载体DNA。粗黑线代表用于基因取代中的克隆基因组片段。垂直箭头表明抗生素抗性标记插入物的位置。
发明详述
用两种分子遗传学技术(DNA聚合酶链反应(PCR)和同源性探测)组合克隆了本发明的新DNA序列。
识别和克隆本发明的新DNA序列的方法以及用基因取代构建bkd突变体的方法在以下描述。
首先,用保守区设计称作“右”和“左”(图1)的2种PCR引物,所述保守区是从由不同物种的E1-α BCKDH肽序列推断的和由文献上获得的多种排列识别的。使用右和左两种引物经PCR扩增阿凡曼链霉菌基因组DNA获得约0.55kb长PCR产物。将这种PCR扩增的DNA片段进一步克隆到大肠杆菌载体pGEM-3Z中以产生重组质粒pCD613。接着,将质粒pCD613转化进大肠杆菌DH5-α感受态细胞。选择出一种转化体,指定为菌株CD613。克隆DNA片段CD613的DNA测序显示出存在具有高度同源于E1-αBCKDH亚单位的推断肽的开放读框(图3)。然后将克隆的CD613基因组DNA片段用作探针,经菌落杂交筛选阿凡曼链霉菌染色体文库。识别了几个粘粒克隆。限制性分析和Southern印迹分析表明,所有选择出的粘粒克隆都携带有重叠基因组片段。从亚克隆的基因组DNA片段(在实施例6中详细描述)获得的染色体区DNA测序表明,序列CD613是完整
bkd基因簇的一部分。克隆的阿凡曼链霉菌
bkd基因包括长度约4kb的染色体区(图2)。DNA序列分析表明存在
bkd结构基因,该基因排列成按以下方式组构的簇:E1-α(
bkd F)、E1-β(
bkd G)和E2(
bkd H)开放读框(图2-6)。
其次,构建携带有
bkd F基因灭活变体的质粒。如图2所示,(从左到右)画出了阿凡曼链霉菌染色体中3种邻近的
BamHI限制片段:2.3kb、1.4kb和4.1kb。1.4kb
BamHI基因组片段携带起始E1-α开放读框(ORF-1)(基因
bkd F)。4.1kb
BamHI携带剩下的
bkd基因簇(
bkd F末端、
bkd G和
bkd H)。质粒pCD768是携带两种阿凡曼链霉菌基因组片段(2.3和4.1kb
BamHI)(它们与染色体1.4kb
BamHI片段两边邻近)的穿梭载体pCD262的衍生物。此外,pCD768携带有位于2.3和4.1kb
BamHI片段的
ermE标记。
ermE标记(赋予红霉素抗性)与ORF-1(
bkd F)有相反的取向,避免由下游基因超量表达引起的可能的麻烦。如以下的描述,经重组,该构建体产生宿主基因组中1.4kb缺失(将影响到ORF1)。
将质粒pCD768转化进阿凡曼链霉菌31272 SC2宿主原生质体。选择出表现出对红霉素的抗性(erm-R)和硫链丝菌肽的抗性(tsr-R)两种抗性的两个转化体。使1号转化体(CD783)在液体培养基中生长,制备原生质体,并在含红霉素的琼脂培养基上制成平板。选择50个克隆并进一步分析:46个是erm-R、tsr-R,4个是erm-R、tsr-S。后面的4个克隆表现出如下的bkd-缺陷表型:它们不能在ILV基本培养基板上生长;它们没有可检测的E1(支链脱羧酶)活性;除非外加S(+)-2-甲基丁酸或异丁酸,它们不能经发酵合成天然阿凡曼菌素(参见实施例9)。此外,当CHC加到发酵培养基中时,可合成新阿凡曼菌素(CHC-阿凡曼菌素。说明
bkd阻断不影响阿凡曼菌素生物合成的细胞机制。这一组4个中的1个克隆(克隆pp15)事先命名为阿凡曼链霉菌菌株CD794,并作为本发明的一个例证保藏在美国典型培养物保藏中心。最后,Southern杂交分析证实,如所预期的,靠阿凡曼链霉菌ATCC 31272 SC2中的基因取代,相应于
bkd F基因的OR1-1被破坏。
以下是有关阿凡曼链霉菌
bkd基因克隆的实验步骤和所得结果的详细描述:
(a)
可用作结合PCR引物候选位点的E1-αBCKDH肽亚单 位中保守区的识别
对比来自人(Fisher
et al.,1989
J.Biol.Chem.,
264:3448-3453)、大鼠(Zhany et al.,1987,
J.Biol,Chem.,
262:15220-15224),恶臭假单胞菌(Sokatch
et al.,1988,
Eur.J.Biochem.,
176:311-317)和嗜热脂肪芽孢杆菌(Perham
et al.,1990,
Eur.J.Biochem.,
191:337-346)的4种E1-α BCKDH肽序列,以识别可用作设计相应PCR引物的序列的保守区。用GCG序列分析软件包(GCG,Madison,WI)的LineUP和Pretly程序进行计算机分析以识别在原核生物和真核生物两者的BCKDH复合物中高度保守的E1-α亚单位区。四种E1-αBCKDH肽的多种对比显示出几个广泛同源性区(参见Wexler,I.D.,
et al.,1991,
FEBS letters,282:209-213)。位于人E1-α氨基酸182-229之间的硫胺素焦磷酸结合基序)Perham
et al.,1989,
FEBS Lett ers,
255:77-82)和包含磷酸化位点1和2跨越氨基酸291-307的区在所有4种被分析的E1-α BCKDH肽中明显保守。也存在前述的 位于氨基酸245-289之间的高同源性区。这一区对α-酮酸脱氢酶(它有α和β亚单位二者)显得是独特的,它不同源于大肠杆菌PDHE1或大肠杆菌和酵母α-戊二酸脱氢酶复合物的E1组分(它们是仅由单独的E1多肽组成的二聚体)中的任何序列。由于以上提到的原因,已说明后面的同源性区在亚单位相互作用中起作用(Patel
et
al.,1991,
FEBS Letters,
282:209-213)。选来进行PCR引物设计的保守区编码人E1-αBCKDH蛋白质的氨基酸残基192到200和286到293。
(b)
从用作PCR引物的那些E1-α BCKDH保守区衍生的 新寡核苷酸的设计
如以上的描述,从多种比较研究选择出E1-αBCKDH亚单位的两个保守区。用包含人E1-α BCKDH亚单位(用作E1-αBCKDH亚单位的代表性模型)氨基酸192-200的区设计右PCR引物(图1)。这些氨基酸位于硫胺素焦磷酸结合基序的范围内。用包含人E1-α BCKDH亚单位氨基酸286-293的区设计左PCR引物(图1)。后面的氨基酸序列包含亚单位相互作用位点末端部分和磷酸化位点保守区的起始部分。使用链霉菌基因密码子排布法(F.Wright and M.J.Bibb,1992,Gene,113:55-65)。在右引物5′-末端有促进克隆PCR产物的2个额外的含腺嘌呤的核苷酸和两个限制酶识别序列(
EcoRI和
SacI)。类似地,在左引物的5′-末端有两个额外的含腺嘌呤的核苷酸和两个限制酶识别序列(
BamHI和XbaI)。
右PCR引物完整的序列是:
5′-AAGAATTCGAGCTCGGCGACGGCGCCACCTCCGAGGGCGAC-3′(SEQUENCE ID NO.9)
左PCR引物完整的序列是:
5′-AA
GGATCCTCTAGAGGTSSWGTGGKGGCCGATSCGGWA-3′(SEQUENCE ID NO.10)
用国际生物化学联合会(IUB)核苷酸命名规则描述DNA序列。按如下的IUB组码识别丰余序列:K=G+T、S=G+C、W=A+T。与E1-α
bkd基因不同源的和为克隆目的掺入到引物中的限制识别序列是下面画线的(参见图1)。
(c)
阿凡曼链霉菌基因组DNA片段的PCR扩增
用适于高GC含量DNA和使得链霉菌DNA有效和特异扩增的反应条件酶促扩增阿凡曼链霉菌基因组DNA(参见实施例2)。用以上描述的引物(右引物5′-AAGAATTCGAGCTCGGCGACGGCGCCACCTCCGAGGGCGAC-3′(SEQUENCE ID NO.9)和左引物5′-AAGGATCCT CTAGAGGTSSWGTGGKGGCCGATSCGGWA-3′(SEQUENCE ID NO.10)。组合完成PCR。扩增产物用琼脂凝胶电泳按大小分成不同的组分。在以上所述的PCR条件下,当采用这种引物组合时检测到单个DNA带(长度约550碱基对)。
(d)
扩增的基因组DNA片段克隆到大肠杆菌克隆载体中,再 转化进大肠杆菌宿主中
如以前提到的,为方便克隆,将
EcoRI限制位点掺入到右PCR引物中,使
XbaI限制位点存在于左引物5′末端。用电洗脱从琼脂糖凝胶回收0.55kb PCR片段,并用
EcoRI和
XbaI限制酶两者消化。在将特定片段连接进线性化的大肠杆菌载体(pGEM-3Z)后回收到许多重组克隆,产生重组质粒pCD613,将其转化进大肠杆菌感受态细胞中。选择出一种转化体用于进一步研究其特征,将其指定为菌株CD613。证实性限制分析表明,从大肠杆菌菌株CD613分离的质粒PCD613确定含有0.55kb阿凡曼链霉菌插入物。
(e)克隆片段的DNA测序的bkd-特异性序列的识别
用一对载体引物经双链测序方法对存在于质粒pCD613中的0.55kb插入物测序(参见实施例6A)。此外,将0.35kb SalI片段(位于0.55kb PCR插入物内)亚克隆进细菌噬菌体MB中,并用单链测序方案测序(参见实施例6B)。用单链DNA模板和Taq Track试剂盒(Promega)按双脱氧核苷酸链终止法完成DNA测序。DNA测序数据的密码子优先分析(GCG序列分析软件包,Madison,WI)表明具有预期的用于链霉菌基因的密码子的开放读框。
接着,用IntelliGenetics Suite软件(IntelliGeneticsInc.,Mountain View,California)Seq和Translate程序将推定的开放读框翻译成氨基酸序列。最后用IntelliGenetics软年FASTDB程序进行具有询问肽序列(query peptide)的数据库类似性检索。检索DNA数据库(GenBankR,National Institute of Health,和EuropeanMolecular Biolologg Laboratory(EMBL),Heidelberg,Germang)或蛋白质数据库(PIR和Swiss-Prot)的所有数据库检索明确显示,源于克隆CD613的序列高度同源于但是新的且不同于源于原核生物和真核生物源二者的数据库中所列的所有其它E1-α BCKDH肽。此外,也比较了被基因
bkdA编码的新阿凡曼链霉菌E1-α BCKDH肽序列(参见Denoya,C.D.,1993,“Cloned genes encodingbrancled-chain alpha-ketoacid dehydrogenase complex fromStreptomyces avermitilis”,美国专利申请08/100,518,1993年7月30日申请)。这一分析的结论是;在大肠杆菌菌株CD613中克隆的550bp阿凡曼链霉菌基因组PCR产物确实代表了一种新的E1-α
bkd基因片段。
(f)
全可凡曼链霉菌bkd基因簇的的克隆、限制性分析和 Southern印迹分析及染色体图的构建
如以上所述,原0.55kbPCR片段含有一个内0.35kbSalI片段。将这一小片段用作放射性活性标记探针经菌落杂交来筛选阿凡曼链霉菌基因组DNA粘粒文库。识别并回收10个克隆。限制性分析和Southern印迹杂交分析表明,所述10个克隆均含有来源于相同染色体区的重叠序列。高度严格地使用相同探针进行阿凡曼链霉菌ATCC 31272 SC2的消化的染色体DNA的Soutbern印迹分析。后一分析证实从基因组文库回收的克隆的同一性。令人惊奇的是,所述粘粒克隆中的两个也杂交到
bkdA特异性探针(参见Denoya,C.D.,1993,“Cloned genes encoding branched-chain alpha-ketoacid dehydrogenase complex from Streptomyces avermitilis”,美国专利申请08/100,518,1993年7月30日申请)上,表明这里所述的
bkd基因(命名为
bkdF)可能位于靠近包含
bkdA、
bkdB和
bkdC的基因簇的位置上。构建了含有阿凡曼链霉菌CD613序列的基因组区的限制图(图2)。如从以上讨论的杂交数据所预测的,bkdF基因离
bkdABC基因簇仅12kb。
(g)
得自粘粒克隆的基因组DNA片段的亚克隆和携带bkd 基因簇的阿凡曼链霉菌染色体区的DNA测序
将
BamHI和
PstI基因组片段(覆盖了阿凡曼链霉菌染色体全部CD613
bkd区)从DNA文库粘粒克隆亚克隆进大肠杆菌载体pGEM-3Z中。包括每一质粒简要描述的这一工件中构建的亚克隆的表如下:
1.含有2.3kb
BamHI片段的质粒pCD740;
2.含有1.4kb
BamHI片段的质粒pCD854;
3.含有4.1kb
BamHI片段的质粒pCD713;和
4.含有约5kb
PstI插入物的质粒pCD747。(分别相应于上述4种质粒的大肠杆菌菌株CD740、CD854、CD713和CD747,保藏在美国典型培养物保藏中心,有关这些保藏物的相关信息可以在PCT表RO/134中查到,该表在本申请66页上)此外,从质粒pCD713中携带的4.1kb
BamHI片段衍生含约3.1kb
PstI/
BamHI片段的亚克隆。这一新构建体被称作质粒pCD746,并且来进行DNA测序(如以下描述)。质粒限制性酶切作图、Southern杂交和PCR分析证实了每一亚克隆的同一性。
(h)
从克隆DNA片段获得的DNA测序数据的计算机分析和 阿凡曼链霉菌E1-α、E1-β和E2 bkd开放读框的识别
从大量不同的亚克隆和构建体获得了如下的DNA测序数据:
1.CD613:代表以上“c”和“d”节及实施例2和3中描述的原PCR克隆。它含有开放读框1(ORF-1)的一部分,ORF-1相应于编码BCKDH复合物E1-α组分的
bkdF基因(图3)。
2.CD746:代表得自pCD713的3.1kb
PstI/
BamHI片段(参见以上“g”节)。用SP6载体引物(从Promega Co.购得)经pCD746插入物
PstI末端测序获得的DNA测序数据揭示出部分ORF-2,ORF-2相应于编码BCKDH复合物E1-β组分的
bkdG基因(图4)。
3.CD785:转座子小-γ-δ-1插入物,该插入物用于位于克隆的4.1kb
BamHI基因组片段中
bkdF开放读框下游的DNA区测序。这一小-γ-δ-1插入物命名为“A3”,位于含
bkdF基因的
BamHI末端的约1.7kb处。从插入物A3两个末端进行的DNA测序(参见实施例6c)表明存在相应于E1-β ORF(ORF-2)(
bkdG)的ORF(图5)。
4.CD786:转座子小-γ-δ-1插入物,该插入物用于位于克隆的4.1kb
BamHI基因组片段中
bkdF开放读框下游的DNA区测序。这一小-γ-δ-1插入物命名为“A5”,位于含
bkdF基因的
BamHI末端的约3kb处。从插入物A5两个末端进行的DNA测序(参见实施例6c)表明存在相应于E2 ORF(ORF-3)(
bkdH)的ORF(图6)。
用“DNA Inspector”软件(Textco,N.H.)进行测序的基因组区的移动碱基组成分析(sliding base composition analysis),所述的基因组区含有阿凡曼链霉菌E1-α、E1-β和E2(部分)
bkd开放读框(OFR)。这一分析给出了用30个碱基骨架长度和20的偏移值(offset value)进行的G+C含量平均值分析的轮廓。相应于阿凡曼链霉菌染色体这一区的总G+C含量是69%,也分析了为密码子位置的函数的G+C含量。用带有链霉菌64种基因密码子使用表(F.Wright and M.J.Bibb,1992,
Gene,
113:55-65)的“Codon Preference程序”(Genetics Computer Group,Madi-son,WI)检测开放读框。Codon Preference程序是一种读框-特异性基因探测程序,用于利用其与密码子频率表的类似性或其每一密码子第三位上的组成(通常为GC)的偏移来识别蛋白质编码序列。ORF表示为其各自读框区下面的框。也检测了所有起始(ATG)和终止密码子(垂直线)。在每一读框中发现的稀有密码子标注在每一ORF区下。用25密码子移动窗计算G+C含量,因而在观察到蛋白质编码区的全部影响之前预料到约25个密码子的偏移。获得了以下3种分布图:1.三联体中第一位置;2.三联体中第二位置、3.三联体中第三位置。这一分析的结果是确定了相应于三种BCKDH亚单位(E1-α、E1-β和E2)的三种
bkdORF的位置。
(i)阿凡曼链霉菌bkd突变体的构建
用来引入缺失的技术是一种改进的用于酿酒酵母、大肠杆菌和枯草芽孢杆菌的基因取代方法(Scherer,S.andR.W.Davis,1979,
Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.,76:4951-4955;Shortle,D.,et al.,1982,
Sience,217:371-373;staht,M.L.,and Ferrari,E.,1984,J.Bacteriol.,158:411-418)。这一技术(特别是用于链霉菌的这一技术)的一般性描述可见于Kieser,T.和Hopwood,D.A.的综述性文章“Genetic Manipulation of streptomyces:Integrating Vectors andGene Replacement”(1991,
Methods in Enzgmology,Vol,
204,430-458)。而且,这一方法(包括保证单个克隆分离和增加质粒消除频率必须的附加原生质体制备步骤)的详细描述可见于Anzai等的文章“Replacement of
Streptomyces hygroscopicus genomic segme-nts with
in vitro altered DNA sequences”
Joural of Antibiotics,1988,vol.XLI,2,pp.226-233。
用基因取代培育工业突变株的一个关键性步骤是构建在所述特定菌株中有效发挥作用的整合载体。此外,当在链霉菌染色体中进行基因取代时,一个主要问题是载体的消除。用于链霉菌的带有可选择性标记的大肠杆菌质粒可看作是理想的,因为它的不能在链霉菌中复制。大肠杆菌质粒已成功地用于生二素链霉菌和变青链霉菌中(Kieser,T.,and Hopwood,D.A.,1991,Genetic Manipulation ofStrep-tomyces:Integrating Vectors and Gene Replacement,in:Methods in Enxymology,vol.
204,430-458)。然而,在我们经历的实验中,这一策略在阿凡曼链霉菌中表现出低的整合效率,极易引起单交换现象。
我们最近已研究出大量多用途穿梭载体,该载体对于在链霉菌大肠杆菌二者中克隆和在链霉菌中分子遗传学技术方面的各种用途上有用)C.D.Denoya,1993,“Novel Bacterial Plasmid ShuttleVectors for
Streptomyces sp.and
Escherichia coli”,美国专利申请032,925,1993年3月18日申请)。这些穿梭载体是结构稳定的,并且在大肠杆菌和大量链霉菌的种中有效地复制,使宽的大小范围内的克隆DNA片段从一种宿主向另一种宿主的来回转移。三种穿梭载体(pCD262、pCD385和pCD500)携带链霉菌温度敏感性复制起点,该复制起点控制链霉菌中的中到高拷贝数。这一复制子的温度敏感性使其能用于链霉菌基因取代和突变体设计实验中。
穿梭载体pCD262和pCD500已成功地用于构建本文所述的
bkd-缺损菌株中。这一载体以自身复制的高拷贝数质粒稳定地保持在链霉菌中。然而,当已用这些载体中任何载体转化的阿凡曼链霉菌菌株经受苛刻的条件(如高湿)、孢子形成或原生质体制备和再生时,可回收到许多无质粒的菌落。我们已利用这一特点,在阿凡曼链霉菌基因破坏实验中将pCD262或pCD500用作整合载体。
阿凡曼链霉菌中的基因取代机制被假定为导致整合和后续分离步骤(其中整合质粒被切除)的双交换或单产换。我们已观察到阿凡曼链霉菌中的双交换和单交换现象。经双交换和单交换两种机制,接着切除,产生相同的产物。经采用这一方法,我们能破坏相应于本文所述阿凡曼链霉菌
bkd基因簇
bkdF基因的E1-α开放读框。这一破坏作用涉及影响编码BCKDH复合物E1-α亚单位的基因的5’-半边的约1.4kb染色体缺失。所形成的表现出
bkd突变体所有特有表型特征的突变菌株是稳定的,并且能被用于经发酵产生有价值的新阿凡曼菌素产物。
更具体地说,我们通过用得自
Saccharo polys pora erythraea的ermE基因(赋予红霉素抗性)取代阿凡曼链霉菌ATCC 31272 SC2染色体中E1-αBCKDH基因(
bkdF)区段构建了
bkdF突变体。如以上提及的,这是经采用新双功能(大肠杆菌/链霉菌)载体(pCD262)获得的,该载体在有关链霉菌的克隆和基因取代两种实验中有效地发挥作用。如图7所示,画出(从左到右)了阿凡曼链霉菌染色体中三个邻近的
BamHI限制片段2.3kb、1.4kb和4.1kb。1.4kb
BamHI基因组片段携带E1-α开放读框(ORF-1)(基因
bkdF)的起始部分。4.1kb
BamHI携带
bkd基因簇剩下的部分(
bkdF末端、
bkdG和
bkdH)。
质粒pCD768是穿梭载体pCD262的一个衍生物,pCD262携带位于1.4kb
BamHI片段侧翼的两个阿凡曼链霉菌基因组片段(2.3和4.1kb
BamHI片段)(图8)。此外,pCD768携带位于2.3和4.1kb
BamHI片段之间的
ermE标记。该
ermE标记以与OR1-1(
bkd F)相反的取向存在,以避免由下游基因的超量表达引起的可能的麻烦。预料这一构建体经重组可产生宿主基因组中1.4kb缺失(ORF-1受影响)。
将质粒pCD768转化进阿凡曼链霉菌ATCC 31272 SC2宿主原生质体。选择出对红霉素(
erm-R)和硫链丝菌肽(tsr-R)两种抗生素有抗性的转化体(参见实施例9)。使转化体#1(CD783)在液体培养基中生长,制备原生质体,并平板接种到含红霉素的琼脂培养基上。选择50个克隆并进一步分析:46个是erm-R、tsr-R;4个是erm-R、tsr-S(pp15、pp17、pp22和pp40)。进一步分析后一组的4个克隆和前一组的2个克隆(pp14和p21,参见实施例9表1)。所有这些克隆均表现出如下的
bkd-缺陷表型:所有4个erm-R,tsr-S都不能在1LV基本培养基板上生长;当试验BCKDH复合物E1组分时它们没有活性;除非补加S(+)-2-甲基丁酸或异丁酸,它们不能经发酵合成天然阿凡曼菌素(参见实施例9)。此外,当CHC加到发酵培养基中时,可合成新阿凡曼菌素(CHC-阿凡曼菌素),说明
bkd阻断不影响阿凡曼菌素生物合成的细胞机制(参见实施例9)。这一组4个中的1个克隆(克隆pp15)事先命名为阿凡曼链霉菌菌株CD794,并作为本发明的例证保藏在美国典型培养物保藏中心,最后,Southern杂交分析清楚地证实,如所预期的,靠阿凡曼链霉菌ATCC 31272 SC2中的基因取代,相应于
bkdF基因的ORF-1被破坏(参见实施例15)。
实施例
以下是用于识别、克隆和分析阿凡曼链霉菌
bkdF基因的实验方法的详细实施例(附图也说明了这些方法)。此外,也描述了经基因取代构建两种
bkd-缺陷突变体的方法。也描述了分子生物学领域中专业人员公知的标准技术其它细节和所使用的特定的酶的表示方法(例如Sanbrook等的实验室手册“分子克隆”(Cold SpringHarbor Laboratory,1988)中的方法)
实施例1
阿凡曼链霉菌基因组DNA的制备
于29℃下在YPD-2琼脂培养基上以铺满菌苔的方式培养阿凡曼链霉菌(单菌落分离物#2)菌丝体7天。培养基的组成为:Difco酵母提取物 10gDifco Bacto-胨 10g葡萄糖 5gDifco Bacto琼脂 20g乙酸钠 2gMOPS 10g
PH值调至7.0。
终体积11。
在121℃下高压灭菌25分钟。
用该菌丝体接种到在300ml折流瓶中的30ml AS-7培养基(参见Hafner等1988,欧洲专利申请号:88300353.5,公开号:0284176)中,在29℃下振荡(230rpm)培养24小时。所述培养基包括:稀释淀粉1 20gArdamine pH2 5gPharmamedia3 15gCaCO3 2g
用NaOH调PH至7.2。
终体积:11。
在121℃下高压灭菌25分钟。
1经用“termamyl”(一种从Novo Enzymes,Wilton,CT获得的得自地衣形芽孢杆菌的α-淀粉酶)水解淀粉至约40%葡萄糖当量制备。
2从Yeast Products,Inc.,Clifton,NJ 07012获得。
3从Traders Protein,Memphis,TN38108获得。
用约0.3ml上述培养物接种到另一个含有30ml改进的液体酵母提取物麦芽提取物(YEME)培养基(Bibb,M.J.,Freeman,R.F.,and D.A.Hopwood,1977,
Mol.Gen. Genetics,154:156-166)的折流瓶中。改进的YEME培养基每升含有:Difco酵母提取物 3gDifco Bacto-胨 5gOxoid麦芽提取物 3g蔗糖 300g葡萄糖 10g
在121℃下高压灭菌40分钟。
高压灭菌后加入2ml 2.5m MgCl2·6H2O。
终体积调至11。
在29℃下使培养物生长48-72小时。离心收集菌丝体,按教科学“Genetic Manipulation of
Streptomyces,A LaboratoryManual”(The John Innes Foundation,Norwich,U.K.,1985,byD.A.Hopwood et al.)中所述的“Isolation of Strep to myces TotalDNA by Caesium Chloride Gradient Centrifugation:Procedure 2”方案制备基因组DNA。将DNA沉淀悬浮到3ml TE缓冲液(10mMTris-HCl,pH8.0,1mMEDTA)中。
实施例2
阿凡曼链霉菌基因组DNA扩增的聚合酶链反应
用Perkin-Elmer Cetus热循环器酶促扩增阿凡曼链霉菌基因组DNA。用
Taq聚合酶(Perkin-Elmer Cetus)和缓冲液进行PCR反应30个循环,所述缓冲液(由制造者提供)中存在200μmoldNTP、0.5μmol各引物、50ng模板DNA和2.5单位酶,终体积100μl。第1个循环的热分布型为:95℃下3分钟(变性步骤)、55℃下2分钟(退火步骤)和72℃下2分钟(扩增步骤)。除了变性步骤缩短到1.5分钟外,后续的29个循环具有类似的热分布型。DNA引物由Genosys Biotechnologies,Inc.(Texas)提供,右引物(图1)是:
5′-AAGAATTCGAGCTCGGCGACGGCGCCACCTCCGA
GGGCGAC-3′(SEQUENCE ID NO.9),
左引物(图1)是:
5′-AAGGATCCTCTAGAGGTSSWGTGGKGGCCGATSCGGWA-3′(SEQUENCE ID NO.10)。
用国际生物化学联合会(1UB)核苷酸命名规则描述DNA序列。按如下的1UB组码识别丰余序列:K=G+T、S=G+C、W=A+T。与E1-α
bkd基因不同源的和为克隆目的掺入到引物中的限制识别序列是下面划线的(参见图1)。扩增产物用琼脂糖凝胶电泳按大小分成不同的组分。按Sambrook et al.,1989,“Molecular Cloning:Alaboratory Manual”,2nd Edition,ColdSpring Harbor Lab,N.Y.r描述,将PCR样品在100V下在1×TBE缓冲液(90mM Tris-HCl,pH8.5,90mM硼酸,2.5mM EDTA)中的水平1%琼脂糖凝胶中电泳1.5小时。分离的PCR DNA产物用溴化乙锭染色在凝胶上定位,用365nm紫外光使荧光带可见。在以上所述的PCR条件下,当使用这一引物组合时,测得单独的DNA带(长度约550碱基对)。
实施例3
将0.55kb PCR扩增的阿凡曼链霉菌基因组DNA片段克隆进大肠杆菌载体,接着转化进大肠杆菌宿主。
A.0.55kb PCR产物的回收
如以上所提及的,用阿凡曼链霉菌基因组DNA为模板和右及左引物组合经PCR扩增0.55kb DNA片段。如图1所示,右引物具有位于5′末端的
EcoRI识别位点,左引物具有位于5′末端的XbaI识别位点。用连接步骤(其中用
EcoRI和
XbaI消化插入物和克隆载体两者)克隆0.55kb PCR片段。扩增后(如实施例2的描述),将约80μl PCR反应混合物加到1%琼脂凝胶上进行电泳。按以上描述使0.55kb DNA片段可见,按以下方法用电洗脱回收:用剃刀片移去0.55kb DNA带,用单向电洗脱器(International BiotechnologyInc.,New Haven,CT)在装有7.5M乙酸铵的V-形孔中于80V下电洗脱35分钟从琼脂糖凝胶上回收DNA。用乙醇沉淀该DNA,离主获得沉淀,最后溶解到20μl DNA缓冲液(10mM Tris-Hcl、4mM NaCl、0.1mM EDTA,pH7.5)中。
B.
EcoRI和
XbaI限制酶消化
按供给者(Boehringer Mannheim Biochemicals)推荐的方法用限制酶
EcoRI和
XbaI各1单位同时消化以上回收的全部PCR物质。类似地,于37℃下在总反应体积为60μl的制造者指定的试验缓冲液中温育约1μg质粒pGEM-3Z(Promega Corp.,Madison,WI)和2单位的限制酶
EcoRI和
XbaI(所有限制酶均从BoehringerMannheim Biochemicals购得)4小时,以产生线性分子。然后,PCR片段和线性化的载体分别用等体积的苯酚-氯仿抽提两次,分别用等体积的乙醚抽提两次,最后,加入2体积的无水乙醇沉淀DNA。经在10,000xg下离心10分钟回收沉淀的DNA,并真空下干燥。将最终的PCR片段沉淀重新溶解到20μl DNA缓冲液中,最终的线性化载体沉淀重新溶解到12μl DNA缓冲液中。
C.连接产生pCD613
在20μl总反应体积中于15℃在供给者限定的条件下将约11μl
EcoRI/
XbaI处理过的0.55kb PCR DNA产物和约1μl
EcoRI/XbaI线性化的pGEM-3Z与1单位连接酶(New EnglandBiolabs,Inc.,Beverly,MA)一起温育过夜。将试验微管置于冰上终止反应,按Sambrook
et al.,1989,″Molecular Cloning:A LaboratoryManual″,2nd Edition,Cold Spring Harbor Lab.N.Y.描述的标准方法用反应混合物(20μl)转化感受态大肠杆菌DH5-α细胸。回收许多氨苄青霉素抗性转化体。质粒载体pGEM-3Z含有得自大肠杆菌
lac操纵子的DNA的DNA片段,该片段编码β-半乳糖苷酶的氨基末端片段(Yanisch-Peron,C.,Vieira,J.,and J.Messing,
Gene,33,103,1985〕。这一片段)其合成可被异丙基硫代-β-半乳糖苷酶(IPTG)诱导)能与由宿主编码的β-半乳糖苷酶缺损形式等位基因内(α)互补。与诱导剂1PTG接触的大肠杆菌细胞合成酶的两种片段,且当平板接种到含有生色底物5-溴-4-氯-3-吲哚基-β-D-半乳糖苷(X-gal)的培养基上时形成蓝色菌落。外源DNA片段插入到质粒的多克隆位点灭活β-半乳糖苷酶氨基末端片段并废除α-互补。因此,携带重组质粒的细菌产生白色菌落。从这一转化实验回收许多白色菌落。这些菌落应含有质粒pCD613。选择一个菌落(指定为菌株CD613)并进一步分析证实了这一点,按标准的微生物学方法将大肠杆菌菌株CD613的单菌落接种到含50μg/ml氨苄毒霉素的Luria-Bertani(LB)液体培养基中。LB培养基包含:Bacto-胰化蛋白胨 10gBacto-酵母提取物 5gNaCl 10g
用5N NaOH调PH至7.0。
溶液的终体积调至1l。
在121℃下高压灭菌20分钟。
将培养物在35℃下培养过夜。第2天早晨,在4℃下以10,000rpm离心5分钟收获细菌细胞。用改进的Birnboim和Doly方法(
Nucleic Acids Res.,1979
7:1513-1523),按Denoya等的描述(
Microbios Lett.,1985,
29:87-93)从刚收获的大肠杆菌CD613细胞分离质粒载体。最后将分离的质粒DNA溶解到DNA缓冲液(10mMTris-HCl、4mM NaCl、0.1mM EDTA;pH7.5)中,达到每10μl缓冲液含约1μg pCD613的浓度。证实性限制分析(使用EcoRI和
XbaI)表明,与预期的一样,pCD613携带0.55kb DNA插入物。
实施例4
均匀放射性标记的双链DNA探针的制备
由切口翻译(参见Sambrook
et al.,1989,“Molecular Cloning:ALaboratory Manual”,2nd Edition,Cold Spring Harbor Lab,N.Y.一般性地描述了这一技术)制备双链DNA探针。首先,用基本上按实施例1中所述的合适的限制消化和电洗脱纯化方法制备携带靶序列的特异性DNA片段。在每一种情况下按从供给者获得的指导用〔α-32P〕dCTP(脱氧胞苷5′-三磷酸四(三乙胺)盐,〔α-32P〕-)(从NEN-Dupont购得)和BRL Nick Transltion System(从BRLLifeTechnologies,Inc.购得)标记约1μgDNA。在50μl体积中完成典型的反应。在加入5μg终止缓冲液(如在BRL推荐的方法中所述的)后,按供给者的说明用Stratagene推进柱从未掺入的核苷酸中分离标记的DNA。按照这些步骤通常可获得具有超出108cpm/μg许多的特异性活性的32P-标记DNA。
实施例5
经Southern杂交分析阿凡曼链霉菌基因组DNA
于37℃用2单位的限制酶
BamHI消化约10μg纯化的阿凡曼链霉菌基因组DNA最少2小时。消化完后,经通过1%琼脂凝胶的电泳(参见实施例1A)分离DNA片段,并用毛细管转移法(Southern,E.M.1975,
J.Mol.Biol.,
98:503)向尼龙膜(孔径0.45μm)(Schleicher和Schuell Ngtran膜)转移一夜。第2天,将龙尼膜包进塑料包中,使每一膜的DNA边暴露在紫外辐射源(302nm)下以将DNA固定在膜上。按Sambrook
et al.(1989),″MolecularCloning:A Laboratory Manual″,2nd Edition,Cold Spring HarborLab,N.Y.(此后称作“the Sambrook
et al.Manual″)中描述的方案进行放射性标记RNA或RNA探针对固定在龙尼膜上的DNA的杂交。在42℃下进行预杂交和杂交。杂交溶液含有6×SSC(1X:0.15M NaCl,15mM拧檬酸钠,pH7.0)、10×Denhardt′s试剂〔1X:0.02%菲可(ficoll)、0.02%聚乙烯吡咯烷酮、0.02%牛血清白蛋白〕、1%SDS(十二烷基硫酸钠)、100μg/ml变性的片断化的鲑精DNA、100μg/ml大肠杆菌tRNA和50%甲酰胺(Fluka)。过夜杂交后,按以下方式洗涤膜:两次用1×SSC、0.1%SDS于室温下洗涤15分钟、两次用0.1×SSC、0.1%SDS于42℃下洗涤15分钟。在某些试验中,于65℃在不存在甲酰胺的情况下进行杂交,且用SSPE(1X:0.18M NaCl、10mM Na3PO4、PH7.7,1mM EDTA)代替SSC。最后,将膜对X-光胶片曝光以获得放射自显影影像。
实施例6
DNA测序
A.质粒pCD613中携带的双链DNA PCR产物的测序
按实施例2所述制备超螺旋质粒pCD613。在测序前将约4μg双链pCD613转化成单链形式。它是按
Taq Track SequencingSystems Technical Manual(Promega Co.,Madison,WI.)中的描述经碱变性处理完成的。寡核苷酸测序引物由Genosys BiotechnologiesInc.(Texas)合成。载体引物1(5′-AAGGATCCTGCAGCCCAGTCACGACGTTGTAAAACGA-3′)(SEQUENCE ID NO.11)描绘出pGEM-3Z多克隆位点(MCS)的
EcoRI位点(2689-2712位)的上游,引物2(5′-AAGGATCCTGCAGACAGCTATGACCATGATTACGCCA-3′)(SEQUENCE ID NO.12)描绘出MCS的HindIII位点(91-114位)的下游。
B.
来源于pCD613的0.35kb SalI阿凡曼链霉菌基因组片段克隆 到噬菌体M13中和DNA测序。
如以前的讨论,限制分析显示,PCR来源的基因组片段CD613含有一个内0.35kb
SalI片段。为了制备在Sanger′s二脱氧测序法(Sanger et al.,1977,
Proc.Nat.Acad.Sci.USA,
74:5463-5467)中用作模板的单链重组DNA,将0.35kb
SalI阿凡曼链霉菌DNA片段克隆进噬菌体M13mp18中。于37℃用限制酶SalI消化约2μg质粒pCD613(按以前所述的小量制备法制备)2小时以释放0.35kb阿凡曼链霉菌基因组片段。使消化混合物在1.2%琼脂糖凝胶中电泳,按以前所述方法电洗脱和沉淀0.35kb片段。此外,用
SaII消化约1μg纯化的双链复制型(RF)M13mp18 DNA,用小牛小肠碱性磷酸酶(CIAP)(从Promega Corp.,Madison,WI购得)脱磷酸化,最后按前面所述连接到0.35kb DNA片段上。纯化的RF M13克隆载体从New England Biolabs购得。连接混合物用于转染感受态大肠杆菌JM109细胞。回收几个白色噬斑。选择以相反方向携带插入物的来源于mp18转染的两个单独的白色噬斑。使噬菌体生长,并按Sambrook et al.,Manual中所述制备单链DNA。按供给者(Promega)提供的说明,用M13-特异-40测序引物(New EnglandBiolabs,Catalog No.1212)、脱氧腺苷5′-〔α-硫代〕三磷酸、〔35S〕(NEN-Dupont)和Taq Track测序试剂盒(Promega)进行每一单链DNA模板的DNA测序。
C.
位于携带部分bkdF基因的克隆4.1kb BamHI片段上的某些 基因组区的转座子易化测序
将小-γ-δ-1转座子插入物用于位于得自阿凡曼链霉菌的克隆的4.1kb
BamHI基因组片段中
bkdF开放读框下游的DNA区的测序。小-γ-δ-1元件是一种小的(1.8kb)γ-δ(Tn1000)衍生物,该衍生物含有Tn5的kan基因和在γ-δ一个末端的两个40bp反向重复序列之间克隆的γ-δ的解离(res)位点(Berg,C.M.et al.,1992,Gene,113;9-16)。小-γ-δ-1缺乏编码转酶和解离酶,因此依赖其宿主提供转座和解离功能。因此,在缺乏辅助转座子的菌株中,小-γ-δ-1不转移且插入物是稳定的。反向重复序列内末端是可用作DAN测序引物结合位点的唯一序列。基本上按Berg C.M.etal.,(1993,Methods in Enzymology,Academic Press,vol.218,P.279-306)的描述制备转座子插入物。每一插入的转座子用作位于插入物两个位点的链霉菌DNA测序的起始模板。使用两种“通用”引物:“res”引物(5’-GTAGGGAGCCTGATATG-3’)(SEQUENCE ID NO.13)和“Kam”引物(5’-GCTATCCGCGCATCCAT-3’)(SEQUENCE IDNO.14)。命名为“A3”(克隆CD785)和“A5”(克隆CD 786)的两个小-γ-δ-1插入物分别距含
bkd F ORF的
Bam III端约1.7kb和3kb。在每一插入物两端进行的DNA测序表明,A3插入物(序列CD785)靠近E1-β ORF(
bkdG)末端(图5),A5插入物(序列CD786)靠近E2 ORF(
bkd H)末端(图6)。
实施例7
全bkd阿凡曼链霉菌基因簇的克隆
和染色体图的构建
用
Sal I限制酶限制性酶切约4μg纯化的pCD613,经在1.2%琼脂糖凝胶中电泳分离DNA片段。经电洗脱回收约0.35kb
sal IDNA片段(推带有特异于阿凡曼链霉链菌
bkd F E1-α基因的序列),按前面的描述经切口翻译标记。然后将〔32P〕标记的DNA片段用作探针,筛选阿凡曼链霉菌基因组粘粒文库。制备基因组文库的一般性方法的详细描述可见于Sambrook
et alManual.Hopwood等(1985)的“Genetic Manipulation ofStreptomyces A Laboratory Manual”中给出了一种链霉菌染色体文库制备方法的完整的描述。粘粒载体的描述见于“CosmidVectors for Streptomyces Genemic DNA Cloning”(DenoyaC.D.U.S专利申请048,719,1993年4月16日申请)
在筛选2200多个重组文库克隆后识别出10个克隆。在LB液体培养基中培养这10个杂交克(命名为大肠杆菌克隆CD519、CD521、CD691、CD692、CD694、CD695、CD696、CD697、CD698和CD699),并按以前的描述由各培养物制备质粒。限制分析和Southern印迹杂交分析揭示出10个克隆相关,具有重叠染色体区。令人感兴趣的是,这里所列的命名为CD519和CD521的两个粘粒克隆也包括在用
bdk A探针(参见C.D.Denoya,美国专利申请08/100,518,以上已提及)识别的颗粒克隆表中。按标准方法获得覆盖包括序列CD613在内的全染色体区的阿凡曼链霉菌基因组限制图,在图2中给出。该图也显示了这里所述的新
bkd基因和原来描述的
bkd基因(C.D.Denoya,美国专利申请08/100,518,1993年7月30日申请)之间的连锁。两个
bkd基因簇相距的12kb。
实施例8
用穿梭载体转化变青链霉菌和从变青链霉菌转化体大量制备
质粒载体
将变青链霉菌菌株TK64用于这些实验中。变青链霉菌的生长和原生质体化的培养基,原生质体制备和转化均按D.A.Hopwood et al.Genetic Manipulation of Streptomy ces-alaboratory manual,1985,The John InnesFoundation,Norwich,U.K.的描述进行。此外,后面的参考文献给出了变青链霉菌菌株TD64的详细描述。选择硫链丝菌肽抗性的直接用穿梭载体pCD262或大量衍生物转化的变青链霉菌原生质体。从选择的转化体按以下方法制备质粒DNA:使培养物在液体YEME培养基(Bibb,M.J.,Free man,R.F.,andD.A.Hopwood,1977,Mol.Gen.Genetics,154:155-166)中生长。YEME培养基每升含有:3g酵母提取物、5g bacto-胨、3g麦芽提取物。340克蔗糖。高压灭菌后,加入2ml 2.5M Mgcl26H2O。于30℃下使培养物生长40-48小时。经离心从500ml链霉菌细胞培养物收获菌丝体,并重悬到终体积为50ml的溶菌酶溶液(在0.3M蔗糖、0.025M Tni-Hcl(PH8.0)和0.025MEDTM中的2mg/ml溶菌酶)中。这一步骤后,基本上按手册(“Genetic Manipulationof streptomyces,A Laboratory Manual”,The John InnesFoundation,Norwich,1985)中的描述用碱溶法制备质粒。将DNA沉淀再溶解到500ml 10mM Tris-Hcl/Ph8.0,1mM EDTA中,并基本上按Sambrook et al.Manual中的描述经氯化铯-溴化乙锭梯度超离心进一步纯化。最后将分离的质粒DNA溶解在DNA缓冲液(10mM Tris0Hcl、4mM Nacl、0.1mM EDTA;PH7.5)中,达每10μl缓冲液约1μg质粒DNA的浓度。
实施例9
阿凡曼链霉菌
bkdF突变体的构建
用来引入染色体缺失的技术是用于酿酒酵母、大肠肝菌和枯草芽孢杆菌中的变化的基因取代方法(Scherer,S.andR.W.Davis,1979,
Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.76:4951-4955;Shortle,D.
et al.1982
,Science,217:371-373;Stahl,M.L.,andFerrari,E.,1984,
J.Bacteriol.,158:411-418)。这一技术的一般性描述(特别是用于链菌的)可见于综述性文章“Genetic Manipulationof Streptomyces:Integrating Vectors and Gene Replacement”(bykieser,T.,and Hopwood,D.A.1991,in:Methods inEnzymologg,vol.204,430-458)。而且,这一技术(包括保证单个克隆分离和增加质粒消除频率必须的附加原生质体制备步骤)的详细描述可见于Anzai等所著的文章,标题为“Replacement ofStreptomy ecs hygroscopicus genomic segments with in vitroaltered DNA sequence”(The Jorunal of Antibiotics,1988,VolXLI,No.2,pp:226-233)。原生质体制备和再生步骤常常刺激质粒丧失。然而,在一或两轮非选择性生长后,大多数双功能(大肠杆菌/链霉菌)载体(例如pCD262,用于这一工作中)偶然引起产生无质粒细胞(Kieser,t.,and Hopwood,D.A.1991,in:Methods inEnzymology,Vol.204,430-458)。
A.携带bkd F基因灭活拷贝的穿梭载体的构建
如图7所示,给出了(从左到右)包括这里讨论的
bkd基因族的阿凡曼链霉菌染色体区中三个邻近的
Bam HI限制片段:2.3kb、1.4kb和4.1kb。1.4kb
Bam HI基因组片段携带E1-α开放读框(ORF-1)起始部分。(
bkdF)。4.1kb
Bam HI携带剩下的
bkd基因簇(
bkd F末端部分、
bkd G和
bkdH)。将这三种限制片段每一种亚克隆进大肠杆菌载体pGEM-32。形成的构建体是:质粒pCD740(携带2.3kb
Bam HI片段)、质粒pCD854(携带1.4kb
BamHI片段)和质粒pCd713(携带4.1kb
BamHI片段)(参见图2)。在两个步骤中完成携带
bkd F基因灭活拷贝的载体的构建。首先,按以下方法将携带erm E标记(使对抗生素红霉素有抗性)和4.1kb
BamHI阿凡曼链霉菌片段和1.6kb
BglII片段两者克隆进穿梭载体pCD262(C.D.Denoya,“Novel Bacterial Plasmid Shutlle Vectors for streptomyces sp.and Escherichia Coli”,美国专利申请032,925,1993年3月18日申请):用限制酶
BamHI切割约1.5μg质粒pCD713,并在0.8%琼脂糖凝胶上电泳。电泳后,用Geneclean II试剂盒和制造者(Bio 101 Inc.,La Jolla,CA)推荐的方法从凝胶上回收4.1kbBamHI片段。类似地,用限制酶
Bgl II切割约2μg pIJ4026,并在0.8%琼脂糖凝胶上电泳。质粒PIJ4026是携带Saccharopolyspora erythraea(原来称为Strep tomyces erythraeus)erm E基因的大肠杆菌克隆载体pUC18的一种衍生物(参见M.B:66 et al.,1985,Gene,41:357-368,和D.A.Hopwood etal.,Genetic Manipulation of Streptomyces-A Laboratorymanual,1985,the John Innes foundation,Norwich,U.K)。电泳后,用Geneclean II试剂盒和制造者(Bio 101 Inc.,La Jolla,CA)推荐的方法从凝胶上回收1.6kb
BglII片段。此外,一份纯化的质粒pCd262用限制酶
BglII线性化,用小牛小肠碱性磷酸酶(CIAP)(从Promega Corp.Madison,WI购得)脱磷酸化,最后连接到以上描述的4.1kb
BamHI和1.6kb
BglII纯化片段上。通过将试验微管置于冰上终止连接反应,然后按实施例1中所描述的标准方法将反应混合物(20μl)用于转化感受态大肠杆菌DH5-α细胞。回收到许多氨苄青霉素抗性转化体。这些菌落应含有质粒pCD761。通过选择一个菌落(指定为菌珠CD761)。并进一步分析重组质粒(用几种限制酶从这一菌株回收到)证实了这一点。质粒pCD761是穿梭载体pCD262的一种衍生物,携带4.1kb阿凡曼链霉菌
BamHI基因组片段和1.6kb bglII DNA片段(携带ermE标记)两者(两者按图7所示取向)。第二步,质粒pCD761用
BglII线性化,用CIAP脱磷酸化,并连接到从质粒pCD740分离的2.3kb
BamHI阿凡曼链霉菌片段上。通过将试验微管置于冰上来终止连接反应,按实施例1中描述的标准方法,将反应混合物(20μl)用于转化感受态大肠杆菌DH5-α细胞。回收到许多氨苄青霉素抗性转化体。这些菌落应含有质粒pCD768。通过选择一个菌落(指定为菌株CD768)并进一步分析重组质粒(用几种限制酶从这一菌株回收到)证实了这一点。质粒pCD768是穿梭载体pCD262的一种衍生物,pCD262携带两个阿凡曼链霉菌基因组片段(2.3和4.1kb
BamHI)(它们靠近野生型染色体上1.4kb
BamHI片段各端)。此外,pCD768在2.3和4.1kb
BamHI片段之间携带有ermE标记。ermE标记与ORF-1(
bkdF)取向相反,以避免由下游基因的超量表达引起的可能的麻烦。经重组,这一构建体产生了缩主基因组中1.4kb缺失,影响
bkd基因5’-末端。
B.
用穿梭载体转化阿凡曼链霉菌
从转化的大肠杆菌DH5-α或大肠杆菌CD167细胞(菌株CD 167是从大肠杆菌GM2163是从经单菌落分离衍生的,GM2163是从Dr.B.J.Bachmann,Curator,E.ColiGenetie StockCenter,Yale Vniversity获得的)(参见实施例1)或者从转化的变青链霉菌TK64细胞(参见实施例8)制备用于转化阿凡曼链霉菌原生质体的穿梭载体(pCD262、pCD768)。
整个过程中使用阿凡曼链霉菌菌株ATCC31272单菌落分离物#2(SC2)。三种可替换接种物用于制备阿凡曼链霉菌原生质体:1.孢子(按Hopwood et al.,1985,Genetic Manipulation ofStreplomy ces-A Laboratory Manual,The Joh Innesfoundation,Norwich,U.K.所述制备)。冷冻超声过的菌丝体(参见以下制备)和3、YPD-2琼脂上的菌落(参见实施例1)。冷冻超声过的菌丝体按如下方法制备:菌丝体培养物在TrypticaseSoy Broth(TSB)中生长至浊度2到9(在600nm),然后用玻璃组织研磨机匀浆10次,将匀化过的菌丝体用TSB稀释2倍,并加入到无菌聚丙烯离心管中。将超声探针(Bronwill BiosonikIII)浸入到液体深度1-2cm,在50%强度(最大瓦数的一半)下超声处理样品10秒钟。超声处理将菌丝体团块分散成单或双细胞,单位这导致传代培养时出现快速指数生长。超声过的菌丝体制剂稀释至40%甘油的终浓度,吸入到小瓶中,在-85℃下冷冻。将孢子、菌丝体或匀化菌落接种到含0.5%甘氨酸的YEME培养基(参见实施例1)中。按D.A.Hopwood等的描述(GeneticManipulation of Streptomyces-A Laboratory Manual,1985,TheJohn Innes foundation,Norwich,U.D.,按MacNeil,D.J.,andKlapko,L.M.,J.Industrial Microbiol.1987,2,209-218的描述改进)进行阿凡曼链霉菌原生质体制备和转化。分别选择硫链丝菌肽或红霉素抗性的用穿梭载体pCD262或衍生物(例如pCD768)转化的阿凡曼链霉菌原生质体。
C.用PC768分离阿凡曼链霉菌红霉素抗性硫链丝菌肽敏感突
变体
如以上所述,将质粒pCD768转化进阿凡曼链霉菌31272SC2。在再生培养基(RM14)板(参见以上所涉及的培养基组成的描述)上用4μg/ml红霉素选择阿凡曼链霉菌初级转化体。将两个红霉素抗性(erm-R)转化体(1和2号)挑取到含有4μg/ml红霉素或4μg/ml硫链丝菌肽的YPD-2琼脂板(参见实施例1)上。两种转化体均对两种抗生素有抗性(erm-r,tsr-R)选择转化体#1(命名为阿凡曼链霉菌菌株CD783)进一步研究。在YEME液体培养基上培养这一菌株,制备原生质体并平板接种到含红霉素(4μg/ml)的再生培养基板上。包括这一原生质体再生步骤是为了保证单菌落分离及增加质粒丧失(Anzai,H.,etal.,1988)“Replacement of
Streptomyces hygroscopicus genomicsegments with in vitro altered DNA sequences”,
The Journal of Antibiotics vol.
XLI No.2,pp.226-233)。再生许多菌落,将50个克隆挑取到含红霉素或硫链丝菌肽的板上。50个菌落中的46个可以在硫链丝菌肽上生长。总之,46个菌落为erm-r、tsr-r,仅4个菌落为erm-r、tsr-s.erm-r、tsr-S菌落给出整合形成后预期的表型(双交换现象)并已丧失游离复制子。因此,进一步分析给出erm-R和tsr-s表型的4个克隆(pp15、pp17、pp22和pp40)以及为erm-R、tsr的2个克隆(pp14和pp21)(用作对照)。
D.阿凡曼链霉菌bkdF突变体:携带影响bkd F基因5’末端的
染色体缺失的阿凡霉链霉菌表型
进行下列分析:1.在含有作为仅有的碳(C)源的异亮氨酸、亮氨酸和缬氨酸(ILV)的基本培养基琼脂板上的生长能力;2.支链α-酮酸脱氢酶(BCKDH)E1活性试验;和3.发酵产生天然和新阿凡曼菌素的能力。这些方法描述如下:
1.ILV板:使用改变的经典Mg基本培养基(Anderson,E.H.,1946,
Proe.Natl.Acad.Sci.U.S.A.,32:120-128)。该修饰的Mg培养基每升包括:琼脂糖(eakem ME,FMCBioproducts,Rockland,ME)7.5g
蒸馏水 650ml
于121℃下高压灭菌15分钟。冷却时加入以下无菌溶液:
25×M9盐溶液 40ml
矿质原料溶液 2.1ml
0.1MFeSO4·7H2O 0.1ml
ILV混合物 250ml
PH调节至7.0。
终体积:1l。
每板注入约25ml。
25×M9盐经将下列盐溶解在去离子H2O中达到终体积1.2l:制备:
K2HPO4 125g
NaH2PO4·H2O 55g
NaNO3 48g
PH调至7.0
将该盐溶液分成160ml等分样,于121℃下高压灭菌15分钟。
矿质原料溶液包含:
1M MgSO4·7H2O
1M CaCl2
0.25M MnSO4·H2O
于121℃下高压灭菌15分钟。
ILV混合物经将L-异亮氨酸、L-亮氨酸和L-缬氨酸各10g溶解到1l去离子水中制备。混合物经过滤灭菌。
在这些板上,
bkd F-缺陷突变体不能生长。于29℃下培养14天后,记录不利用ILV者。
2.BCKDH E1试验:用原来描述过的改进的放射化学试验方法(Hafner,E.W.ct al.1991,J.Antibiotics,44 349-356)测定BCKDH E1活性。使选择的分离物在YPD-2琼脂板上于29℃下生长6-7天。生长后,用无菌牙签从生长在YPD-2琼脂板上的各菌落挑出针尖大小的细胞群,并转移到15ml玻璃闪烁瓶底部。重新悬浮细胞,并加入100μl甲苯/α-〔1-14C〕酮异己酸盐混合物(按以下描述制备)透化。立即用己用Solrable(一种用NEN-Dupont购得的组织和凝胶溶解剂)浸泡的Whatman4CHR纸(hatman catalog number 3004614)覆盖瓶口。将一弹性帽稳定地置入到瓶上,帽和瓶的上半部均用石蜡膜(parafilm)包裹,并于29℃在轻轻振荡下培养3.5小时。培养完成后,将滤纸转移到含有4ml“Ready safe”(Beckman)液体闪烁混合物的7ml玻璃闪烁瓶中以测定放射活性。在用这一溶剂平衡4小时或4小时以上后测定放射活性。通过将22μlα〔1-14C〕酮异己酸盐原料溶液加入到含5%甲苯(已经超声处理产生乳白色甲苯分散液)的1ml Mg盐培养基(Davis,R.W.,etal.,1980,appendix 1:Media,Drug Concentrations,and nutritionalsupplements in“A manual for Genetic Engineering-AdvancedBacterial Genetics”,P.203,Cold spring HarborLaboratory,N.Y.)中制备甲苯/α-〔1-14C〕酮异己酸盐混合物。通过将2.8μ 20mM α-酮异己酸盐(钠盐,Sigma K-0629)、50μlα〔1-14C〕酮异己酸盐(55mCi/mmol,50μci/ml,Amersham)和足够量的水混合至终体积1ml制备α-〔1-14C〕酮异己酸原料溶液。用基于Bradford染色-结合方法(Bradford,M.,Anal.Biochem.,72:248,1976)的Bio-Rad蛋白质测定法(Bio-Rad laboratorie,Richmond,California)测定蛋白质浓度。支链α-酮酸脱氢酶E2组分的比活性表示为每分钟每mg蛋白质放出和CO2的微微摩尔数(表1)。
3.阿凡曼菌素产生:将在新鲜的改进YPD-2琼脂板(改进包括从常规YPD-2培养基省去乙酸盐,参见实施例1)上生长5至7天的阿凡曼链霉菌ATCC31272 SC2或阿凡曼链霉菌菌株CD794(
bkdF)菌丝体接种到含8ml基本确定成分培养基(参见以下)的50ml(1×6英寸)培养管中。然后于29℃以45℃角在200RPM下振荡培养该管72小时。生长后,用2ml种子培养物等分样接种另外的300ml培养瓶,培养瓶中含有25ml其中已加入多种脂肪酸的基本确定成分培养基。除了用水解淀粉(114g/l)替代稀马铃薯可溶淀粉,不用亮氨酸和氯化钠,加入甘氨酸(2g/l)外,按现有技术的描述(Hafner,E.W.etal.,1991,J.Antibioties,44:349-356)制备发酵培养基。在某些发酵中,向培养基中加入(0.04%终浓度)S(+)-2-甲基丁酸或环己烷羧酸(CHC)。于29℃振荡(200RPM)培养12天后,用4倍体积的乙腈-甲醇(7∶118)溶剂混合物抽提培养瓶中内含物,将上清液用高效液相色谱(HPLC)进行阿凡曼菌素分析.用Beckmansμm Ultra Sphere ODS C-18柱(4.6mm×25cm),流速0.75ml分钟,经240nm处吸光度测定检测进行HPLC分析。流动相是水(178ml)、乙腈(102ml)和甲醇(加至终体积为2l)。
表1总结出了这些结果,已丧失游离复制子的4个硫链丝菌肽敏感性克隆显示出如下典型的
bkd-缺陷表型:所有4个克隆均不能在ILV基本培养基板上生长,且当进行BCKDH复合物E1组分试验时均无活性。发酵研究表明,阻断培养物不能合成天然阿凡曼菌素。此外,当将S(+)-2-甲基丁酸加入到发酵培养基(0.04%终浓度)中时,合成出“a”型天然阿凡曼菌素;类似地,加入环己烷羧酸(CHC)导致产生新CHC-阿凡曼菌素。这些发酵结果说明,
bkd阻断不影响阿凡曼菌素生物合成的细胞机制。这一4个克隆的组中的1个克隆(克隆pp15,参见表1)事先命名为阿凡曼链霉菌菌株CD794,并作为本发明的一个例子在美国典型培养物保藏中心保藏。有关这一保藏物的相关信息可见于PCT表RO/134(在本申请说明书第66页上)。
表1
多种阿凡曼链霉菌菌株中E1支链α-酮酸脱氢酶活性阿凡曼链霉菌菌 抗性表型b ILV上生长cE1BCKDH比 天然阿凡曼
株a 活性d.e 菌素的产生fATCC 31272 SC2 Erm-s,Tsr-S + 69 +PF 402-77 Erm-s,Tsr-S - 0g -/+1
CD783 Erm-R,Tsr-R + 67 +
pp14 Erm-R,Tsr-R + 65 +
pp21 Erm-R,Tsr-R + 50 +pp15(CD794) Erm-R,Tsr-S - 0g -/+1
pp17 Erm-R,Tsr-S - 0g NTh
pp22 Erm-R,Tsr-S - 0g -/+1
pp40 Erm-R,Tsr-S - 0g NTh
a.使用以下阿凡曼链霉菌:ATCC31272 S2(菌株ATCC31272的单菌落分离物);PF402-77(菌株ATCC31272 SC2的
bkd-缺陷突变体,由化学诱变产生);CD783(用质粒pCD768转化(参见实施例9)的菌株ATCC31272的衍生物);pp14-40(原生质体处理的再生(参见实施例9)后分离的CD783的单菌落衍生物)。
b.Erm-R,对红霉素有抗性,Tsr-R,对硫链丝菌肽有抗性。
c.+或-,能或不能在计加异亮氨酸、亮氨酸和缬氨酸(作为仅有碳源)的基本培养基上生长。
d.以每分钟每mg蛋白质放出的CO2的微微摩尔数表示的支链α-酮酸脱氢酶E1组分的比活性。
e.结果是重复测定的平均值。
f.+或-,经发酵产生或不产生天然阿凡曼菌素。
g.0=不可测。
h.NT,未测试。
i.-/+=经发酵不产生天然阿凡曼菌素;然而当S(+)-2-甲基丁酸加入到发酵培养基中时产生天然阿凡曼菌素,当CHC加入到发酵培养基中时产生新CHC-阿凡曼菌素。
E.
证实bkd-缺陷基因型的Southern杂交分析
用2个erm-R、tsr-s克隆pp15(事先命名为菌株CD794)和pp22(事先命名为菌株CD798)进行Southern杂交分析。这些分析表明,经双交换发生了
ermE标记的染色体组合和1.4kbBam HI基基组片段(携带
bkdF开放读框(ORF-1)的5’末端)的伴随缺失。通过经1%琼脂糖凝胶的电泳分离染色体DNA限制片段,并基本上按实施例5中描述的Southern(1975)方法转移到尼龙上。
实施例10
阿凡曼链霉菌
bkd ABCF突变体的构建
这一实施例描述构建影响下列
bkd基因的稳定阿凡曼链霉菌多重突变体的方法:
bkdA、
bkdB、
bkdC和
bkdF。这些基因中的前面三个分别编码支链α-酮酸脱氢酶复合物的E1-α、E1-β和E2亚单位。这些基因是
bkdABC基因族(如Denoya,C.D,美国专利申请08/100,518(1993年7月30日申请)中描述的)的一部分。
bkdF基因处于以上描述的
bkdFGH基因族中,它编码支链α-酮酸脱氢酶复合物的E1-α亚单位。
A.携带靶染色体区(bkdC)(用可选择的抗生素抗性标记
(ermE)标记)的运送载体的设计和构建
首先,将6.5kb
sphI阿凡曼链霉菌31272基因组片段(携带bkd ABC基因族)亚克隆进穿梭/运送载体PC500的ShpI克隆位点(参见Denoya,D.D.,“Novel Bacterial Plasmid Shuttle Vectorsfor
streptomyces and
Escherichia coli”,美国专利申请08/032,925,1993年3月18日申请),形成质粒PC544(参见图9)。接着,将携带
ermE标记的1.7kb
BalII pIJ4026片段插入到存在于pCD544插入物中的唯一
BglII位点。质粒PIJ4026是携带Saccharopoly spora erythraea(原来称为Streptomyceserythraeus)ermE基因的大肠杆菌克隆载体PUC18的衍生物(参见M.Bibb
et al.,1985,
ene,41:357-368和D.A.Hopwood
et al.,Genetic Manipulation of
Streptomyces-A LaboratoryManual,1985,the John Innes Foundation,Norwich,U.K)所形成的构建体(pCD547)具有一个插入的
bkdC基因灭活拷贝。
B.
遗传标记bkdC突变株的构建
按照标准的基因取代方法(参见实施例9)用质粒PCD547作为运送载体(参见前面部分),阿凡曼链霉菌野生型菌株ATCC31272 SC2作为宿主,选择12个表现出红霉素抗性硫链丝菌肽敏感性表型的原生质体制备/然后再生的单菌落。这一12个菌落的组中的一个事先命名为阿凡曼链霉菌菌株CD570(参见图9),在以下的基因取代步骤中将其用作宿主(参见下述)。
C.携带突变(缺失)bkd ABC靶区的运送载体的设计和构建
质粒pCD728是携带两种阿凡曼链霉菌染色体片段(7kbBamHI,从亚克隆pCD528制备;和6.5kb
BglII/
BamHI,从亚克隆pCD559制备(参见图9))的穿梭载体pCD262(参见Denoya,C.D.,“Novel Bacterial Plasmid Shuttle Vectors forStreptomy ces and
Escherichia cdi”美国专利申请#08/032,925,1993年3月18日申请)的一个衍生物。这里使用的亚克隆的详细描述也参见Denoya C.D.,US专利申请08/100,518(1993年7月30)日申请)。
D.
非标记的bkd ABC缺失菌株的构建
将质粒pCD728转化进阿凡曼链霉菌菌株CD570原生质体,回收推定的转化体。也经转化将对照质粒pCD739(具有一个以错误的方向插入的基因组片段)引入到菌株CD570中。获得许多重组体,在这些重组体中
erm E标记已被
bkd ABC缺失构建体取代且运送质粒(pCD262)已从其细胞丧失。总之,经重组和双交换重组,pCD728产生约2kb的影响
bkd A(E1-α)、
bkdB(E1-α)、
bkd B(E1-β)和
bkdC(E2)基因的阿凡曼链霉菌染色体缺失。回收的整合体具有红霉素敏感和硫链丝菌肽敏感表型。Southern印迹分析证实ermE标记被缺失序列取代。选择式表这一组的一个单菌落进一步研究,并命名为菌株CD757(参见图9)。
E.
bkdF基因取代载体的设计和构建
这一载体的构建在实施例9A节中描述。简单地说,质粒pCD768是穿梭载体PCD262的一种衍生物,pCD262携带邻近野生型染色体上1.4kb
BamHI片段两端的两个阿凡曼链霉菌基因组片段(2.3和4.1kb
BamHI片段之间的
ermE标记。
ermE标记与ORF-1(
bkdF)取向相反,以避免由下游基因的超量表达引起的可能的损害。经重组,这一构建体在宿主基因组中产生1.4kb缺失(影响
bkdF基因5’末端)。
F.
阿凡曼链霉菌多重bkd突变体(bkdABCF)的构建
基本上按实施例9所述方法将质粒pCD768转化进阿凡曼链霉菌菌株CD757(
bkd ABC)的原生质体中(参见以上步骤D).回收许多转化体,并按标准方法选择推定的整合体。将代表这一组的并表现出红霉素抗性和硫链丝菌肽敏感表型的一个整合体命名为菌株CD797,并进行进一步的分析(参见图9)。培养物CD797表现出如下典型的
bkd-缺陷表型:在ILV基本培养基板(参见实施例9)上不能生长,当进行BCKDH复合物E1组分试验时没有活性。发酵研究表明,在不补加S(+)-2-用基丁酸或异丁酸的情况下,阻断培养物不能合成天然阿凡曼菌素。此外,添加环己烷羧酸(CHC)也导致形成新CHC-阿凡曼菌素。这些发酵结果说明,包括四种
bkd基因(
bkd A、
bkdB、
bkdC和bkdF)破坏或缺失的多重
bkd阻断不影响阿凡曼菌素生物合成细胞机制。
序列表(1)一般信息
(i)申请人: DENOYA,CLAUDIO D.(美国)
STUTZMAN-ENGWALL,KIM J.(美国)
PFIZER INC.(美国以外的其它国家)
(ii)发明名称:
编码阿凡曼链霉菌支链α-酮酸脱氢酶复合物的基因
(iii)序列数:8
(iv)通讯地址
(A)联系人:DR.PETER C.RICHARDSON,PFIZER INC
(B)街:235 EAST 42ND STREET,20TH FLOOR
(C)城市:NEW YORK
(D)州:NEW YORK
(E)国家:U.S.A.
(F)邮编:10017-5755
(v)计算机可读形式
(A)介质类型:Floppy disk
(B)计算机:IBM PC兼容
(C)操作系统:PC-DOS/MS-DOS
(D)软件:PatentIn Release #1.0,Version #1.25
(vi)当前申请的资料
(A)申请号:US 08/168,602
(B)申请人:16-DEC-1993
(C)分类号:
(viii)代理人/代理机构信息
(A)姓名:DEBENEDICTIS,KAREN
(b)登记号:32,977
(C)参考/提要号:PC8529A
(ix)电信信息:
(A)电话:(212)573-5425
(B)传真:(212)573-1939
(C)电传:N/A(2)SEQ ID NO:1信息
(i)序列特征:
(A)长度:501个碱基对
(B)类型:核酸
(C)链型:双链
(D)拓扑结构:线性
(ii)分子类型:cDNA
(xi)序列描述:SEQ ID NO:1:TACGTCTTCC CGACCTACCG CGAGCACGGC GTCGCCTGGT CCGGCGGGGT CGACCCCACC 60AACCTCCTCG GCATGTTCCG CGGCGTGAAC AACGGCGGCT GGGATCCCAA CAGCAACAAC 120TTCCACCTCT ACACGATCGT CATCGGCTCG CAGACGCTGC ACGCCACCGG CTACGCCATG 180GGTATCGCCA AGGACGGCGC CGACTCGGCC GTGATCGCGT ACTTCGGTGA GGCGCCTCC 240AGCCAGGGTG ACGTCGCCGA ATCGTTCGCC TTCTCCGCGG TCTACAACGC CCCTGTCGTC 300TTCTTCTGCC AGAACAACCA GTGGGCCATC TCGAGCCCCA CCGAGAAGCA GACCCGCGTC 360CCGCTCTACC AGCGCGCGCA GGGCTACGGC TTCCCGGGCG TCCGCGTCGA CGGCAACGAC 420GTACTGGCCT GCCTCGCCGT CACCAAGTGC CTCGAGCGGG CCCGCCGGGG CGAGGGGCCC 480ACGTTGGTCG AGGCGTTCAC G 501(2)SEQ ID NO:2信息
(i)序列特征:
(A)长度:201个碱基对
(B)类型:核酸
(C)链型:双链
(D)拓扑结构:线性
(ii)分子类型:cDNA
(xi)序列描述:SEQ ID NO:2:CTCGCCGAGT CGGGCATCGT CGGCACGGCG ATCGGTCTCG CCCTGCGCGG CTACCGGCCG 60GTGGTGGAGA TCCAGTTCGA CGGCTTCGTC TTCCCGGCGT ACGACCAGAT CGTCACGCAG 120CTCGCGAAGA TGCACGCGCG GGCGTCGGGC AAGATCAAGC TCCCCGTTGT CGTCCGCATC 180CCGTACGGCG GCGGCATCGG C 201(2)SEQ ID NO:3信息
(i)序列特征:
(A)长度:217个碱基对
(B)类型:核酸
(C)链型:双链
(D)拓扑结构:线性
(ii)分子类型:cDNA
(xi)序列描述:SEQ ID NO:3:CGCCGGTGTT CCTGGGCGGC GGGCCGCCGG AGATCGCCGC CCGCATCACG GAGCGCTGCT 60TCTACCACCT GGAGGCACCC GTGCTGAGGG TCGGCGGCTA CCACGCCCCG TATCCGCCCG 120CGCGTCTGGA AGAGGAGTAC CTTCCGGGCC TTGACCGGGT GCTCGATGCC GTCGACCGCT 180CGCTGGCGTA CTGAGGAGAG GGTCGTGACG ACGATGA 217(2)SEQ ID NO:4信息
(i)序列特征:
(A)长度:453个碱基对
(B)类型:核酸
(C)链型:双链
(D)拓扑结构:线性
(ii)分子类型:cDNA
(xi)序列描述:SEQ ID NO:4:AACCAGGAGA TCGTCCTCAA GCACTATGTG AACCTGGGCA TCGCGGCGGC CACCCCGCGC 60GGTCTGATCG TCCCGAACAT CAAGGACGCC CACGCCAAGA CCGTGCCGCA ACTGGCCGAG 120TCACTGGGTG AGTTGGTGTC GACGGCCCGC GAGGGCAAGA CGTCCCCGAC GGCCATGCAG 180GGCGGCACGG TCACGATCAC GAACGTCGGC GTTCTTCGGC GTCGACACGG GCACGCCGAT 240CCTATCCTCA ACCCCGGCGA GTCCGCGATC CTCGGCTTCG GCGCGATCAA GCTCCAGCCG 300TGGGTCCACA AGGGCAAGGT CAAGCCCCGA CAGGTCACCA CGCTGGCGCT CAGCTTCGAC 360CATCGCCTGG TCGACGGCGA GCTGGGCTCC AAGGTGCTGG CCGACGTGGC GGCGATCCTG 420GAGCAGCCGA AGCGGCTGAT CACCTGGGCC TAG 453(2)SEQ ID NO:5信息
(i)序列特征:
(A)长度:167个氨基酸
(B)类型:氨基酸
(C)链型:单链
(D)拓扑结构:线性
(ii)分子类型:肽
(ii)序列描述:SEQ ID NO:5:
Tyr Val Phe Pro Thr Tyr Arg Glu His Gly Val Ala Trp Ser Gly Gly
1 5 10 15
Val Asp Pro Thr Asn Leu Leu Gly Met Phe Arg Gly Val Asn Asn Gly
20 25 30
Gly Trp Asp Pro Asn Ser Asn Asn Phe His Leu Tyr Thr Ile Val Ile
35 40 45
Gly Ser Gln Thr Leu His Ala Thr Gly Tyr Ala Met Gly Ile Ala Lys
50 55 60
Asp Gly Ala Asp Ser Ala Val Ile Ala Tyr Phe Gly Asp Gly Ala Ser
65 70 75 80
Ser Gln Gly Asp Val Ala Glu Ser Phe Ala Phe Ser Ala Val Tyr Asn
85 90 95
Ala Pro Val Val Phe Phe Cys Gln Asn Asn Gln Trp Ala Ile Ser Ser
100 105 110
Pro Thr Glu Lys Gln Thr Arg Val Pro Leu Tyr Gln Arg Ala Gln Gly
115 120 125
Tyr Gly Phe Pro Gly Val Arg Val Asp Gly Asn Asp Val Leu Ala Cys
130 135 140
Leu Ala Val Thr Lys Cys Leu Glu Arg Ala Arg Arg Gly Glu Gly Pro
145 150 155 160
Thr Leu Val Glu Ala Phe Thr
165(2)SEQ ID NO:6信息
(i)序列特征:
(A)长度:67个氨基酸
(B)类型:氨基酸
(C)链型:单链
(D)拓扑结构:线性
(ii)分子类型:肽
(ii)序列描述:SEQ ID NO:6:
Leu Ala Glu Ser Gly Ile Val Gly Thr Ala Ile Gly Leu Ala Leu Arg
1 5 10 15
Gly Tyr Arg Pro Val Val Glu Ile Gln Phe Asp Gly Phe Val Phe Pro
20 25 30
Ala Tyr Asp Gln Ile Val Thr Gln Leu Ala Lys Met His Ala Arg Ala
35 40 45
Ser Gly Lys Ile Lys Leu Pro Val Val Val Arg Ile Pro Tyr Gly Gly
50 55 60
Gly Ile Gly
65(2)SEQ ID NO:7信息
(i)序列特征:
(A)长度:63个氨基酸
(B)类型:氨基酸
(C)链型:单链
(D)拓扑结构:线性
(ii)分子类型:肽
(xi)序列描述:SEQ ID NO:7:
Pro Val Phe Leu Gly Gly Gly Pro Pro Glu Ile Ala Ala Arg Ile Thr
1 5 10 15
Glu Arg Cys Phe Tyr His Leu Glu Ala Pro Val Leu Arg Val Gly Gly
20 25 30
Tyr His Ala Pro Tyr Pro Pro Ala Arg Leu Glu Glu Glu Tyr Leu Pro
35 40 45
Gly Leu Asp Arg Val Leu Asp Ala Val Asp Arg Ser Leu Ala Tyr
50 55 60(2)SEQ ID NO:8信息
(i)序列特征:
(A)长度:150个氨基酸
(B)类型:氨基酸
(C)链型:单链
(D)拓扑结构:线性
(ii)分子类型:肽
(xi)序列描述:SEQ ID NO:8:
Asn Gln Glu Ile Val Leu Lys His Tyr Val Asn Leu Gly Ile Ala Ala
1 5 10 15
Ala Thr Pro Arg Gly Leu Ile Val Pro Asn Ile Lys Asp Ala His Ala
20 25 30
Lys Thr Val Pro Gln Leu Ala Glu Ser Leu Gly Glu Leu Val Ser Thr
35 40 45
Ala Arg Glu Gly Lys Thr Ser Pro Thr Ala Met Gln Gly Gly Thr Val
50 55 60
Thr Ile Thr Asn Val Gly Val Leu Arg Arg Arg His Gly His Ala Aap
65 70 75 80Pro Ile Leu Asn Pro Gly Glu Ser Ala Ile Leu Gly Phe Gly Ala Ile
85 90 95Lys Leu Gln Pro Trp Val His Lys Gly Lys Val Lys Pro Arg Gln Val
100 105 110Thr Thr Leu Ala Leu Ser Phe Asp His Arg Leu Val Asp Gly Glu Leu
115 120 125Gly Ser Lys Val Leu Ala Asp Val Ala Ala Ile Leu Glu Gln Pro Lys130 135 140Arg Leu Ile Thr Trp Ala145 150(2) SEQ ID NO:9信息:
(i)序列特征:
(A)长度:41个碱基对
(B)类型:核酸
(C)链型:双链
(D)拓扑结构:线性
(ii)分子类型:cDNA
(xi)序列特征:SEQ ID NO:9AAGAATTCGA GCTCGGCGAC GGCGCCACCT CCGAGGGCGA C(2) SEQ ID NO:10信息:
(i)序列特征:
(A)长度:38个碱基对
(B)类型:核酸
(C)链型:双链
(D)拓扑结构:线性
(ii)分子类型:cDNA
(xi)序列特征:SEQ ID NO:10:AAGGATCCTC TAGAGGTSSW GTGGKGGCCG ATSCGGWA(2) SEQ ID NO:11信息:
(i)序列特征:
(A)长度:37个碱基对
(B)类型:核酸
(C)链型:双链
(D)拓扑结构:线性
(ii)分子类型:cDNA
(xi)序列特征:SEQ ID NO:11:AAGGATCCTG CAGCCCAGTC ACGACGTTGT AAAACGA(2) SEQ ID NO:12信息:
(i)序列特征:
(A)长度:37个碱基对
(B)类型:核酸
(C)链型:双链
(D)拓扑结构:线性
(ii)分子类型:cDNA
(xi)序列特征:SEQ ID NO:12:AAGGATCCTG CAGACAGCTA TGACCATGAT TACGCCA(2) SEQ ID NO:13信息:
(i)序列特征:
(A)长度:17个碱基对
(B)类型:核酸
(C)链型:双链
(D)拓扑结构:线性
(ii)分子类型:cDNA
(xi)序列特征:SEQ ID NO:13:GTAGGGAGCC TGATATG(2) SEQ ID NO:14信息:
(i)序列特征:
(A)长度:17个碱基对
(B)类型:核酸
(C)链型:双链
(D)拓扑结构:线性
(ii)分子类型:cDNA
(xi)序列特征:SEQ ID NO:14:
CTATCCGCG CATCCATINDICATIONS RELATING TO A DEPOSITED MICROORGANISM
Claims (7)
1.一种为链霉菌属微生物支链α-酮酸脱氢酶复合物编码的分离的DNA区段,所说的复合物具有下述SEQ ID NO.5,SEQ ID NO.6,SEQ ID NO.7或SEQ ID NO.8的氨基酸序列,SEQ ID NO:5Tyr Val Phe Pro Thr Tyr Arg Glu His Gly Val Ala Trp Ser Gly Gly1 5 10 15Val Asp Pro Thr Asn Leu Leu Gly Met Phe Arg Gly Val Asn Asn Gly
20 25 30Gly Trp Asp Pro Asn Ser Asn Asn Phe His Leu Tyr Thr Ile Val Ile
35 40 45Gly Ser Gln Thr Leu His Ala Thr Gly Tyr Ala Met Gly Ile Ala Lys
50 55 60Asp Gly Ala Asp Ser Ala Val Ile Ala Tyr Phe Gly Asp Gly Ala Ser65 70 75 80Ser Gln Gly Asp Val Ala Glu Ser Phe Ala Phe Ser Ala Val Tyr Asn
85 90 95Ala Pro Val Val Phe Phe Cys Gln Asn Asn Gln Trp Ala Ile Ser Ser
100 105 110Pro Thr Glu Lys Gln Thr Arg Val Pro Leu Tyr Gln Arg Ala Gln Gly
115 120 125Tyr Gly Phe Pro Gly Val Arg Val Asp Gly Asn Asp Val Leu Ala Cys
130 135 140Leu Ala Val Thr Lys Cys Leu Glu Arg Ala Arg Arg Gly Glu Gly Pro145 150 155 160Thr Leu Val Glu Ala Phe Thr,
165SEQ ID NO:6Leu Ala Glu Ser Gly Ile Val Gly Thr Ala Ile Gly Leu Ala Leu Arg1 5 10 15Gly Tyr Arg Pro Val Val Glu Ile Gln Phe ASp Gly Phe Val Phe Pro
20 25 30 Ala Tyr Asp Gln Ile Val Thr Gln Leu Ala Lys Met His Ala Arg Ala
35 40 45Ser Gly Lys Ile Lys Leu Pro Val Val Val Arg Ile Pro Tyr Gly Gly
50 55 60Gly Ile Gly,65SEQ ID NO:7Pro Val Phe Leu Gly Gly Gly Pro Pro Glu Ile Ala Ala Arg Ile Thr1 5 10 15Glu Arg Cys Phe Tyr His Leu Glu Ala Pro Val Leu Arg Val Gly Gly
20 25 30Tyr His Ala Pro Tyr Pro Pro Ala Arg Leu Glu Glu Glu Tyr Leu Pro
35 40 45Gly Leu Asp Arg Val Leu Asp Ala Val Asp Arg Ser Leu Ala Tyr,or
50 55 60SEQ ID NO:8Asn Gln Glu Ile Val Leu Lys His Tyr Val Asn Leu Gly Ile Ala Ala1 5 10 15Ala Thr Pro Arg Gly Leu Ile Val Pro Aan Ile Lys Asp Ala His Ala
20 25 30Lys Thr Val Pro Gln Leu Ala Glu Ser Leu Gly Glu Leu Val Ser Thr
35 40 45Ala Arg Glu Gly Lys Thr Ser Pro Thr Ala Met Gln Gly Gly Thr Val
50 55 60Thr Ile Thr Asn Val Gly Val Leu Arg Arg Arg His Gly His Ala Asp65 70 75 80Pro Ile Leu Asn Pro Gly Glu Ser Ala Ile Leu Gly Phe Gly Ala Ile
85 90 95Lys Leu Gln Pro Trp Val His Lys Gly Lys Val Lys Pro Arg Gln Val
100 105 110Thr Thr Leu Ala Leu Ser Phe Asp His Arg Leu Val Asp Gly Glu Leu
115 120 125Gly Ser Lys Val Leu Ala Asp Val Ala Ala Ile Leu Glu Gln Pro Lys
130 135 140Arg Leu Ile Thr Trp Ala145 150
2.一种DNA区段,该区段具有如下所述的SEQ ID NO.1,SEQ IDNO.2,SEQ ID NO.3或SEQ ID NO.4的DNA序列:SEQ ID NO.1:TACGTCTTCC CGACCTACCG CGAGCACGGC GTCGCCTGGT CCGGCGGGGT CGACCCCACC 60AACCTGCTCG GCATGTTCCG CGGCGTGAAC AACGGCGGCT GGGATCCCAA CAGCAACAAC 120TTCCACCTCT ACACGATCGT CATCGGCTCG CAGACGCTGC ACGCCACCGG CTACGCCATG 180GGTATCGCCA AGGACGGCGC CGACTCGGCC GTGATCGCGT ACTTCGGTGA CGGCGCCTCC 240AGCCAGGGTG ACGTCGCCGA ATCGTTCGCC TTCTCCGCGG TCTACAACGC CCCTGTCGTC 300TTCTTCTGCC AGAACAACCA GTGGGCGATC TCGAGCCCCA CCGAGAAGCA GACCCGCGTC 360CCGCTCTACC AGCGCGCGCA GGGCTACGGC TTCCCGGGCG TCCGCGTCGA CGGCAACGAC 420GTACTGGCCT GCCTCGCCGT CACCAAGTGC CTCGAGCGGG CCCGCCGGGG CGAGGGGCCC 480ACGTTGGTCG AGGCGTTCAC G 501SEQ ID NO.:2CTCGCCGAGT CGGGCATCGT CGGCACGGCG ATCGGTCTCG CCCTGCGCGG CTACCGGCCG 60GTGGTGGAGA TCCAGTTCGA CGGCTTCGTC TTCCCGGCGT ACGACCAGAT CGTCACGCAG 120CTCGCGAAGA TGCACGCGCG GGCGTCGGGC AAGATCAAGC TCCCCGTTGT CGTCCGCATC 180CCGTACGGCG GCGGCATCGG C 201SEQ ID NO.:3CGCCGGTGTT CCTGGGCGGC GGGCCGCCGG AGATCGCCGC CCGCATCACG GAGCGCTGCT 60TCTACCACCT GGAGGCACCC GTGCTGAGGG TCGGCGGCTA CCACGCCCCG TATCCGCCGG 120CGCGTCTGGA AGAGGAGTAC CTTCCGGGCC TTGACCGGGT GCTCGATGCC GTCGACCGCT 180CGCTGGCGTA CTGAGGAGAG GGTCGTGACG ACGATGA,or 217SEQ ID NO:4AACCAGGAGA TCGTCCTCAA GCACTATGTG AACCTGGGCA TCGCGGCGGC CACCCCGCGC 60GGTCTGATCG TCCCGAACAT CAAGGACGCC CACGCCAAGA CCGTGCCGCA ACTGGCCGAG 120TCACTGGGTG AGTTGGTGTC GACGGCCCGC GAGGGCAAGA CGTCCCCGAC GGCCATGCAG 180GGCGGCACGG TCACGATCAC GAACGTCGGC GTTCTTCGGC GTCGACACGG GCACGCCGAT 240CCTATCCTCA ACCCCGGCGA GTCCGCGATC CTCGGCTTCG GCGCGATCAA GCTCCAGCCG 300TGGGTCCACA AGGGCAAGGT CAAGCCCCGA CAGGTCACCA CGCTGGCGCT CAGCTTCGAC 360CATCGCCTGG TCGACGGCGA GCTGGGCTCC AAGGTGCTGG CCGACGTGGC GGCGATCCTG 420GAGCAGCCGA AGCGGCTGAT CACCTGGGCC TAG 453
3.包含按照权利要求2的DNA区段的重组DNA。
4.一种已掺入了按照权利要求3的重组DNA的宿主细胞,所说的宿主细胞相应于保藏号为ATCC 69493,ATCC 69494,ATCC69495,ATCC 69496或ATCC 55516的转化体。
5.一种包含按照权利要求3的重组DNA的质粒,该质粒是包含在权利要求4的宿主细胞中的质粒。
6.一种基本上纯化的多肽,该多肽具有下述SEQ ID No.5、SEQID No.6、SEQ ID No.7或SEQ ID No.8的氨基酸序列:SEQ ID NO.:5Tyr Val Phe Pro Thr Tyr Arg Gly His Gly Val Ala Trp Ser Gly Gly1 5 10 15Val Asp Pro Thr Asn Leu Leu Gly Met Phe Arg Gly Val Asn Asn Gly
20 25 30Glu Trp Asp Pro Asn Ser Asn Asn Phe His Leu Tyr Thr Ile Val Ile
35 40 45Gly Ser Gln Thr Leu His Ala Thr Gly Tyr Ala Met Gly Ile Ala Lya
50 55 60Asp Gly Ala Asp Ser Ala Val Ile Ala Tyr Phe Gly Asp Gly Ala Ser65 70 75 80Ser Gln Gly Asp Val Ala Glu Ser Phe Ala Phe Ser Ala Val Tyr Aan
85 90 95Ala Pro Val Val Phe Phe Cys Gln Ann Asn Gln Trp Ala Ile Ser Ser
100 105 110Pro Thr Glu Lys Gln Thr Arg Val Pro Leu Tyr Gln Arg Ala Gln Gly
115 120 125Tyr Gly Phe Pro Gly Val Arg Val Asp Gly Aen Asp Val Leu Ala Cys
130 135 140Leu Ala Val Thr Lys Cys Leu Glu Arg Ala Arg Arg Gly Glu Gly Pro145 150 155 160Thr Leu Val Glu Ala Phe Thr
165SEQ ID NO.:6Leu Ala Glu Ser Gly Ile Val Gly Thr Ala Ile Gly Leu Ala Leu Arg1 5 10 15Gly Tyr Arg Pro Val Val Glu Ile Gln Phe ABP Gly Phe Val Phe Pro
20 25 30
Ala Tyr Asp Gln Ile Val Thr Gln Leu Ala Lya Met His Ala Arg Ala
35 40 45
Ser Gly Lys Ile Lys Leu Pro Val Val Val Arg Ile Pro Tyr Gly Gly
50 55 60
Gly Ile Gly
65
SEQ ID NO.:7
Pro Val Phe Leu Gly Gly Gly Pro Pro Glu Ile Ala Ala Arg Ile Thr
1 5 10 15
Glu Arg Cys Phe Tyr His Leu Glu Ala Pro Val Leu Arg Val Gly Gly
20 25 30
Tyr His Ala Pro Tyr Pro Pro Ala Arg Leu Glu Glu Glu Tyr Leu Pro
35 40 45
Gly Leu Asp Arg Val Leu Asp Ala Val Asp Arg Ser Leu Ala Tyr,or
50 55 60
SEQ ID NO.:8
Asn Gln Glu Ile Val Leu Lys His Tyr Val Asn Leu Gly Ile Ala Ala
1 5 10 15
Ala Thr Pro Arg Gly Leu Ile Val Pro Asn Ile Lys Asp Ala His Ala
20 25 30
Lys Thr Val Pro Gln Leu Ala Glu Ser Leu Gly Glu Leu Val Ser Thr
35 40 45
Ala Arg Glu Gly Lys Thr Ser Pro Thr Ala Met Gln Gly Gly Thr Val
50 55 60
Thr Ile Thr Asn Val Gly Val Leu Arg Arg Arg His Gly His Ala Asp
65 70 75 80
Pro Ile Leu Asn Pro Gly Glu Ser Ala Ile Leu Gly Phe Gly Ala Ile
85 90 95
Lys Leu Gln Pro Trp Val Hin Lys Gly Lys Val Lys Pro Arg Gln Val
100 105 110
Thr Thr Leu Ala Leu Ser Phe Asp His Arg Leu Val Asp Gly Glu Leu
115 120 125
Gly Ser Lys Val Leu Ala Asp Val Ala Ala Ile Leu Glu Gln Pro Lyn
130 135 140
Arg Leu Ile Thr Trp Ala
145 150
7.一种多肽,该多肽是通过在按照权利要求4的宿主细胞中表达产生的,具有SEQ ID No.5,SEQ ID No.6,SEQ ID No.7或SEQID No.8的氨基酸序列。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US16860293A | 1993-12-16 | 1993-12-16 | |
US08/168,602 | 1993-12-16 |
Related Child Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN98108414A Division CN1210150A (zh) | 1993-12-16 | 1998-05-11 | 编码阿凡曼链霉菌支链α-酮酸脱氢酶复合物的基因 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN1137806A CN1137806A (zh) | 1996-12-11 |
CN1056189C true CN1056189C (zh) | 2000-09-06 |
Family
ID=22612168
Family Applications (2)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN94194516A Expired - Fee Related CN1056189C (zh) | 1993-12-16 | 1994-06-16 | 编码阿凡曼链霉菌支链α-酮酸脱氢酶复合物的基因 |
CN98108414A Pending CN1210150A (zh) | 1993-12-16 | 1998-05-11 | 编码阿凡曼链霉菌支链α-酮酸脱氢酶复合物的基因 |
Family Applications After (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN98108414A Pending CN1210150A (zh) | 1993-12-16 | 1998-05-11 | 编码阿凡曼链霉菌支链α-酮酸脱氢酶复合物的基因 |
Country Status (21)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US5707839A (zh) |
EP (1) | EP0734443A1 (zh) |
JP (1) | JP2800921B2 (zh) |
KR (1) | KR100209842B1 (zh) |
CN (2) | CN1056189C (zh) |
AU (2) | AU6805894A (zh) |
BR (1) | BR9408337A (zh) |
CA (1) | CA2177269A1 (zh) |
CO (1) | CO4340655A1 (zh) |
CZ (1) | CZ174496A3 (zh) |
EC (1) | ECSP941123A (zh) |
EG (1) | EG22869A (zh) |
FI (1) | FI942725A (zh) |
HU (1) | HUT76092A (zh) |
IL (3) | IL109991A (zh) |
NO (2) | NO962544D0 (zh) |
NZ (3) | NZ329675A (zh) |
PE (1) | PE11096A1 (zh) |
PL (1) | PL178993B1 (zh) |
WO (1) | WO1995016781A1 (zh) |
ZA (1) | ZA944092B (zh) |
Families Citing this family (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5466102A (en) * | 1993-12-16 | 1995-11-14 | Kennametal Inc. | System for coupling machine tools |
US6248579B1 (en) * | 1998-02-13 | 2001-06-19 | Pfizer Inc | Streptomyces avermitilis gene directing the ratio of B2:B1 avermectins |
CN1297485A (zh) * | 1998-02-13 | 2001-05-30 | 辉瑞产品公司 | 介导除虫菌素b2:b1比例的除虫链霉菌基因 |
US6197591B1 (en) | 1998-09-14 | 2001-03-06 | Pfizer Inc. | Streptomyces avermitilis regulatory genes for increased avermectin production |
IL147563A0 (en) * | 1999-08-12 | 2002-08-14 | Pfizer Prod Inc | Streptomyces avermitilis gene directing the ratio of b2:b1 avermectins |
DE10356092B4 (de) * | 2003-12-01 | 2008-04-03 | Siemens Audiologische Technik Gmbh | Hörgerät mit drahtlosem Übertragungssystem |
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1987003907A1 (en) * | 1985-12-17 | 1987-07-02 | Lubrizol Genetics, Inc. | Isolation of genes for biosynthesis of polyketide antibiotics |
EP0276131A2 (en) * | 1987-01-23 | 1988-07-27 | Pfizer Inc. | Non-natural demethylavermectins and process therefor |
EP0313297A2 (en) * | 1987-10-23 | 1989-04-26 | Pfizer Inc. | Process for production of avermectin aglycones and cultures therefor |
EP0391594A2 (en) * | 1989-03-31 | 1990-10-10 | Merck & Co. Inc. | Cloning genes from streptomyces avermitilis for avermectin biosynthesis and the methods for their use |
Family Cites Families (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5077278A (en) * | 1987-01-23 | 1991-12-31 | Pfizer Inc. | Non-natural demethylavermectins compositions and method of use |
US5252474A (en) * | 1989-03-31 | 1993-10-12 | Merck & Co., Inc. | Cloning genes from Streptomyces avermitilis for avermectin biosynthesis and the methods for their use |
-
1994
- 1994-06-09 FI FI942725A patent/FI942725A/fi unknown
- 1994-06-10 ZA ZA944092A patent/ZA944092B/xx unknown
- 1994-06-13 IL IL10999194A patent/IL109991A/xx not_active IP Right Cessation
- 1994-06-16 PL PL94314977A patent/PL178993B1/pl unknown
- 1994-06-16 KR KR1019960703207A patent/KR100209842B1/ko not_active IP Right Cessation
- 1994-06-16 HU HU9601644A patent/HUT76092A/hu unknown
- 1994-06-16 CZ CZ961744A patent/CZ174496A3/cs unknown
- 1994-06-16 CA CA002177269A patent/CA2177269A1/en not_active Abandoned
- 1994-06-16 EP EP94916371A patent/EP0734443A1/en not_active Withdrawn
- 1994-06-16 AU AU68058/94A patent/AU6805894A/en not_active Abandoned
- 1994-06-16 NZ NZ329675A patent/NZ329675A/xx not_active IP Right Cessation
- 1994-06-16 JP JP7516632A patent/JP2800921B2/ja not_active Expired - Fee Related
- 1994-06-16 CN CN94194516A patent/CN1056189C/zh not_active Expired - Fee Related
- 1994-06-16 WO PCT/IB1994/000157 patent/WO1995016781A1/en not_active Application Discontinuation
- 1994-06-16 NZ NZ329117A patent/NZ329117A/en not_active IP Right Cessation
- 1994-06-16 BR BR9408337A patent/BR9408337A/pt unknown
- 1994-06-16 NZ NZ266526A patent/NZ266526A/en not_active IP Right Cessation
- 1994-07-06 PE PE1994245983A patent/PE11096A1/es not_active Application Discontinuation
- 1994-07-20 EC EC1994001123A patent/ECSP941123A/es unknown
- 1994-08-11 EG EG49194A patent/EG22869A/xx active
- 1994-12-06 CO CO94055391A patent/CO4340655A1/es unknown
-
1995
- 1995-06-06 US US08/470,892 patent/US5707839A/en not_active Expired - Fee Related
-
1996
- 1996-06-14 NO NO962544A patent/NO962544D0/no not_active Application Discontinuation
-
1998
- 1998-05-11 CN CN98108414A patent/CN1210150A/zh active Pending
- 1998-11-27 AU AU94219/98A patent/AU9421998A/en not_active Abandoned
-
2003
- 2003-01-27 IL IL15416103A patent/IL154161A0/xx unknown
- 2003-01-27 IL IL15416203A patent/IL154162A0/xx unknown
-
2007
- 2007-02-12 NO NO20070802A patent/NO20070802L/no not_active Application Discontinuation
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1987003907A1 (en) * | 1985-12-17 | 1987-07-02 | Lubrizol Genetics, Inc. | Isolation of genes for biosynthesis of polyketide antibiotics |
EP0276131A2 (en) * | 1987-01-23 | 1988-07-27 | Pfizer Inc. | Non-natural demethylavermectins and process therefor |
EP0313297A2 (en) * | 1987-10-23 | 1989-04-26 | Pfizer Inc. | Process for production of avermectin aglycones and cultures therefor |
EP0391594A2 (en) * | 1989-03-31 | 1990-10-10 | Merck & Co. Inc. | Cloning genes from streptomyces avermitilis for avermectin biosynthesis and the methods for their use |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
IL109991A0 (en) | 1994-10-07 |
NZ329675A (en) | 1998-10-28 |
EG22869A (en) | 2003-09-30 |
CN1210150A (zh) | 1999-03-10 |
IL154161A0 (en) | 2003-07-31 |
NO20070802L (no) | 1996-06-14 |
FI942725A (fi) | 1995-06-17 |
JP2800921B2 (ja) | 1998-09-21 |
PE11096A1 (es) | 1996-04-12 |
CO4340655A1 (es) | 1996-07-30 |
KR100209842B1 (ko) | 1999-07-15 |
CZ174496A3 (cs) | 1999-05-12 |
NZ329117A (en) | 1998-04-27 |
NO962544L (no) | 1996-06-14 |
BR9408337A (pt) | 1997-08-19 |
AU6805894A (en) | 1995-07-03 |
US5707839A (en) | 1998-01-13 |
PL178993B1 (pl) | 2000-07-31 |
AU9421998A (en) | 1999-03-04 |
JPH09500283A (ja) | 1997-01-14 |
ZA944092B (en) | 1995-12-11 |
CA2177269A1 (en) | 1995-06-22 |
ECSP941123A (es) | 1994-12-15 |
NO962544D0 (no) | 1996-06-14 |
CN1137806A (zh) | 1996-12-11 |
EP0734443A1 (en) | 1996-10-02 |
HUT76092A (en) | 1997-06-30 |
IL109991A (en) | 2005-08-31 |
PL314977A1 (en) | 1996-09-30 |
FI942725A0 (fi) | 1994-06-09 |
NZ266526A (en) | 1997-12-19 |
HU9601644D0 (en) | 1996-08-28 |
WO1995016781A1 (en) | 1995-06-22 |
IL154162A0 (en) | 2003-07-31 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN1227362C (zh) | 生产刺糖噻杀虫剂所用的生物合成基因 | |
CN100347291C (zh) | 用于发酵制备l-半胱氨酸、l-胱氨酸、n-乙酰丝氨酸或四氢噻唑衍生物的微生物和方法 | |
CN1177054C (zh) | D-山梨醇脱氢酶基因 | |
CN1706935A (zh) | 生产l-赖氨酸的棒状菌和制备l-赖氨酸的方法 | |
CN1231574C (zh) | 生产l-赖氨酸的棒状菌和制备赖氨酸的方法 | |
CN1263855C (zh) | 来自淡青链霉菌的假寡糖生物合成基因的分离及其应用 | |
CN1130460C (zh) | 牻牛儿基二磷酸合酶基因 | |
CN1777681A (zh) | Sqs基因 | |
CN1104502C (zh) | 编码阿佛曼链霉菌支链α-酮酸脱氢酶复合体的基因 | |
CN1056189C (zh) | 编码阿凡曼链霉菌支链α-酮酸脱氢酶复合物的基因 | |
CN1795270A (zh) | 编码具有d-乳酸脱氢酶活性蛋白质的dna及其用途 | |
CN1676607A (zh) | 为抗生素的生物合成从蓝灰链霉菌非产蓝亚种中克隆基因及其使用方法 | |
CN1668639A (zh) | 涉及二酮哌嗪衍生物合成的多核苷酸和由所述多核苷酸编码的多肽 | |
CN1165621C (zh) | 法呢基二磷酸合酶 | |
CN1514880A (zh) | 生产依马菌素的方法和组合物 | |
CN1186447C (zh) | 介导除虫菌素b2:b1比例的除虫链霉菌基因 | |
CN1814761A (zh) | 吡咯喹啉醌合成相关基因及其编码蛋白 | |
CN1498270A (zh) | 基因已被破坏的酵母 | |
CN101063140A (zh) | 万古霉素生物合成基因簇 | |
CN1230544C (zh) | 磷酸己酮糖异构酶和编码该酶的基因 | |
CN1527881A (zh) | 来自食甲基嗜甲基菌的新的酶及其编码基因 | |
CN1521180A (zh) | 介导除虫菌素b2:b1比例的除虫链霉菌基因 | |
CN1186446C (zh) | 介导除虫菌素b2:b1比例的除虫链霉茵基因 | |
CN1192107C (zh) | 从带小棒链霉菌分离的5s棒烷基因及其在棒酸生产中的应用 | |
CN100347302C (zh) | 尼可霉素生物合成调控基因及其编码蛋白与表达工程菌 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C14 | Grant of patent or utility model | ||
GR01 | Patent grant | ||
C19 | Lapse of patent right due to non-payment of the annual fee | ||
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |