CN105130014A - 一种阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂的制备方法及应用 - Google Patents
一种阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂的制备方法及应用 Download PDFInfo
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Abstract
本发明提供了一种阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂的制备方法及应用，将3-氯-2-羟丙基三甲基氯化铵与NaOH溶液进行混合使其反应后，加入糖蛋白类微生物絮凝剂混合，室温下搅拌0.5～2h，然后在60～90℃反应1～3h后，提纯后得到阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂，该絮凝剂用于去除废水中高岭土的应用。本发明制备的阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂，能够有效地使荷负电的微生物絮凝剂阳离子化，从而省去微生物絮凝剂使用过程中的助凝剂。在使用过程中不需要添加其他助凝剂，能够去除高岭土模拟废水中的悬浊物，从而简化絮凝剂的添加过程。本发明的方法最终达到简化絮凝剂添加工艺，降低沉降污泥中无机助凝剂物质的含量，降低沉降污泥对环境的二次污染。
Description
技术领域
本发明属于水处理领域，涉及微生物絮凝剂，具体涉及一种阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂的制备方法及应用。
背景技术
微生物絮凝剂是80年代后期研究开发的一类絮凝剂，是一类由微生物产生的具有絮凝剂活性的代谢产物，主要有糖蛋白、多糖、蛋白质、纤维素和DNA以及有絮凝剂活性的菌体等。因其高效、无毒、无二次污染以及用途广泛等优势而被广泛研究。然而，目前所产微生物絮凝剂均荷负电，Zeta电位约在-50mV到-80mV之间。通常情况下，使用时需Ca2+、Mg2+等阳离子或聚合氯化铝等作助凝剂，以提高其活性。水中高岭土为2.5-5g/L时，需投加高达4mmol/LCa2+或Mg2+，方能达到理想效果，这不仅使沉降污泥和处理后水样中残留较高Ca2+、Mg2+或Al3+，且应用时须分别投加，从而致使絮凝剂投加操作繁琐并增加水处理成本。
发明内容
基于现有技术中存在的问题，本发明提供一种阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂的制备方法，提高糖蛋白类微生物絮凝剂的活性，解决现有技术中糖蛋白类微生物絮凝剂使用时需要助凝剂导致助凝剂对环境产生二次污染的问题。
本发明的另一目的在于提供一种采用如上方法改性的糖蛋白类微生物絮凝剂的应用，解决现有的微生物絮凝剂水处理过程会对环境产生二次污染的问题。
为了解决上述技术问题，本申请采用如下技术方案予以实现：
一种阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂的制备方法，该方法包括以下步骤：
将3-氯-2-羟丙基三甲基氯化铵(CTA)与NaOH溶液进行混合使其反应后，加入糖蛋白类微生物絮凝剂混合，室温下搅拌0.5～2h，然后在60～90℃反应1～3h后，提纯后得到阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂。
本发明还具有如下区别技术特征：
具体的，所述的提纯过程为：对反应完成后的混合物加水至完全溶解，然后加入乙醇，析出沉淀，过滤，保留沉淀，沉淀干燥后得到阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂。
具体的，所述的3-氯-2-羟丙基三甲基氯化铵(CTA)与NaOH的摩尔比为1:(0.8～1.6)，NaOH溶液的浓度为(0.5～1)mol/L。
具体的，所述的糖蛋白类微生物絮凝剂每10g对应的3-氯-2-羟丙基三甲基氯化铵为0.005～0.02mol。
具体的，所述的糖蛋白类微生物絮凝剂为NY1菌所产的糖蛋白类微生物絮凝剂纯品。
优选的，所述的糖蛋白类微生物絮凝剂的制备过程包括以下步骤：
步骤1.1，制备种子液：
从克雷伯氏菌NY1菌株保存斜面上挑取一环菌接入牛肉膏蛋白胨液体培养基中培养，得到OD600nm为1.82±0.08的克雷伯氏菌NY1种子液；
步骤1.2，克雷伯氏菌NY1发酵产絮凝剂：
将100mL发酵培养基于121℃灭菌30min。在无菌环境下，吸取2mL克雷伯氏菌NY1种子液加入发酵培养基中。在30℃，160r/min条件下，恒温振荡培养72h，得糖蛋白类微生物絮凝剂的粗品；
步骤1.3，糖蛋白类微生物絮凝剂的粗品的纯化方法：
取72h后发酵液，于10000r/min，4℃条件下离心15min去菌，在上清液中加入稳定剂，每100mL上清液中对应加入0.5g～2g的稳定剂，搅拌均匀后无水乙醇混合，析出沉淀，倾去上清液，再于10000r/min，4℃条件下离心1min，将所得固体沉淀用少量无水乙醇反复洗三次，于45℃烘干，得到糖蛋白类微生物絮凝剂的纯品。
优选的，所述的稳定剂为氯化钠、氯化钾、硫酸钠或硫酸钾。
更进一步地，采用上述阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂的制备方法制备的阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂用于去除废水中高岭土的应用。
具体的，所述的应用中，每1.6mg阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂对应加至50mL含有2g/L的高岭土的废水悬浊液中。
本发明与现有技术相比，有益的技术效果是：
本发明制备的阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂，能够有效地使荷负电的微生物絮凝剂阳离子化，从而省去微生物絮凝剂使用过程中的助凝剂。
在使用过程中不需要添加其他助凝剂，能够去除高岭土模拟废水中的悬浊物，从而简化絮凝剂的添加过程。本发明的方法最终达到简化絮凝剂添加工艺，降低沉降污泥中无机助凝剂物质的含量，降低沉降污泥对环境的二次污染。
以下结合实施例对本发明的具体内容作进一步详细地说明。
具体实施方式
遵从上述技术方案，以下给出本发明的具体实施例，需要说明的是本发明并不局限于以下具体实施例，凡在本申请技术方案基础上做的等同变换均落入本发明的保护范围。下面结合实施例对本发明做进一步详细说明。
需要说明的是：本申请的克雷伯氏菌NY1为已有的菌种，参见文献：
M.Nie,X.Yin,J.Jia,Y.Wang,S.Liu,Q.Shen,P.LiandZ.Wang.ProductionofanovelbioflocculantMNXY1byKlebsiellapneumoniaestrainNY1andapplicationinprecipitationofcyanobacteriaandmunicipalwastewatertreatment.JournalofAppliedMicrobiology,2011,111,547–558。
实施例1：
本实施例给出一种阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂的制备方法，该方法包括以下步骤：
步骤一，制备糖蛋白类微生物絮凝剂：
步骤1.1，制备种子液：
从克雷伯氏菌NY1菌株保存斜面上挑取一环菌接入牛肉膏蛋白胨液体培养基中培养，得到OD600nm为1.82±0.08的克雷伯氏菌NY1种子液；
步骤1.2，克雷伯氏菌NY1发酵产絮凝剂：
将100mL发酵培养基于121℃灭菌30min。在无菌环境下，吸取2mL克雷伯氏菌NY1种子液加入发酵培养基中。在30℃，160r/min条件下，恒温振荡培养72h，得糖蛋白类微生物絮凝剂的粗品；
步骤1.3，糖蛋白类微生物絮凝剂的粗品的纯化方法：
取72h后发酵液，于10000r/min，4℃条件下离心15min去菌，在上清液中加入稳定剂氯化钠，每100mL上清液中对应加入0.5g～2g的稳定剂，搅拌均匀后无水乙醇混合，析出沉淀，倾去上清液，再于10000r/min，4℃条件下离心1min，将所得固体沉淀用少量无水乙醇反复洗三次，于45℃烘干，得到糖蛋白类微生物絮凝剂的纯品。
步骤二，糖蛋白类微生物絮凝剂的阳离子化改性：
将0.015mol的3-氯-2-羟丙基三甲基氯化铵(CTA)与浓度为1mol/L的NaOH溶液按摩尔比1：1进行混合，使其反应10min后，加入10gNY1菌所产絮凝剂纯品。将该混合物于室温下搅拌0.5h，放入恒温箱中使其于60℃反应1小时，得到阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂的混合物。
步骤三，阳离子化糖蛋白类微生物絮凝剂的提纯：
将上述步骤二所得的混合物完全溶解于10mL水中，然后加入30mL的无水乙醇使其析出沉淀，过滤，对沉淀反复洗涤三次、弃去上清液，保留沉淀，于10000r/min，4℃条件下离心1min后干燥，得到纯化后的阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂，测定Zeta电位。
应用实施例1：
本应用实施例给出一种去除废水中高岭土的方法，该方法采用实施例1中的制备方法制备的纯化后的阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂。
将0.4mL纯化后的阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂(4g/L)加至50mL浓度为2g/L的高岭土的废水悬浊液(pH7.5)中，快速搅拌1min，慢速搅拌2min，静置5min，测定上清液在550nm处的吸光度。计算该样品絮凝率。
絮凝率(％)＝[(A-B)/A]×100％，其中：
A为絮凝前的样品在550nm下的吸光度；
B为絮凝后在550nm处上清液的吸光度。
对比例1：
本对比例给出一种糖蛋白类微生物絮凝剂的制备方法，制备过程按照实施例1中步骤一来制备，具体步骤与实施例1的如下步骤相同：
步骤1.1，制备种子液；
步骤1.2，克雷伯氏菌NY1发酵产絮凝剂；
步骤1.3，糖蛋白类微生物絮凝剂的粗品的纯化方法；
最终得到糖蛋白类微生物絮凝剂的纯品，测定Zeta电位。
应用对比例1-1：
本应用实施例给出一种去除废水中高岭土的方法，该方法采用对比例1中制备的糖蛋白类微生物絮凝剂的纯品。
将0.4mL糖蛋白类微生物絮凝剂(2g/L)和0.2mL的浓度为1mol/L的助凝剂CaCl2溶液，依次加至50mL的浓度为2g/L的高岭土的废水悬浊液(pH7.5)中，快速搅拌1min，慢速搅拌2min，静置5min，测定上清液在550nm处的吸光度。计算该样品絮凝率。
应用对比例1-2：
本应用实施例给出一种去除废水中高岭土的方法，该方法采用实施例1中的制备方法制备的纯化后的阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂。
将0.4mL纯化后的阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂(4g/L)和0.2mL的浓度为1mol/L的助凝剂CaCl2溶液，依次加至50mL浓度为2g/L的高岭土的废水悬浊液(pH7.5)中，快速搅拌1min，慢速搅拌2min，静置5min，测定上清液在550nm处的吸光度。计算该样品絮凝率。
结果测试表征：
对比例1中的阳离子化前的糖蛋白类微生物絮凝剂的Zeta电位为-49.7mv，而采用实施例1的方法阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂的Zeta电位为+12.3mv；应用对比例1-1中阳离子化前糖蛋白类微生物絮凝剂的絮凝率为89.2％，而应用实施例1中阳离子化后的糖蛋白类微生物絮凝剂的絮凝率为92.3％。应用对比例1-2虽然在实施例1的絮凝剂的基础上加入了助凝剂，但是应用对比例2中阳离子化后的糖蛋白类微生物絮凝剂的絮凝率为92.2％，因此，实施例1中制备的阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂在使用过程中不需要加入助凝剂。
实施例2：
本实施例给出一种阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂的制备方法，该方法包括以下步骤：
步骤一，制备糖蛋白类微生物絮凝剂：
步骤一的具体内容与实施例1基本相同，区别仅仅在于其中步骤1.3中的稳定剂为氯化钾。
步骤二，糖蛋白类微生物絮凝剂的阳离子化改性：
将0.02mol的3-氯-2-羟丙基三甲基氯化铵(CTA)与浓度为0.5mol/L的NaOH溶液按摩尔比1：1.6进行混合，使其反应10min后，加入10gNY1菌所产絮凝剂纯品。将该混合物于室温下搅拌0.5h，放入恒温箱中使其于60℃反应1h，得到阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂的混合物。
步骤三，阳离子化糖蛋白类微生物絮凝剂的提纯：
将上述步骤二所得的混合物完全溶解于10mL水中，然后加入30mL的无水乙醇使其析出沉淀，过滤，对沉淀反复洗涤三次、弃去上清液，保留沉淀，于10000r/min，4℃条件下离心1min后干燥，得到纯化后的阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂，测定Zeta电位。
对比例2：
本对比例给出一种糖蛋白类微生物絮凝剂的制备方法，制备过程按照实施例2中步骤一来制备，具体步骤与实施例2的如下步骤相同：
步骤1.1，制备种子液；
步骤1.2，克雷伯氏菌NY1发酵产絮凝剂；
步骤1.3，糖蛋白类微生物絮凝剂的粗品的纯化方法；
最终得到糖蛋白类微生物絮凝剂的纯品，测定Zeta电位。
应用实施例2：
本应用实施例给出一种去除废水中高岭土的方法，该方法采用实施例2中的制备方法制备的阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂。
应用实施过程与应用实施例1相同，计算该样品絮凝率。
应用对比例2：
本应用实施例给出一种去除废水中高岭土的方法，该方法采用对比例2中制备的糖蛋白类微生物絮凝剂的纯品。
应用实施过程与应用对比例1-1相同，计算该样品絮凝率。
结果测试表征：
对比例2中的阳离子化前的糖蛋白类微生物絮凝剂的Zeta电位为-48.9mv，而采用实施例2的方法阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂的Zeta电位为+14.1mv；应用对比例2中阳离子化前糖蛋白类微生物絮凝剂的絮凝率为85.6％，而应用实施例2中阳离子化后的糖蛋白类微生物絮凝剂的絮凝率为98.1％。
实施例3：
本实施例给出一种阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂的制备方法，该方法包括以下步骤：
步骤一，制备糖蛋白类微生物絮凝剂：
步骤一的具体内容与实施例1基本相同，区别仅仅在于其中步骤1.3中的稳定剂为硫酸钠。
步骤二，糖蛋白类微生物絮凝剂的阳离子化改性：
将0.02mol的3-氯-2-羟丙基三甲基氯化铵(CTA)与浓度为1mol/L的NaOH溶液按摩尔比1：0.8进行混合，使其反应10min后，加入10gNY1菌所产絮凝剂纯品。将该混合物于室温下搅拌2h，放入恒温箱中使其于60℃反应1h，得到阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂的混合物。
步骤三，阳离子化糖蛋白类微生物絮凝剂的提纯：
将上述步骤二所得的混合物完全溶解于10mL水中，然后加入30mL的无水乙醇使其析出沉淀，过滤，对沉淀反复洗涤三次、弃去上清液，保留沉淀，于10000r/min，4℃条件下离心1min后干燥，得到纯化后的阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂，测定Zeta电位。
对比例3：
本对比例给出一种糖蛋白类微生物絮凝剂的制备方法，制备过程按照实施例3中步骤一来制备，具体步骤与实施例3的如下步骤相同：
步骤1.1，制备种子液；
步骤1.2，克雷伯氏菌NY1发酵产絮凝剂；
步骤1.3，糖蛋白类微生物絮凝剂的粗品的纯化方法；
最终得到糖蛋白类微生物絮凝剂的纯品，测定Zeta电位。
应用实施例3：
本应用实施例给出一种去除废水中高岭土的方法，该方法采用实施例3中的制备方法制备的阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂。
应用实施过程与应用实施例1相同，计算该样品絮凝率。
应用对比例3：
本应用实施例给出一种去除废水中高岭土的方法，该方法采用对比例3中制备的糖蛋白类微生物絮凝剂的纯品
应用实施过程与应用对比例1-1相同，计算该样品絮凝率。
结果测试表征：
对比例3中的阳离子化前的糖蛋白类微生物絮凝剂的Zeta电位为-47.2mv，而采用实施例3的方法阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂的Zeta电位为+16.1mv；应用对比例3中阳离子化前糖蛋白类微生物絮凝剂的絮凝率为89.9％，而应用实施例3中阳离子化后的糖蛋白类微生物絮凝剂的絮凝率为95.4％。
实施例4：
本实施例给出一种阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂的制备方法，该方法包括以下步骤：
步骤一，制备糖蛋白类微生物絮凝剂：
步骤一的具体内容与实施例1基本相同，区别仅仅在于其中步骤1.3中的稳定剂为硫酸钾。
步骤二，糖蛋白类微生物絮凝剂的阳离子化改性：
将0.005mol的3-氯-2-羟丙基三甲基氯化铵(CTA)与浓度为0.5mol/L的NaOH溶液按摩尔比1：1.2进行混合，使其反应10min后，加入10gNY1菌所产絮凝剂纯品。将该混合物于室温下搅拌1h，放入恒温箱中使其于90℃反应2h，得到阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂的混合物。
步骤三，阳离子化糖蛋白类微生物絮凝剂的提纯：
将上述步骤二所得的混合物完全溶解于10mL水中，然后加入30mL的无水乙醇使其析出沉淀，过滤，对沉淀反复洗涤三次、弃去上清液，保留沉淀，于10000r/min，4℃条件下离心1min后干燥，得到纯化后的阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂，测定Zeta电位。
对比例4：
本对比例给出一种糖蛋白类微生物絮凝剂的制备方法，制备过程按照实施例4中步骤一来制备，具体步骤与实施例4的如下步骤相同：
步骤1.1，制备种子液；
步骤1.2，克雷伯氏菌NY1发酵产絮凝剂；
步骤1.3，糖蛋白类微生物絮凝剂的粗品的纯化方法；
最终得到糖蛋白类微生物絮凝剂的纯品，测定Zeta电位。
应用实施例4：
本应用实施例给出一种去除废水中高岭土的方法，该方法采用实施例4中的制备方法制备的阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂。
应用实施过程与应用实施例1相同，计算该样品絮凝率。
应用对比例4：
本应用实施例给出一种去除废水中高岭土的方法，该方法采用对比例4中制备的糖蛋白类微生物絮凝剂的纯品。
应用实施过程与应用对比例1-1相同，计算该样品絮凝率。
结果测试表征：
对比例4中的阳离子化前的糖蛋白类微生物絮凝剂的Zeta电位为-48.9mv，而采用实施例4的方法阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂的Zeta电位为+13.5mv；应用对比例4中阳离子化前糖蛋白类微生物絮凝剂的絮凝率为86.2％，而应用实施例4中阳离子化后的糖蛋白类微生物絮凝剂的絮凝率为97.5％。
实施例5：
本实施例给出一种阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂的制备方法，该方法包括以下步骤：
步骤一，制备糖蛋白类微生物絮凝剂：
步骤一的具体内容与实施例1基本相同，区别仅仅在于其中步骤1.3中的稳定剂为硫酸钾。
步骤二，糖蛋白类微生物絮凝剂的阳离子化改性：
将0.01mol的3-氯-2-羟丙基三甲基氯化铵(CTA)与浓度为0.8mol/L的NaOH溶液按摩尔比1：1进行混合，使其反应10min后，加入10gNY1菌所产絮凝剂纯品。将该混合物于室温下搅拌1h，放入恒温箱中使其于75℃反应3h，得到阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂的混合物。
步骤三，阳离子化糖蛋白类微生物絮凝剂的提纯：
将上述步骤二所得的混合物完全溶解于10mL水中，然后加入30mL的无水乙醇使其析出沉淀，过滤，对沉淀反复洗涤三次、弃去上清液，保留沉淀，于10000r/min，4℃条件下离心1min后干燥，得到纯化后的阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂，测定Zeta电位。
对比例5：
本对比例给出一种糖蛋白类微生物絮凝剂的制备方法，制备过程按照实施例5中步骤一来制备，具体步骤与实施例5的如下步骤相同：
步骤1.1，制备种子液；
步骤1.2，克雷伯氏菌NY1发酵产絮凝剂；
步骤1.3，糖蛋白类微生物絮凝剂的粗品的纯化方法；
最终得到糖蛋白类微生物絮凝剂的纯品，测定Zeta电位。
应用实施例5：
本应用实施例给出一种去除废水中高岭土的方法，该方法采用实施例5中的制备方法制备的阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂。
应用实施过程与应用实施例1相同，计算该样品絮凝率。
应用对比例5：
本应用实施例给出一种去除废水中高岭土的方法，该方法采用对比例5中制备的糖蛋白类微生物絮凝剂的纯品。
应用实施过程与应用对比例1-1相同，计算该样品絮凝率。
结果测试表征：
对比例5中的阳离子化前的糖蛋白类微生物絮凝剂的Zeta电位为-48.5mv，而采用实施例5的方法阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂的Zeta电位为+17.2mv；应用对比例5中阳离子化前糖蛋白类微生物絮凝剂的絮凝率为84.7％，而应用实施例5中阳离子化后的糖蛋白类微生物絮凝剂的絮凝率为98.3％。
实施例6：
本实施例给出一种阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂的制备方法，该方法与实施例1的方法相同，区别仅仅在于，步骤三，阳离子化糖蛋白类微生物絮凝剂的提纯过程中加入离子强度增强剂氯化钠或氯化钾，最后得纯化后的阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂，测定Zeta电位。
应用实施例6：
本应用实施例给出一种去除废水中高岭土的方法，该方法采用实施例6中的制备方法制备的阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂。
应用实施过程与应用实施例1相同，计算该样品絮凝率。
结果测试表征：
实施例1中的阳离子化后的糖蛋白类微生物絮凝剂的Zeta电位为+12.3mv，而采用实施例6的方法阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂的Zeta电位同样为+12.3mv；应用实施例1中阳离子化前糖蛋白类微生物絮凝剂的絮凝率为92.2％，而应用实施例6中阳离子化后的糖蛋白类微生物絮凝剂的絮凝率为92.2％，从上述结果可以看出，提纯过程中加入有离子强度增强剂氯化钠或氯化钾或者不加入，对于絮凝剂的Zeta电位和絮凝率没有影响。
Claims (9)
1.一种阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂的制备方法，其特征在于：该方法包括以下步骤：
将3-氯-2-羟丙基三甲基氯化铵(CTA)与NaOH溶液进行混合使其反应后，加入糖蛋白类微生物絮凝剂混合，室温下搅拌0.5～2h，然后在60～90℃反应1～3h后，提纯后得到阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂。
2.如权利要求1所述的制备方法，其特征在于：所述的提纯过程为：对反应完成后的混合物加水至完全溶解，然后加入乙醇，析出沉淀，过滤，保留沉淀，沉淀干燥后得到阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂。
3.如权利要求1所述的制备方法，其特征在于：所述的3-氯-2-羟丙基三甲基氯化铵(CTA)与NaOH的摩尔比为1:(0.8～1.6)，NaOH溶液的浓度为(0.5～1)mol/L。
4.如权利要求1所述的制备方法，其特征在于：所述的糖蛋白类微生物絮凝剂每10g对应的3-氯-2-羟丙基三甲基氯化铵为0.005～0.02mol。
5.如权利要求1所述的制备方法，其特征在于：所述的糖蛋白类微生物絮凝剂为NY1菌所产的糖蛋白类微生物絮凝剂纯品。
6.如如权利要求5所述的制备方法，其特征在于：所述的糖蛋白类微生物絮凝剂的制备过程包括以下步骤：
步骤1.1，制备种子液：
从克雷伯氏菌NY1菌株保存斜面上挑取一环菌接入牛肉膏蛋白胨液体培养基中培养，得到OD600nm为1.82±0.08的克雷伯氏菌NY1种子液。
步骤1.2，克雷伯氏菌NY1发酵产絮凝剂：
将100mL发酵培养基于121℃灭菌30min。在无菌环境下，吸取2mL克雷伯氏菌NY1种子液加入发酵培养基中，在30℃，160r/min条件下，恒温振荡培养72h，得糖蛋白类微生物絮凝剂的粗品。
步骤1.3，糖蛋白类微生物絮凝剂的粗品的纯化方法：
取72h后发酵液，于10000r/min，4℃条件下离心15min去菌，在上清液中加入稳定剂，每100mL上清液中对应加入0.5g～2g的稳定剂，搅拌均匀后无水乙醇混合，析出沉淀，倾去上清液，再于10000r/min，4℃条件下离心1min，将所得固体沉淀用少量无水乙醇反复洗三次，于45℃烘干，得到糖蛋白类微生物絮凝剂的纯品。
7.如权利要求6所述的制备方法，其特征在于：所述的稳定剂为氯化钠、氯化钾、硫酸钠或硫酸钾。
8.采用如权利要求1至7任一权利要求所述的制备方法制备的阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂用于去除废水中高岭土的应用。
9.如权利要求8所述的应用，其特征在于：每1.6mg阳离子修饰糖蛋白类微生物絮凝剂对应加至50mL含有2g/L的高岭土的废水悬浊液中。
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