CN105078955A - Terreumol A在制备神经保护药物中的应用 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了Terreumol?A在制备神经保护药物中的应用,属于药物领域。研究发现应用20μmol/LAβ25-35能有效建立体外培养的大鼠嗜铬瘤细胞株PC12凋亡模型;Terreumol?A能部分对抗Aβ25-35诱导的PC12凋亡,可以进一步研究开发成制备神经保护的药物。
Description
技术领域
本发明涉及化合物TerreumolA的新用途,具体涉及TerreumolA在制备神经保护药物中的应用。
背景技术
XiaYin等人首次分离纯化出化合物TerreumolA,并将成果发表在著名天然产物杂志JournalofNaturalProduct上(HighlyOxygenatedMeroterpenoidsfromFruitingBodiesoftheMushroomTricholomaterreum,J.Nat.Prod.,2013,76,1365-1368)。
目前尚未有该化合物的活性报道。
发明内容
本发明的目的在于提供一种TerreumolA的医药用途。
上述目的是通过如下技术方案实现的:
TerreumolA在制备神经保护药物中的应用,所述TerreumolA化学结构式如下,
附图说明
图1:MTT代谢率检测Aβ25-35对PC12细胞的毒性作用;
图2:Aβ25-35对PC12细胞LDH释放率的影响;
图3:Aβ25-35和/或TerreumolA对PC12细胞LDH释放率的影响。
具体实施方式
下面结合实施例进一步说明本发明的实质性内容。
实施例1:TerreumolA的分离制备及结构确证
TerreumolA的制备方法同文献报道的制备方法(HighlyOxygenatedMeroterpenoidsfromFruitingBodiesoftheMushroomTricholomaterreum,J.Nat.Prod.,2013,76,1365-1368)。
结构确证:黄色晶体,分子式为C25H34O8,不饱和度为8。IR数据显示化合物含有羟基基团(3440cm- 1),化合物在372和291nm有紫外吸收表明其含有共轭结构部分。核磁共振氢谱数据δH(ppm,DMSO-d6,600MHz):H-2(6.52,s),H-5(3.44,d,J=15.1),H-5(2.77,d,J=15.1),H-7(2.85,dd,J=9.8,3.8),H-8(2.27,m),H-8(1.45,m),H-9(2.33,dd,J=12.7,7.3),H-9(1.43,m),H-11(3.89,m),H-15(1.33,s),H-16(1.38,s),1-OH(11.97,s),4-OH(7.85,s),3-OCH3(3.96,s);核磁共振碳谱数据δC(ppm,DMSO-d6,600Hz):159.2(C,1-C),99.7(CH,2-C),155.0(C,3-C),139.7(C,4-C),29.8(CH2,5-C),60.4(C,6-C),66.1(CH,7-C),25.5(CH2,8-C),34.9(CH2,9-C),64.7(C,10-C),64.4(CH,11-C),199.6(C,12-C),115.2(C,13-C),123.6(C,14-C),21.5(CH3,15-C),16.4(CH3,16-C),56.6(CH3,3-OCH3)。结构确证数据与文献报道一致,因此可以确定本化合物即为文献报道的TerreumolA。
实施例2:TerreumolA的药理作用试验
一、材料和仪器
Aβ25-35购于美国sigma公司。TerreumolA自制,HPLC归一化纯度大于98%。MTT(四唑氮蓝)购于美国Amresco公司。LDH测定试剂盒购于南京建成生物有限公司。吖啶橙(AO)购于美国sigma公司。溴化乙啶(EB)购于美国sigma公司。RNase酶购于美国sigma公司。蛋白酶K购于美国sigmaAnnexin公司。Ⅴ-FITC细胞凋亡检测试剂盒购于南京凯基生物科技发展有限公司。D-MEM/F12培养基干粉购于美国GibcoL公司。马血清购于美国hycLon公司。胎牛血清购于杭州四季青生物工程有限公司。多聚赖氨酸(PLL)购于美国sigma公司。
低温高速离心机(美国Heraeus),二氧化碳培养箱(美国SHELL/JB),超净工作台(苏州净化设备厂),雷勃MK3酶标仪(芬兰Thermolabsystems),荧光显微镜(德国Leica),流式细胞仪EpicsXL(美国CouLter公司),电泳系统(北京六一仪器厂),雷勃MK3酶标仪(芬兰Thermolabsystems),荧光显微镜(德国Leica),流式细胞仪EpicsXL(美国CouLter公司),电泳系统(北京六一仪器厂)。
二、试验方法
1、细胞培养
PC12细胞生长于含10%马血清、5%胎牛血清的D-MEM/F12培养液(37℃,体积分数为0.05的CO2,饱和湿度),常规传代。实验时培养器皿用0.005%PLL溶液(分子量为150,000-300,000)包被,增加PC12细胞对培养器皿黏附力。
2、Aβ25-35凝聚态处理
Aβ25-35溶于无菌双蒸水,终浓度为2.0mmol/L,分装,-20℃保存,临用前,37℃孵育4-7d。
3、药物对PC12细胞的处理
对数生长期的PC12细胞按一定的密度分别接种于培养板中,待其生长稳定后,将细胞分组,即对照组,Aβ25-35诱导凋亡组以及TerreumolA干涉Aβ25-35诱导凋亡组。其中Aβ25-35诱导凋亡组,以培养液加入凝聚态的Aβ25-35储存液,配制一定浓度的工作液,分别加入细胞培养板,每孔再分别加入细胞悬液,CO2培养箱培养。每小组均设3个平行孔;其次依据20μmol/LAβ25-35,设定TerreumolA干涉凋亡组,细胞以不同浓度TerreumolA预处理1h,再分别予终浓度20μmol/LAβ25-35培养。
4、MTT法测定细胞存活率
取对数生长期的细胞以2-5×105/mL的初始浓度分别接种于96孔培养板中每孔160μL,待其生长稳定后,加入不同浓度的Aβ25-35,细胞对照组只加等量培养液,每组设三个平行孔。培养96小时,每孔加5mg/mL的MTT溶液(PBS配制)20μL,混匀后继续培养4h,弃上清,每孔加DMSO0.2mL,振荡10min,以空白对照孔调零,在490nm波长下测定各孔光密度值。
5、LDH释放量的测定
接种于24孔细胞培养板的细胞,经药物处理48h后,吸出各组上清液备用,各组细胞加入0.1%NP-401mL作用10min,收集上清液备用。按照LDH测定试剂盒说明,分别检测各组上清液和0.1%NP-40的LDH活性,LDH释放率=OD上清/(OD上清+OD0.1%NP-40)×100%。
6、流式细胞分析细胞凋亡
按AnnexinVFITC试剂盒说明操作:
(1)细胞处理一定时间后,2000rpm/min离心5min,细胞数1~5×105;
(2)用PBS清洗细胞二次,2000rpm离心5min;
(3)加入500μLBindingbuffer悬浮细胞;
(4)加入2μLAnnexinV-FITC混匀后,加入5μLPropidiumIodide(PI),混匀,室温,避光反应20min;
(5)流式细胞仪(BackmancoulterEpicsXL)检测,激发波长488nm,发射光530nm.,对散点图进行分析。
7、统计分析
结果用均数±标准差表示,两两比较用t检验,P<0.05认为有统计学意义。
三、结果及结论
1、MTT测定Aβ25-35对PC12细胞活性的影响
从图1可看出,Aβ25-35处理PC12细胞4d后,MTT法检测显示20,40μmol/LAβ25-35作用组吸光值(A490)明显降低,差别有统计学意义(P<0.05)。MTT法检测表示线粒体功能,结果说明Aβ25-35使PC12细胞线粒体功能降低,活细胞数减少,即Aβ25-35对PC12细胞的活性有抑制作用,并与作用浓度相关。结果见表1及图1。
表1Aβ25-35对PC12细胞生长的抑制作用
Aβ25-35(μmol/L) | 0 | 10 | 20 | 40 |
细胞存活率 | 100 | 87.04±4.3% | 73.4±3.2% | 68.6±3.08% |
2、LDH释放量测定
10、20、40μmol/LAβ25-35作用PC12细胞48h后,通过检测细胞LDH释放率显示细胞的损伤程度,结果表明Aβ25-35对PC12细胞的毒性作用,并与作用的浓度相关,20、40μmol/LAβ25-35作用组与对照组比较,差别有统计学意义(图2)。选20μmol/LAβ25-35作为损伤组,观察TerreumolA的干预作用,作用48h,结果表明,10ng/mLTerreumolA即能降低PC12细胞LDH释放率,但差异不显著;100ng/mL,1000ng/mLTerreumolA组明显降低PC12细胞LDH释放率[图3;标号意义:1、control;2、20μmol/LAβ25-35;3、20μmol/LAβ25-35+1.0ng/mLTerreumolA;4、20μmol/LAβ25-35+10ng/mLTerreumolA;5、20μmol/LAβ25-35+100ng/mLTerreumolA;6、20μmol/LAβ25-35+1000ng/mLTerreumolA;其中4、5、6三组与20μmol/LAβ25-35组比较p<0.05]。
3、AnnexinⅤ-PI染色的流式细胞法检测细胞凋亡
各组PC12细胞经处理后上流式细胞仪,并对散点图进行分析(MuLticycL软件处理),显示对照组、10μmol/LAβ25-35、20μmol/LAβ25-35作用48h后,PC12细胞的凋亡率分别为2.1±0.3%,9.3±0.5%和18.6±3.4%,凋亡率与Aβ25-35剂量成正相关,与对照组比较差别具有显著性意义,以100ng/mLTerreumolA预先处理,凋亡率降低为11.2±3.7%,差别有统计学意义(表2,与对照组比较,*:P<0.05,**:P<0.01;与20μmol/LAβ25-35组比较,#:P<0.05),显示TerreumolA抗Aβ25-35致凋亡作用。
表2流式细胞术检测PC12细胞凋亡率
组别 | 细胞凋亡率(%) |
对照组 | 2.1±0.3% |
10μmol/LAβ25-35 | 9.3±0.5%* |
20μmol/LAβ25-35 | 18.6±3.4%** |
20μmol/LAβ25-35+100ng/mLNGF | 11.2±3.7%# |
总结,本研究发现应用20μmol/LAβ25-35能有效建立体外培养的大鼠嗜铬瘤细胞株PC12凋亡模型;TerreumolA能部分对抗Aβ25-35诱导的PC12凋亡。
Claims (1)
1.TerreumolA在制备神经保护中的应用,所述TerreumolA化学结构式如下,
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---|---|---|---|---|
CN105111080A (zh) * | 2015-09-05 | 2015-12-02 | 林天样 | 一种新的二萜化合物及其医药用途 |
CN105153269A (zh) * | 2015-10-22 | 2015-12-16 | 淄博夸克医药技术有限公司 | 一种新的三萜化合物及其制备方法和医药用途 |
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