CN105063013B - 一种融合细胞及其制备方法和其作为肿瘤疫苗的应用 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种融合细胞及其制备方法和其作为肿瘤疫苗的应用，该方法包括以下步骤：(1)制备NDV‑Ulster病毒株修饰的肿瘤细胞；(2)制备采用磷酸抗原或双膦酸盐类药物刺激活化的新型抗原递呈细胞γδT‑APC；(3)制备γδT‑APC和NDV‑Ulser修饰的肿瘤细胞的融合细胞；(4)纯化融合细胞；(5)融合细胞的培养；(6)融合细胞产品的制备。本发明方法能得到更多的新型抗原递呈细胞γδT‑APC，γδT‑APC和经过修饰的肿瘤细胞的融合率高，本发明所得融合细胞的肿瘤抗原效价更完整、免疫源性更强、肿瘤抗原负载率高。
Description
技术领域
本发明涉及一种融合细胞及其制备方法和该融合细胞作为肿瘤疫苗的应用，尤其是涉及一种采用新型抗原递呈细胞γδT-APC和新城鸡瘟病毒株NDV-Ulser修饰的肿瘤细胞融合制备融合细胞的方法，还涉及所得融合细胞作为肿瘤疫苗的应用。
背景技术
树突状细胞(以下称为Dendritic Cell,DC)作为专职抗原递呈细胞在诱导抗病原微生物和抗肿瘤的免疫应答中起至关重要的作用。以DC为基础的抗癌疫苗在临床试验中也日益受到广泛的关注。为了获得肿瘤特异性疫苗，研究者们采用了多种策略来研制基于DC细胞的肿瘤疫苗，以激发抗肿瘤特异性免疫应答。临床试验中应用的DC疫苗主要包括抗原负载的DC细胞疫苗、基因修饰的DC细胞疫苗等。但令人失望的是，在这些DC疫苗的临床试验中，仅有很少的患者接受上述DC细胞疫苗治疗后出现客观应答反应。其原因主要在于：一是对于各种肿瘤已经确定的特异性肿瘤抗原极少，肿瘤细胞也容易通过抗原变异逃避针对单一抗原表位的免疫作用；二是由于提取的肿瘤蛋白抗原在体内容易被蛋白质水解酶降解，诱导的免疫效应不能持久，难以获得理想的治疗效果；三是基因修饰法制备的DC细胞肿瘤疫苗，受基因导入效率和基因转移的靶向性等技术难题的影响；四是DC的的细胞疫苗还受到DC细胞的数量少、纯度低以及DC和肿瘤细胞的免疫源性差等的影响。对于DC融合细胞来说，理论上所有的肿瘤细胞抗原都能够有效地进入抗原递呈途径，免疫源性TAA或TSA肽在共刺激分子存在下由MHCI和MHCII递呈到细胞表面。而且融合细胞能够迁移到肿瘤引流淋巴结，在那里它们能直接与CD4+T和CD8+T细胞直接进行相互作用，诱导强烈的抗肿瘤免疫应答。另外，宿主DC细胞也可以摄取死亡的融合细胞释放的TAAs并依靠其表面MHCI和MHCII分子递呈同时活化CD4+和CD8+T细胞。DC的融合细胞疫苗虽然可以涵盖所有已知和未知的肿瘤特异性抗原及肿瘤相关抗原库，但DC融合细胞疫苗也受DC细胞数量和纯度及肿瘤细胞的免疫源性等的影响，因此，上述DC肿瘤疫苗在临床上的效果往往并不理想。
近年来，DC和肿瘤细胞的融合细胞疫苗的出现成为了肿瘤免疫治疗的研究热点，因为融合细胞既表达肿瘤的所有抗原成分，又具有DC细胞的抗原提呈能力，即融合细胞能递呈肿瘤细胞所有的抗原。肿瘤细胞特异性抗原仍未得到明确鉴定，因此用DC-肿瘤融合细胞递呈全肿瘤抗原被认为是一种简单而有效的抗肿瘤方法。DC-肿瘤融合细胞可通过化学方法如聚乙二醇(PEG)或是使用电融合仪获得。肿瘤细胞在融合前一般都要经过射线照射或是丝裂霉素C处理，所得到的DC-肿瘤融合细胞疫苗是没有增殖危险的。Zhou(Zhou J,Weng D,Zhou F et al.Patient derived renal cell carcinoma cells fused withallogeneic dendritic cells elicit anti-tumor activity：in vitro results andclinical responses.Cancer Immunol Immunother[J]，2009,58(10):1587-1597)报道10个进展的肾癌患者接受疫苗治疗后，其中6个人的病情稳定(SD)持续了1.5年。Avigan(Avigan D,Vasir B,GongJ et al.Fusion cell vaccination of patients withmetastatic breast and renal caner induces immunological and clinicalresponses.Clin Cancer Res[J],2004,10(14):4699-4708)的研究结果表明，在转移性乳腺癌病人中，一位患者胸壁8cm×6cm的肿块几乎完全消退。另一位患者肾上腺肿块缩小了50％，肺上的包块缩小了44％。Trefzer(Trefzer U，Herberth G，Wohlan K,etal.Vaccination with hybrids of tumor and dendritic cells induces tumor-specific T cell and clinical responses in melanoma stage III and IVpatients.Int J Cancer[J],2004,110(5):730-740)研究报道，17例III和IV期黑色素瘤患者接受了融合细胞疫苗治疗后，8例患者有临床疗效，1例达到完全缓解，1例达到部分缓解，6例疾病稳定，平均存活28个月；另外9例患者存活5-22个月，平均存活时间为12.5个月，较IV期黑色素瘤患者平均存活时间(8个月)明显延长。
然而DC-肿瘤融合疫苗也有其很大的局限性，虽然DC细胞可由外周血中的单核细胞来诱导，但单核细胞来源的DC(Mo-DC)受体外增殖能力和不同DC诱导条件的限制，使得单核来源DC(Mo-DC)数量很有限，一般100ml外周血分离PBMCs并经贴壁诱导后最多可获得1×107个DC，而且这些Mo-DC细胞均一性很差，往往是成熟与未成熟DC交织在一起，未成熟DC细胞纯度一般只能达到40-50％左右，未经修饰的DC-肿瘤的融合效率大概在30％左右，按照DC细胞:肿瘤细胞＝1:10的比例进行融合，融合率仅为20-30％，融合细胞相关抗原的表达一般也只能达到30-50％左右，因此临床试验中制备的DC-肿瘤融合细胞疫苗要达到理想的治疗效果必须得满足以下条件：一是用于制备融合细胞的无论是抗原递呈细胞还是肿瘤细胞必须要有很强的免疫源性；二是必须得提高抗原递呈细胞和肿瘤细胞的融合效率，只有足够数量的融合细胞才能更好的发挥有效的免疫应答作用；三是要获得足够数量的融合细胞，首先要有足够数量且表型均一的抗原递呈细胞。
发明内容
为了克服现有技术的缺陷，本发明提供了一种融合细胞及其制备方法和所得融合细胞作为肿瘤疫苗的应用。本发明中采用新型抗原递呈细胞γδT-APC和新城鸡瘟病毒株NDV-Ulser修饰的肿瘤细胞进行融合，其中新型抗原递呈细胞γδT-APC是通过采用磷酸化抗原或双膦酸盐类药物刺激活化脐带血来源的单个核细胞细胞获得的，将所得融合细胞进行分离纯化和扩大培养并将其制备成疫苗。其中，本发明所涉及的γδT-APC、NDV-Ulser修饰的肿瘤细胞、二者的融合细胞都可以进行大量制备；与采用DC细胞和未经修饰的肿瘤细胞进行融合相比，本发明方法能得到更多的新型抗原递呈细胞γδT-APC，γδT-APC和经过修饰的肿瘤细胞的融合率高，本发明所得融合细胞肿瘤抗原效价更完整、免疫源性更强、肿瘤抗原负载率高。
一种融合细胞的制备方法，包括以下步骤：
(1)制备NDV-Ulster病毒株修饰的肿瘤细胞
将肿瘤细胞灭活，在灭活的肿瘤细胞中按照每(1-2)×107个灭活的肿瘤细胞中加入NDV-Ulster病毒株32个血凝单位的比例加入NDV-Ulster病毒株，得混合物，将混合物移入培养瓶中，在培养瓶中加入无血清细胞培养基并于37℃、5％CO2的条件下培养0.5-2小时，离心收集NDV-Ulster病毒株修饰后的肿瘤细胞，洗涤并进行无菌检验，无菌检验阴性为合格；
(2)制备采用磷酸抗原或双膦酸盐类药物刺激活化的新型抗原递呈细胞γδT-APC
从脐带血血库购买的或患者自己在商业机构保存的脐带血中分离单个核细胞后，用含2-10％所述脐带血血浆的无血清细胞培养基将单个核细胞稀释到1-2×106个/ml，置于培养瓶中，并向培养瓶中加入磷酸化抗原或双膦酸盐类药物，优选1-羟基-2-(咪唑-1-yl)-亚乙基-1，1-二磷酸-水化物刺激活化单个核细胞，使磷酸化抗原或双膦酸盐类药物浓度为1-10μM，将培养瓶置于37℃、5％CO2的条件下培养18-24h后，再在培养瓶中加入重组人白细胞介素-Ⅱ(即rhIL-2)，使其浓度为100-1000U/ml，优选1000U/ml，每隔2-3天继续补充所述含2-10％所述脐带血血浆的无血清细胞培养基并补充重组人白细胞介素-Ⅱ，使重组人白细胞介素-Ⅱ浓度保持为100-1000U/ml，优选1000U/ml，如此总共培养7-14天，优选14天，即可获得活化的γδT-APC，离心将γδT-APC收集起来，对活化的γδT-APC细胞进行微生物、细胞活率及免疫表型的检测，微生物检测阴性，细胞活率＞85％，目标免疫表型的阳性率均＞80％才能用于融合细胞的制备；
(3)制备γδT-APC和NDV-Ulser修饰的肿瘤细胞的融合细胞
使用不同荧光染料标记的抗体对步骤(1)所得NDV-Ulser修饰的肿瘤细胞以及步骤(2)培养的γδT-APC进行染色，每2×105个γδT-APC加入1-2×106个NDV-Ulster修饰的肿瘤细胞(即细胞比例1:5-10)进行融合，获得融合产物；优选使用FITC标记的抗MUC1(HMPV,BD Pharminggen)单克隆抗体和/或FITC标记的抗Her-2/neu(TA-1,BD Pharminggen)单克隆抗体对步骤(1)所得NDV-Ulser修饰的肿瘤细胞进行染色，优选使用PE标记的抗HLA-DR(TU36,BD Pharminggen)单克隆抗体和/或PE标记的抗CD86(IT2.2,BD Pharminggen)单克隆抗体对步骤(2)培养的γδT-AP进行染色；
(4)纯化融合细胞
将步骤(3)所得融合产物通过流式细胞荧光分选技术(FACS)纯化获得含有步骤(3)中使用的各种抗体的融合细胞，且该步骤优选的还包括进一步确认所得融合细胞的目标免疫表型为阳性；融合细胞不仅高表达来源于γδT-APC的MHC-I、MHC-II分子、共刺激分子(CD80,CD86)、粘附分子(ICAM-I),同时还能表达来源于肿瘤细胞的特异性抗原，融合细胞能表达来源于被融合双亲的共同特征,融合前用不同的荧光抗体标记的γδT-APC和肿瘤细胞，融合后融合细胞即出现所谓的双阳性表现，流式细胞仪可以定量检测融合率；
(5)融合细胞的培养：将步骤4获得的经过纯化的融合细胞置于培养瓶中，加入所述含2-10％所述脐带血血浆的无血清细胞培养基，并加入重组人白介素-2使其浓度为100-1000U/ml，于37℃、5％CO2的条件下培养18-24h，得培养物；
(6)融合细胞产品的制备：将步骤(5)所得培养物离心去上清，沉淀洗涤后收集融合细胞产品，对融合细胞产品进行活细胞计数和微生物检测，存活率＞85％为合格，微生物检测阴性为合格。所述活细胞计数计算存活率使用台酚蓝染色法。
一种融合细胞的制备方法，其中肿瘤细胞可以为原代培养的肿瘤细胞或传代培养的肿瘤细胞株，所述原代培养和传代培养均采用现有技术。
一种融合细胞的制备方法，其中原代培养的肿瘤细胞或传代培养的肿瘤细胞株的初始来源为：取新鲜的离体肿瘤组织，冲洗干净，通过机械方法(优选为剪切或研磨)消化后制备成单细胞悬液，计量细胞数目，去除死细胞及碎片，去除肿瘤浸润淋巴细胞；其中所述消化优选为消化后过100目筛网，所述计量细胞数目优选采用台酚蓝染色法，所述去除死细胞及碎片优选采用密度梯度离心法，所述去除肿瘤浸润淋巴细胞优选采用包被好的商用免疫磁珠(德国美天旎，CD3MicroBeads)。
一种融合细胞的制备方法，其中步骤(1)中所述肿瘤细胞的灭活方式为：进行γ辐射照射或者加入丝裂霉素C，所述γ辐射照射的剂量优选为30-200Gy，所述加入丝裂霉素C的剂量优选为30-90μg/ml。
一种融合细胞的制备方法，其中步骤(2)中所述磷酸化抗原或双膦酸盐类药物还可以选自帕米膦酸二钠(二钠-氨基-1-羟基亚丙基-1，1-二膦酸五水化合物)、阿伦磷酸钠(4–氨基–(1–羟基亚丁基)–1，1–二磷酸单钠三水合物)、伊班膦酸钠([1—羟基—3—(N—甲基—N—戊胺基)亚膦酸单钠盐-水合物)和唑来膦酸(1-羟基-2-(咪唑-1-yl)-亚乙基-1,1-二磷酸一水化物)。
一种融合细胞的制备方法，其中所有步骤中所述无血清细胞培养基均为：生产厂家为Takara、商品名为GT-T551H3的无血清细胞培养基；生产厂家为Lonza、商品名为X-VIVO15的无血清细胞培养基或生产厂家为Gibco、商品名为AIM-V的无血清细胞培养基。
一种融合细胞的制备方法，其中步骤(2)中所述分离单个核细胞的方法为：将脐带血使用人淋巴细胞分离液进行分离，其中所述人淋巴细胞分离液优选为生产厂家为GE、商品名为Ficoll-paque plus或Ficoll-paque premium的人淋巴细胞分离液。
一种融合细胞的制备方法，其中步骤(3)中细胞融合的方法优选聚乙二醇(PEG)融合法或电融合法，其中：
所述聚乙二醇融合法的步骤为:γδT-APC和肿瘤细胞组成的混合细胞均匀混合于离心管中,吸取预热至37℃的50％PEG缓慢滴入离心管中，轻柔振荡，每1-2.5×106个混合细胞中加入0.5-1ml 50％PEG，静置融合1-15分钟，然后缓慢加入预热至37℃的所述无血清细胞培养基稀释终止反应；
所述电融合技术的步骤为:γδT-APC和肿瘤细胞组成的混合细胞在融合介质中进行洗涤，所述融合介质为：含50g/L葡萄糖、0.5mmol/L醋酸镁、0.1mmol/L醋酸钙、3g/L牛血清白蛋白,pH7.2的水溶液,随后将混合细胞重悬于所述融合介质中,细胞浓度为(1-1.5)×107个/ml，融合过程由BTX公司的ECM2001电融合仪来完成，把细胞放入电融合槽中,用交流电(120V/cm)冲击细胞悬液10秒使得γδT-APC和肿瘤细胞各自排列成两排，然后立即将交流电改为直流电(1100V/cm)冲击25微秒，进行细胞融合。
一种融合细胞的制备方法，其中步骤(2)中所述目标免疫表型为HLA-DR、HLA-A、CD80、CD86和CD11c；步骤(4)中所述目标免疫表型为HLA-DR、HLA-A、CD80、CD86、CD11c和MUC1。
本发明还提供了使用上述制备方法制备的融合细胞。
本发明还提供了上述融合细胞作为肿瘤疫苗的应用，所述肿瘤疫苗的制备方法为：将合格的融合细胞产品用0.9％的生理盐水悬浮，使细胞浓度为(1-3)×107个/ml，并加入人血白蛋白使其终浓度为0.5-1％，即制得可以给患者输注的融合细胞肿瘤疫苗。
本发明所述肿瘤可以为乳腺癌肿瘤，本发明使用了乳腺癌细胞株MCF7用于实验。
与现有技术相比，本发明具有如下有益效果：
1、γδT-APC容易大量制备，纯度高，抗原递呈能力强，100ml脐带血中分离到1×108个单个核细胞后，经过7天培养，可获得1.5×109个γδT-APC，细胞纯度可达90％以上；而100ml脐带血中分离到1×108个单个核细胞后，经过7天培养，只能得到1×107个Mo-DC，细胞纯度最高只有60％左右；
2、NDV修饰的肿瘤细胞由于神经氨酸酶的插入使得肿瘤细胞的抗原得以充分暴露在表面，肿瘤免疫源性更强，NDV修饰的肿瘤细胞由于融合蛋白的插入使得肿瘤细胞的粘附性增强，细胞的融合能力更强；
3、γδT-APC和NDV修饰的肿瘤细胞进行融合，融合率可达到42％-61％，但使用Mo-DC和未经修饰的肿瘤细胞，融合率只有20％-30％；
4、γδT-APC和NDV修饰的肿瘤细胞的融合细胞上抗原负载率高，可达80％以上，抗原结合更稳定、免疫源性更强。
附图说明
图1是经过荧光染料标记的抗体染色的不同细胞示意图，图A中为经过染色的NDV修饰的肿瘤细胞，图B中为经过染色的γδT-APC细胞，图C中黄色代表上述二者的融合细胞；
图2是采用流式细胞术检测融合细胞的图谱，右上象限代表融合细胞；
图3是对比γδT-APC细胞、Mo-DC细胞、未经修饰的乳腺癌细胞和NDV-Ulster病毒株修饰的乳腺癌细胞表面特定免疫表型的阳性表达率，每一种免疫表型对应的左起第一项代表γδT-APC；每一种免疫表型对应的左起第二项代表Mo-DC；每一种免疫表型对应的左起第三项代表未经修饰的乳腺癌细胞；每一种免疫表型对应的左起第四项代表NDV-Ulster病毒株修饰的乳腺癌细胞。
具体实施方式
下面结合附图，对本发明的具体实施方式进行详细描述，但应当理解本发明的保护范围并不受具体实施方式的限制。
实施例1 γδT-APC和NDV-Ulster病毒株修饰的肿瘤细胞进行融合
(1)制备NDV-Ulster病毒株修饰的肿瘤细胞
将乳腺癌细胞株MCF7进行γ辐射照射灭活，γ辐射照射的剂量为200Gy，在灭活的肿瘤细胞中按照每1×107个灭活的肿瘤细胞中加入NDV-Ulster病毒株32个血凝单位的比例加入NDV-Ulster病毒株，得混合物，将混合物移入培养瓶中，在培养瓶中加入无血清细胞培养基(生产厂家为Lonza、商品名为X-VIVO15)并于37℃、5％CO2的条件下培养1小时，1500rpm×10min离心收集NDV-Ulster修饰后的肿瘤细胞，用无血清细胞培养基(生产厂家为Lonza、商品名为X-VIVO15)洗涤、采用台酚蓝染色法计量细胞数和浓度并进行无菌检验，无菌检验为阴性合格后重新悬浮后用于融合细胞制备；
(2)制备采用磷酸抗原或双膦酸盐类药物刺激活化的新型抗原递呈细胞γδT-APC
从脐带血血库购买脐带血，并用GE公司、商品名为Ficoll-paque plus的人淋巴细胞分离液分离单个核细胞后，用含10％该脐带血血浆的无血清细胞培养基(生产厂家为Lonza、商品名为X-VIVO15)将单个核细胞稀释到2×106个/ml，置于培养瓶中，并向培养瓶中加入终浓度为10μM的1-羟基-2-(咪唑-1-yl)-亚乙基-1，1-二磷酸-水化物刺激活化单个核细胞，将培养瓶置于37℃、5％CO2的条件下培养24h后，再在培养瓶中加入重组人白细胞介素-Ⅱ(即rhIL-2)，使其浓度为1000U/ml，每隔2-3天继续补充所述含10％上述脐带血血浆的无血清细胞培养基(生产厂家为Lonza、商品名为X-VIVO15)并补充重组人白细胞介素-Ⅱ，使其浓度保持为1000U/ml，如此总共培养7天，即可获得活化的γδT-APC，离心将γδT-APC收集起来，对活化的γδT-APC细胞进行微生物、细胞活率及免疫表型的检测，微生物检测阴性，细胞活率＞85％，免疫表型HLA-DR、HLA-A、CD80、CD86和CD11c的阳性率分别＞80％才能用于融合细胞的制备；
(3)制备γδT-APC和NDV-Ulser修饰的肿瘤细胞的融合细胞
使用FITC标记的抗MUC1(HMPV)单克隆抗体对步骤(1)所得NDV-Ulser修饰的肿瘤细胞进行染色，使用PE标记的抗HLA-DR(TU36)单克隆抗体对步骤(2)培养的γδT-APC进行染色，每2×105个γδT-APC中加入2×106个NDV-Ulster修饰的肿瘤细胞(即细胞比例1：10)进行混合并采用电融合技术进行融合:γδT-APC和NDV-Ulser修饰的肿瘤细胞在融合介质(含50g/L葡萄糖、0.5mmol/L醋酸镁、0.1mmol/L醋酸钙、3g/L牛血清白蛋白,pH7.2的水溶液)中洗涤并随后重悬于融合介质中,细胞浓度为1×107个/ml，融合过程由BTX公司的ECM2001电融合仪来完成，把细胞放入电融合槽中,用交流电(120V/cm)冲击细胞悬液10秒使得γδT-APC和NDV-Ulser修饰的肿瘤细胞各自排列成两排；然后立即将交流电改为直流电(1100V/cm)冲击25微秒，获得融合产物；
(4)纯化融合细胞
通过FACS对步骤(3)所得产物进行分析和纯化，获得既具有HLA-DR、HLA-A、CD80、CD86、CD11c和MUC1的免疫表型、又同时含有FITC标记的抗MUC1(HMPV)单克隆抗体和PE标记的抗HLA-DR(TU36)单克隆抗体的融合细胞；
(5)融合细胞的培养：将步骤4获得的经过纯化的融合细胞置于培养瓶中，加入上述含10％上述脐带血血浆的无血清细胞培养基，并加入重组人白介素-2使其浓度为1000U/ml，于37℃、5％CO2的条件下培养24h，得培养物；
(6)融合细胞产品的制备：将步骤(5)所得培养物离心去上清，沉淀洗涤后收集融合细胞产品，对融合细胞产品进行活细胞计数和微生物检测，存活率＞85％为合格，微生物检测阴性为合格，所述活细胞计数计算存活率使用台酚蓝染色法；
(7)肿瘤疫苗的制备：将合格的融合细胞产品用0.9％的生理盐水悬浮，使细胞浓度为3×107个/ml，并加入人血白蛋白使其终浓度为1％，即制得可以给患者输注的融合细胞肿瘤疫苗。
实施例2 γδT-APC和NDV-Ulster病毒株修饰的肿瘤细胞进行融合
(1)制备NDV-Ulster病毒株修饰的肿瘤细胞
将乳腺癌细胞株MCF7加入丝裂霉素C灭活，使丝裂霉素C的剂量为50μg/ml，在灭活的肿瘤细胞中按照每2×107个灭活的肿瘤细胞中加入NDV-Ulster病毒株32个血凝单位的比例加入NDV-Ulster病毒株，得混合物，将混合物移入培养瓶中，在培养瓶中加入无血清细胞培养基(生产厂家为Takara、商品名为GT-T551H3)中于37℃、5％CO2的条件下培养2小时，1500rpm×10min离心收集NDV-Ulster修饰后的肿瘤细胞，用无血清细胞培养基(生产厂家为Takara、商品名为GT-T551H3)洗涤、采用台酚蓝染色法计量细胞数和浓度并进行无菌检验，无菌检验为阴性合格后重新悬浮后用于融合细胞制备；
(2)制备采用磷酸抗原或双膦酸盐类药物刺激活化的新型抗原递呈细胞γδT-APC
从脐带血血库购买脐带血，并用GE公司、商品名为Ficoll-paque premium的人淋巴细胞分离液分离单个核细胞后，用含10％所述脐带血血浆的无血清细胞培养基(生产厂家为Takara、商品名为GT-T551H3)将单个核细胞稀释到2×106个/ml，置于培养瓶中，并向培养瓶中加入终浓度为10μM的1-羟基-2-(咪唑-1-yl)-亚乙基-1，1-二磷酸-水化物刺激活化单个核细胞，将培养瓶置于37℃、5％CO2的条件下培养24h后，再在培养瓶中加入重组人白细胞介素-Ⅱ(即rhIL-2)，使其浓度为1000U/ml，每隔2-3天补充所述含10％所述述脐带血血浆的无血清细胞培养基(生产厂家为Takara、商品名为GT-T551H3)并补加重组人白细胞介素-Ⅱ，使其浓度保持为1000U/ml，如此总共培养14天，即可获得活化的γδT-APC，离心将γδT-APC收集起来，对活化的γδT-APC细胞进行微生物、细胞活率及免疫表型的检测，微生物检测阴性，细胞活率＞85％，免疫表型HLA-DR、HLA-A、CD80、CD86和CD11c的阳性率分别＞80％才能用于融合细胞的制备；
(3)制备γδT-APC和NDV-Ulser修饰的肿瘤细胞的融合细胞
使用FITC标记的抗Her-2/neu(TA-1)单克隆抗体对步骤(1)所得NDV-Ulser修饰的肿瘤细胞进行染色，使用PE标记的抗CD86(IT2.2)单克隆抗体和HLA-DR(TU36)单克隆抗体对步骤(2)培养的γδT-AP进行染色，每2×105个γδT-APC中加入1×106个NDV-Ulster修饰的肿瘤细胞(即细胞比例1：5)进行混合并采用聚乙二醇法进行融合:γδT-APC和肿瘤细胞组成的混合细胞均匀混合于离心管中,吸取预热至37℃的50％PEG缓慢滴入离心管中，轻柔振荡，每1×106个混合细胞中加入0.5ml 50％PEG，静置融合15分钟，然后缓慢加入预热至37℃的所述无血清细胞培养基(生产厂家为Takara、商品名为GT-T551H3)稀释终止反应；
(4)纯化融合细胞
通过FACS对步骤(3)所得产物进行分析和纯化，获得既具有HLA-DR、HLA-A、CD80、CD86、CD11c和MUC1的免疫表型、又同时含有FITC标记的抗Her-2/neu(TA-1)单克隆抗体和PE标记的抗CD86单克隆抗体(IT2.2)和HLA-DR(TU36)单克隆抗体的融合细胞；
(5)融合细胞的培养：将步骤4获得的经过纯化的融合细胞置于培养瓶中，加入含10％上述脐带血血浆的无血清细胞培养基(生产厂家为Takara、商品名为GT-T551H3)，并加入重组人白介素-2使其浓度为500U/ml，于37℃、5％CO2的条件下培养24h，得培养物；
(6)融合细胞产品的制备：将步骤(5)所得培养物离心去上清，沉淀洗涤后收集融合细胞产品，对融合细胞产品进行活细胞计数和微生物检测，存活率＞85％为合格，微生物检测阴性为合格，所述活细胞计数计算存活率使用台酚蓝染色法；
(7)肿瘤疫苗的制备：将合格的融合细胞产品用0.9％的生理盐水悬浮，使细胞浓度为1×107个/ml，并加入人血白蛋白使其终浓度为0.5％，即制得可以给患者输注的融合细胞肿瘤疫苗。
实施例3 Mo-DC细胞和未经修饰的肿瘤细胞进行融合
Mo-DC细胞的诱导培养：从脐带血血库购买脐带血(与实施例1为同一脐带血)，并用GE公司、商品名为Ficoll-paque premium的人淋巴细胞分离液分离单个核细胞后，用含10％所述脐带血血浆的无血清细胞培养基(生产厂家为Lonza、商品名为X-VIVO15)将单个核细胞稀释到2×106个/ml，置于培养瓶中，5％CO2、37℃的条件下培养2小时，轻轻吸出悬浮细胞，保留下层的贴壁细胞，在培养瓶中加入终浓度为100ng/ml的GM-CSF、终浓度为100ng/ml的IL-4、终浓度为10％的所述脐带血血浆、终浓度为0.02mmol/L的L-谷氨酰胺、终浓度为5×10-5mol/L的巯基乙醇的无血清细胞培养基(生产厂家为Lonza、商品名为X-VIVO15)，5％CO2、37℃的条件下培养2天，然后加入诱导DC成熟的试剂包括终浓度为5μg/ml的PGE2，终浓度为50ng/ml的IL-6，终浓度为50ng/ml的IL-1和终浓度为100ng/ml的TNF-α继续培养5天诱导DC成熟，获得Mo-DC细胞。
将上述所得Mo-DC细胞与未经修饰的、乳腺癌细胞株MCF7进行融合，除了用于融合的2种细胞不同，其余步骤参数均与实施例1相同。
实施例4 性能对比
(1)从100ml脐带血中分离到1×108个单个核细胞后，按照实施例1中制备新型抗原递呈细胞γδT-APC的方法，由1×108个单个核细胞细胞培养7天后可增殖为1.5×109个γδT-APC，培养到14天后能达到3×109个γδ-APC，细胞纯度可达到90％，按照实施例3中制备Mo-DC的方法，由1×108个单个核细胞细胞培养诱导7天后，只能得到1×107个Mo-DC，且细胞纯度最高只有60％左右；
(2)实施例1和实施例3中均采用电融合方法，对比二者融合效率：γδ-APC和Mo-DC均为同一脐带血来源的、具有抗原递呈功能的抗原递呈细胞；实施例1采用的是NDV-Ulser修饰的乳腺癌细胞株MCF7，实施例3采用的是未经修饰的乳腺癌细胞株MCF7；抗原递呈细胞和肿瘤细胞的比例均为1:10。融合效率为通过荧光标记和流式检测及免疫荧光检测分析的结果，融合效率＝(视野内融合细胞的细胞核总数/视野内全部细胞的细胞核总数)×100％，实施例1中的融合效率为61％，采用本发明方法的融合效率可达到42％-61％，按照实施例3中方法的融合效率为20％-30％；
(3)对比γδT-APC细胞、Mo-DC细胞、未经修饰的乳腺癌细胞和NDV-Ulster病毒株修饰的乳腺癌细胞表面特定免疫表型的阳性表达率，如图3所示，γδT-APC细胞和NDV-Ulster病毒株修饰的乳腺癌细胞表面HLA-DR,HLA-A,CD80，CD86，CD11c,MUC1的阳性表达率要分别高于Mo-DC细胞和未经修饰的乳腺癌细胞；
(4)对比γδT-APC细胞和NDV-Ulser修饰的肿瘤细胞的融合细胞以及Mo-DC和未经修饰的肿瘤细胞的融合细胞的免疫表型，结果如表1所示：本发明所得融合细胞表面HLA-DR、HLA-A、CD80、CD86、CD11c以及MUC1的阳性表达率要高于Mo-DC和未经修饰的肿瘤细胞的融合细胞。
表1.不同融合细胞免疫表型检测结果
综上所述，γδT-APC相对于Mo-DC更容易大量培养，且获得的γδT-APC纯度高于Mo-DC；与使用Mo-DC和未经修饰的肿瘤细胞融合相比，使用γδT-APC和经过修饰的肿瘤细胞融合的融合率更高，且本发明融合细胞表面负载的几种标志免疫表型的阳性表达率要高于前者融合细胞。
以上公开的仅为本发明的具体实施例，但是，本发明并非局限于此，任何本领域的技术人员能思之的变化都应落入本发明的保护范围。
Claims (15)
1.一种融合细胞的制备方法，其特征在于，包括以下步骤：
(1)制备NDV-Ulster病毒株修饰的肿瘤细胞
将肿瘤细胞灭活，在灭活的肿瘤细胞中按照每(1-2)×107个灭活的肿瘤细胞中加入NDV-Ulster病毒株32个血凝单位的比例加入NDV-Ulster病毒株，得混合物，将混合物移入培养瓶中，在培养瓶中加入无血清细胞培养基并于37℃、5％CO2的条件下培养0.5-2小时，离心收集NDV-Ulster病毒株修饰后的肿瘤细胞，洗涤并进行无菌检验，无菌检验阴性为合格；
(2)制备采用磷酸抗原或双膦酸盐类药物刺激活化的新型抗原递呈细胞γδT-APC
从脐带血中分离单个核细胞后，用含2-10％所述脐带血血浆的无血清细胞培养基将单个核细胞稀释到(1-2)×106个/ml，置于培养瓶中，并向培养瓶中加入磷酸化抗原或双膦酸盐类药物刺激活化单个核细胞，使磷酸化抗原或双膦酸盐类药物浓度为1-10μM，将培养瓶置于37℃、5％CO2的条件下培养18-24h后，再在培养瓶中加入重组人白细胞介素-Ⅱ，使其浓度为100-1000U/ml，每隔2-3天继续补充所述含2-10％所述脐带血血浆的无血清细胞培养基并补充重组人白细胞介素-Ⅱ，使重组人白细胞介素-Ⅱ浓度保持为100-1000U/ml，如此总共培养7-14天，即可获得活化的γδT-APC，离心将γδT-APC收集起来，对活化的γδT-APC细胞进行微生物、细胞活率及免疫表型的检测，微生物检测阴性，细胞活率＞85％，目标免疫表型的阳性率均＞80％才能用于融合细胞的制备；
(3)制备γδT-APC和NDV-Ulser修饰的肿瘤细胞的融合细胞
使用不同荧光染料标记的抗体对步骤(1)所得NDV-Ulser修饰的肿瘤细胞以及步骤(2)培养的γδT-APC进行染色，每2×105个γδT-APC中加入(1-2)×106个NDV-Ulster修饰的肿瘤细胞进行融合，获得融合产物；
其中，细胞融合的方法为电融合法，所述电融合技术的步骤为:γδT-APC和肿瘤细胞组成的混合细胞在融合介质中进行洗涤，所述融合介质为：含50g/L葡萄糖、0.5mmol/L醋酸镁、0.1mmol/L醋酸钙、3g/L牛血清白蛋白,pH7.2的水溶液,随后将混合细胞重悬于所述融合介质中,细胞浓度为(1-1.5)×107个/ml，融合过程由电融合仪来完成，把细胞放入电融合槽中,用交流电120V/cm冲击细胞悬液10秒使得γδT-APC和肿瘤细胞各自排列成两排，然后立即将交流电改为直流电1100V/cm冲击25微秒，进行细胞融合；
(4)纯化融合细胞
将步骤(3)所得融合产物通过流式细胞荧光分选技术纯化获得含有步骤(3)中使用的各种抗体的融合细胞；
(5)融合细胞的培养：将步骤4获得的经过纯化的融合细胞置于培养瓶中，加入所述含2-10％所述脐带血血浆的无血清细胞培养基，并加入重组人白介素-2使其浓度为100-1000U/ml，于37℃、5％CO2的条件下培养18-24h，得培养物；
(6)融合细胞产品的制备：将步骤(5)所得培养物离心去上清，沉淀洗涤后收集融合细胞产品，对融合细胞产品进行活细胞计数和微生物检测，存活率＞85％为合格，微生物检测阴性为合格；
上述步骤(2)中所述目标免疫表型为HLA-DR、HLA-A、CD80、CD86和CD11c；步骤(4)中所述目标免疫表型为HLA-DR、HLA-A、CD80、CD86、CD11c和MUC1。
2.根据权利要求1所述的融合细胞的制备方法，其特征在于，在步骤(2)中，将培养瓶置于37℃、5％CO2的条件下培养18-24h后，再在培养瓶中加入重组人白细胞介素-Ⅱ，使其浓度为1000U/ml。
3.根据权利要求1所述的融合细胞的制备方法，其特征在于，在步骤(2)中，每隔2-3天继续补充所述含2-10％所述脐带血血浆的无血清细胞培养基并补充重组人白细胞介素-Ⅱ，使重组人白细胞介素-Ⅱ浓度保持为1000U/ml。
4.根据权利要求1所述的融合细胞的制备方法，其特征在于，在步骤(2)中，每隔2-3天继续补充所述含2-10％所述脐带血血浆的无血清细胞培养基并补充重组人白细胞介素-Ⅱ，如此总共培养14天，即可获得活化的γδT-APC。
5.根据权利要求1所述的融合细胞的制备方法，其特征在于，步骤(1)中所述肿瘤细胞的灭活方式为：进行γ辐射照射或者加入丝裂霉素C。
6.根据权利要求5所述的融合细胞的制备方法，其特征在于，所述γ辐射照射的剂量为30-200Gy。
7.根据权利要求5所述的融合细胞的制备方法，其特征在于，所述加入丝裂霉素C的剂量为30-90μg/ml。
8.根据权利要求1或5所述的融合细胞的制备方法，其特征在于，步骤(2)中所述分离单个核细胞的方法为：将脐带血使用人淋巴细胞分离液进行分离。
9.根据权利要求8所述的融合细胞的制备方法，其特征在于，所述人淋巴细胞分离液为生产厂家为GE、商品名为Ficoll-paque plus或Ficoll-paque premium的人淋巴细胞分离液。
10.一种融合细胞的制备方法，其特征在于，包括以下步骤：
(1)制备NDV-Ulster病毒株修饰的肿瘤细胞
将肿瘤细胞灭活，在灭活的肿瘤细胞中按照每(1-2)×107个灭活的肿瘤细胞中加入NDV-Ulster病毒株32个血凝单位的比例加入NDV-Ulster病毒株，得混合物，将混合物移入培养瓶中，在培养瓶中加入无血清细胞培养基并于37℃、5％CO2的条件下培养0.5-2小时，离心收集NDV-Ulster病毒株修饰后的肿瘤细胞，洗涤并进行无菌检验，无菌检验阴性为合格；
(2)制备采用磷酸抗原或双膦酸盐类药物刺激活化的新型抗原递呈细胞γδT-APC
从脐带血中分离单个核细胞后，用含2-10％所述脐带血血浆的无血清细胞培养基将单个核细胞稀释到(1-2)×106个/ml，置于培养瓶中，并向培养瓶中加入磷酸化抗原或双膦酸盐类药物刺激活化单个核细胞，使磷酸化抗原或双膦酸盐类药物浓度为1-10μM，将培养瓶置于37℃、5％CO2的条件下培养18-24h后，再在培养瓶中加入重组人白细胞介素-Ⅱ，使其浓度为100-1000U/ml，每隔2-3天继续补充所述含2-10％所述脐带血血浆的无血清细胞培养基并补充重组人白细胞介素-Ⅱ，使重组人白细胞介素-Ⅱ浓度保持为100-1000U/ml，如此总共培养7-14天，即可获得活化的γδT-APC，离心将γδT-APC收集起来，对活化的γδT-APC细胞进行微生物、细胞活率及免疫表型的检测，微生物检测阴性，细胞活率＞85％，目标免疫表型的阳性率均＞80％才能用于融合细胞的制备；
(3)制备γδT-APC和NDV-Ulser修饰的肿瘤细胞的融合细胞
使用不同荧光染料标记的抗体对步骤(1)所得NDV-Ulser修饰的肿瘤细胞以及步骤(2)培养的γδT-APC进行染色，每2×105个γδT-APC中加入(1-2)×106个NDV-Ulster修饰的肿瘤细胞进行融合，获得融合产物；
其中，细胞融合的方法为聚乙二醇融合法，所述聚乙二醇融合法的步骤为:γδT-APC和肿瘤细胞组成的混合细胞均匀混合于离心管中,吸取预热至37℃的50％PEG缓慢滴入离心管中，轻柔振荡，每(1-2.5)×106个混合细胞中加入0.5-1ml 50％PEG，静置融合1-15分钟，然后缓慢加入预热至37℃的所述无血清细胞培养基稀释终止反应；
(4)纯化融合细胞
将步骤(3)所得融合产物通过流式细胞荧光分选技术纯化获得含有步骤(3)中使用的各种抗体的融合细胞；
(5)融合细胞的培养：将步骤4获得的经过纯化的融合细胞置于培养瓶中，加入所述含2-10％所述脐带血血浆的无血清细胞培养基，并加入重组人白介素-2使其浓度为100-1000U/ml，于37℃、5％CO2的条件下培养18-24h，得培养物；
(6)融合细胞产品的制备：将步骤(5)所得培养物离心去上清，沉淀洗涤后收集融合细胞产品，对融合细胞产品进行活细胞计数和微生物检测，存活率＞85％为合格，微生物检测阴性为合格；
上述步骤(2)中所述目标免疫表型为HLA-DR、HLA-A、CD80、CD86和CD11c；步骤(4)中所述目标免疫表型为HLA-DR、HLA-A、CD80、CD86、CD11c和MUC1。
11.根据权利要求1或5所述的融合细胞的制备方法，其特征在于，步骤(3)中使用FITC标记的抗MUC1(HMPV)单克隆抗体和/或FITC标记的抗Her-2/neu(TA-1)单克隆抗体对步骤(1)所得NDV-Ulser修饰的肿瘤细胞进行染色，使用PE标记的抗HLA-DR(TU36)单克隆抗体和/或PE标记的抗CD86(IT2.2)单克隆抗体对步骤(2)培养的γδT-AP进行染色。
12.根据权利要求1或5所述的融合细胞的制备方法，其特征在于，步骤(4)还包括进一步确认所得融合细胞的目标免疫表型为阳性。
13.根据权利要求1所述的融合细胞的制备方法，其特征在于，步骤(2)中所述磷酸化抗原或双膦酸盐类药物还可以选自帕米膦酸二钠、阿伦磷酸钠、伊班膦酸钠和唑来膦酸。
14.一种根据权利要求1所述方法制备的融合细胞。
15.权利要求14所述融合细胞制备肿瘤疫苗的应用，所述肿瘤疫苗的制备方法为：将合格的融合细胞产品用0.9％的生理盐水悬浮，使细胞浓度为(1-3)×107个/ml，并加入人血白蛋白使其终浓度为0.5-1％，即制得可以给患者输注的融合细胞肿瘤疫苗。
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