CN104593398B - 一种高L‑天冬氨酸α羧化酶活性的工程菌及其在生产β‑丙氨酸中的应用 - Google Patents
一种高L‑天冬氨酸α羧化酶活性的工程菌及其在生产β‑丙氨酸中的应用 Download PDFInfo
- Publication number
- CN104593398B CN104593398B CN201310534782.2A CN201310534782A CN104593398B CN 104593398 B CN104593398 B CN 104593398B CN 201310534782 A CN201310534782 A CN 201310534782A CN 104593398 B CN104593398 B CN 104593398B
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- engineering bacteria
- pand
- alanine
- beta
- sequence
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Active
Links
Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
本发明公开了一种工程菌及其在生产β‑丙氨酸中的应用。本发明提供的工程菌,其构建方法依次包括如下步骤:(1)将目的蛋白的编码基因插入载体pET‑30a(+)的多克隆位点,得到的重组质粒pET30‑panDB;所述目的蛋白如序列表的序列6所示;(2)将步骤(1)得到的重组质粒pET30‑panDB导入大肠杆菌BL21(DE3),得到所述工程菌。本发明还保护一种生产β‑丙氨酸的方法,以L‑天冬氨酸为底物,采用所述工程菌进行生物转化,得到β‑丙氨酸。采用本发明提供的方法制备β‑丙氨酸,无需添加诱导剂,整个过程无需高温、高压,同时具有条件温和、操作简单、对环境友好等优点,已达工业化应用水平。
Description
技术领域
本发明涉及一种高L-天冬氨酸α羧化酶活性的工程菌及其在生产β-丙氨酸中的应用。
背景技术
β-丙氨酸(β-alanine),即3-氨基丙酸(3-aminopropanoic),是自然界中唯一存在的β型非蛋白氨基酸,β-丙氨酸是一种重要的生化原料,可以用于合成泛酸、肌肽、帕米膦酸钠、巴柳氮等,在医药、饲料和食品领域有着十分广泛的应用。
目前β-丙氨酸的合成方法主要有化学法和生物法。
化学法合成β丙氨酸主要有丙烯腈法、丙烯酸法及琥珀酰亚胺降解法。丙烯腈法使用丙烯腈和氨水氨化反应生成β-氨基丙腈,再在酸性或碱性条件下水解即得,该方法原料易得、成本较低,但有副反应,且水解过程中生成大量无机盐,产物较难纯化。丙烯酸法使用丙烯酸、丙烯酸酯或丙烯酸盐与氨水氨化反应,在较高的温度和压力条件下得到β-丙氨酸,合成工艺简单、收率高,但却需要高温高压。琥珀酰亚胺法是指将琥珀酰亚胺在碱性氯酸钠溶液中发生降解得到β-丙氨酸,该法的工艺条件要求苛刻,原料成本较高且易发生其它副反应,不适合工业化。总之,化学合成法的原料、中间体有毒,同时反应条件比较苛刻,要求高温高压,对环境污染严重。
生物法合成β-丙氨酸,国内相关报道的主要有两种,一种是使用藤黄八叠球菌将丙烯酸转化为β-丙氨酸(转化率为54%),另一种是使用大肠杆菌BL21(DE3)作为宿主,表达来源于大肠杆菌的L-天冬氨酸α羧化酶,最终产β-丙氨酸2.94g/L,远远达不到工业化的水平。
发明内容
本发明通过筛选不同来源的L-天冬氨酸α羧化酶,构建了基因工程菌,通过酶活比较,提供了一种高L-天冬氨酸α羧化酶活性的工程菌及其在生产β-丙氨酸中的应用。
本发明提供的工程菌,其构建方法依次包括如下步骤:(1)将目的蛋白的编码基因插入载体pET-30a(+)的多克隆位点,得到的重组质粒pET30-panDB;所述目的蛋白如序列表的序列6所示;(2)将步骤(1)得到的重组质粒pET30-panDB导入大肠杆菌BL21(DE3),得到所述工程菌。
所述目的蛋白的编码基因具体可如序列表的序列5所示或如序列表的序列4所示。
所述重组质粒pET30-panDB具体可为在载体pET30的NdeⅠ和KpnⅠ酶切位点之间插入所述目的蛋白的编码基因得到的重组质粒。
本发明还保护所述工程菌在生产β-丙氨酸中的应用。所述应用具体可为以L-天冬氨酸为底物生产β-丙氨酸。
本发明还保护一种重组质粒,是将目的蛋白的编码基因插入载体pET-30a(+)的多克隆位点,得到的重组质粒pET30-panDB;所述目的蛋白如序列表的序列6所示。所述目的蛋白的编码基因具体可如序列表的序列5所示或如序列表的序列4所示。本发明还保护所述重组质粒在生产β-丙氨酸中的应用。
本发明还保护一种生产β-丙氨酸的方法,包括如下步骤:以L-天冬氨酸为底物,采用所述工程菌进行生物转化,得到β-丙氨酸。所述生物转化的条件可为37℃、450rpm。所述生物转化的时间具体可为1-15小时。所述的方法中,所述工程菌通过如下方法扩大培养:①挑取工程菌的单菌落,接种于10mL含50μg/ml卡那霉素的LB液体培养基,37℃、200rpm振荡培养12小时;②取步骤①得到的整个培养体系,接种于100mL含50μg/ml卡那霉素的LB液体培养基,30℃、200rpm振荡培养12h,离心收集菌体。
本发明中通过筛选不同来源的L-天冬氨酸α羧化酶,提供了一株高产β-丙氨酸基因工程菌,该菌株可以稳定的高表达L-天冬氨酸α羧化酶,将L-天冬氨酸转化成β-丙氨酸,酶活达2.09U/mL,转化15h后β-丙氨酸的产量为178g/L,转化率达99%。
采用本发明提供的方法制备β-丙氨酸,无需添加诱导剂,整个过程无需高温、高压,同时具有条件温和、操作简单、对环境友好等优点,已达工业化应用水平。
附图说明
图1为标准品溶液的HPLC图谱。
图2为工程菌甲、工程菌乙、工程菌丙和工程菌丁进行步骤3得到的上清液的酶活。
图3为生物转化过程中转化体系中生成的β-丙氨酸浓度。
具体实施方式
以下的实施例便于更好地理解本发明,但并不限定本发明。下述实施例中的实验方法,如无特殊说明,均为常规方法。下述实施例中所用的试验材料,如无特殊说明,均为自常规生化试剂商店购买得到的。以下实施例中的定量试验,均设置三次重复实验,结果取平均值。
载体pET-30a(+):Novagen公司。大肠杆菌BL21(DE3):Novagen公司。L-天冬氨酸标准品:生工生物工程(上海)股份有限公司,产品编号AB0091CAS(56-84-8)。β-丙氨酸标准品:生工生物工程(上海)股份有限公司,产品编号A6168CAS(107-95-9)。
实施例1、重组质粒和工程菌的构建
序列表的序列1所示的双链DNA分子即大肠杆菌BL21(DE3)中L-天冬氨酸α-羧化酶的编码基因。序列表的序列2所示的双链DNA分子即谷氨酸棒状杆菌(Corynebacteriumglutamicum)中L-天冬氨酸α-羧化酶的编码基因。序列表的序列3所示的双链DNA分子即结核分枝杆菌(Mycobacterium tuberculosis)中L-天冬氨酸α-羧化酶的编码基因。序列表的序列4所示的双链DNA分子即枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)中L-天冬氨酸α-羧化酶的编码基因。
一、工程菌甲的构建
1、重组质粒pET30-panDE的构建
(1)合成序列表的序列1所示的双链DNA分子。
(2)以步骤(1)合成的双链DNA分子为模板,用Ec-pand-for和Ec-pand-rev组成的引物对进行PCR扩增,得到PCR扩增产物。
Ec-pand-for:5’-GGCTTCCATATGATTCGCACGATGCTGC-3’;
Ec-pand-rev:5’-TTACGGGGTACCTCAAGCAACCTGTACCGGAA-3’。
(3)用限制性内切酶NdeⅠ和KpnⅠ双酶切步骤(2)的PCR扩增产物,回收酶切产物。
(4)用限制性内切酶NdeⅠ和KpnⅠ双酶切载体pET-30a(+),回收约5300bp的载体骨架。
(5)将步骤(3)的酶切产物和步骤(4)的载体骨架连接,得到重组质粒pET30-panDE。根据测序结果对重组质粒pET30-panDE进行结构描述如下:在载体pET-30a(+)的NdeⅠ和KpnⅠ酶切位点之间插入了序列表的序列1自5’末端第4至381所示的双链DNA分子。
2、工程菌甲的构建
将重组质粒pET30-panDE导入大肠杆菌BL21(DE3),得到的重组菌即为工程菌甲,又称工程菌E.coli BL21(DE3)/pET30-panDE。
二、工程菌乙的构建
1、重组质粒pET30-panDC的构建
(1)合成序列表的序列2所示的双链DNA分子。
(2)以步骤(1)合成的双链DNA分子为模板,用cg-pand-for和cg-pand-rev组成的引物对进行PCR扩增,得到PCR扩增产物。
cg-pand-for:5’-GGCTTCCATATGCTGCGTACCATCCTG-3’;
cg-pand-rev:5’-TTACGGCTCGAGTCAAATACTACGGCTCGTCAGC-3’。
(3)用限制性内切酶NdeⅠ和XhoⅠ双酶切步骤(2)的PCR扩增产物,回收酶切产物。
(4)用限制性内切酶NdeⅠ和XhoⅠ双酶切载体pET-30a(+),回收约5300bp的载体骨架。
(5)将步骤(3)的酶切产物和步骤(4)的载体骨架连接,得到重组质粒pET30-panDC。根据测序结果对重组质粒pET30-panDC进行结构描述如下:在载体pET-30a(+)的NdeⅠ和XhoⅠ酶切位点之间插入了序列表的序列2自5’末端第4至411所示的双链DNA分子。
2、工程菌乙的构建
将重组质粒pET30-panDC导入大肠杆菌BL21(DE3),得到的重组菌即为工程菌乙,又称工程菌E.coli BL21(DE3)/pET30-panDC。
三、工程菌丙的构建
1、重组质粒pET30-panDM的构建
(1)合成序列表的序列3所示的双链DNA分子。
(2)以步骤(1)合成的双链DNA分子为模板,用mt-pand-for和mt-pand-rev组成的引物对进行PCR扩增,得到PCR扩增产物。
mt-pand-for:5’-GGCTTCCATATGTTACGGACGATGCTG-3’;
mt-pand-rev:5’-TTACGGGGTACCCTATCCCACACCGAGCCG-3’。
(3)用限制性内切酶NdeⅠ和KpnⅠ双酶切步骤(2)的PCR扩增产物,回收酶切产物。
(4)用限制性内切酶NdeⅠ和KpnⅠ双酶切载体pET-30a(+),回收约5300bp的载体骨架。
(5)将步骤(3)的酶切产物和步骤(4)的载体骨架连接,得到重组质粒pET30-panDM。根据测序结果对重组质粒pET30-panDM进行结构描述如下:在载体pET-30a(+)的NdeⅠ和KpnⅠ酶切位点之间插入了序列表的序列3自5’末端第4至420所示的双链DNA分子。
2、工程菌丙的构建
将重组质粒pET30-panDM导入大肠杆菌BL21(DE3),得到的重组菌即为工程菌丙,又称工程菌E.coli BL21(DE3)/pET30-panDM。
四、工程菌丁的构建
1、重组质粒pET30-panDB的构建
(1)合成序列表的序列4所示的双链DNA分子。
(2)以步骤(1)合成的双链DNA分子为模板,用bs-pand-for和bs-217-rev组成的引物对进行PCR扩增,得到PCR扩增产物。
bs-pand-for:5’-GGCTTCCATATGTATCGAACAATGATGAGCG-3’;
bs-217-rev:5’-TGCACCGTTTAAGCAATGACGCCGCTTCCC-3’。
(3)以步骤(1)合成的双链DNA分子为模板,用bs-217-for和bs-pand-rev组成的引物对进行PCR扩增,得到PCR扩增产物。
bs-217-for:5’-GGGAAGCGGCGTCATTGCTTAAACGGTGCA-3’;
bs-pand-rev:5’-TTACGGGGTACC CTACAAAATTGTACGGGCTGGT-3’。
(4)同时将步骤(2)得到的PCR扩增产物和步骤(3)得到的PCR扩增产物作为模板,用bs-pand-for和bs-pand-rev组成的引物对进行PCR扩增,得到PCR扩增产物。
(5)用限制性内切酶NdeⅠ和KpnⅠ双酶切步骤(4)的PCR扩增产物,回收酶切产物。
(6)用限制性内切酶NdeⅠ和KpnⅠ双酶切载体pET-30a(+),回收约5300bp的载体骨架。
(7)将步骤(5)的酶切产物和步骤(6)的载体骨架连接,得到重组质粒pET30-panDB。根据测序结果对重组质粒pET30-panDB进行结构描述如下:在载体pET-30a(+)的NdeⅠ和KpnⅠ酶切位点之间插入了序列表的序列5自5’末端第4至384所示的双链DNA分子(序列5与序列4的差别仅在于将序列4自5’末端第207位核苷酸由A突变为了C,以去除序列中的NdeⅠ酶切识别序列;序列表的序列4和序列5均编码序列表的序列6所示的蛋白质)。
2、工程菌丁的构建
将重组质粒pET30-panDB导入大肠杆菌BL21(DE3),得到的重组菌即为工程菌丁,又称工程菌E.coli BL21(DE3)/pET30-panDB。
实施例2、基因工程菌酶活检测
分别将实施例1制备的工程菌甲、工程菌乙、工程菌丙和工程菌丁进行如下操作:
1、挑取工程菌的单菌落,接种于10mL含50μg/ml卡那霉素的LB液体培养基,37℃、200rpm振荡培养12小时。
2、取步骤1得到的整个培养体系,接种于100mL含50μg/ml卡那霉素的LB液体培养基,30℃、200rpm振荡培养12h。
3、步骤2的终止时刻,取2mL培养体系(即OD600nm=3的菌液),加入1mL pH8.0、0.01mol/L的磷酸缓冲液,混匀,然后进行超声波破碎(功率200W,工作3秒停3秒,总时间为4min),10000rpm离心1min,取上清液。
4、取500μL步骤3得到的上清液,加入536μL60g/L的L-天冬氨酸溶液(L-天冬氨酸溶液的制备方法:取L-天冬氨酸,加入水,加入NaOH调整pH为7.0以促进L-天冬氨酸溶解),37℃静置反应2h,12000rpm离心1min,取上清液。
5、HPLC检测
取步骤4得到的上清液,用蒸馏水稀释至50倍体积,得到稀释液,稀释液衍生化后进行HPLC检测。
衍生化的方法:取300μL稀释液,加入360μL pH9.5、0.05mol/L的硼酸钠缓冲液,然后再加入240μL衍生剂,混匀,室温反应两分钟后进行HPLC检测。衍生剂:由1.3g邻苯二甲醛、0.59g N-乙酰半胱氨酸、20mL无水乙醇和78.11mL pH9.5、0.05mol/L的硼酸缓冲液组成。
HPLC检测采用Agilent色谱柱(Eclipse XDB-C18,5μm,4.6×150mm),流动相为2.871g/L的乙酸钠水溶液,流速为1mL/min,在334nm(紫外)进行实时监测。
将标准品溶液(标准品溶液即含有0.4g/L L-天冬氨酸和0.3g/Lβ-丙氨酸的溶液;标准品溶液的制备方法:取L-天冬氨酸标准品和β-丙氨酸标准品,加入水,加入NaOH调整pH为7.0以促进L-天冬氨酸和β-丙氨酸溶解)按相同的方法进行衍生化后进行HPLC检测,HPLC图谱见图1(图1中,纵坐标的单位是mAU)。L-天冬氨酸标准品的出峰时间为1.409min,β-丙氨酸标准品的出峰时间为2.910min。
β-丙氨酸的标准曲线方程为y=10437x,y代表β-丙氨酸的峰面积,x代表β-丙氨酸的浓度(g/L)。L-天冬氨酸的标准曲线方程为y=9884x,y代表L-天冬氨酸的峰面积,x代表L-天冬氨酸的浓度(g/L)。
每分钟生成1μmol产物(β-丙氨酸)所需要的酶量定义为一个酶活单位。
工程菌甲、工程菌乙、工程菌丙和工程菌丁进行步骤3得到的上清液的酶活依次见图2(设置三次重复实验,每次重复实验中含有10个重复处理,结果取平均值),工程菌丁得到的上清液的酶活最高,为2.09U/mL。
实施例3、全细胞转化
1、挑取实施例1制备的工程菌丁的单菌落,接种于100mL LB液体培养基,37℃、200rpm振荡培养12小时。
2、取步骤1得到的整个培养体系,接种于1000mL含50μg/ml卡那霉素的LB液体培养基,30℃、200rpm振荡培养12h。
3、取步骤2得到的整个培养体系,9000rpm离心10min,收集菌体。
4、取全部步骤3得到的菌体,用300mL蒸馏水悬浮,加入L-天冬氨酸,37℃、450rpm生物转化15小时,发酵过程中,每小时取样一次,采用实施例2中的方法通过HPLC检测β-丙氨酸的浓度。
结果见图3。完成发酵时,发酵体系中β-丙氨酸的浓度达178g/L,转化率达99%。
Claims (6)
1.一种工程菌,其构建方法依次包括如下步骤:
(1)将目的蛋白的编码基因插入载体pET-30a(+)的多克隆位点,得到的重组质粒pET30-panDB;所述目的蛋白的编码基因如序列表的序列5所示;
(2)将步骤(1)得到的重组质粒pET30-panDB导入大肠杆菌BL21(DE3),得到所述工程菌。
2.权利要求1所述的工程菌,在生产β-丙氨酸中的应用。
3.一种生产β-丙氨酸的方法,包括如下步骤:以L-天冬氨酸为底物,采用权利要求1所述的工程菌进行生物转化,得到β-丙氨酸。
4.如权利要求3所述的方法,其特征在于:所述生物转化的条件为37℃、450rpm。
5.如权利要求3所述的方法,其特征在于:所述生物转化的时间为1-15小时。
6.如权利要求3至5中任一所述的方法,其特征在于:权利要求1或2所述的工程菌通过如下方法扩大培养:①挑取工程菌的单菌落,接种于10mL含50μg/ml卡那霉素的LB液体培养基,37℃、200rpm振荡培养12小时;②取步骤①得到的整个培养体系,接种于100mL含50μg/ml卡那霉素的LB液体培养基,30℃、200rpm振荡培养12h,离心收集菌体。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201310534782.2A CN104593398B (zh) | 2013-11-01 | 2013-11-01 | 一种高L‑天冬氨酸α羧化酶活性的工程菌及其在生产β‑丙氨酸中的应用 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201310534782.2A CN104593398B (zh) | 2013-11-01 | 2013-11-01 | 一种高L‑天冬氨酸α羧化酶活性的工程菌及其在生产β‑丙氨酸中的应用 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN104593398A CN104593398A (zh) | 2015-05-06 |
CN104593398B true CN104593398B (zh) | 2017-06-06 |
Family
ID=53119451
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201310534782.2A Active CN104593398B (zh) | 2013-11-01 | 2013-11-01 | 一种高L‑天冬氨酸α羧化酶活性的工程菌及其在生产β‑丙氨酸中的应用 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN104593398B (zh) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN107630053A (zh) * | 2016-07-18 | 2018-01-26 | 中国科学院微生物研究所 | 一种生产β‑丙氨酸的方法及其专用工程菌 |
Families Citing this family (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN108728470B (zh) * | 2017-04-14 | 2022-01-11 | 中国科学院微生物研究所 | 产β-丙氨酸的重组菌及其构建方法与应用 |
CN108841883A (zh) * | 2018-06-19 | 2018-11-20 | 四川同晟生物医药有限公司 | 一种生物酶法转化生产β-丙氨酸和D-天冬氨酸的方法 |
Family Cites Families (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
TR200200751T2 (tr) * | 1999-09-21 | 2004-08-23 | Basf Aktiengesellschaft | Panto bileşiklerinin üretilmesi için yöntemler ve mikroorganizmalar. |
EP2292749A3 (en) * | 2004-07-30 | 2011-12-21 | Novozymes A/S | Alanine 2, 3 aminomutases |
-
2013
- 2013-11-01 CN CN201310534782.2A patent/CN104593398B/zh active Active
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN107630053A (zh) * | 2016-07-18 | 2018-01-26 | 中国科学院微生物研究所 | 一种生产β‑丙氨酸的方法及其专用工程菌 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN104593398A (zh) | 2015-05-06 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Fatokun et al. | Classical optimization of cellulase and xylanase production by a marine Streptomyces species | |
Jiménez-Gómez et al. | Genome insights into the novel species Microvirga brassicacearum, a rapeseed endophyte with biotechnological potential | |
CN108060114B (zh) | 一种发酵生产l-丙氨酸的大肠杆菌及其应用 | |
CN106755012B (zh) | 一种内切β-1,3-葡聚糖酶编码基因及其酶和制备方法与应用 | |
CN104593398B (zh) | 一种高L‑天冬氨酸α羧化酶活性的工程菌及其在生产β‑丙氨酸中的应用 | |
JPWO2016163534A1 (ja) | バチルス属細菌芽胞の製造方法 | |
CN101052724B (zh) | 尿苷5'-二磷酸-n-乙酰半乳糖胺的制备方法 | |
CN104178536A (zh) | 一种r-3-氨基哌啶的生物制备方法 | |
Khan et al. | Optimization of process variables for enhanced production of urease by indigenous Aspergillus niger strains through response surface methodology | |
CN107841505A (zh) | 一种食品安全级菌株及其制备氨基葡萄糖的方法 | |
CN103409475A (zh) | 一种酶法合成l-茶氨酸的方法 | |
CN104673734B (zh) | 用于生产β-丙氨酸的工程菌及生产β-丙氨酸的方法 | |
Liu et al. | A novel synthesis of iminodiacetic acid: Biocatalysis by whole Alcaligenes faecalis ZJB‐09133 cells from iminodiacetonitrile | |
CN104131041A (zh) | 一种α-酮戊二酸的生产方法 | |
CN104087535B (zh) | 生物法制备茶氨酸的方法 | |
Li et al. | High-level production of pullulan from high concentration of glucose by mutagenesis and adaptive laboratory evolution of Aureobasidium pullulans | |
CN103352031B (zh) | 一种糖基转移酶基因及应用 | |
CN105255934A (zh) | 一种高效联产α-氨基丁酸及葡萄糖酸的策略 | |
CN104805144A (zh) | 一种高效生产l-瓜氨酸的方法 | |
Zhang et al. | Screening and characterization of microorganisms capable of converting iminodiacetonitrile to iminodiacetic acid | |
Yin et al. | The hybrid strategy of Thermoactinospora rubra YIM 77501T for utilizing cellulose as a carbon source at different temperatures | |
Vu et al. | Improvement of cellulase activity using error-prone rolling circle amplification and site-directed mutagenesis | |
Gupta et al. | Comparative analysis of genome-based CAZyme cassette in Antarctic Microbacterium sp. PAMC28756 with 31 other Microbacterium species | |
Schulze et al. | Investigation of exopolysaccharide formation and its impact on anaerobic succinate production with Vibrio natriegens | |
CN106191089B (zh) | 一种加速5-氨基戊酸生物法生产的方法 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
GR01 | Patent grant | ||
GR01 | Patent grant |