CN104356201A

CN104356201A - 一种海参抗氧化多肽

Info

Publication number: CN104356201A
Application number: CN201410614617.2A
Authority: CN
Inventors: 汪少芸; 李灵; 赵立娜; 邵彪
Original assignee: Fuzhou University
Current assignee: Fuzhou University
Priority date: 2014-11-05
Filing date: 2014-11-05
Publication date: 2015-02-18
Anticipated expiration: 2034-11-05
Also published as: CN104356201B

Abstract

本发明提供了一种海参抗氧化多肽及其制备方法，该方法以海参肉或海参内脏蛋白为原料，通过对酸性蛋白酶的酶解，分离纯化得到特异性海参抗氧化多肽，其氨基酸全序列为：kvlltflvv。本发明所制得的海参抗氧化多肽弥补了天然抗氧化剂所具有的缺陷，并且消除了公众对人工合成抗氧化剂的忧虑，为开发基于食品源的抗氧化多肽以及探索其在食品、医学上的广泛应用奠定了基础。

Description

一种海参抗氧化多肽

技术领域

本发明属于生物技术领域，提供了一种海参抗氧化多肽。

背景技术

生物分子的氧化是一个自由基介导的过程，它会对食品和生物系统造成许多不利的影响。在好氧器官内，与动脉硬化、癌症等多种疾病相关的游离自由基会不可避免地随着氧代谢的过程而产生。在食品中，营养成分的氧化会产生过氧化物，其不仅会影响食品的营养价值，造成食品品质下降，严重的甚至还会导致摄入者的身体发生疾病。因此，寻找安全的抗氧化剂以抑制过氧化物产生一直是生化营养学的研究热点。由于BHT、TBHQ等化学合成抗氧化剂比天然抗氧化剂具有更好的效果和更便宜的价格，因此其已经被广泛应用于食品行业中。但是，目前有研究发现合成抗氧化剂对人体肝、脾、肺等器官具有蓄积性致癌作用，从而引起了人们对其安全性的担忧，并且开始逐渐限制其在食品中的使用。于是人们把目光转向天然抗氧化剂。α-生育酚是一种被普遍使用的天然抗氧化剂，它能有效保持食品中油脂的稳定性，但是却不利于食品保存。因此，我们有必要寻找一种其它来源的安全的天然抗氧化剂。

多肽是分子结构介于氨基酸和蛋白质之间的一类化合物，使蛋白质具有一定的生理功能。在人类的生命活动中，肽在体内的消化吸收优于游离的氨基酸，且有着区别于氨基酸的体内输送体系。某些短肽在提供人体生长、发育所必需的营养物质的同时，还能够防病治病，调节人体机能，这些具有生物活性的多肽被称为生物活性肽。研究发现，很多不同来源的多肽都具有抗氧化能力，如水解酪蛋白、大豆蛋白、牛血清白蛋白、卵白蛋白、油料种子蛋白、小麦醇溶蛋白和玉米蛋白等得到的多肽都具有一定的抗氧化性。

国内海参加工目前大多停留在初级加工阶段，由于资源利用率低，加工过程产生的下脚料浪费等原因造成资源浪费，甚至是环境污染。海参肉或海参内脏中含有大量蛋白质，且其组成均衡，利用现代生物技术对其中的蛋白质资源进行深加工，合理的选用酶类等，通过工艺优化将使得抗氧化活性肽的研究具有更广阔的前景。

发明内容

本发明的目的在于针对天然抗氧化剂的不足、以及人工合成抗氧化剂的安全性堪忧，提供一种海参抗氧化多肽及其制备方法。本发明制得的海参抗氧化多肽抗氧化活性高，弥补了天然抗氧化剂的缺陷，消除了人们对人工合成抗氧化剂安全性的担忧。

为了实现发明目的，本发明采用如下技术方案：

一种海参抗氧化多肽，其氨基酸序列为：kvlltflvv。

一种制备如上所述的海参抗氧化多肽的方法：以海参肉或海参内脏为原料提取蛋白，然后对其进行酶解；酶解产物经浓缩除杂得海参多肽溶液，海参多肽溶液再经分离纯化、冷冻干燥得到海参抗氧化多肽。

所述酶解条件为：pH为3.5、温度50℃、酶解时间为6 h、酶-底物配比为3000U/g；所述酶为酸性蛋白酶。

所述分离纯化的方法包括超滤、SP-Sephadex C-25离子交换色谱、Sephadex G-50分子筛和RP-HPLC反相高效液相色谱。

所述分离纯化的具体步骤为：

（1）首先利用膜过滤系统对海参多肽溶液进行超滤分离，得到不同分子量的多肽组分；

（2）收集具有最佳抗氧化活性的组分，用SP-Sephadex C-25阳离子交换色谱进行分离，上样后洗去未吸附组分，再以乙酸-乙酸钠缓冲液进行线性梯度洗脱，流速为0.5ml/min，在215nm下进行测量，测定各吸收峰对应的洗脱组分的抗氧化活性；

（3）收集具有最佳抗氧化活性的组分，用Sephadex G-50凝胶色谱进行分离，洗脱液为去离子水，流速为0.5ml/min，在215nm下进行测量，测定各吸收峰对应的洗脱组分的抗氧化活性；

（4）收集具有最佳抗氧化活性的组分，利用RP-HPLC反相高效液相色谱进行进一步的分离，采用乙腈和水的混合液进行梯度洗脱，收集体积比为46 %乙腈和54 %水处的洗脱峰，得到海参抗氧化多肽；

（5）利用蛋白质固相序列分析仪鉴定多肽的氨基酸序列。

步骤（1）中所述的多肽组分包括分子量≥3000 Da，1500-3000 Da，≤1500 Da的组分。

步骤（2）中所述的乙酸-乙酸钠缓冲液浓度为0.02mol/L、pH4.5，含0～0.35mol/L NaCl。

步骤（4）中分离时所用色谱柱为Gemini 5μ C18，上样量为100μL，流速为1ml/min，检测波长为215nm。

步骤（4）中梯度洗脱为：洗脱液自含体积比为10%乙腈和90%水的混合液开始，至体积比为90%乙腈和10%水的混合液结束。

本发明立足于寻找一种天然高效的抗氧化剂，以海参蛋白为出发点，通过酸性蛋白酶的切割条件控制，切割为具有特定的肽链长度和结构域组成的活性多肽，而使抗氧化活性得以高效实现。

本发明改变了现有抗氧化剂的提取与运用的思路和方法，消除了人工合成抗氧化剂所可能引起的副作用，所提取得到的海参抗氧化多肽是天然抗氧化剂，可以取代传统的合成抗氧化剂；并且本发明还改善了我国对海参蛋白利用率偏低的情况，既可解决大量海参资源的高效利用问题，又能解除消费者对抗氧化剂在食品安全方面的顾虑，对科技、经济和食品工业的发展具有深远意义。

附图说明

图1为海参抗氧化多肽的RP-HPLC图谱，C峰为海参抗氧化多肽的色谱峰；

图2为纯化的海参抗氧化多肽清除DPPH自由基的“量-效”关系曲线。

图3为纯化的海参抗氧化多肽清除ABTS自由基的“量-效”关系曲线。

图4为纯化的海参抗氧化多肽抑制Fe²⁺诱导卵黄脂蛋白多不饱和脂肪酸过氧化反应的“量-效”关系曲线。

具体实施方式

海参抗氧化多肽的制备方法，具体步骤如下：

(1) 海参蛋白的提取

海参蛋白质提取工艺条件为：

将海参或海参内脏清洗3-5次，浸提pH为 7.0，提取温度为40-80 ℃，料液比为1:4-1:8 （重量比），提取时间为2-6 h，离心10000g 20分钟，收集上清液，经过滤、浓缩和冷冻干燥后得到海参蛋白。

(2) 海参蛋白的酶解

酶购自上海生物试剂公司（中国·上海）。

采用酸性蛋白酶酶解海参蛋白，蛋白浓度为30mg/ml，酶解条件取pH为3.5、温度50℃、酶解时间为6h、酶与底物比为（3000U/g），用2M HCl调节pH稳定，水解6h后，沸水浴中灭酶15min，然后迅速冷却至室温，置于离心机中，以4000r/min离心15min，取上清液备用。

（3）酶解产物的浓缩、除杂

利用纳滤系统对蛋白酶解液进行浓缩后，加入4倍体积乙醇沉降大分子蛋白质，12000r/min离心20min得上清液即为海参多肽溶液。

（4）酶解产物的分离

利用膜过滤系统对海参多肽溶液进行超滤分离，利用分子量截留范围不同的超滤膜对酶解产物进行分离，得到不同分子量的多肽，包括≥3000 Da，1500-3000 Da， ≤1500 Da等组分。

（5）酶解产物的纯化

将得到的酶解产物分为3个分子量范围不同的组分，分别为分子量大于3000Da的组分、分子量介于1500Da和3000Da的组分、分子量小于1500Da的组分；收集具有最佳抗氧化活性的组分，再经过SP-Sephadex C-25阳离子交换色谱（长20cm，直径1.6cm）进行分离，以含0～0.35mol/L NaCl的0.02mol/L、pH4.5乙酸-乙酸钠缓冲液进行线性梯度洗脱，流速为0.5ml/min；收集具有最佳抗氧化活性的组分，再用Sephadex G-50（长100cm，直径2.6cm）凝胶色谱进行分离，洗脱液为去离子水，流速为0.5ml/min，洗脱峰在215nm下进行测量；收集具有最佳抗氧化活性洗脱峰对应的组分，利用RP-HPLC反相高效液相色谱进行再进一步的分离，所用色谱柱为Gemini 5μ C18，上样量为100μL，流速为1ml/min，检测波长为215nm。洗脱液自含10%乙腈和90%水（v/v）的混合液开始，至90%乙腈和10%水（v/v）的混合液结束，进行梯度洗脱，收集46 %乙腈和54 %水（v/v）处的洗脱峰对应的组分，得到本发明的高纯度的海参抗氧化多肽。

（6）抗氧化多肽的氨基酸序列测定

利用蛋白质固相序列分析仪(Applied Biosystems Model 476A, Perkin Elmer Co. MA, U.S.A) 测定本发明的抗氧化多肽的氨基酸全序列为kvlltflvv。

（7）抗氧化活性的测试

ⅰDPPH自由基清除能力的测定

利用DPPH（1，1-Diphenyl-2-picryl-hydrazyl）自由基清除率测定法研究抗氧化多肽。配制浓度为1×10^-5mol/L的DPPH乙醇溶液，避光保存。将2mL, 0.1mM 的DPPH无水乙醇溶液加入到含有2mL不同酶解样品的洁净试管中，混匀。室温下放置30min后，于517 nm处测定吸光度,吸光值越小，表明自由基清除能力越强。

式中，A₀为2 mL，0.1mM的DPPH无水乙醇溶液+2mL的样品溶剂，空白对照；A_i为2mL，0.1mM的DPPH无水乙醇溶液+2mL的样品；A_j为2mL的无水乙醇+2 mL的样品。

ⅱABTS自由基清除活性的测定

以去离子水将ABTS溶解，使ABTS浓度达到7mmol/L，加入过硫酸钾，使过硫酸钾的浓度为2.45 mmol/L。之后将该溶液在室温下置于暗处过夜12～16h。将生成的ABTS自由基溶液用磷酸缓冲液（PBS，0.2 mol/L，pH 7.4）稀释，使其在734nm下的吸光值为0.70。取0.1ml酶解液与2.9ml ABTS自由基液混合，摇匀30s，暗处反应10 min，然后在734nm下测定反应液的吸光值。以蒸馏水代替水解液作空白。

式中，A₀为2.9 mL ABTS试剂与0.1 mL蒸馏水混合液的吸光值；A_j为2.9 mL ABTS试剂与0.1 mL酶解液混合液的吸光值。

ⅲ抗脂质体过氧化活性的测定

用等体积新鲜的鸡蛋卵黄和磷酸缓冲液（pH7.4，0.1mol/L）混合，使用前稀释25倍并用磁力搅拌机搅拌均匀。在试管中分别加入2.4ml卵黄稀释液、2.4ml 25mmol/L FeSO₄·H₂O、200μL水解液样品，混匀后在37℃下水浴4h，加入0.8ml 50%三氯乙酸和2ml TBA，混匀后在95℃恒温30min。冷却至室温后，8000r/min离心20min，取上清液于532nm下测定吸光值。以蒸馏水代替水解液作为空白。

式中，A₀为空自对照组的吸光度；A_j为样品组的吸光度。

为了进一步了解本发明内容、特点及功效，兹例举以下实施例，但本发明不限于以下实施例。

实施例1

称取5.0克海参蛋白用去离子水溶解并定容至250ml，然后用2mol/L HCl将其pH调节至3.0。先将该溶液水浴加热到50℃，接着再按照酶-底物配比为3000U/g的比例加入相应量的酶，酶解时间为6小时。接着在沸水浴中灭酶15分钟，冷却后再4000rpm离心15分钟。收集上清液备用。

将上清液利用膜过滤系统对海参多肽溶液进行超滤分离，利用分子量截留范围不同的超滤膜对酶解产物进行分离，得到≥3000 Da，1500-3000 Da， ≤1500 Da的不同组分，测定其抗氧化活性。测定结果为：分子量小于1500Da的组分具有最好的抗氧化活性。

收集分子量小于1500Da的组分，用SP-Sephadex C-25阳离子交换色谱（长20cm，直径1.6cm）进行再进一步的分离，以含0.25mol/L NaCl的0.02mol/L、pH4.5乙酸-乙酸钠缓冲液进行线性梯度洗脱，流速为0.5ml/min，洗脱峰在215nm下进行测量，收集各峰对应的组分并测定抗氧化活性。

将分离出来的抗氧化活性最明显的组分峰用Sepadex G-50凝胶过滤色谱（长20cm，直径1.6cm）再进行分离，洗脱液为去离子水，流速为0.5ml/min，洗脱峰在215nm下进行测量。收集各峰并测定抗氧化活性。

将分离出来的最好的抗氧化活性组分利用RP-HPLC反相高效液相色谱进行再进一步的分离，所用色谱柱为Gemini 5μ C18，上样量为100μL，流速为1ml/min，检测波长为215nm。洗脱液自含10%乙腈和90%水（v/v）的混合液开始，至90%乙腈和10%水（v/v）的混合液结束，进行梯度洗脱，收集46 %乙腈和54 %水（v/v）处的洗脱峰，得到本发明的高纯度的特异性抗氧化多肽，如图1所示。C峰为该抗氧化多肽的色谱峰，得到高纯度的海参抗氧化多肽。

纯化后的海参抗氧化多肽具有很强的抗氧化能力，由图2、图3和图4可以看出，它具有较强的清除DPPH自由基、ABTS自由基以及抑制脂质过氧化反应的能力。

利用蛋白质固相测序仪(Applied Biosystems Model 476A, Perkin Elmer Co. MA, U.S.A) 测定纯化后的抗氧化多肽的氨基酸序列。得到其氨基酸全序列为：kvlltflvv。

以上所述仅为本发明的较佳实施例，凡依本发明申请专利范围所做的均等变化与修饰，皆应属本发明的涵盖范围。

SEQUENCE LISTING

<110> 福州大学

<120> 一种海参抗氧化多肽

<130> 1

<160> 1

<170> PatentIn version 3.3

<210> 1

<211> 9

<212> PRT

<213> 氨基酸序列

<400> 1

Lys Val Leu Leu Thr Phe Leu Val Val

1 5

Claims

1.一种海参抗氧化多肽，其特征在于：所述海参抗氧化多肽的氨基酸序列为：

kvlltflvv。

2.一种制备如权利要求1所述的海参抗氧化多肽的方法，其特征在于：以海参肉或海参内脏为原料提取蛋白，然后对其进行酶解；酶解产物经浓缩除杂得海参多肽溶液，海参多肽溶液再经分离纯化、冷冻干燥得到海参抗氧化多肽。

3.根据权利要求2所述的海参抗氧化多肽的制备方法，其特征在于：所述酶解条件为：pH为3.5、温度50℃、酶解时间为6 h、酶-底物配比为3000U/g；所述酶为酸性蛋白酶。

4.根据权利要求2所述的海参抗氧化多肽的制备方法，其特征在于：所述分离纯化的方法包括超滤、SP-Sephadex C-25离子交换色谱、Sephadex G-50分子筛和RP-HPLC反相高效液相色谱。

5.根据权利要求2所述的海参抗氧化多肽的制备方法，其特征在于：所述分离纯化的具体步骤为：

（5）利用蛋白质固相序列分析仪鉴定多肽的氨基酸序列。

6.根据权利要求5所述的海参抗氧化多肽的制备方法，其特征在于：步骤（1）中所述的多肽组分包括分子量≥3000 Da，1500-3000 Da，≤1500 Da的组分。

7.根据权利要求5所述的海参抗氧化多肽的制备方法，其特征在于：步骤（2）中所述的乙酸-乙酸钠缓冲液浓度为0.02mol/L、pH4.5，含0～0.35mol/L NaCl。

8.根据权利要求5所述的海参抗氧化多肽的制备方法，其特征在于：步骤（4）中分离时所用色谱柱为Gemini 5μ C18，上样量为100μL，流速为1ml/min，检测波长为215nm。

9.根据权利要求5所述的海参抗氧化多肽的制备方法，其特征在于：步骤（4）中梯度洗脱为：洗脱液自含体积比为10%乙腈和90%水的混合液开始，至体积比为90%乙腈和10%水的混合液结束。