CN104297493A - 可溶性i型鸭肝炎病毒3d蛋白在制备elisa试剂中的应用及其elisa试剂盒 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了可溶性I型鸭肝炎病毒3D蛋白在制备ELISA试剂中的应用及其ELISA试剂盒,ELISA试剂盒含有可溶性I型鸭肝炎病毒3D蛋白包被的反应板、酶标抗体、显色液和终止液,将该试剂盒用于检测I型鸭病毒性肝炎抗体具有特异性强、重现性好、敏感度高,与用全病毒作包被抗原的ELISA试剂盒检测的符合率高,可用于临床样品的检测。
Description
技术领域
本发明属于生物化学领域,具体涉及可溶性I型鸭肝炎病毒3D蛋白在制备ELISA试剂中的应用和检测I型鸭病毒性肝炎血清抗体的ELISA试剂盒。
背景技术
我国是世界上养鸭数量最多的国家,鸭的饲养量约占世界的70%,养鸭业在我国农业经济中占有重要地位。鸭肝炎病毒(Duck Hepatitis Virus,DHV)可引起雏鸭的鸭病毒性肝炎(Duck Viral Hepatitis,DVH)。DVH是一种高度致死性传染病,以发病急、病程短、发病率和死亡率高为特点。
鸭肝炎病毒属于小RNA病毒科(Picornaviridae)禽肝炎病毒属(Avihepatovirus),本病毒有三个血清型,分别为DHAV-1、DHAV-2和DHAV-3,无免疫交叉反应。在我国,主要流行1型鸭病毒性肝炎,给我国养鸭业造成了巨大的经济损失,威胁着养鸭业的健康发展。因此对DHAV等鸭源病毒进行研究具有重要的社会和经济意义。
对鸭肝炎及鸭肝炎病毒进行研究,离不开鸭肝炎病毒及其抗体的检测试剂及检测方法。可用于DHV及其抗体检测的试剂及方法虽很多,如血凝实验、协同凝集实验、中和实验、琼脂扩散、ELISA、荧光抗体、免疫组化、胶体金等。而目前最常用且可靠的方法仍是中和试验,但因其操作复杂、费时、成本高,不能用于快速检测因而不适于基层推广应用。ELISA法具有操作简便快速、特异性强、敏感性高、重复性好等优点。早在1991年,Zhao等运用中和实验、琼脂扩散试验、ELISA法对DHV抗体进行检测,阳性检出率分别为18.8%、68.8%和68.8%;杨萍萍等以氯仿去脂、0.22μm孔径滤膜过滤、凝胶柱浓缩层析方法纯化得到的病毒作为包被抗原,也建立了检测DHV血清抗体的间接ELISA方法。但该方法在具体使用中受到限制,一致未能推广,其主要原因之一是检测DHV血清抗体的间接ELISA方法对抗原纯度要求很高,但由于病毒必须依靠宿主细胞才能增殖,因此进行全病毒抗原纯化时难于与宿主蛋白分离。
随着对DHAV-1分子生物学研究的不断深入,将重组表达蛋白(特别是大肠杆菌原核表达蛋白)抗原运用到鸭肝炎病毒抗体的检测中成为可能。大肠杆菌表达的重组蛋白抗原易于制备和纯化,且表达重组蛋白抗原的宿主细胞大肠杆菌比制备DHV抗原的宿主细胞(如鸭胚及鸭源细胞、鸡胚等)与DHV的宿主(鸭)亲缘关系更远,检测时由于抗原纯度而产生非特异性的可能性也减少。但重组表达的蛋白抗原运用到鸭肝炎病毒抗体的检测还有一个困难,就是大肠杆菌表达易形成不溶性的包涵体,包涵体由于杂蛋白含量较低、可避免蛋白酶降解、难溶于水等特点而使其易于分离纯化。包涵体中的目标蛋白虽然其肽链是完整的,但却是非天然形式、无生物学活性的表达蛋白,包涵体的溶解非常困难,需要用强变性剂高浓度尿素、SDS等来打断分子内和分子间的非共价键、离子键等,为获得有活性的蛋白,继而需要进行蛋白复性,而包涵体蛋白溶解后的复性不仅费时、费力,且复性率低。
DHAV具有微RNA病毒科成员相似的特点,为单股正链RNA,完整基因组长度约为7.7kb,由5’非翻译区、一个大的开放阅读框(ORF)、3’非翻译区组成,ORF含有6750nt,编码2249AA的多聚蛋白,随后被病毒编码的蛋白酶切割,首先分解成P1、P2和P3产物,然后P1、P2和P3(P1编码结构蛋白、P2和P3编码非结构蛋白)又进一步分别分解为VP0/VP1/VP3、2A1/2A2/2A3/2B/2C和3A/3B/3C/3D蛋白,产生12个成熟的病毒蛋白。3D是DHAV的一种非结构蛋白,虽然不是病毒粒子的组成成分,但在病毒生命循环中扮演着重要角色,在合成负链RNA、合成复制酶过程中占有主导的作用,加之其本身的酶催化活性,使得3D蛋白在病毒的生存过程中必不可少,因此,在病毒感染机体内可能产生3D抗体,但目前未见3D蛋白是否可以作为抗原检测DHAV抗体的ELISA方法报道;同时,获得高纯度有活性的抗原并应用于制备ELISA检测试剂盒,对于鸭病毒性肝炎抗体的检测的有重要的意义和推动作用。
发明内容
有鉴于此,本发明的目的之一在于提供可溶性I型鸭肝炎病毒3D蛋白在制备检测I型鸭病毒性肝炎抗体ELISA试剂中的应用;本发明的目的之二在于提供检测I型鸭病毒性肝炎抗体ELISA试剂盒。
为实现上述发明目的,本发明提供如下技术方案:
1、可溶性I型鸭肝炎病毒3D蛋白在制备检测I型鸭病毒性肝炎抗体的ELISA试剂中的应用,所述可溶性蛋白的制备步骤如下:将SEQ ID NO.3所示序列的第9~1376位核苷酸连接于pET-32(a)+载体的多克隆酶切位点处,然后以大肠杆菌Rosetta、BL21或BL21(DE3)PLYS为宿主菌,在Amp抗性的LB培养基中活化后,在IPTG终浓度为0.2~1.0mmol/L、温度为20~39℃条件下诱导表达4~12小时,收集菌液,离心后收集菌体,将收集的菌体用20mmol/L、pH为8.0的Tris-HCl悬浮,然后在冰浴下超声,破碎后进行离心,上清用Ni2+-NTA琼脂糖凝胶柱纯化,透析,超滤得可溶性I型鸭肝炎病毒3D蛋白。
优选的,所述宿主菌为大肠杆菌BL21(DE3)PLYS。
优选的,所述诱导表达为加入IPTG至终浓度为0.8mmol/L,在温度为25℃条件下诱导表达6小时。
优选的,所述活化的具体步骤为:将表达菌株接种于Amp抗性的LB培养基中,在37℃、120r/min条件下过夜培养,然后将培养液与Amp抗性的LB培养基按体积比为1:100扩大培养至OD600为0.6即可。
更优选的,所述冰浴下超声为在冰浴条件下超声破碎6次,30sec/次,每次间隔30sec。
2、检测I型鸭病毒性肝炎抗体的ELISA试剂盒,所述试剂盒含有可溶性I型鸭肝炎病毒3D蛋白包被的反应板。
优选的,所述反应板的制备方法为将1μg/mL的可溶性I型鸭肝炎病毒3D蛋白按每孔100μL加入反应板中,4℃过夜包被,次日PBST洗板5次,拍干即可。
优选的,所述试剂盒还含有酶标抗体、显色液和终止液。
更优选的,所述酶标抗体为HRP标记羊抗鸭IgG或HRP标记兔抗鸭IgG,所述显色液为TMB,所述终止液为浓度为2mol/L的H2SO4。
本发明的有益效果在于:本发明公开了可溶性I型鸭肝炎病毒3D蛋白在制备检测I型鸭病毒性肝炎抗体ELISA试剂中的应用,且将其构建为检测试剂盒,获得的试剂盒具有特异性强、重现性好、敏感度高,与用全病毒作包被抗原的ELISA试剂盒检测的符合率高,对I型鸭病毒性肝炎的诊断具有重要意义。
附图说明
为了使本发明的目的、技术方案和有益效果更加清楚,本发明提供如下附图:
图1为I型鸭肝炎病毒株DHAV-H的3D基因PCR扩增产物电泳结果(M:DL 2000Marker,1:3D基因PCR扩增产物)。
图2为I型鸭肝炎病毒株DHAV-H的3D基因载体构建过程中PCR鉴定和酶切鉴定结果(A:pJET-1.2+/DHAV-H-3D质粒PCR鉴定,M:DL2000Marker,1:PCR产物;B:pJET-1.2+/DHAV-H-3D质粒酶切鉴定,M:DL15000Marker,1:Kpn Ⅰ/Xho Ⅰ双酶切条带,2:Xho Ⅰ单酶切条带;C:pET-32(a)+/DHAV-H-3D质粒的PCR鉴定,M:DL2000Marker,1:PCR产物;D:pET32a+/DHAV-H-3D质粒的酶切鉴定,1:Kpn Ⅰ/Xho Ⅰ双酶切结果,2:Xho Ⅰ单酶切条带)。
图3为可溶性3D蛋白表达条件的优化(M为低分子量蛋白质标准品;A:表达菌的筛选,1为pET-32(a)+空载体表达产物,2-4分别为pET-32(a)+/DHAV-H-3D重组质粒转化Rosetta、BL21和BL21(DE3)PLYS三种不同表达宿主菌的表达产物;B:诱导表达时间的优化,1-5依次为诱导12h、10h、8h、6h和4h的BL21(DE3)PLYS宿主菌表达产物;C:诱导表达温度的优化,1-6分别为39℃、37℃、35℃、30℃、25℃和20℃的BL21(DE3)PLYS宿主菌表达产物;D:IPTG浓度优化,1-5分别为0.2mmol/L、0.4mmol/L、0.6mmol/L、0.8mmol/L和1.0mmol/L的IPTG诱导的表达产物。
图4为3D蛋白Western-blot检测及纯化蛋白电泳(A为3D蛋白的免疫印迹检测结果,M为蛋白质Marker,1为3D蛋白印迹。B为SDS-PAGE检测纯化的3D蛋白,M为低分子量蛋白质Marker,1为纯化的3D蛋白)。
具体实施方式
下面将结合附图,对本发明的优选实施例进行详细的描述。实施例中未注明具体条件的实验方法,通常按照常规条件,例如分子克隆实验指南(第三版,J.萨姆布鲁克等著)中所述的条件,或按照制造厂商所建议的条件。
实施例1、克隆I型鸭肝炎病毒株DHAV-H的3D基因
I型鸭肝炎病毒株H(DHAV-H)(GenBank:JQ301467)、E.coli DH5α菌种和pET-32(a)+载体均由四川农业大学禽病防治研究中心保存并提供。各种分子生物学试剂购于生物试剂公司。
根据DHAV-H的基因组序列(GenBank:JQ301467)设计扩增3D基因的引物,具体引物如下:
P1:5’-ggggtaccgatcaagggaaagtagtgagcaag-3’(SEQ ID NO.1),下划线表示Kpn Ⅰ酶切位点;
P2:5’-acgcctcgagtcagatcatcatgcaagctgt-3’(SEQ ID NO.2),下划线表示Xho Ⅰ酶切位点;然后将设计的引物由宝生物工程(大连)有限公司合成。
取保存的DHAV-H病毒液以灭菌PBS作5倍稀释,添加1/100体积的双抗(青霉素、链霉素的终浓度分别为100IU/mL和100μg/mL)后于37℃温育1h,然后接种9日龄发育良好、无母源抗体的鸭胚,弃去24h内死亡胚,收集24~72h死亡胚的尿囊液及胚体,按照Trizol试剂盒说明书提取病毒RNA。
将提取的病毒RNA反转录合成cDNA,然后以cDNA为模板进行PCR扩增,反转录和PCR扩增体系如表1所示。
表1反转录和PCR反应体系
反录转程序为:30℃10min,42℃15min,95℃5min,4℃5min,循环一次;PCR程序为:94℃预变性5min;94℃变性40sec,56℃退火40sec,72℃后延伸30sec,30个循环,最后72℃后延伸10min。将PCR扩增产物进行琼脂糖凝胶电泳,结果如图1所示。结果显示,扩增获得长度约1386bp的片段(不包括内切酶位点和保护性碱基则为1368bp),其核苷酸序列如SEQ ID NO.3所示,与预期片段大小相同,因此按照天根生化科技(北京)有限公司的胶回收试剂盒说明书回收目的条带,回收获得的片段命名为DHAV-H-3D。
实施例2、构建表达I型鸭肝炎病毒株H 3D蛋白的表达载体
将回收的DHAV-H-3D与pJET1.2载体连接,连接反应参照pJET1.2克隆试剂盒说明书进行,反应体系如表2所示。
表2、连接DHAV-H-3D与pJET1.2载体
按表2体系混合后进行瞬时离心,然后在20℃条件下连接15min。连接产物转化DH5α感受态细胞,并用Amp抗性的LB固体及液体培养基筛选,并将筛选菌落用SEQ ID NO.1和SEQ ID NO.2所示序列为引物进行PCR检测,扩增产物进行琼脂糖凝胶电泳,结果如图2中A所示。结果显示,筛选获得了阳性克隆。
为了进一步检测阳性克隆,将阳性克隆的菌株提取质粒,然后经Kpn Ⅰ和Xho Ⅰ双酶切及Xho Ⅰ单酶切鉴定,酶切体系如表3所示。
表3、Kpn Ⅰ及Xho Ⅰ酶切鉴定反应体系
按表3体系混合后瞬时离心,然后于37℃条件水浴3h,反应结束将酶切产物进行琼脂糖凝胶电泳检测,结果如图2中B。结果显示,DHAV-H-3D片段正确连入pJET1.2载体中,并命名为pJET-1.2+/DHAV-H-3D。将pJET-1.2+/DHAV-H-3D送Invitrogen公司测序,筛选未突变的序列用于构建表达载体。
取测序正确的pJET-1.2+/DHAV-H-3D和pET-32(a)+载体分别用Kpn Ⅰ和Xho Ⅰ进行双酶切,回收3D基因及载体骨架,然后按表4所示体系进行连接。
表4、3D基因及载体骨架连接体系
按表4体系混合后瞬时离心,然后于16℃条件下过夜连接,得pET-32(a)+/DHAV-H-3D质粒。连接产物转化DH5α宿主菌,以Amp抗性LB固体及液体培养基筛选,然后进行PCR鉴定,结果如图2中C所示。然后将PCR鉴定为阳性的菌株用于提取质粒,并将质粒用Xho Ⅰ进行单酶切及用Kpn Ⅰ和Xho Ⅰ进行双酶切,酶切产物进行琼脂糖凝胶电泳,结果如图2中D所示。由图2中C和D可知,3D基因及载体骨架正确连接。
实施例3、I型鸭肝炎病毒株H可溶性3D蛋白的表达
表达宿主菌大肠杆菌(Escherichia coli)Rosetta、大肠杆菌BL21和大肠杆菌BL21(DE3)PLYS菌种均由四川农业大学禽病防治研究中心保存;含I型鸭肝炎病毒株H 3D蛋白的表达载体pET-32(a)+/DHAV-H-3D由实施例2中构建;各种分子生物学试剂购于生物试剂公司。
将实施例2获得的pET-32(a)+/DHAV-H-3D质粒分别转化BL21、Rosetta和BL21(DE3)PLYS表达菌,转化菌于Amp抗性的LB液体培养基中37℃、120r/min条件下过夜培养,次日将过夜培养物与新鲜Amp抗性的LB液体培养基按体积比为1:100扩大培养约3小时,菌液OD600达0.6时加入IPTG至终浓度为0.2mmol/L,并在37℃下诱导12h,然后收集菌液,将菌液在12000r/min条件下、离心10min,菌体用20mmol/L Tris-HCl(pH 8.0)按1:10(V/V)悬浮。同时以pET-32(a)+载体转化相应表达菌作为阴性对照。
为了筛选表达出可溶性3D蛋白的表达菌,然后将上述制得的悬浮菌液在冰浴条件下超声破碎6次,30sec/次,每次之间间隔30sec,然后将破碎后的菌液在4℃、12000r/min条件下离心10min,弃沉淀(为不溶性包涵体表达蛋白),收集上清(为可溶性表达蛋白)。吸取80μL上清,加入20μL含β-巯基乙醇的5×SDS上样buffer,煮沸10min后在12000r/min条件下常温离心5min,然后进行SDS-PAGE电泳检查,结果如图3中A所示。结果显示,通过将重组质粒pET-32(a)+/DHAV-H-3D转化到三种表达菌后,在约68kD处出现了目的条带,而阴性对照不含有此条带,并且转化BL21(DE3)PLYS菌株的蛋白表达量最大、BL21的表达量次之,所以根据表达量筛选出最佳表达菌为BL21(DE3)PLYS。
I型鸭肝炎病毒株H可溶性3D蛋白表达条件的优化:
(1)IPTG浓度的优化:将含有pET-32(a)+/DHAV-H-3D重组质粒的BL21(DE3)PLYS菌株的菌液按体积比为1:100接种于5支含Amp抗性的LB液体培养基试管中,并于37℃振荡培养至OD600=0.6左右,加入IPTG至终浓度分别为0.2mmol/L、0.4mmol/L、0.6mmol/L、0.8mmol/L和1.0mmol/L,然后在37℃条件下诱导培养12h,然后用SDS-PAGE检测可溶性3D蛋白的表达量,结果如图3中B所示。结果显示,IPTG终浓度为0.8mmol/L条件下可溶性3D蛋白的表达量最高,即IPTG终浓度为0.8mmol/L为最适浓度。
(2)诱导表达温度优化:将含有pET-32(a)+/DHAV-H-3D重组质粒的BL21(DE3)PLYS菌株的菌液按体积比为1:100接种于6支含Amp抗性的LB液体培养基试管中,并于37℃振荡培养至OD600=0.6左右,加入IPTG至终浓度为0.8mmol/L,然后分别于温度为20℃、25℃、30℃、35℃、37℃和39℃条件下诱导12h,然后用SDS-PAGE检测可溶性3D蛋白的表达量,结果如图3中C所示。结果显示,温度在25℃条件下可溶性3D蛋白的表达量最高,即诱导温度为25℃为最适表达温度。
(3)诱导表达时间优化:将含有pET-32(a)+/DHAV-H-3D重组质粒的BL21(DE3)PLYS菌株的菌液按体积比为1:100接种于5支含Amp抗性的LB液体培养基试管中,并于37℃振荡培养至OD600=0.6左右,加入IPTG至终浓度为0.8mmol/L,然后于温度为25℃条件下诱导4h、6h、8h、10h和12h,然后用SDS-PAGE检测可溶性3D蛋白的表达量,结果如图3中D所示。结果显示,温度在诱导表达6h后可溶性3D蛋白的表达量以达到最高,即诱导表达时间为6h。
经过上述优化,可以看出含有pET-32(a)+/DHAV-H-3D重组质粒的BL21(DE3)PLYS菌最优表达条件为0.8mmol/L IPTG、25℃诱导6h。后续按照此条件对3D蛋白进行大量表达。
I型鸭肝炎病毒株H可溶性3D蛋白Western-blot检测,具体步骤如下:按最优表达条件表达可溶性3D蛋白,然后进行SDS-PAGE,随后将电泳后的凝胶转印至PVDF膜上,80V转印90min,转印完毕后将PVDF膜取出,以1%BSA于37℃摇动孵育1h,然后以1:100稀释的抗DHAV的IgG在37℃摇动孵育1h后取出,以TBS洗涤3次,每次2min,随后以1:3000稀释的HRP标记的羊抗鸭IgG或HRP标记兔抗鸭IgG于37℃摇动孵育1h,以TBS洗涤后按照DAB显色试剂盒说明书显色,待目的条带清晰可见时以蒸馏水冲洗终止显色,结果如图4中A所示,最后将PVDF膜干燥避光保存。
I型鸭肝炎病毒株H可溶性3D蛋白的纯化:将含重组质粒pET-32(a)+/DHAV-H-3D的BL21(DE3)PLYS在最适条件下表达,然后收集菌体,用20mmol/L Tris-HCl(pH 8.0)悬浮后在冰浴条件下超声破碎6次,30sec/次,每次之间间隔30sec,然后将破碎后的菌液在4℃、12000r/min条件下离心10min,收集上清(为可溶性表达蛋白);然后将收集的上清在Bio-rad公司提供的Ni2+-NTA琼脂糖凝胶柱纯化(纯化液及纯化方法按试剂盒说明书进行),将收集的纯化蛋白液进行透析后用0.45μm的滤膜超滤,最后置于4℃、-20℃、-70℃或冻干保存。将纯化后的可溶性3D蛋白进行SDS-PAGE电泳,结果如图4中B所示。结果显示表达的3D蛋白经Ni2+-NTA亲和纯化后,得到了纯度、浓度均较高的蛋白,经核酸蛋白分析仪测定蛋白浓度为1.5mg/mL。
实施例4、利用可溶性3D蛋白以ELISA方法检测I型鸭病毒性肝炎抗体
ELISA方法检测I型鸭病毒性肝炎抗体的具体步骤如下:
(1)抗原包被反应板:加入实施例3纯化获得的可溶性3D蛋白,100μL/孔,包被,次日PBST洗板5次,每次3min,拍干;
(2)封闭液封闭,同上洗板;
(3)加入待检鸭血清,在37℃孵育1.5h,同上洗板;
(4)加入工作浓度的酶标抗体(HRP标记羊抗鸭IgG或HRP标记兔抗鸭IgG),在37℃条件下孵育0.5h,同上洗板;
(5)加入TMB显色液,避光反应;
(6)加入终止液(2mol/L H2SO4),50μL/孔;
(7)酶标仪以双波长形式读取OD450-OD630值;
(8)选择P/N值最大者为最佳反应条件。
为了获得最佳的检测效果,按表5所示条件优化:
表5、间接ELISA条件优化
ELISA方法的反应条件优化
(1)最佳酶标抗体浓度
将酶标抗体(KPL公司的HRP标记羊抗鸭IgG,浓度为100μg/mL)分别作1:100、1:200、1:400、1:800、1:1600浓度稀释,每个浓度设置两个重复,均于37℃孵育,同时设置阴阳性血清,然后检测OD450-OD630值,并取平均值,结果如表6所示。选择P/N值最大者为最佳二抗稀释度。
表6、酶标抗体工作浓度优化
由表6可知,酶标抗体作1:800稀释时效果最佳。
(2)最佳抗原包被浓度及血清稀释度
将实施例3纯化获得的可溶性3D蛋白分别作1:50、1:100、1:200、1:400、1:800和1:1600稀释,鸭病毒性肝炎阳/阴性血清分别作1:100、1:200、1:400、1:800稀释,每个浓度设置2个重复,检测OD450-OD630值后取平均值,结果如表7所示。选择P/N值最大者为最佳条件。
表7、抗原包被浓度和血清稀释度选择
由表7可知,将可溶性3D蛋白作1:1:1600,血清作1:400稀释效果最佳。
(3)最佳显色时间
将显色时间分别设置为5min、10min、15min、20min、25min和30min,每个显色时间阳性、阴性血清均设置4个重复,均于37℃避光显色,然后检测OD450-OD630值,读取平均值,结果如表8所示。选择P/N值最大者为最佳显色时间。
表8、最佳显色时间选择
结果显示,显色时间为15min时效果最佳。
(4)最佳包被条件
分别在37℃处理1h后在4℃过夜,37℃处理4h后在4℃过夜和直接在4℃过夜三种条件下包被,同时设置阳性和阴性血清,各7个重复,读取OD450-OD630平均值,结果如表9所示。选择P/N值最大者为最佳包被条件。
表9、包被条件优化
由表9可知,在4℃条件下包被过夜为最佳包被条件。
(5)最佳封闭液、封闭时间
分别以1%BSA、5%BSA、1%脱脂奶粉、5%脱脂奶粉、1%小牛血清、5%小牛血清、1%明胶和5%明胶为封闭液,每一种封闭液设置3个重复,并于37℃条件下封闭,读取OD450-OD630平均值,结果如表10所示。然后设置封闭时间为30min、60min、90min、120min,读取OD450-OD630平均值,结果如表11所示。选择P/N值最大者作为最佳封闭液、封闭时间。
表10、最佳封闭液选择
表11、封闭时间选择
由表10和表11可知,最佳封闭液为1%BSA,最佳封闭时间为0.5h。
根据上述优化条件构建检测I型鸭病毒性肝炎抗体的ELISA试剂盒,具体为:可溶性I型鸭肝炎病毒3D蛋白包被的反应板、酶标抗体、显色液和终止液,其中反应板以浓度1μg/mL的可溶性I型鸭肝炎病毒3D蛋白按每孔100μL加入反应板中,4℃过夜包被,次日PBST洗板5次,拍干,其效果最佳;酶标抗体为HRP标记羊抗鸭IgG,所述显色液为TMB,所述终止液为浓度为2mol/L的H2SO4。
ELISA检测方法为:以1μg/mL的可溶性3D蛋白液4℃过夜包被,以1%BSA作为封闭液37℃封闭0.5h,血清稀释度1:400于37℃孵育1.5h,HRP标记的羊抗鸭IgG以1:800稀释于37℃孵育0.5h,显色15min。
利用根据上述ELISA的优化条件,检测I型鸭病毒性肝炎抗体的ELISA试剂盒的特异性:
(1)特异性交叉实验
用建立的ELISA试剂盒检测鸭沙门氏菌(Sal)、鸭大肠杆菌(E.coli)、鸭肿头败血症病毒(DSHDV)、禽流感病毒H5(AIV)、鸭瘟病毒(DPV)和鸭里默氏杆菌(RA)阳性血清,设置鸭肝炎阳性、阴性血清对照,每个血清设置3个重复,读取OD450-OD630平均值,结果如表12所示。
表12、ELISA试剂盒特异性检测
结果显示,六种待检阳性血清与阴性血清的比值均小于2.1,表明建立的ELISA试剂盒特异性很好。
(2)特异性阻断实验
用可溶性3D蛋白与I型鸭肝炎病毒感染的阳性血清按体积比为10:1混合,于37℃中和1h后稀释至最佳血清稀释度,用建立的ELISA试剂盒检测,计算阻断率,结果如表13所示。
表13、ELISA试剂盒阻断实验结果
结果显示,阳性血清阻断率为72.8%,阴性血清阻断率为16.4%。表明可溶性3D蛋白能与鸭肝炎阳性血清特异性识别并进行中和。
(3)变异系数
同一批纯化的3D蛋白按不同批次包被酶标条,然后检测6份血清的OD450-OD630值,每份血清设置6个重复,检测其变异系数作板内、板间变异系数,变异系数CV=标准差/平均值(SD/X×100%),结果如表14和表15所示。
表14、板内变异系数测定
表15、板间变异系数测定
结果表明,板内变异系数在1.9%-6.6%,均小于10%,板间变异系数在1.4%-6.7%,均小于10%。表明建立的ELISA试剂盒法重现性好。
(4)阳性阈值确定
以可溶性3D蛋白最佳稀释度包被酶标条,以最佳反应条件进行反应,检测60份阴性血清OD450-OD630值,计算cut-off值=均值+3×方差(Vcut-off=X+3×SD),结果如表16所示。
表16、60份阴性血清OD450-OD630值
取均值+3×SD作为阳性阈值,结果显示,阳性阈值为0.155+3×0.028=0.238。
(5)敏感性检测
取8份I型鸭病毒性肝炎阳性血清,分别从1:100开始,以2倍倍比稀释,用建立的ELISA试剂盒检测,以能检测出阳性的最大稀释度为灵敏度,结果如表17所示。
表17、ELISA试剂盒灵敏度检测
结果显示,ELISA试剂盒检测I型鸭病毒性肝炎血清的灵敏度为1:3200。
综上可见,利用本发明制得的包被可溶性3D蛋白的ELISA试剂盒检测I型鸭病毒性肝炎抗体具有特异性强、重现性好、敏感度高的优点,可用于临床样品的检测。
实施例5、可溶性3D蛋白与全病毒ELISA检测的比较
全病毒ELISA检测抗原的制备:
将DHAV-1弱毒的尿囊液原毒(为血清I型鸭肝炎病毒CH60株,该病毒株为本实验室分离致弱的病毒株,公开于公开号为103103163A的中国专利,保藏编号为CCTCC NO.V201248)以灭菌PBS作5倍稀释,添加相当于稀释液1/100体积的双抗(青霉素、链霉素的终浓度分别为100IU/mL和100μg/mL)于37℃温育1h后接种鸡胚,每天照蛋两次,24h内死亡胚舍弃,收集24-72h内死亡鸡胚尿囊液和胚体,胚体经-20℃冻融两次并研磨后以适量PBS悬浮,10000r/min离心30min取上清与尿囊液混匀置-20℃保存备用。
将DHAV-1弱毒病毒液经10000r/min离心30min,取上清液0.22μm滤膜过滤后45000r/min离心2h,将沉淀以离心前病毒液体积的1/40比例加入灭菌PBS悬浮,分装于-20℃保存备用,并以核酸蛋白仪检测其蛋白浓度。
全病毒ELISA方法,具体步骤如下:
a.抗原包被反应板,100μL/孔,37℃处理1h后转入4℃过夜包被,次日PBST洗板5次,每次3min,拍干;
b.以含质量分数为1%BSA的PBST封闭,37℃封闭1h,同上洗板;
c.加入待检血清,于37℃反应1h,同上洗板;
d.加入工作浓度的酶标抗体(HRP标记羊抗鸭IgG),于37℃孵育1h,同上洗板;
e.加入TMB显色液,避光反应15min;
f.加入终止液(浓度为2mol/L的H2SO4),50μL/孔;
g.酶标仪以双波长形式读取OD450-OD630值。
h.选择P/N值最大者为最佳反应条件。
然后并按照表18的条件进行优化ELISA的条件:
表18、间接ELISA条件优化
(1)最佳酶标抗体浓度
将酶标抗体(KPL公司的HRP标记羊抗鸭IgG,浓度为100μg/mL)分别作1:100、1:200、1:400、1:800、1:1600和1:3200浓度稀释,每个浓度设置两个重复,均于37℃孵育,同时设置阴阳性血清,然后检测OD450-OD630值,并取平均值,结果如表19所示。选择P/N值最大者为最佳二抗稀释度。
表19、酶标抗体浓度优化
由表19可以看出,酶标抗体的最佳浓度为按体积比为1:200稀释。
(2)最佳抗原包被浓度及血清稀释度
将DHAV-1全病毒分别作1:50、1:100、1:200、1:400、1:800和1:1600稀释,鸭病毒性肝炎阳/阴性血清分别作1:100、1:200、1:400和1:800稀释,每个浓度设置2个重复,检测OD450-OD630值后取平均值,结果如表20所示。选择P/N值最大者为最佳条件。
表20、抗原包被浓度和血清稀释度选择
结果显示,最佳抗原包被浓度1.125μg/ml,最佳血清稀释度为1:100。
(3)最佳显色时间
设置显色时间分别为5min、10min、15min、20min、25min和30min,每个显色时间设置4个重复,并设置阳性、阴性血清,均于37℃避光显色,检测OD450-OD630值后取平均值。结果如表21所示。
表21、显色时间选择
结果显示,显色时间为10min时P/N值最大且阴性值较低,即最佳显色时间为10min。
(4)最佳包被条件
设置37℃反应1h后4℃包被过夜,37℃反应4h后4℃包被过夜和4℃包被过夜三个条件包被,每个包被条件设置7个重复,检测检测OD450-OD630值后取平均值,结果如表22所示。
表22、包被条件优化
由表22可以看出,在4℃包被过夜时P/N值最大,即最佳包被条件为4℃包被过夜。
(5)最佳封闭液及封闭时间
分别以质量分数为1%的BSA、质量分数为5%的BSA、质量分数为1%的脱脂奶粉、质量分数为5%的脱脂奶粉、质量分数为1%的小牛血清、质量分数为5%的小牛血清、质量分数为1%的明胶和质量分数为5%的明胶为封闭液,并设置封闭时间为30min、60min、90min和120min四个梯度,每一种封闭液均设置阳性、阴性血清,各设置3个重复,均于37℃封闭,检测OD450-OD630值后取平均值,结果如表23和24所示。
表23、最佳封闭液选择
表24、封闭时间选择
结果显示,封闭液为质量分数为5%的明胶和封闭时间为30min时P/N值最大,即最佳封闭液为质量分数为5%的明胶,最佳封闭时间为30min。
(6)最佳血清、酶标抗体孵育时间
血清孵育时间分别设置为30min、60min、90min和120min四个梯度,每个时间点设置7个重复,均在37℃孵育,检测OD450-OD630值后取平均值,结果如表25所示。
表25、血清孵育时间优化
酶标抗体孵育时间分别设置为30min、60min、90min和120min四个梯度,每个时间点设置7个重复,均在37℃孵育,检测OD450-OD630值后取平均值,结果如表26所示。
表26、酶标抗体孵育时间优化
由表25和表26可知,血清孵育时间为60min和酶标抗体孵育时间为60min时P/N值最大,即最佳血清孵育时间为60min,最佳酶标抗体孵育时间为60min。
全病毒ELISA的特异性检测
(1)特异性交叉实验
利用上述优化的ELISA检测方法检测鸭沙门氏菌(Sal)、鸭大肠杆菌(E.coli)、鸭肿头败血症病毒(DSHDV)、禽流感病毒H5(AIV)、鸭瘟病毒(DPV)和鸭疫里默氏杆菌(RA)阳性血清,设置鸭肝炎阳性、阴性血清对照,每个血清设置3个重复取平均值,结果如表27所示。
表27、基于DHAV的ELISA方法特异性检测
结果显示,所有待检血清与鸭肝炎阴性血清的比值均小于2.1,表明建立的ELISA方法特异性很好。
(2)特异性阻断实验
用全病毒与I型鸭肝炎病毒感染的阳性血清或阴性血清按体积比为10:1混合,于37℃中和1h后稀释至最佳血清稀释度,然后优化的ELISA方法进行检测,计算阻断率,结果如表28所示。
表28、全病毒阻断实验
结果显示,阳性血清阻断率为91.2%,阴性血清阻断率为5.6%,表明DHAV病毒能与鸭肝炎阳性血清很好的特异性结合。
(3)全病毒ELISA方法变异系数
以两个不同批次纯化的病毒液分别包被酶标板,检测6份血清的OD450-OD630值,每份血清设置6个重复,检测其变异系数作板内、板间变异系数,变异系数CV=标准差/平均值(SD/X×100%),结果如表29所示。
表29、板内和板间变异系数测定
结果显示,板内变异系数和板间变异系数均小于10%,表明基于全病毒建立的ELISA方法具有较好的重复性。
(4)全病毒阳性阈值确定
以全病毒最佳稀释度包被酶标条,以最佳反应条件进行反应,检测60份阴性血清OD450-OD630值,计算cut-off值=均值+3×方差(Vcut-off=X+3×SD),3×SD作为阳性阈值,结果如表30所示。
表30、60份阴性血清OD450-OD630值
结果显示,全病毒阳性阈值0.067+3×0.025=0.143。
(5)全病毒ELISA方法敏感性检测
取6份已知的鸭甲肝病毒阳性血清,分别从1:100开始,以2倍倍比稀释,用优化的ELISA方法检测,以能检测出阳性的最大稀释度为灵敏度,结果如表31所示。
表31、基于DHAV的ELISA方法灵敏度检测
结果显示,全病毒ELISA检测的灵敏度为1:6400。
(6)可溶性3D蛋白的ELISA检测和全病毒ELISA检测的符合率比较
分别以实施例4中建立的可溶性3D蛋白的ELISA方法和本实施例中全病毒ELISA方法检测60份相同的血清样品,测OD450-OD630值,结果见表32所示,然后统计符合率,结果如表33所示。
表32、可溶性3D蛋白和全病毒的ELISA方法检测平行检测60份血清OD450-OD630值
a为阳性符合,b为阴性符合,c为不符合
表33、可溶性3D蛋白和全病毒的间接ELISA方法的符合率
结果显示两种方法检出的阳性符合率为83.3%,阴性检出符合率为85.7%,总符合率为84.5%,说明基于可溶性3D蛋白的ELISA与基于DHAV-1全病毒的ELISA方法具有较好的符合率。
综上可见,利用本发明制得的包被可溶性3D蛋白的ELISA试剂盒检测I型鸭病毒性肝炎抗体具有特异性强、重现性好、敏感度高,与用全病毒作抗原包被的ELISA试剂盒检测的符合率高,可用于临床样品的检测。
实施例6、可溶性3D蛋白和全病毒ELISA试剂盒的应用
将40只鸭子按照表36分为3D蛋白组(P组)、3D蛋白+疫苗组(P+V组)、疫苗组(V组)及对照组(C组),并按照表34中的免疫剂量和途径进行免疫和注射。
表34、动物分组及免疫
免疫后3d采血分离血清样品,按照建立的可溶性3D蛋白、DHAV全病毒ELISA方法,分别检测血清中的3D蛋白抗体、鸭甲肝病毒抗体水平,结果如表35所示。
表35、3D蛋白和全病毒抗体水平检测
结果显示3D蛋白抗体和全病毒抗体效价在免疫后3天即可检出,对照组均为阴性,表明利用本发明的方法制备的3D蛋白能够用于检测I型鸭病毒性肝炎的3D蛋白抗体。
最后说明的是,以上优选实施例仅用以说明本发明的技术方案而非限制,尽管通过上述优选实施例已经对本发明进行了详细的描述,但本领域技术人员应当理解,可以在形式上和细节上对其作出各种各样的改变,而不偏离本发明权利要求书所限定的范围。
Claims (9)
1.可溶性I型鸭肝炎病毒3D蛋白在制备检测I型鸭病毒性肝炎抗体的ELISA试剂中的应用,其特征在于,所述可溶性蛋白的制备步骤如下:将SEQ ID NO.3所示序列的第9~1376位核苷酸连接于pET-32(a)+载体的多克隆酶切位点处,然后以大肠杆菌Rosetta、BL21或BL21(DE3)PLYS为宿主菌,在Amp抗性的LB培养基中活化后,在IPTG终浓度为0.2~1.0mmol/L、温度为20~39℃条件下诱导表达4~12小时,收集菌液,离心后收集菌体,将收集的菌体用20mmol/L、pH为8.0的Tris-HCl悬浮,然后在冰浴下超声,破碎后进行离心,上清用Ni2+-NTA琼脂糖凝胶柱纯化,透析,超滤得可溶性I型鸭肝炎病毒3D蛋白。
2.根据权利要求1所述的应用,其特征在于:所述宿主菌为大肠杆菌BL21(DE3)PLYS。
3.根据权利要求1所述的应用,其特征在于:所述诱导表达为加入IPTG至终浓度为0.8mmol/L,在温度为25℃条件下诱导表达6小时。
4.根据权利要求1所述的应用,其特征在于,所述活化的具体步骤为:将表达菌株接种于Amp抗性的LB培养基中,在37℃、120r/min条件下过夜培养,然后将培养液与Amp抗性的LB培养基按体积比为1:100扩大培养至OD600为0.6即可。
5.根据权利要求1所述的应用,其特征在于:所述冰浴下超声为在冰浴条件下超声破碎6次,30sec/次,每次间隔30sec。
6.检测I型鸭病毒性肝炎抗体的ELISA试剂盒,其特征在于:所述试剂盒含有可溶性I型鸭肝炎病毒3D蛋白包被的反应板。
7.根据权利要求6所述的ELISA试剂盒,其特征在于:所述反应板的制备方法为将1μg/mL的可溶性I型鸭肝炎病毒3D蛋白按每孔100μL加入反应板中,4℃过夜包被,次日PBST洗板5次,拍干即可。
8.根据权利要求6所述的ELISA试剂盒,其特征在于:所述试剂盒还含有酶标抗体、显色液和终止液。
9.根据权利要求6所述的ELISA试剂盒,其特征在于:所述酶标抗体为HRP标记羊抗鸭IgG或HRP标记兔抗鸭IgG,所述显色液为TMB,所述终止液为浓度为2mol/L的H2SO4。
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