CN103558386A - ELISA检测融合蛋白rMBP-NAP的方法 - Google Patents

ELISA检测融合蛋白rMBP-NAP的方法 Download PDF

Info

Publication number
CN103558386A
CN103558386A CN201310368917.2A CN201310368917A CN103558386A CN 103558386 A CN103558386 A CN 103558386A CN 201310368917 A CN201310368917 A CN 201310368917A CN 103558386 A CN103558386 A CN 103558386A
Authority
CN
China
Prior art keywords
nap
damping fluid
antibody
rmbp
coated
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
CN201310368917.2A
Other languages
English (en)
Other versions
CN103558386B (zh
Inventor
康巧珍
汲振余
刘鑫
李国栋
王婷
陈娇
傅国
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Zhengzhou University
Original Assignee
Zhengzhou University
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Zhengzhou University filed Critical Zhengzhou University
Priority to CN201310368917.2A priority Critical patent/CN103558386B/zh
Publication of CN103558386A publication Critical patent/CN103558386A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN103558386B publication Critical patent/CN103558386B/zh
Expired - Fee Related legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/569Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for microorganisms, e.g. protozoa, bacteria, viruses
    • G01N33/56911Bacteria
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/531Production of immunochemical test materials
    • G01N33/532Production of labelled immunochemicals
    • G01N33/535Production of labelled immunochemicals with enzyme label or co-enzymes, co-factors, enzyme inhibitors or enzyme substrates
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/558Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor using diffusion or migration of antigen or antibody
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/68Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving proteins, peptides or amino acids
    • G01N33/6803General methods of protein analysis not limited to specific proteins or families of proteins
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2333/00Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
    • G01N2333/195Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from bacteria
    • G01N2333/20Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from bacteria from Spirochaetales (O), e.g. Treponema, Leptospira

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Bioinformatics & Computational Biology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)

Abstract

本发明公开了一种ELISA检测融合蛋白rMBP-NAP的方法,包括包被、封闭、加样、加鼠MBP单抗、加酶标二抗、加入底物显色。本发明使用兔NAP多克隆抗体包被,尤其是经NAP-GST亲和层析纯化抗体,通过使用商品化的酶标二抗的夹心间接ELISA法,避免了制备酶标抗体的麻烦,增加了灵敏度,在测定时也无需经过特殊处理,简便快捷、灵敏、特异性好。另外,在本发明的工作浓度下,还可很好地对rMBP-NAP进行定量分析:批内变异系数小于10%,批间变异系数均小于15%;加入结构类似的干扰物NAP-GST后,OD值并没有升高,T检验证明没有发生显著差异;回收率也在85-115%之间。

Description

ELISA检测融合蛋白rMBP-NAP的方法
技术领域
本发明涉及一种融合蛋白rMBP-NAP,尤其涉及一种ELISA检测融合蛋白rMBP-NAP的方法。
背景技术
    幽门螺杆菌(Helicobacter pylori,Hp)是定植于人胃粘膜的革兰氏阴性螺杆菌,世界上约有50%的人感染幽门螺杆菌。幽门螺杆菌产生一系列独特的毒力因子,其中包括中性粒细胞激活蛋白(Hp-NAP)。Hp菌体培养条件苛刻,难以进行大规模培养。细菌抗原组分复杂,且含量较低,直接从全菌中分离纯化出保护性抗原的难度较大,方法繁琐。本实验室在中国第一个提交了HP-NAP的编码基因序列,Gnebank登录号AY366361,并构建了由大肠杆菌E. coli TB1表达重组蛋白rMBP-NAP的方法,rMBP-NAP蛋白的分子量约为 59KD,为大分子蛋白抗原,该蛋白由MBP(麦芽糖结合蛋白)和NAP(幽门螺杆菌中性粒细胞激活蛋白)两种蛋白融合而成,具体制备方法见专利CN201010177875.0。
    Enzyme-linkedimmunoassay,简称ELISA,是利用抗原抗体之间专一性键结之特性,对检体进行检测,主要以夹心法(sandwich)、间接法(indirect)、以及竞争法(Competitive)三种为主。
    其中双抗体夹心法基本工作原理是:利用连接于固相载体上的抗体和酶标抗体分别与样品中被检测抗原分子上两个抗原决定簇结合,形成固相抗体抗原酶标抗体免疫复合物。由于反应系统中固相抗体和酶标抗体的量相对于待测抗原是过量的,因此复合物的形成量与待测抗原的含量成正比(在方法可检测范围内)。测定复合物中的酶作用于加入的底物后生成的有色物质量(OD值),即可确定待测抗原含量。若固相载体上的抗体和酶标抗体分别与样品中被检测抗原分子上两个不同的抗原决定簇结合,则属于双位点夹心法。
    双抗体夹心法中,传统的双多抗夹心法(A法)所需检测抗体和固相载体包被抗体都是多抗,制备简单,在一定范围内检测灵敏度高,信号显示强,很难避免钩状效应,其主要问题在于:固相载体上的抗体和检测抗体都为针对完整抗原所有抗原结合位点多克隆抗体,抗原浓度比较低的时候,固相支持物上的抗体几乎跟抗原上所有位点结合,结合力强,空余位点少,检测抗体与抗原位点少,结合力弱,只要固相支持物上的抗体未与抗原结合饱和,抗原量与最后信号显示部呈线性关系;随着抗原量的增加,固相支持物上的抗体与抗原结合饱和,空余位点越来越多,检测抗体与抗原的空余位点结合,信号显示与实际抗原增长呈几何倍数增长,同样不呈线性关系;随着抗原量的增加,固相载体上的抗体与每个抗原的结合位点很少,结合力很弱,而过量的检测抗体与其结合位点增多,结合力增强,因为抗原抗体结合本来就是一个动态可逆的反应过程,一旦从固相载体上抗体与抗原解离下来的时候,位点立即被检测抗体结合,形成抗原抗体复合物沉淀,在洗涤过程中被洗掉,随着抗原量的增加,而信号反而降低,就是所谓的钩状效应。此时反应后显色的吸光值(位于抗原过剩带上)与标准曲线(位于抗体过剩带上)某一抗原浓度的吸光值相同,如按常法测读,所得结果将低于实际的含量,因为标准曲线到达高峰后呈钩状弯落。钩状效应严重时,反应甚至可不显色而出现假阴性结果。
而用高亲和力的单克隆抗体对(B法)即检测抗体和固相载体包被抗体都用单克隆抗体,生产此类试剂盒可削弱钩状效应,由于固相载体上的抗体和检测抗体结合的不是相同的位点,所以不形成竞争关系,一般情况下不会形成钩状效应,但是单克隆抗体制备周期长,成本高,特别是高亲和力的配对抗体更是不容易得到,同时,由于固相载体上抗体和检测抗体都是单位点与抗原结合,所以结合力弱,信号显示值低,敏感性差,稳定性也不好。
发明内容
    本发明克服了现有技术的不足,提供了一种ELISA检测融合蛋白rMBP-NAP的方法,制备方法简单、成本低、周期短,且精密度、特异性好。
    为达到上述目的,本发明采用的技术方案为:
    一种ELISA检测融合蛋白rMBP-NAP的方法,包括以下步骤:
1)包被:将100ul被包被缓冲液稀释至500ng/mL的兔抗幽门螺杆菌NAP多抗,包被至固体载体如酶标板,用洗涤缓冲液洗涤;  
2)封闭:再加封闭液以封闭,孵育后洗涤
3)加样:分别加入100ul工作浓度(15.625-1000ng/mL、2倍倍比稀释的梯度)的rMBP-NAP抗原标准品和待测样品,孵育后洗涤
4)分别加入稀释至50ng/mL的小鼠MBP单抗100ul,孵育后洗涤
5)分别加入100ul辣根过氧化物酶HRP标记的羊抗小鼠IgG抗体,孵育后洗涤
6)加入底物显色,并于450nm波长处测定吸光值OD
7)以步骤3中一系列不同稀释度的rMBP-NAP标准品,制标准曲线,计算样品中rMBP-NAP的含量。
   使用本法ELISA检测时,通常另设空白对照/阴性对照。显色步骤可用商业化的TMB(四甲基联苯胺)底物,显色液可由A液和B液(TMB)按1:1比例配制,先加A液,再加B液,避光显色5-10 min,用浓硫酸终止反应。
所述兔抗幽门螺杆菌NAP多抗可由含NAP特异片段的抗原免疫兔制得,如用rMBP-NAP免疫,然后再用亲和层析纯化,亲和配体可使用加标签的NAP抗原,如NAP-GST融合蛋白,该蛋白是在NAP上加了GST标签,一种构建方法可参见论文:Long M, Luo J, Li Y, et al. Detection and evaluation of antibodies against neutrophil-activating protein of Helicobacter pylori in patients with gastric cancer[J]. World journal of gastroenterology: WJG, 2009, 15(19): 2381.。以NAP-GST融合蛋白为配体的亲和层析,层析介质的基质可为常用的Sepharose 4B,层析上样前,可使用磷酸盐PBS缓冲液(缓冲对为H2P04 --HP04 2-)平衡层析柱,PBS浓度可为10 mM,该缓冲液中NaCl浓度可为137mM,pH可为7.4;上完样,在洗脱前,优选使用PBS缓冲液(缓冲对为H2P04 --HP04 2-)平衡层析柱,PBS浓度可为10 mM,该缓冲液中NaCl浓度较高,可为500mM,pH可为7.4;优选使用甘氨酸-HCl缓冲液将兔抗幽门螺杆菌NAP多抗洗脱,该缓冲液的pH可为2.5,浓度可为0.1 mol/L。
    所述步骤1-5的洗涤,优选使用常用的含吐温20的PBST缓冲液,其磷酸盐(缓冲对为H2P04 --HP04 2-)浓度可为0.15 mol/L,吐温20的质量分数可为0.05%,pH可调至7.4;所述步骤4或5的稀释液亦可用如前所述的PBST缓冲液。所述封闭液优选在所述PBST缓冲液中另加入牛血清白蛋白BSA,BSA质量体积分数可为2-5%。
   所述步骤2、3、4或5中孵育的条件优选为37 ℃,优选孵育1h。
   所述包被缓冲液可为碳酸盐缓冲液(缓冲对为HCO3 --CO3 2-),碳酸盐浓度可为0.05mol/L ,pH可为9.6;包被过程可采用在4 ℃放置24h或过夜。
   所述样品或标准品可预先用PBS或PBST缓冲液稀释。
    本发明的积极效果为:
本发明的鼠MBP单克隆抗体可与rMBP-NAP蛋白中MBP上的表位(epitope) 结合,兔NAP多克隆抗体可以与rMBP-NAP蛋白中NAP上的表位(epitope)结合,尤其是经NAP-GST亲和层析纯化抗体,纯度超过90%、效价达到1:12800,可高特异地结合rMBP-NAP抗原,这样,通过1个单抗、1个多抗即可实现“夹心”;比传统双多抗夹心法(A法)线性好,无标准曲线的钩状效应;与双单抗的夹心法(B法)相比制备方法简单、成本低、周期短。
 通过使用商品化的酶标二抗的夹心间接ELISA法,避免了制备酶标抗体的麻烦,增加了灵敏度,在测定时也无需经过特殊处理,简便快捷、灵敏、特异性好。
另外,在本发明的工作浓度下,还可很好地对rMBP-NAP进行定量分析:批内变异系数小于10%,批间变异系数均小于15%;加入结构类似的干扰物NAP-GST后,OD值并没有升高,T检验证明没有发生显著差异;回收率也在85-115%之间。
具体实施方式
部分下文所用试剂(其他试剂或仪器均为市售或本领域常用):
(1)、PBS缓冲液:
在800 mL双蒸水中溶解NaCl 8 g,KCl 0.2 g,Na2HP04·12H2O 3.63 g和KH2P04 0.24 g,搅拌均匀后,调节pH值至7.4,再加水定容至1000 mL,高压蒸气灭菌,4℃保存。
除非另有指明,以下文中PBS缓冲液均指此磷酸盐浓度10mM、NaCl浓度 137mM的溶液。
(2)、包被缓冲液:称取Na2CO3 1.59克,NaHCO3 2.94克,加入蒸馏水,调整pH值到9.6,充分溶解后,定容至1L。然后用0.22 μm微孔滤器除菌,4℃保存。
(3)、洗涤缓冲液:称取KH2PO4 0.2克,Na2HPO4·12H2O 2.9克,NaCl 8.0克,KCl 0.2克,Tween-20 0.5mL,加入蒸馏水,调整pH值到7.4,充分溶解后,定容至1L,室温保存。
(4)、PBST缓冲液:将吐温20加入到(1)所制PBS缓冲液中,吐温20的体积分数为0.05%
(5)封闭液(含5%BSA的PBST缓冲液):称取0.25g BSA,溶解在5 mL (4)所制PBST缓冲液中。存放于4℃,放至室温后使用,现用现配。
(6)显色液:显色液由A液和B液按1:1比例配制,4℃保存,现用现配。
A液配方: 称取柠檬酸钠(含1分子水,分子量210.14)约3.15 g 溶于150 mL双蒸水中,即0.1 mol柠檬酸;再称取称醋酸钠(含3个结晶水)11.56 g或者无水醋酸钠6.9725 g加双蒸水至850 mL 即0.1 mol醋酸钠;混合以上两种溶液 pH =5.0;称取非那西汀0.08 g 加少许(约30 mL)双蒸水加热至完全溶解,加入前两种溶液的混合液中;再加入0.5 g过氧化脲,混匀即可。
B液配方:称取TMB(四甲基联苯胺)1.27 g 加入到500 mL 甲醇中,加热溶解,再加入500 mL丙三醇即可。
(7)终止液:蒸馏水178.3 mL,逐滴加入浓硫酸(98%) 21.7 mL,室温保存
(8)洗脱液:0.1 mol/L甘氨酸-HCl,pH 2.5
(9)弗式完全佐剂(CFA)、弗式不完全佐剂(IFA)购自Sigma公司
(10)融合蛋白NAP-GST                     本实验室制备
兔抗NAP多克隆抗体的制备及验证:
一、主要动物和免疫原
动物:成年健康雄性新西兰大白兔,购于河南省实验动物中心
免疫原:融合蛋白rMBP-NAP
二、免疫、兔抗NAP多克隆抗血清的制备
免疫方式为后颈部皮下注射,每次免疫原用量为0.5 mg/只,0.5 mg免疫原(rMBP-NAP)溶解在500 μl PBS(10mM、pH 7.4、含137mM NaCl;具体配制方法及配方见前面描述)缓冲液中。首次免疫时与0.5 mL弗氏完全佐剂CFA混合(1 : 1, v/v); 免疫后第2周和第6周用不完全弗氏佐剂(IFA)进行加强免疫,免疫剂量相同。最后一次免疫2周后收集血,然后收集血清。
三、纯化
1、制备NAP-GST-Sepharose 4B亲和介质
将NAP-GST蛋白与CNBr激活的Sepharose 4B的交联,经检测偶联效果良好,基本上90%以上的蛋白交联到了载体柱上。
2、NAP-GST-Sepharose 4B亲和层析
1)将前述收集到的抗血清 37 ℃放置 1 个小时,再经过4 ℃过夜处理,然后按40mL血清加5M的 NaCl 4 mL,8000 rpm 离心10min,取上清准备过柱
2)预先用10 mM的 PBS缓冲液 (pH 7.4、含137mM NaCl;具体配制方法及配方见前面描述) 平衡NAP-GST-Sepharose 4B柱子
3)血清过柱,流速1 mL/min
4)用10 mM 的PBS缓冲液(pH 7.4、含500mM NaCl)洗涤柱子,流速1mL/min,洗20个柱体积
5)洗脱,用0.1 mol/L、pH 2.5的甘氨酸-HCl洗脱靶抗体,控制流出速度为1 mL/min。每管收集洗脱液1 mL,用100 uL 1M Tris 碱中和。
3、纯化产物进行SDS-PAGE电泳,检测抗体的纯度
SDS-PAGE电泳结果表明,经过纯化的抗体只在50KD附近有一个条带,没有其他杂带,抗体的纯度超过90%。
四、效价验证
采用间接ELISA方法检测多克隆抗体效价,具体操作如下
a 用包被缓冲液(pH9.6、0.05M碳酸盐缓冲液)稀释rMBP-NAP至浓度为10ng/ml,另设空白对照,阴性血清对照,包被酶标板,每孔100ul。4 ℃过夜,弃去液体,甩干,每孔加满PBST洗涤液,震荡3min,甩去洗涤液,用吸水纸拍干。如此重复3次,拍干;
b 用另加有5%BSA的PBST溶液封闭酶标板,37℃孵育1h,洗涤3次;
c 在包被孔中依次分别加入1:1600、1:3200、1:6400、1:12800、1:25600、1:51200、1:102400稀释的多克隆抗体样品,每孔100ul ,37℃孵育1h,洗涤3次;
d 在每一包被孔中加入HRP标记羊抗兔IgG抗体(PBST缓冲液稀释至1mg/mL),37℃孵育1h,洗涤3次;
e 每孔先加A号显色剂50uL,再加入B号显色剂50uL,轻轻震荡混匀,37℃显色5min,用2mol/L H2SO4终止反应(此时蓝色立转黄色),酶标仪450nm读取吸光度(OD)值;测定应在加完终止液15分钟内进行。
 
结果显示稀释度在1:12800时,P/N(阳性血清/阴性血清)比值最接近2.1,可知在抗原10ng/mL时,抗体效价达到1:12800。
 
ELISA检测融合蛋白rMBP-NAP的方法
实施例1:
1)包被:用包被缓冲液(pH9.6、0.05M碳酸盐缓冲液)将兔抗幽门螺杆菌NAP多抗稀释至500ng/mL,以100ul每孔加入到酶标板,另设空白对照,4 ℃过夜,弃去液体,甩干,每孔加满PBST洗涤液,震荡5分钟,甩去洗涤液,如此重复3次,用吸水纸拍干。另设空白对照、阴性血清对照。
2)封闭:用封闭液封闭酶标板,37℃孵育1h,洗涤3次,拍干
3)加样:分别加入100ul工作浓度(15.625-1000ng/mL、2倍倍比稀释的梯度)的rMBP-NAP抗原标准品和待测样品,每个样品做复孔,37 ℃孵育1h,洗涤3次,拍干
4)用0.15 mol/L、pH 7.4 PBST缓冲液将小鼠MBP单抗稀释至50ng/mL,每孔分别加入100ul,
5)在每一包被孔中加入HRP标记的羊抗小鼠IgG抗体100 uL,
6)每孔先加A号显色液50 uL,再加入B号显色剂50 uL,震荡混匀后,37 ℃避光显色5-10 min,用2 mol/L H2SO4终止反应(终止后蓝色立转黄色),酶标仪450 nm读取吸光度(OD)值;测定应在加完终止液15分钟内进行。
7)制标准曲线,计算样品中rMBP-NAP的含量。
 
实施例2:
       操作步骤如上,封闭液改用含2%BSA的PBST缓冲液,其他操作、条件如上。
 
ELISA检测融合蛋白rMBP-NAP的方法的考核(以实施例1的方法为例)
(1)精密度
精密度通常用批内和批间的变异系数(CV%)来表示,rMBP-NAP的含量在标准曲线范围内选择了250ng/mL、62.5ng/mL和15.625ng/mL三个浓度,来验证建立的ELISA方法的批内和批间精密度,结果如表1-4和表1-5显示:批内变异系数均在5.9%—7.73%范围内,均小于10%,批间变异系数在6.2%-7.85%范围内,均小于15%,说明建立的方法重现性良好。
表1-4  批内精密度测定结果
Figure 2013103689172100002DEST_PATH_IMAGE002
表1-5 批间精密度测定结果
Figure 2013103689172100002DEST_PATH_IMAGE004
(2) 特异性
其中6个样本孔,加入100 uL rMBP-NAP(终浓度为61.25 ng/mL),另设6个对照孔,加入1000 ul稀释的rMBP-NAP(终浓度为61.25 ng/mL)和等摩尔的NAP-GST(终浓度为也61.25 ng/mL),结果如下表1-6,表明加入结构类似干扰物NAP-GST后,OD值没有发生显著性差异,说明建立的ELISA方法特异性强,能够专一测定rMBP-NAP。
表1-6特异性测定结果
 (3)回收率
样品1,2,3中rMBP-NAP的含量分别为250ng/mL、62.5ng/mL、15.625ng/mL,每个样品设6个孔,根据标准曲线测出平均值,算出回收率如下表1-7所示,分别为104%、103%、111%。
表1-7 方法回收率的测定结果
样品序号 理论值(ng/mL) 平均值(ng/mL) 回收率(%)
1 250 260.73 104
2 62.5 64.15 103
3 15.63 17.28 111

Claims (10)

1.ELISA检测融合蛋白rMBP-NAP的方法,包括以下步骤:
1)包被:将100ul被包被缓冲液稀释至500ng/mL的兔抗幽门螺杆菌NAP多抗,包被至固体载体,用洗涤缓冲液洗涤  
2)封闭:再加封闭液以封闭,孵育后洗涤
3)加样:分别加入100ul工作浓度的rMBP-NAP抗原标准品和待测样品,孵育后洗涤
4)分别加入稀释至50ng/mL的小鼠MBP单抗100ul,孵育后洗涤
5)分别加入稀释至1mg/mL的、辣根过氧化物酶HRP标记的羊抗小鼠IgG抗体100ul,孵育后洗涤
6)加入底物显色,并于450nm波长处测定吸光值OD。
2.如权利要求1所述的方法,其特征在于:
所述兔抗幽门螺杆菌NAP多抗的制备方法为:以rMBP-NAP免疫兔得到多抗血清,再经以NAP-GST融合蛋白为配体的亲和层析纯化制得。
3.如权利要求2所述的方法,其特征在于,所述亲和层析包括:上样前,用磷酸盐浓度10mM、pH为7.4的PBS缓冲液平衡层析柱,该缓冲液中NaCl浓度为137mM。
4.如权利要求2所述的方法,其特征在于,所述亲和层析包括:在洗脱前,用磷酸盐浓度10mM、pH为7.4的PBS缓冲液洗涤,该缓冲液中NaCl浓度为500mM。
5.如权利要求2所述的方法,其特征在于,所述亲和层析包括:使用0.1 mol/L、pH2.5的甘氨酸-HCl缓冲液将兔抗幽门螺杆菌NAP多抗洗脱。
6.如权利要求1所述的方法,其特征在于:所述封闭液为磷酸盐浓度为0.15 mol/L、吐温20的体积分数为0.05%、pH 7.4 的PBST缓冲液,其中还含有质量体积分数为2-5%的牛血清白蛋白。
7.如权利要求1所述的方法,其特征在于:所述包被缓冲液为0.05mol/L 、pH9.6的碳酸盐缓冲液。
8.如权利要求1所述的方法,其特征在于:所述步骤1-5的洗涤条件独立地选自:使用0.15 mol/L、pH 7.4 PBST缓冲液进行洗涤。
9.如权利要求1所述的方法,其特征在于:所述步骤4或5所用稀释液为磷酸盐浓度为0.15 mol/L、吐温20的质量分数为0.05%、pH 7.4 的PBST缓冲液。
10.如权利要求1所述的方法,其特征在于:所述步骤2、3、4或5中孵育的条件为:37 ℃孵育1h。
CN201310368917.2A 2013-08-22 2013-08-22 ELISA检测融合蛋白rMBP‑NAP的方法 Expired - Fee Related CN103558386B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201310368917.2A CN103558386B (zh) 2013-08-22 2013-08-22 ELISA检测融合蛋白rMBP‑NAP的方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201310368917.2A CN103558386B (zh) 2013-08-22 2013-08-22 ELISA检测融合蛋白rMBP‑NAP的方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN103558386A true CN103558386A (zh) 2014-02-05
CN103558386B CN103558386B (zh) 2017-03-01

Family

ID=50012692

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201310368917.2A Expired - Fee Related CN103558386B (zh) 2013-08-22 2013-08-22 ELISA检测融合蛋白rMBP‑NAP的方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN103558386B (zh)

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN107875375A (zh) * 2017-10-10 2018-04-06 郑州大学 rMBP‑NAP调控巨噬细胞及直接抗肿瘤的用途
CN109771637A (zh) * 2019-01-30 2019-05-21 郑州大学 一种抗特应性皮炎的蛋白
CN110376389A (zh) * 2019-08-28 2019-10-25 重庆三峡医药高等专科学校 一种检测嗜酸性粒细胞碱性蛋白的胶体金试纸条

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1825117A (zh) * 2006-01-28 2006-08-30 中国人民解放军第四军医大学 标签蛋白或含标签的融合蛋白的定量检测方法
CN101231292A (zh) * 2008-02-25 2008-07-30 中南大学 人乳转铁蛋白及其检测试剂盒在鼻咽癌诊断中的应用
CN101413959A (zh) * 2008-12-04 2009-04-22 江苏先声药物研究有限公司 组氨酸标签蛋白或含组氨酸标签的融合蛋白的免疫学定量检测方法
CN102002106A (zh) * 2010-05-20 2011-04-06 郑州大学 融合蛋白mbp-nap及其制备方法和应用

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1825117A (zh) * 2006-01-28 2006-08-30 中国人民解放军第四军医大学 标签蛋白或含标签的融合蛋白的定量检测方法
CN101231292A (zh) * 2008-02-25 2008-07-30 中南大学 人乳转铁蛋白及其检测试剂盒在鼻咽癌诊断中的应用
CN101413959A (zh) * 2008-12-04 2009-04-22 江苏先声药物研究有限公司 组氨酸标签蛋白或含组氨酸标签的融合蛋白的免疫学定量检测方法
CN102002106A (zh) * 2010-05-20 2011-04-06 郑州大学 融合蛋白mbp-nap及其制备方法和应用

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
张玉民等: "定量检测IL-2-HSA融合蛋白双抗体夹心ELISA法的建立", 《生物技术通讯》 *

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN107875375A (zh) * 2017-10-10 2018-04-06 郑州大学 rMBP‑NAP调控巨噬细胞及直接抗肿瘤的用途
CN109771637A (zh) * 2019-01-30 2019-05-21 郑州大学 一种抗特应性皮炎的蛋白
CN110376389A (zh) * 2019-08-28 2019-10-25 重庆三峡医药高等专科学校 一种检测嗜酸性粒细胞碱性蛋白的胶体金试纸条

Also Published As

Publication number Publication date
CN103558386B (zh) 2017-03-01

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN102279269A (zh) 胱抑素c检测剂盒的制备方法
CN100567324C (zh) 一种微囊藻毒素单克隆抗体及其制备方法与应用
CN102305859B (zh) 检测猪繁殖与呼吸综合征病毒的活毒抗体试剂盒
KR101366353B1 (ko) 인슐린 측정 방법
CN102080066B (zh) 一种检测t-2毒素的方法及其专用试剂盒
CN100465644C (zh) 微囊藻毒素酶联免疫检测试剂盒
CN103558386A (zh) ELISA检测融合蛋白rMBP-NAP的方法
CN109180519B (zh) 一种喹乙醇代谢物抗原、抗体及酶联免疫检测试剂盒与检测方法
CN104483477A (zh) 偶联免疫磁珠的肌钙蛋白诊断试纸条的制备方法
CN100465645C (zh) 一种微囊藻毒素酶联免疫检测试剂盒
CN110045130B (zh) 一种与IgA肾病相关的多肽的免疫分析检测试剂盒
CN102305856A (zh) 肺炎支原体IgM抗体胶体金法检测试剂盒及其制备方法
WO2018227643A1 (zh) 一种用于脂肪性肝炎检测的靶标志物gp73及检测应用方法
CN101819203A (zh) 一种检测相思子毒素的化学发光试剂盒及其制备方法
CN102520177A (zh) 定量检测玉米赤霉烯酮的方法
CN102520179A (zh) 定量检测伏马毒素b1的方法
CN102749446A (zh) 一种肺炎衣原体IgM抗体胶体金法检测试剂盒及其制备方法
CN101413959A (zh) 组氨酸标签蛋白或含组氨酸标签的融合蛋白的免疫学定量检测方法
EP3537152B1 (en) Immunoassay method for determining renin concentration
US10295534B2 (en) Method for measuring anti-drug antibody
CN113832132B (zh) 一种烙铁头svmp蛋白特异性短肽、抗烙铁头svmp蛋白抗体和蛇伤检测试剂盒
CN101571549B (zh) Vero细胞HCP检测试剂盒及其应用
CN104749371A (zh) 人肾母细胞瘤过度表达基因编码蛋白酶联免疫试剂盒
CN102809658A (zh) 一种维生素b2的酶联免疫检测试剂盒
KR20060027404A (ko) 사료 효소 검출 시약, 방법 및 키트

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant
CF01 Termination of patent right due to non-payment of annual fee

Granted publication date: 20170301

Termination date: 20190822

CF01 Termination of patent right due to non-payment of annual fee