CN103468738B - 一种利用转基因植物提高对多环芳烃降解能力的方法 - Google Patents

Abstract

本发明公开了一种利用转基因植物提高对多环芳烃降解能力的方法，具体过程是：利用改造的P450单加氧酶基因和合成的葡萄谷胱甘肽转硫酶（GST）基因来构建二价基因植物表达载体，然后将二价基因表达载体通过农杆菌介导转化到植物中。利用本发明，使获得的转基因植物对多环芳烃的耐受性和降解能力提高，种植这种转基因植物有利于修复被多环芳烃污染的土壤环境。

Description

一种利用转基因植物提高对多环芳烃降解能力的方法

技术领域

本发明属于环境科学领域，具体涉及一种利用转基因植物提高对多环芳烃降解能力的方法。

背景技术

多环芳烃（PAHs）及其衍生物是一类广泛存在于环境中的有机污染物。多环芳烃含有两个或两个以上苯环的碳氢化合物，可分为芳香稠环和非芳香稠环型，环境污染研究中的多环芳烃一般是指芳香稠环型，其中16种多环芳烃化合物已被美国环保局列入优先控制的污染物黑名单。多环芳烃大多是石油、煤等化石燃料以及木材、天然气、有机高分子化合物、纸张、作物秸秆、烟草等含碳氢化合物的物质经不完全燃烧或在还原性气氛中经热分解而生成的，PAHs环数相对丰度可以反映来自热解或石油类污染，通常4环及4环以上PAHs主要来源于化石燃料高温燃烧，而2环和3环PAHs则来源于石油类污染。一般而言2-3环的低分子量PAHs具有显著的急性毒性，而某些高分子量的PAHs则具有潜在的致癌性，有很强的致畸、致癌、致突变作用。多环芳烃化合物由于水溶性差，辛醇-水分配系数高，常被吸附于土壤颗粒上。因此，该类化合物易于从水中分配到生物体内，沉积层中土壤就成为PAHs的主要载体。多环芳烃在环境中不断积累，其半衰期少则2个月、多则几年。多环芳烃进入土壤后，由土壤表面污染进一步导致下层土壤污染，甚至地下水污染。

利用植物治理土壤多环芳烃污染是一类节能且对环境相对安全的方法。和微生物修复相比，植物修复更适应原地修复，它具有修复面积大、投资少、不破环场地结构、不引起地下水二次污染等优点，在对重金属和有机污染物的处理中已显示明显的有效性，有的已经达到野外应用的水平。但是由于植物对多环芳烃的羟化作用较弱，因此对于多环芳烃的降解能力较低。

本发明通过将动物的细胞色素氧化酶基因转化到植物中，来加快被吸收到植物体内的多环芳烃的氧化解环。同时将谷胱甘肽转硫酶基因转化到植物中，将多环芳烃的氧化产物安全转移到细胞器中，进一步分解，降低多环芳烃的氧化产物对植物细胞的毒害作用，通过培育环境友好型转基因植物，提高植物对PAHs的修复能力。

细胞色素P450是一类以血红素为辅基的B族细胞色素超家族蛋白酶。P450是一种末端加氧酶，从NAD(P)H获得电子后，催化单加氧反应。P450能够在生物体内催化多种内源性物质的生物合成，还参与许多外源性难降解有机物的生物氧化和降解。

P450在原核和真核生物中广泛存在。真核生物中的P450为膜结合状态，原核生物中的P450为游离状态，为一种可溶性蛋白。Fowler（JournaloftheChemicalSociety,ChemicalCommunications.1994,2761–2762）和Stevenson（JournaloftheAmericanChemicalSociety,1996，118,12846-12847）发现P450cam的底物结合部位中酪氨酸Y96突变可以改变其底物的特异性。Y96A突变体能够氧化不被天然P450酶氧化的物质二苯基甲烷，Y96A突变体的底物结合部位具有更大的空间，表示它对底物的要求可能具有更大的可塑性。Y96F突变体使原来底物樟脑的氧化区域和立体选择性发生了变化，但是提高了多环芳烃萘和芘氧化区域专一性，1位和2位萘酚的比例达到93：3。另一个位点F87参与了蛋白质与底物的结合，F87A（L）与Y96F双突变体促使P450cam提高了多环芳烃菲、芘和苯并芘的氧化效率。P450BM-3在ω1和ω3位催化C12-C20饱和或不饱和脂肪酸的氧化。对枯草杆菌（Bacillusmegaterium）的P450BM-3中底物结合位点R47L/Y51F进行双突变，使该区域疏水性加强后，对多环芳烃的氧化活性提高了40倍；将3个位点A74G/F87V/L188Q进行突变，对多环芳烃萘、芴、二氢苊和苊的氧化活性分别提高到160、53、109和287/min，底物的氧化速率比野生型P450BM-3提高了数百倍（Li等AppliedBiochemistryandBiotechnology2008，144，27-36）。P450BM-3能在大肠杆菌中高效表达，并具有结构稳定性，因此，该基因被认为最适应用于构建多环芳烃氧化的工程菌株。最近，Brezna等又从分枝杆菌（MycobacteriumvanbaaleniiPYR-1）中克隆获得了3个P450基因cyp151（pipA）、cyp150和cyp51，将这些基因在大肠杆菌中表达后，能够有效地分解二苯并噻吩、7-甲基苯并[α]蒽和芘。表明P450在很多细菌中参与了多环芳烃的代谢（AppliedMicrobiologyandBiotechnology2006，71，522-532）。哺乳动物细胞色素P450单加氧酶在肝脏解毒中作用巨大，将这些基因转化到植物中能降解很多有机污染物。研究发现人P450单加氧酶CYP1A1能够有效地氧化苯并[a]芘等高分子量PAHs，因此根据Gleba等人的方法，用分泌性信号肽使该基因在植物中大量表达后，分泌到根表面及土壤中，使根系周围PAHs羟化，从而提高植物对高分子量PAHs吸收效率（ProceedingsoftheNationalAcademyofSciences1999，96，5973-5977）。

谷胱甘肽转硫酶（GIutathioneS-tranSferaSeS，简称GSTS，EC2.5.1.18）是广泛分布于哺乳动物、植物、鸟类、昆虫、寄生虫及微生物体内的一组多功能同工酶，其主要功能是催化某些内源性或外来有害物质的亲电子基团与还原型谷胱甘肽的巯基偶联，增加其疏水性使其易于穿越细胞膜，分解后排出体外，从而达到解毒的目的。亲电子类物质包括过氧化物、不饱和醛酮、烷基或芳香基化合物。GSTS的普遍底物是2，4-二硝基氯苯（CDNB），GSTS的催化机理是促使GSH与CDNB结合生成S-2，4-二硝基苯谷胱甘肽。

发明内容

本发明的目的在于提供一种利用转基因植物提高对多环芳烃降解能力的方法，该方法通过将人的P450单加氧酶基因与葡萄GST基因转化到植物中，拓宽植物修复多环芳烃污染土壤的范围，加快吸收效率。

为达到上述目的，本发明的技术方案是：

一种利用转基因植物提高对多环芳烃降解能力的方法：将改造的P450单加氧酶基因和葡萄谷胱甘肽转硫酶（GST）基因构建二价基因植物表达载体；将所述构建的二价基因植物表达载体通过农杆菌介导转化到植物中。

优选地，所述P450单加氧酶基因来源于人肝。

优选地，所述P450单加氧酶基因的改造方法是：通过定点突变方法消除P450单加氧酶（cyp1A1）基因的129位NcoI切点和1436位EcoRI切点。

优选地，所述葡萄谷胱甘肽转硫酶（GST）基因按植物偏爱密码通过合成方法获得。

优选地，利用口蹄疫病毒2A区编码序列将所述P450单加氧酶基因和葡萄谷胱甘肽转硫酶（GST）基因串联在一起。

所述P450单加氧酶基因和葡萄谷胱甘肽转硫酶（GST）基因构建二价基因植物表达载体的方法为：通过T4DNA连接酶将两个基因与含有双35S启动子和Nos终止子的pYPX245（GenbankAY178049.1）质粒连接；酶切鉴定和序列测定表明获得了P450单加氧酶基因和葡萄谷胱甘肽转硫酶（GST）基因植物表达单元；将两个表达单元酶切后依次插入pCAMBIA1301植物表达载体，构建二价基因植物表达载体pCYPGST。

所述构建的二价基因植物表达载体pCYPGST通过电击法导入到根癌农杆菌中，所述根癌农杆菌优选为EHA105或LBA4404或GV3101。

优选地，通过所述根癌农杆菌将构建的二价基因植物表达载体pCYPUGT转化到拟南芥和水稻中。

本发明的有益效果如下：

1.当植物中转化了P450单加氧酶基因（cyp1A1）和葡萄谷胱甘肽转硫酶（GST）基因的表达载体后，通过表达产生的P450单加氧酶将多环芳烃氧化；氧化产物再通过与谷胱甘肽转硫酶（GST）结合，转移到细胞外或细胞器中，从而降低了多环芳烃氧化产物对细胞的毒害。

2.通过本发明构建的转基因植物对于菲或芘的耐受性和降解能力有显著提高。

3.该套体系能在植物中安全高效表达，对环境影响较小。

4.利用该套体系获得的转基因植物能够有效修复被多环芳烃污染的土壤环境。

附图说明

图1为本发明实施例中构建的P450单加氧酶基因（cyp1A1）和谷胱甘肽转硫酶（GST）基因双价基因植物表达载体。

具体实施方式

以下实施例中涉及的构建二价基因植物表达载体pCYPGST，其具体的构建方法如下：

1、构建改造的P450单加氧酶基因（cyp1A1）

从人肝中克隆P450单加氧酶基因并利用定点突变方法将129位NcoI切点，1436位EcoRI切点消除。

129位NcoI切点突变引物：129Z：AGGGCCTTGGGGCTGGCCTCTGATTGG（SEQIDNO.1所示）；129FCCAATCAGAGGCCAGCCCCAAGGCCCT（SEQIDNO.2所示）。

1436位EcoRI切点突变引物：1436Z：ACGGGTGGAGTTCAGCGTGCCACTGG（SEQIDNO.3所示）；1436F：CCAGTGGCACGCTGAACTCCACCCGT（SEQIDNO.4所示）。

人肝总RNA，cDNA合成试剂盒为Clontech公司产品；DNA柱回收试剂盒购置Amersham公司；试剂RNA抽提试剂盒RNeasyPlantMiniKit为QIAGEN公司产品；各种限制性内切酶和T4DNALigase均购自上海Takara公司。总RNA采用QIAGEN公司的RNeasyPlantMiniKit提取。

取约50μl人肝总RNA进行cDNA合成，cDNA的合成按Clontech公司SMARTcDNALibraryConstructionKit说明书操作进行第一链合成。

以合成的cDNA第一链为模板，以此cyp101Z：AAGGATCCATGCTTTTCCCAATCTCCATG（SEQIDNO.5所示）和cyp101F：AAGAGCTCCTAAGAGCGCAGCTGCATTTGGAAGTG（SEQIDNO.6所示）为引物，利用PCR进行cDNA扩增，扩增条件为：94℃预热1min；94℃，30s，60℃，30s，72℃，3min。共25个循环。PCR结束后，采用酚：氯仿抽提，再加入2倍体积的无水乙醇进行沉淀。沉淀用30μl水溶解，取1μl为模板，以引物cyp101Z和129F；129Z和1436F；1436Z和cyp101F进行PCR扩增，扩增条件为：94℃预热1min；94℃，30s，60℃，30s，72℃，1min。共25个循环，PCR结束后，DNA片断用10%丙烯酰胺胶回收，将上述3个回收片断取10-100ng为模板混合，以cyp101Z和cyp101F为引物将上述片断拼接，扩增条件为：94℃预热1min；94℃，30s，60℃，30s，72℃，4min。共25个循环。

PCR结束后，酚：氯仿抽提，再加入2倍体积的无水乙醇进行沉淀。各加入SacI和BamHI酶切消化，DNA柱回收酶切片断。将酶切处理好片段进行定向克隆，获得质粒T1，并将质粒T1高效转化到大肠杆菌DH5α感受态细胞中。

2、合成葡萄谷胱甘肽转硫酶（GST）基因

以基因合成方法（NucleicAcidsResearch,2004,32,e98）合成葡萄谷胱甘肽转硫酶（GST）基因。

设计的引物为：

VvGST1：ATGAACACCTTGACTCTGAAGTTCCCATACAATCTGCATCCAAACTCCCTGAACTACTCC（SEQIDNO.7所示）

VvGST2：AGGAGGAGGACTTGTTTGGGAACTTTGGAGAGATGTTGGTGGAGTAGTTCAGGGAGTTTG（SEQIDNO.8所示）

VvGST3：CCCAAACAAGTCCTCCTCCTTCCACCCACTGTTCTCCAACTCCAAGGGTAACATCTCTCC（SEQIDNO.9所示）

VvGST4：AAGGACCTCTTCAGCAGAGGTGACAGCCATAGATGCCAGTGGAGAGATGTTACCCTTGGA（SEQIDNO.10所示）

VvGST5：CCTCTGCTGAAGAGGTCCTTCCACCATCTCTGGACTCCACCTCTGAACCACCACCACTGT（SEQIDNO.11所示）

VvGST6：GGACAGATGTAGGAGGTGTACAGACGAGTAGTACCATCGAAAGGACCTCTTCAGCAGAGG（SEQIDNO.12所示）

VvGST7：CCTCTGCTGAAGAGGTCCTTATACGCACAGCGTGTCTGGATTGCTCGTAACTACAAGGGT（SEQIDNO.13所示）

VvGST8：TACCAAGATCGATTGGAACCAGTTTGATCTTGTCCTGAAGACCCTTGTAGTTACGAGCAA（SEQIDNO.14所示）

VvGST9：GGTTCCAATCGATCTTGGTAATCGTCCTGCTTGGTACAAGGAGAAAGTCTATCCAGAGAA（SEQIDNO.15所示）

VvGST10：ACCAGTGACTTTGTTGTTGTGCTCCAGAGATGGGACCTTGTTCTCTGGATAGACTTTCTC（SEQIDNO.16所示）

VvGST11：ACAACAACAAAGTCACTGGTGAATCCCTGGACCTGATCAAGTACATCGACTCCCACTTCG（SEQIDNO.17所示）

VvGST12：TGACGCTTGTTTGGATCATCAGGGTACAGAGATGGACCTTCGAAGTGGGAGTCGATGTAC（SEQIDNO.18所示）

VvGST13：GATGATCCAAACAAGCGTCAGTTCGCTGAAGAGCTGCTGTCCTACACCTACACCTTCAAT（SEQIDNO.19所示）

VvGST14：CGTTCTGAGAGTCACCCTTCAGGGAGAAGATGACAGCACGATTGAAGGTGTAGGTGTAGG（SEQIDNO.20所示）

VvGST15：GAAGGGTGACTCTCAGAACGAGATCAATGCTGCCTTCGACTACCTGGAAACTGCACTGTC（SEQIDNO.21所示）

VvGST16：AGAGAACTGACCCAGGAAGAATGGACCATCGTTGAACTTGGACAGTGCAGTTTCCAGGTA（SEQIDNO.22所示）

VvGST17：TCTTCCTGGGTCAGTTCTCTCTGGTTGACATCGCATTCGCACCATTCATCGAACGTTTCC（SEQIDNO.23所示）

VvGST18：GAGGTGATGTCACACTTCTTGACATCCAGCAGCAGTGGATGGAAACGTTCGATGAATGGT（SEQIDNO.24所示）

VvGST19：AAGAAGTGTGACATCACCTCTGGACGTCCAAAGCTGGTCTCTTGGATCGAGGAGATGAAC（SEQIDNO.25所示）

VvGST20：CCTGTGGATCACGTTTGGTCTGTTTGTATGCCTCGATCTTGTTCATCTCCTCGATCCAAG（SEQIDNO.26所示）

VvGST21：GACCAAACGTGATCCACAGGAGCTTGTTGATGCACTGAAGAAGCGTTTCATGGCAAACGA（SEQIDNO.27所示）

VvGST22：GAGCTCTTAGAATTCGTTTGCCATGAAACGCTTCTTC（SEQIDNO.28所示）

利用PCR进行葡萄谷胱甘肽转硫酶（GST）基因合成，在100μl反应体系中，VvGST2-VvGST21共20个引物的添加量为2ng，外侧引物VvGST1和VvGST22添加量为30ng，扩增条件为：94℃，预热1min；94℃，30s，50℃，30s，72℃，10min，使用的TaqDNA聚合酶为KODFXtaq酶（Toyobo公司，日本），共25个循环。PCR产物通过1%琼脂糖胶回收，取10μl直接与T/A克隆载体相连（大连宝生物公司）。4℃连接过夜，获得质粒T2，将质粒T2高效转化到大肠杆菌DH5α感受态细胞中。获得阳性克隆，测定葡萄谷胱甘肽转硫酶的基因序列（SEQIDNO.29所示）。

3、构建P450单加氧酶基因和葡萄谷胱甘肽转硫酶（GST）基因二价基因植物表达载体

构建含有改造过的人P450单加氧酶基因片段和合成葡萄谷胱甘肽转硫酶（GST）基因的融合基因CYPGST，在两个基因的连接处引入了口蹄疫病毒（foot-and-mouthdiseasevirus，FMDV）的由20个氨基酸组成的2A寡肽序列（2Aoligopeptide）的编码基因：CAACTTCTCAACTTCGACCTTCTCAAACTTGCTGGTGATGTCGAATCCAACCCTGGTCCTA（SEQIDNO.30所示）。两个基因拼接的引物为：CYPGST1：ATCACCAGCAAGTTTGAGAAGGTCGAAGTTGAGAAGTTGCTAAGAGCGCAGCTGCATTTG（SEQIDNO.31所示）；CYPGST2：TTCTCAAACTTGCTGGTGATGTCGAATCCAACCCTGGTCCTAATGAACACCTTGACTCTG（SEQIDNO.32所示）。利用PCR进行P450单加氧酶基因和葡萄谷胱甘肽转硫酶基因的融合，先用cyp101Z和CYPGST1；CYPGST2和VvGST22两对引物进行PCR扩增，扩增条件为：94℃预热1min；94℃，30s，50℃，30s，72℃，10min，使用的TaqDNA聚合酶为KODFXtaq酶（Toyobo公司，日本），共25个循环。PCR产物通过10%聚丙烯酰胺胶回收，各取1μl的PCR回收产物作为模板，以cyp101Z和VvGST22引物进行PCR扩增，扩增产物通过1%琼脂糖电泳回收，回收产物直接与T/A克隆载体相连（大连宝生物公司）。4℃连接过夜，获得质粒T3，将质粒T3高效转化到大肠杆菌DH5α感受态细胞中，获得阳性克隆。

将前述获得的质粒T3分别用BamHI和SacI进行双酶切，回收DNA片段，通过T4DNA连接酶将两个目的片段与含有双35S启动子和NOS终止子的pYPX245（GenbankAY178049.1）质粒连接，酶切鉴定和序列测定表明获得了含有P450单加氧酶基因和葡萄谷胱甘肽转硫酶基因的植物表达单元。将两个表达单元酶切后依次插入pCAMBIA1301植物表达载体，构建二价基因植物表达载体pCYPGST。该表达载体还包含GUS报告基因和带内含子卡那霉素抗性标记基因。

实施例1，转基因的拟南芥对菲和芘耐受性和降解能力的影响

1)农杆菌感受态细胞制备

农杆菌菌株为根癌农杆菌EHA105，或LBA4404，或GV3101菌株（BiovectorCo.,LTD）。挑取单菌在25mlYEB培养基（添加50mg/l利福平）培养过夜，取5ml菌液转接到100mlYEB培养基（添加50mg/l利福平），培养至OD600=0.7-0.8，菌液冰上放置10分钟，5000rpm离心10min，4℃，收集菌体，加入100ml无菌双蒸水清洗两次。加入4ml10%甘油悬浮菌体，转到50ml离心管。5500rpm离心10min，4℃。收集菌体，加入500μl10%甘油悬浮菌体，转到1.5ml离心管。

2）二价基因植物表达载体pCYPGST经电击法导人农杆菌中

取70μl农杆菌感受态细胞，加入1μl表达载体pCYPGST。混匀，转到0.1cm电击杯中。电击参数：200Ω，1.7KV，2.5F，电击后立即加入800μlSOC培养液。培养1小时后，取100μl涂50μg/L卡那霉素抗性板筛选转化子，28℃培养。

3）拟南芥粘花法转化

将前述步骤2）获得的含有表达载体pCYPGST的农杆菌菌株单菌落接菌在5毫升含对应卡那霉素抗生素的LB培养基中28℃培养2天。将5毫升菌液转到500毫升的液体LB培养基中28℃培养16-24小时（OD=1.5-2.0）。液体可以在4℃保存30天。室温下离心收集菌体，4000g离心10分钟。用等体积5%的新鲜蔗糖溶液悬浮。加入0.02%的Silwet-77混匀后转移到烧杯中。每个菌株用300毫升转化，转2-3钵。隔7天后再转化1次。转化操作中将拟南芥倒置后浸入菌液中10秒钟。莲座和花序都要侵染。侵染后将转化植株菌液空干3-5秒。用保鲜膜将转化植株圈好，平放16-24小时。转化后不要放置在高温和强光下。揭开保鲜膜，保持一定湿度，再生长1个月后收种子。利用50μg/mL潮霉素进行转化植株筛选。

4）验证转基因拟南芥具有P450单加氧酶基因和葡萄谷胱甘肽转硫酶（GST）基因的表达产物。

抽提转基因拟南芥总RNA，将拟南芥幼苗液氮冷冻后抽提总RNA，RNA抽提试剂盒RNeasyPlantMiniKit为QIAGEN公司产品；利用Clontech公司cDNA合成试剂盒合成cDNA第一链；DNA柱回收试剂盒购置Amersham公司；各种限制性内切酶和T4DNALigase均购自上海Takara公司。总RNA采用QIAGEN公司的RNeasyPlantMiniKit提取。

取约50μl拟南芥总RNA进行cDNA合成，按Clontech公司cDNA合成说明书操作进行第一链合成。

取1μlcDNA合成产物检测P450单加氧酶基因和葡萄谷胱甘肽转硫酶（GST）基因的表达。P450单加氧酶基因表达检测引物为：CYP1：ACCAGTGGCAGATCAACCATG（SEQIDNO.33所示）；CYP2：CTAAGAGCGCAGCTGCATTTG（SEQIDNO.34所示）。葡萄谷胱甘肽转硫酶（GST）基因检测引物为：GST1：GAAGACCAGGAGGCTGCTA（SEQIDNO.35所示）；GST2：GATACCGAACTTCTTACGCA（SEQIDNO.36所示）。PCR扩增条件为：94℃，预热1min；94℃，30s，50℃，30s，72℃，30s,扩增25循环，能在转基因植物中检测到约300bp条带，而野生型拟南芥没有，表明两个基因能够转录表达。

5）转基因拟南芥对多环芳烃的耐受性和降解

将转基因拟南芥自交纯合3代，获得纯合转化株，收取种子。播种后，移栽到含有0.2mM芘或0.5mM菲的基本培养基中，培养3周，观察植物的生长情况。收集所有的培养基，用60mL1：1的丙酮和正己烷溶液分3次萃取，每次20mL并在超声水浴中超声萃取30分钟，然后将萃取液收集，利用旋转蒸发仪浓缩至干，加入2mL甲醇溶解。将抽提液进行HPLC分析，流动相为甲醇-水，流速为1mL/min，柱温30℃，进样量为40μL，在此条件下所得菲和芘的色谱图清晰。

色谱图结果表明：

转基因拟南芥培养3周后降解培养基中的菲为35.4-42.9%，而野生型拟南芥对照只有11.2%。转基因拟南芥培养3周后降解培养基中的芘为33.5-39.8%，而野生型拟南芥对照只有20%。

实施例2，转基因水稻对菲和芘降解能力的影响

1）农杆菌介导转化水稻

利用实施例1中步骤2）获得的含有表达载体pCYPGST的农杆菌菌株对水稻愈伤组织进行转化。N6培养基为基本培养基，去壳的水稻种子，授粉后12-15天的幼胚，经表面消毒后接种到N6D2培养基中诱导愈伤组织（N6培养基，水解乳蛋白500mg/L，蔗糖30g/L，2,4-D2mg/L，植物凝胶2.5g/L，pH5.8）；培养4-7天后取愈伤组织进行转化。含有表达载体pCYPGST的农杆菌培养OD0.8-1.0后，5000g离心8分钟，重整水清洗一次，等体积MS培养液悬浮侵染8分钟后，吸干放置在MSO+NAA1+BA2的培养基中，22℃共培养3天。然后转入筛选培养基（加入头孢Cb(500ug/ml)和潮霉素HAT(50ug/ml)，转化后的愈伤组织在含有潮霉素HAT(50ug/ml)抗性培养基上培养3～4代，转入分化培养基中（2mg／LKT）；幼芽长至2mm转移到生根培养基（1／2MS+0.5mg／LIBA）。以上培养基中分别加入500mg／L酶水解乳蛋白(CH)，0～700mg／L谷氨酰胺或精氨酸，蔗糖30～80g／L，琼脂6g/L，pH5.8。继代周期为25d。将淡黄色的胚性愈伤组织转入分化培养基中，30d左右分化出芽。光照强度1500～2000lx，12～14h／d。

从获得的抗性植株中取一部分叶子，侵入含有X-GLUC的染色液中，筛选叶片变蓝的转基因植株进行分子检测，提取叶片总DNA，参照《分子克隆》的方法，以人单加氧酶基因CYP1A1基因和葡萄谷胱甘肽转硫酶（GST）基因为模板设计专有引物对转基因植株进行PCR检测，扩增条件为：94℃预热1min；94℃，30s，60℃，30s，72℃，4min。共25个循环。从分子水平上证明目的基因是否导入。

2）验证转基因水稻具有P450单加氧酶基因和葡萄谷胱甘肽转硫酶（GST）基因的表达产物。

抽提转基因水稻总RNA，将水稻幼苗液氮冷冻后抽提总RNA，RNA抽提试剂盒RNeasyPlantMiniKit为QIAGEN公司产品；利用Clontech公司cDNA合成试剂盒合成cDNA第一链；DNA柱回收试剂盒购置Amersham公司；各种限制性内切酶和T4DNALigase均购自上海Takara公司。总RNA采用QIAGEN公司的RNeasyPlantMiniKit提取。

取约50μl拟南芥总RNA进行cDNA合成，按Clontech公司cDNA合成说明书操作进行第一链合成。

取1μlcDNA合成产物检测P450单加氧酶基因和葡萄谷胱甘肽转硫酶（GST）基因的表达。P450单加氧酶基因表达检测引物为：CYP1：ACCAGTGGCAGATCAACCATG（SEQIDNO.33所示）；CYP2：CTAAGAGCGCAGCTGCATTTG（SEQIDNO.34所示）。葡萄谷胱甘肽转硫酶（GST）基因检测引物为：GST1：GAAGACCAGGAGGCTGCTA（SEQIDNO.35所示）；GST2：GATACCGAACTTCTTACGCA（SEQIDNO.36。

Claims (6)

1.一种利用转基因植物提高对多环芳烃降解能力的方法，包括如下步骤:

步骤1，将改造的P450单加氧酶基因和葡萄谷胱甘肽转硫酶基因构建二价基因植物表达载体；

步骤2，将所述构建的二价基因植物表达载体通过农杆菌介导转化到植物中；

其中，所述P450单加氧酶基因为cyp1A1基因，所述葡萄谷胱甘肽转硫酶基因序列如SEQIDNO.29所示；

所述P450单加氧酶基因的改造方法是，将人P450单加氧酶基因的129位核苷酸序列A突变为T，第1437位核苷酸序列A突变为G。

2.如权利要求1所述的利用转基因植物提高对多环芳烃降解能力的方法，其特征在于：所述葡萄谷胱甘肽转硫酶基因按植物偏爱密码通过合成方法获得。

3.如权利要求1所述的利用转基因植物提高对多环芳烃降解能力的方法，其特征在于：利用口蹄疫病毒2A区编码序列将所述P450单加氧酶基因和葡萄谷胱甘肽转硫酶基因串联。

4.如权利要求1所述的利用转基因植物提高对多环芳烃降解能力的方法，其特征在于：所述农杆菌为根癌农杆菌EHA105或根癌农杆菌LBA4404或根癌农杆菌GV3101。

5.如权利要求1所述的利用转基因植物提高对多环芳烃降解能力的方法，其特征在于：所述多环芳烃为菲、芘。

6.如权利要求1所述的利用转基因植物提高对多环芳烃降解能力的方法，其特征在于：所述植物为拟南芥、水稻。