CN103361394B - 利用微生物转化制备9α-羟基-雄烯二酮的方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种利用微生物转化制备9α‑羟基‑雄烯二酮的方法,包括:1)将红平红球菌作为生产菌种,并接种于种子培养基中,培养,得种子;2)将种子接种于转化培养基中,培养,得发酵液;3)在发酵液中投入雄烯二酮溶液,继续培养,得到转化液,并检测转化液中的9α‑羟基‑雄烯二酮含量;4)分离和提取转化液中的9α‑羟基‑雄烯二酮。本发明的方法具有高效专一、环保、投料浓度高、转化率高、产物纯度高、收率高、成本低等优点,而且整个制备过程简单,经济实用,具有广泛的应用前景,而且对于扩展甾体原料药物雄烯二酮的用途有着非常重要的意义。
Description
技术领域
本发明涉及一种制备9α-羟基-雄烯二酮的方法,特别是涉及一种利用微生物转化制备9α-羟基-雄烯二酮的方法。
背景技术
9α-羟基-雄烯二酮(9α-OH-AD)是一种抗动情甾体工业化生产中的关键中间产物,在甾体工业化生产中起着重要作用。利用9α-羟基-雄烯二酮作为前体物可以合成氢化可的松、17α-OH黄体酮、依普利酮、β米松、地塞米松、可的松、氟美松、氟孕酮、氟氢松、特美肤、曲安西龙等多做种重要的甾体原料药,具有重要的商业价值。制备9α-羟基-雄烯二酮的关键是在雄烯二酮第9位健上加一个羟基。目前,国内外大多采用化学合成法,但是化学合成法不仅合成步骤多、收率低,而且生产过程中需要用到多种有毒化学试剂,环境污染非常严重。
3-甾酮-9α羟基化酶是甾体微生物代谢的一个关键酶,该酶在微生物中广泛存在,例如:红球菌属Rhodococcus、诺卡氏菌属Nocardia、节杆菌属Arthrobacte、分枝杆菌属Mycobacterium。3-甾酮-9α羟基化酶负责在甾体的多元环的第九位上引入一个9α羟基。因此,利用具有9α羟基化酶活性的微生物转化雄烯二酮为9α-羟基-雄烯二酮已成为近年来人们研究的热点。Mutafov及同事研究了具有9α羟基化酶活性的红球菌(Rhodococcus sp.)菌株转化雄烯二酮生成9α-羟基-雄烯二酮的能力,发现其转化率仅为25%左右【Process Biochemistry32(7),585-589(1997)】;Kieslich等研究了利用Corynespora cassicola菌转化雄烯二酮为9α-羟基-雄烯二酮的方法,虽然其转化率提高到80%左右,但是其底物投料浓度不到1%(参考美国专利4237220A);Marsheck等对Nocardia canicruria转化雄烯二酮为9α-羟基-雄烯二酮也进行了报道,其转化效率可达90%左右,但是其投料浓度也非常低,不到1%(参考美国专利4397947A)。
综上所述,利用微生物法转化雄烯二酮为9α-羟基-雄烯二酮所面临的主要问题是底物投料浓度低、生物转化效率低、产物总收率小、生产成本高等一系列问题。因此,开发一种简单高效、经济实用的9α-羟基-雄烯二酮的制备方法是当务之急。
发明内容
本发明要解决的技术问题是提供一种利用微生物转化制备9α-羟基-雄烯二酮的方法。通过该方法,能克服现有技术中的投料浓度低、转化时间长、生产成本高等缺点。
为解决上述技术问题,本发明的利用微生物转化制备9α-羟基-雄烯二酮的方法,包括步骤:
1)一级种子培养
将红平红球菌(Rhodococcus erythropolis)作为生产菌种,并接种于含碳源和氮源的种子培养基中,在150~350rpm转速下,26~35℃培养12~30h,得适于接种的种子;
2)二级发酵培养
将步骤1)所得种子接种于转化培养基中,在150~350rpm转速下,26~35℃培养12~30h,得发酵液;
3)底物雄烯二酮转化
在步骤2)所得的发酵液中投入雄烯二酮溶液,继续在150~350rpm转速下,26~35℃培养48~96h,得到转化液,并检测转化液中的9α-羟基-雄烯二酮含量;
4)分离和提取步骤3)所得的转化液中的9α-羟基-雄烯二酮。
所述步骤1)中,红平红球菌为红平红球菌ATCC14887;含碳源和氮源的种子培养基中,碳源选自葡萄糖、麦芽糖、甘油、可溶性淀粉或它们的组合,碳源的含量为0.5g/100mL~3g/100mL;氮源选自酵母膏、蛋白胨、玉米浆、大豆粉、蚕蛹粉或它们的组合,氮源的含量为1g/100mL~6g/100mL;种子培养基的pH优选范围为pH7.0~7.2。
所述步骤2)中,接种量为5~8vol%(体积百分比);转化培养基的组分包括:碳源、氮源、无机盐和水;其中,碳源选自葡萄糖、麦芽糖、甘油、可溶性淀粉或它们的组合;碳源的含量为0.5g/100mL~3g/100mL;氮源选自酵母膏、蛋白胨、玉米浆、大豆粉、蚕蛹粉或它们的组合;氮源的含量为1g/100mL~6g/100mL;无机盐选自镁盐、磷酸盐、钠盐或它们的组合;无机盐的含量为0.001g/100mL~0.1g/100mL;镁盐包括:硫酸镁和氯化镁;磷酸盐包括:磷酸二氢钾、磷酸氢二钾、磷酸二氢钠和磷酸氢二钠;钠盐包括:氯化钠和硝酸钠。优选的转化培养基的配方为:水、葡萄糖0.5g/100mL~1.5g/100mL、蛋白胨0.2g/100mL~1g/100mL、玉米浆2.5g/100mL~5.0g/100mL、磷酸二氢钾0.02g/100mL~0.08g/100mL和硫酸镁0.01g/100mL~0.05g/100mL,pH为6.8~7.5。
所述步骤3)中,雄烯二酮溶液中的第一溶剂选自甲醇、DMSO(二甲基亚砜)、DMF(二甲基甲酰胺)或它们的组合;雄烯二酮的投入量为2.0~4.5%(即20~45g/L发酵液);雄烯二酮溶液的投入方法为:用溶剂将雄烯二酮在80~90℃溶解后,在无菌条件下,投入至发酵液中;检测转化液中的9α-羟基-雄烯二酮含量的方法包括:通过薄层层析或高效液相色谱进行检测;另外,本步骤中,可以雄烯二酮转化成9α-羟基-雄烯二酮的转化率达到90%以上时作为转化终点。
所述步骤4)的具体步骤包括:
A、产品粗提
转化结束后,将转化液减压过滤,滤饼加入第二溶剂,加热回流至澄清;然后,过滤,保留滤液;
其中,第二溶剂包括:甲醇、丙酮、乙酸乙酯、氯仿、二氯甲烷或甲基异丁酮等;
另外,本步骤中的滤饼还能重复加入第二溶剂,以获得滤液,即滤饼还可重复以上步骤至滤液中基本没有产物,合并滤液备用;
B、脱色、结晶
在步骤A所得滤液中,加入相当于投料底物雄烯二酮10wt~15wt%(质量百分数)的活性碳,在55~105℃下搅拌脱色1~2h后,降至室温,过滤去除活性炭,得第一滤液,并用第二溶剂洗涤滤饼,得第二滤液(含第二溶剂的洗涤溶液),将第一滤液与第二滤液合并,然后,在40~60℃下减压浓缩、析晶、过滤、烘干,得9α-羟基-雄烯二酮(白色结晶产品)。
本发明中,底物雄烯二酮转化为9α-羟基-雄烯二酮的反应式如下:
本发明通过优化转化培养基成分及其他微生物转化参数,并通过底物雄烯二酮溶清投料方式,建了一种微生物转化制备雄烯二酮为9α-羟基-雄烯二酮的工艺方法。本发明的方法具有高效专一、环保、投料浓度高、转化率高(如90%以上)、产物9α-羟基-雄烯二酮的纯度高(如97%以上)、收率高、成本低等优点,而且整个制备过程简单(工艺简单),经济实用,具有广泛的应用前景,而且对于扩展甾体原料药物雄烯二酮的用途有着非常重要的意义。
具体实施方式
以下采用的试剂如未特别说明,均为商业化产品。
另外,以下实施例中涉及转化液中的9α-羟基-雄烯二酮的检测分析方法为HPLC法,其具体检测分析方法如下:
1、样品制备:取转化液1mL,加入等体积乙酸乙酯,震荡均匀后,放置分层。取上层有机相约800μL,用有机膜(0.4μm)过滤后供HPLC检测。
2、色谱条件
1)色谱柱:Inertsil ODS-3,4.6mm×250mm×5μm或等同;
2)流动相:甲醇与水的体积比=70:30
3)检测波长:240nm
4)流速:1.0mL/min
5)柱温:30℃
实施例1
(1)一级种子培养
一级种子培养基:蛋白胨0.5g/100mL,酵母膏1.3g/100mL~1.4g/100mL,葡萄糖1.2g/100mL,水,调pH至7.0-7.2,并灭菌。
取一接种环红平红球菌(Rhodococcus erythropolis)ATCC14887至20mL一级种子培养基中,在旋转式摇床200rpm转速下,30℃培养18h,得适于接种的种子。
(2)二级发酵培养
转化培养基:葡萄糖0.5g/100mL、蛋白胨0.2g/100mL、玉米浆2.5g/100mL、磷酸氢二钾0.02g/100mL、硫酸镁0.01g/100mL、水,初始pH为6.8,并灭菌。
将步骤(1)所得种子5mL接种于95mL转化培养基中【接种量为5%(V/V)】,在200rpm转速下,28℃震荡培养18h,得发酵液。
(3)底物雄烯二酮转化
在80℃下,用3mL甲醇溶清2g雄烯二酮,在无菌条件下,投入步骤(2)所得约100mL发酵液中,继续在200rpm转速下,28℃震荡培养48h,得到转化液。
其中,转化培养结束后,经HPLC测得的雄烯二酮的转化率(雄烯二酮转化为9α-羟基-雄烯二酮)为93.5%。
(4)产物分离提取
转化结束后,将转化液减压过滤,固形物滤饼加入30mL甲醇,80℃加热回流至澄清;然后,趁热过滤,保留滤液;滤饼再加入30mL甲醇重复以上步骤,经过3次甲醇回流萃取后,滤饼中基本没有产物,合并滤液。
在上述滤液中,加入3g活性碳,在60℃下搅拌脱色2h后,温度降至室温后,过滤去除活性炭,用10mL甲醇洗涤滤饼,合并甲醇溶液,然后,在40℃下减压浓缩甲醇、析晶、过滤、烘干,得到1.5g9α-羟基-雄烯二酮产品,经HPLC检测其纯度为97%,产品总收率为75%。
实施例2
(1)一级种子培养
步骤如同实施例1,但培养的条件改为:在旋转式摇床150rpm转速下,35℃培养12h。
(2)二级发酵培养
二级转化培养基:葡萄糖1g/100mL、蛋白胨0.6g/100mL、玉米浆3.5g/100mL、磷酸氢二钾0.06g/100mL、硫酸镁0.03g/100mL、水,初始pH为7.0,并灭菌。
将步骤(1)所得种子5mL接种于95mL转化培养基中【接种量为5%(V/V)】,在250rpm转速下,30℃震荡培养20h,得发酵液。
(3)底物雄烯二酮转化
在90℃下,用3mL甲醇溶清3.5g雄烯二酮,在无菌条件下,投入步骤(2)所得约100mL发酵液中,继续在250rpm转速下,30℃震荡培养56h,得到转化液。
其中,转化培养结束后,经HPLC测得的雄烯二酮的转化率(雄烯二酮转化为9α-羟基-雄烯二酮)为92.2%。
(4)产物分离提取
转化结束后,将转化液减压过滤,固形物滤饼加入30mL甲醇,80℃加热回流至澄清;然后,趁热过滤,保留滤液;滤饼再加入35mL甲醇重复以上步骤,经过3次甲醇回流萃取后,滤饼中基本没有产物,合并滤液。
在上述滤液中,加入4g活性碳,在70℃下搅拌脱色1.5h后,温度降至室温后,过滤去除活性炭,用10mL甲醇洗涤滤饼,合并甲醇溶液;在50℃下减压浓缩甲醇、析晶、过滤、烘干,得到2.74g9α-羟基-雄烯二酮产品,经HPLC检测其纯度为97.4%,产品总收率为78.2%。
实施例3
(1)一级种子培养
步骤如同实施例1,但培养的条件改为:在旋转式摇床180rpm转速下,26℃培养15h。
(2)二级发酵培养
二级转化培养基:葡萄糖1.5g/100mL、蛋白胨1g/100mL、玉米浆5.0g/100mL、磷酸氢二钾0.08g/100mL、硫酸镁0.05g/100mL、水,初始pH为7.5,并灭菌。
将步骤(1)所得种子5mL接种于95mL转化培养基中【接种量为5%(V/V)】,在280rpm转速下,32℃震荡培养16h,得发酵液。
(3)底物雄烯二酮转化
在85℃下,用5mL甲醇溶清4.5g雄烯二酮,在无菌条件下,投入步骤(2)所得约100mL发酵液中,继续在280rpm转速下,32℃震荡培养72h,得到转化液。
其中,转化培养结束后,经HPLC测得的雄烯二酮的转化率(雄烯二酮转化为9α-羟基-雄烯二酮)为90.5%。
(4)产物分离提取
转化结束后,将转化液减压过滤,固形物滤饼加入50mL丙酮,80℃加热回流至澄清;然后,趁热过滤,保留滤液;滤饼再加入50mL丙酮重复以上步骤,经过3次丙酮回流萃取后,滤饼中基本没有产物,合并滤液;
在上述滤液中,加入6g活性碳,在80℃下搅拌脱色2h后,温度降至室温后,过滤去除活性炭,用15mL丙酮洗涤滤饼,合并丙酮溶液;在60℃下减压浓缩丙酮、析晶、过滤、烘干,得到3.5g9α-羟基-雄烯二酮产品,经HPLC检测其纯度为97.8%,产品总收率为77.8%。
Claims (7)
1.一种利用微生物转化制备9α-羟基-雄烯二酮的方法,其特征在于,包括步骤:
1)将红平红球菌作为生产菌种,并接种于含碳源和氮源的种子培养基中,在150~350rpm转速下,26~35℃培养12~30h,得适于接种的种子;
其中,红平红球菌为红平红球菌ATCC 14887;
2)将步骤1)所得种子接种于转化培养基中,在150~350rpm转速下,26~35℃培养12~30h,得发酵液;
所述转化培养基的配方为:水、葡萄糖0.5g/100mL~1.5g/100mL、蛋白胨0.2g/100mL~1g/100mL、玉米浆2.5g/100mL~5.0g/100mL、磷酸二氢钾0.02g/100mL~0.08g/100mL和硫酸镁0.01g/100mL~0.05g/100mL;
3)在步骤2)所得的发酵液中投入雄烯二酮溶液,继续在150~350rpm转速下,26~35℃培养48~96h,得到转化液,并检测转化液中的9α-羟基-雄烯二酮含量;
其中,雄烯二酮溶液中的第一溶剂选自甲醇、二甲基亚砜、二甲基甲酰胺或它们的组合;
雄烯二酮的投入量为20~45g/L发酵液;
4)分离和提取步骤3)所得的转化液中的9α-羟基-雄烯二酮;
其中,步骤4)的具体步骤包括:
A、转化结束后,将转化液减压过滤,滤饼加入第二溶剂,加热回流至澄清;然后,过滤,保留滤液;
其中,第二溶剂包括:甲醇、丙酮、乙酸乙酯、氯仿、二氯甲烷或甲基异丁酮;
B、在步骤A所得滤液中,加入相当于投料底物雄烯二酮10wt~15wt%的活性碳,在55~105℃下搅拌脱色1~2h后,降至室温,过滤去除活性炭,得第一滤液,并用第二溶剂洗涤滤饼,得第二滤液,将第一滤液与第二滤液合并,然后,在40~60℃下减压浓缩、析晶、过滤、烘干,得9α-羟基-雄烯二酮。
2.如权利要求1所述的方法,其特征在于:所述步骤1)中,含碳源和氮源的种子培养基中,碳源为葡萄糖1.2g/100mL;氮源为蛋白胨0.5g/100mL,酵母膏1.3g/100mL~1.4g/100mL;种子培养基的pH为7.0~7.2。
3.如权利要求1所述的方法,其特征在于:所述步骤2)中,接种量为5~8vol%。
4.如权利要求3所述的方法,其特征在于:所述转化培养基的pH为6.8~7.5。
5.如权利要求1所述的方法,其特征在于:所述步骤3)中,雄烯二酮的投入量为20~45g/L发酵液;雄烯二酮溶液的投入方法为:用溶剂将雄烯二酮在80~90℃溶解后,在无菌条件下,投入至发酵液中;
检测转化液中的9α-羟基-雄烯二酮含量的方法包括:通过薄层层析或高效液相色谱进行检测。
6.如权利要求1所述的方法,其特征在于:所述步骤3)中,以雄烯二酮转化成9α-羟基-雄烯二酮的转化率达到90%以上时作为转化终点。
7.如权利要求1所述的方法,其特征在于:所述步骤A中,滤饼还能重复加入第二溶剂,以获得滤液。
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Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN104560743B (zh) * | 2013-10-25 | 2018-09-11 | 武汉光华时代生物科技有限公司 | 一种粉状毕赤酵母高密度发酵工艺方法 |
CN105734106A (zh) * | 2014-12-10 | 2016-07-06 | 天津金耀集团有限公司 | 一种促进植物甾醇转化为9α-羟基雄烯二酮的方法 |
CN105734105A (zh) * | 2014-12-10 | 2016-07-06 | 天津金耀集团有限公司 | 分支杆菌促进植物甾醇转化为9α-羟基雄烯二酮的方法 |
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Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN87106868A (zh) * | 1986-10-10 | 1988-04-27 | 吉斯特·布罗卡德斯公司 | 9-α-羟基甾族化合物及其制备方法和相应的9(11)-脱氢衍生物以及含有这些甾族化合物的药物组合物的制备方法 |
CN1413260A (zh) * | 1999-10-22 | 2003-04-23 | 阿克佐诺贝尔公司 | 类固醇的微生物9α-羟基化 |
CN101687903A (zh) * | 2007-07-04 | 2010-03-31 | 里克特格登有限公司 | 用于合成9α-羟基甾体化合物的工艺方法 |
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Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN87106868A (zh) * | 1986-10-10 | 1988-04-27 | 吉斯特·布罗卡德斯公司 | 9-α-羟基甾族化合物及其制备方法和相应的9(11)-脱氢衍生物以及含有这些甾族化合物的药物组合物的制备方法 |
CN1413260A (zh) * | 1999-10-22 | 2003-04-23 | 阿克佐诺贝尔公司 | 类固醇的微生物9α-羟基化 |
CN101687903A (zh) * | 2007-07-04 | 2010-03-31 | 里克特格登有限公司 | 用于合成9α-羟基甾体化合物的工艺方法 |
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