CN103314102A - 分泌半乳糖凝集素9的细胞、其制造方法及其用途 - Google Patents

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Abstract

提供可表达基于半乳糖凝集素9的生理活性的细胞、其制造方法及用途。为了达成上述目的，本发明的细胞特征在于，是含半乳糖凝集素9的细胞，将上述半乳糖凝集素9在细胞表面表达。

Description

分泌半乳糖凝集素9的细胞、其制造方法及其用途
【技术领域】
本发明涉及分泌半乳糖凝集素9的细胞、其制造方法及其用途。例如，本发明涉及分泌Gal-9的CD4T细胞及其应用技术。
【背景技术】
半乳糖凝集素9(galectin9；Gal-9)属于半乳糖凝集素家族，结合到N-或O-聚糖的β半乳糖苷而发挥生理活性(非专利文献1)。半乳糖凝集素9被发现鉴定为T细胞凋亡诱导因子(非专利文献2)及嗜酸性粒细胞趋化因子(非专利文献3)，但其往后至现在被报告具有广泛的活性。关于T细胞，半乳糖凝集素9与Tim-3结合而诱导Tim-3阳性TH1细胞的凋亡，收敛过量的TH1反应而抑制自身免疫性的炎症(非专利文献4)。TH17细胞被认为是自身免疫疾病、过敏或癌等、各种各样的难治性疾病的原因或增恶因子之一的细胞，在此细胞中也有Tim-3表达(非专利文献5～6)。半乳糖凝集素9施用减少TH17细胞，另一方面增加炎症抑制性的Treg细胞(非专利文献7)。目前，Tim-3与此TH17细胞减少的相关、及机制仍是不明。
在半乳糖凝集素9的向T细胞以外的作用除前述的嗜酸性粒细胞趋化活性以外，已知从CDllbLy-6C单核细胞类型骨髓来源抑制细胞的诱导(非专利文献8)、CDllbLy-6G嗜中性粒细胞类型骨髓来源抑制细胞的诱导(非专利文献9～10)或浆细胞样树突细胞的诱导(非专利文献11)、肥胖细胞的脱颗粒抑制(非专利文献12)等。至今的报告多关注半乳糖凝集素9的过量免疫抑制作用，半乳糖凝集素9根据情况使免疫亢进。半乳糖凝集素9与单核细胞或树突细胞上的Tim-3结合而将这些细胞活化，促进炎症性细胞因子产生(非专利文献13)。另外，如果在巨噬细胞中半乳糖凝集素9与Tim-3相互作用，则使排除结核菌的免疫亢进(非专利文献14)。即半乳糖凝集素9可将免疫以两个方向调节。
【现有技术文献】
【专利文献】
专利文献1：国际公开第2005/093064号单行本(wO2005/093064)
【非专利文献】
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【发明内容】
【发明要解决的技术课题】
如前述一样的半乳糖凝集素9的活性的解明几乎均是通过施用-添加重组体蛋白质来进行。例如，半乳糖凝集素9施用在小鼠的胶原诱导关节炎中发挥治疗效果，抑制Tim-3阳性T细胞的减少和Treg细胞的增加、及IFN-γ或IL-17等的炎症性细胞因子产生(非专利文献7)。重要的是，半乳糖凝集素9敲除小鼠对于类风湿性关节炎诱导刺激具有高感受性，与野生型比较呈现Tim-3阳性CD4T细胞(TH1及TH17)的增加和Treg细胞的减少(非专利文献7)。这些的性质与通过施用重组体蛋白质而解明的半乳糖凝集素9的作用不矛盾。从而知道半乳糖凝集素9作为内在性的免疫控制因子而被分泌，调节免疫平衡。但是，尚未鉴定在活体内分泌半乳糖凝集素9，或者调节免疫的细胞。
Tim-3作为半乳糖凝集素9的靶被研究最多，但将半乳糖凝集素9的多样的活性的全部用Tim-3说明是不可能的。实际上至现在为止作为活化淋巴细胞的粘接因子的CD44、整联蛋白或IgE被鉴定为半乳糖凝集素9的靶，经它们的靶发生过敏性的过量免疫抑制或癌细胞的转移抑制(非专利文献12、15～16)。今后，随着研究的进展不难预计靶再增加。如此多个靶相互作用而示多样的活性是多种凝集素共通的性质。即便如此，毫无疑问，以上举的半乳糖凝集素9的靶均存在于细胞膜上，分泌到细胞外的半乳糖凝集素9与它们的靶结合而发挥功能。
然而，也报告半乳糖凝集素9不具有信号肽，基本上在细胞质中，在细胞质或核内的作用(非专利文献17～18)。但是，考虑前述的细胞膜上的靶及半乳糖凝集素9的作用，则半乳糖凝集素9的至少一部分理应分泌。实际上有报告称半乳糖凝集素9从源于T细胞或肥胖细胞的株化细胞分泌(非专利文献12、19)、其分泌机制完全不明，另外无由株化细胞的原故在活体内也从同系统的细胞发生同样的分泌的确证。不限于由何表达半乳糖凝集素9的细胞必然分泌半乳糖凝集素9，但使半乳糖凝集素9分泌细胞的鉴定显著地困难。
半乳糖凝集素9是重要的免疫控制因子，只要可鉴定该分泌细胞，则被认为作为知免疫平衡的指标有用，可成为例如判断各种各样的免疫疾病的诊断或治疗的效果的替代品标志物。再者被认为通过与纯化该细胞的技术组合来也可用于细胞疗法，也应用于自身免疫疾病、过敏、癌等的难治性疾病治疗。
如此，半乳糖凝集素9具有多样的免疫控制活性，其作用机制的详细不明的部分多。另外，未鉴定在活体内分泌半乳糖凝集素9，或者控制免疫反应的细胞等。期望弄清楚由半乳糖凝集素9的免疫控制的细节、例如使TH17和Treg细胞的分化控制的细节，或者，在活体内分泌半乳糖凝集素9，或者控制免疫反应的细胞等的，可表达基于半乳糖凝集素9的生理活性的细胞的鉴定。
从而，本发明旨在提供可表达基于半乳糖凝集素9的生理活性的细胞、其制造方法及用途。
【解决课题的技术方案】
为了达成上述目的，本发明的细胞特征在于，是含半乳糖凝集素9的细胞，将上述半乳糖凝集素9在细胞表面表达。
本发明的细胞的第1制造方法是上述本发明的细胞的制造方法，其通过向动物施用半乳糖凝集素9，在上述动物的至少一部分的细胞的细胞表面表达半乳糖凝集素9。
本发明的细胞的第2制造方法是上述本发明的细胞的制造方法，其通过将动物的细胞在半乳糖凝集素9的存在下培养，在上述动物的细胞的细胞表面表达半乳糖凝集素9。
本发明的药物是选自下列的至少一种：上述本发明的细胞、其破碎物及提取物药物。
本发明的诊断方法是使用选自上述本发明的细胞、其破碎物及提取物的至少一种，在被检细胞中诊断半乳糖凝集素9或半乳糖凝集素9结合性物质的有无的方法。
由本发明的疾病的治疗方法或源于上述疾病的症状的减轻方法是上述动物的疾病的治疗或源于上述疾病的症状的减轻方法，其包括给动物施用选自上述本发明的细胞、其破碎物及提取物的至少一种的步骤。
本发明的免疫控制方法是上述控制动物的免疫的免疫控制方法，其给动物施用上述本发明的细胞。
本发明的细胞检测方法是检测上述细胞的方法，其通过将在上述本发明的细胞的细胞表面表达的半乳糖凝集素9作为标志物检测。
根据本发明，动物的疾病或源于上述疾病的症状的诊断方法是上述动物的疾病或源于上述疾病的症状的诊断方法，其包括在含或不含上述本发明的细胞的动物组织中，由上述本发明的细胞检测方法，定性或定量检测上述本发明的细胞的步骤。
由本发明的动物的疾病的治疗效果的判断方法的特征在于，其包括
对于上述动物进行上述疾病的治疗的步骤，
在上述治疗之前后，分别通过由本发明的上述动物的疾病或源于上述疾病的症状的诊断方法，诊断上述疾病或源于上述疾病的症状的步骤，
在上述治疗之前后，对比上述诊断结果的步骤。
由本发明的细胞的分离方法是细胞的分离方法，其在上述含本发明的细胞的动物组织中，由上述本发明的细胞检测方法，检测上述细胞，将检测的上述细胞从上述动物组织中的其他细胞分离。
【发明效果】
由本发明，如上所述，可提供可表达基于半乳糖凝集素9的生理活性的细胞、其制造方法及用途。
【附图说明】
【图1】是示在实施例中的，在大鼠胶原诱导关节炎模型中的人稳定化半乳糖凝集素9的治疗效果的图。根据(a)的进度表将Lewisrat(♀，6～7周龄)致敏，将由足的肿变得显著的初次致敏由第14天表示用量的人稳定化半乳糖凝集素9(或者作为对照PBS)皮下施用，经时监测足肿。(b)是示3次/周施用的结果的坐标图。(c)是示将一次的施用量固定到0.6mg/kg，以1次/周或2次/周施用之时的结果的坐标图。在(b)及(c)中，横轴表示从初次致敏时的经过天数，纵轴表示足的容积的增加率(％)。“媒质”表示作为对照实验用仅溶剂(无人稳定化半乳糖凝集素9的施用)进行的结果，“非-关节炎”表示不发关节炎症的大鼠的测定结果。
【图2】是示在实施例中的，在人稳定化半乳糖凝集素9的大鼠的体内动态试验结果的坐标图。即，同图表示向Lewisrat(♀，6～7周龄)单次皮下施用表示用量的人稳定化半乳糖凝集素9，用特异性ELISA测定血浆中的人稳定化半乳糖凝集素9的结果。横轴表示经过时间，纵轴表示血浆中的人稳定化半乳糖凝集素9浓度。
【图3】是示在实施例中的，向小鼠MOG诱导性实验的过敏性脑炎(EAE)的半乳糖凝集素9作用的图。(a)是在雌性C57BL/6J小鼠(WT)和同系统的半乳糖凝集素9敲除小鼠(Gal-9KO)中的经时的EAE临床分值的坐标图。横轴表示免疫致敏后的经过时间，纵轴表示临床分值。(b)是致敏后第20周的小鼠(WT和Gal-9KO(Gal-9-/-))脊髓的苏木精/伊红染色，和由抗CD3抗体的免疫染色的组织显微镜照片。(c)是示将由组合致敏后第20周的EAE致敏野生型小鼠(WT)、EAE致敏半乳糖凝集素9敲除小鼠(Gal-9KO)及周龄的未致敏小鼠(Naive)各自制备的鼠腹股沟淋巴节的细胞用CD4、CD25、IL-17及Foxp3抗体染色的结果的图。图中，“幼稚”表示幼稚T细胞。(d)是示由野生型小鼠(WT)及半乳糖凝集素9敲除小鼠(Gal-9KO)的脾脏细胞更制备CD4+CD62L+幼稚T细胞，用包被抗CD3抗体的96-孔板中添加抗CD28抗体而培养(无倾斜的)、或者再添加人TGF-β1、小鼠IL-2及小鼠IL-6而培养，诱导TH17细胞分化(TH17倾斜的)结果的坐标图。更具体而言，表示将96小时培养后的培养上清中的IL-17A浓度用ELISA定量的结果。(e)是示在上述(d)提取培养上清后，将残留的细胞内的IL-10mRNA量用实时RT-PCR法定量的结果的坐标图。(f)是示用上述(a)的系使雌性C57BL/6J小鼠发症EAE，在致敏后第14天和第16天皮下施用人稳定化半乳糖凝集素9(向对照组施用PBS)，至致敏第19天记录临床分值，其后将小鼠脊髓用苏木精/伊红组织染色的结果的图。坐标图中，横轴表示免疫致敏后的经过时间，纵轴表示临床分值。
【图4】是示研究在实施例中的，由半乳糖凝集素9的TH17细胞分化抑制是否依赖于Tim3/Gal-9相互作用的结果的坐标图。(a)表示用图3(d)的方法向幼稚T细胞给96小时TH17细胞分化诱导刺激，添加表示人稳定化半乳糖凝集素9(30nM)的期间而将培养上清中的IL-17A浓度用ELISA定量的结果。横轴表示由半乳糖凝集素9的处理时间，纵轴表示IL-17A浓度。(b)是示在人稳定化半乳糖凝集素9存在下给THl7细胞分化诱导刺激24小时，将IL-17F、IL-21、IL-22及IL23RmRNA表达用实时RT-PCR法定量的结果的坐标图。(c)是示将幼稚T细胞在TH17分化诱导刺激下培养24小时时(TH17倾斜的)，和由同分化诱导刺激除去TGF-β1及IL-6时(无倾斜的)的由流式细胞术的CD4+Tim-3+细胞的解析(左)和在Tim-3中和抗体存在下进行由人稳定化半乳糖凝集素9的TH17分化诱导抑制测定的结果(右)的坐标图。(d)是示将幼稚T细胞在TH17分化诱导刺激下培养96小时后，添加人稳定化半乳糖凝集素9而引起凋亡的Tim-3阳性细胞(TH17细胞)用流式细胞术测定的结果的坐标图。
【图5】是示在实施例中，研究是否由半乳糖凝集素9的TH17分化诱导抑制与N联糖链和O联糖链之任何相关的结果的坐标图。(a)示在人稳定化半乳糖凝集素9和表示浓度的乳糖(半乳糖凝集素抑制剂)存在下进行TH17分化诱导测定的结果。在乳糖的对照使用蔗糖。横轴表示乳糖或蔗糖的浓度，纵轴表示IL-17A的浓度。(b)是表示在N-糖基化抑制剂的苦马豆素(2μg/ml)或O-糖基化抑制剂的苄基N-乙酰-α-D-氨基半乳糖苷(苄基-α-GalNAc，2mM)中进行(a)的TH17分化诱导测定的结果的坐标图。横轴表示苦马豆素或苄基-α-GalNAc的浓度，纵轴表示IL-17A的浓度。
【图6】是示在实施例中，测定Gal-9带给TH1，TH2及TH17细胞分化的效果的结果的坐标图。(a)表示向将幼稚T细胞分化诱导为TH1、TH2或TH17的测定系统添加人稳定化半乳糖凝集素9(或者对照的PBS)，将各自的分化用与各TH亚型特异性的mRNA表达定量的结果。无倾斜的是仅TCR刺激的情况。(b)表示在上述(a)的稳定化半乳糖凝集素9存在下进行TH17分化诱导的细胞的IFN-γ及IL-4mRNA的表达。
【图7】是示在实施例中，研究由半乳糖凝集素9的TH17/Treg平衡调节是否依赖于IL-2的结果的图。(a)是表示向幼稚T细胞添加人稳定化半乳糖凝集素9(或者对照的PBS)，在TH17分化诱导条件下将培养的细胞的CD4+CD25+细胞的比例用流式细胞术测定的结果的图。(b)是表示上述(a)的CD4+CD25+Foxp3+细胞的比例的图。(c)向幼稚T细胞添加人稳定化半乳糖凝集素9(对照是PBS)及表示浓度的IL-2，在TH17分化诱导条件下培养，将培养上清中的IL-17A浓度用ELISA定量的结果。(d)是示将在上述(c)的条件下培养之时的Treg细胞(CD4+CD25+Foxp3+细胞)的比例用流式细胞术测定的结果的坐标图。(e)是表示向幼稚T细胞添加人稳定化半乳糖凝集素9(对照是PBS)，在THl7分化诱导条件下培养之后，在PMA和离子霉素及布雷菲德菌素A存在下再培养，将CD4阳性细胞中的IL-17+Foxp3-细胞和IL-17-Foxp3+细胞的比例用流式细胞术测定的结果的图。(f)是表示将幼稚T细胞在上述(e)的条件下培养，在各时间点将CD25及Foxp3的mRNA表达用实时RT-PCR定量的结果的坐标图。横轴表示经过时间，纵轴表示表达量。
【图8】是表示在实施例中的，在细胞表面表达半乳糖凝集素9的CD4阳性T细胞(THGAL9)的确认(鉴定)的图。(a)表示将幼稚T细胞在图6a的各条件、及未刺激(Nostim)下培养，将培养上清中的半乳糖凝集素9浓度用ELISA定量的结果。仅TCR刺激表示无倾斜的。(b)表示在将幼稚T细胞分化诱导为TH17的条件(TH17倾斜的；TCR刺激之外IL-2、TGF-β1及IL-6刺激)或从其除去IL-6的(仅TGF-β1)、或者从其除去TGF-β1的(仅IL-6)或仅TCR刺激(无倾斜的)的各条件下培养后，将上清中的半乳糖凝集素9用ELISA定量的结果。(c)表示向幼稚T细胞添加人稳定化半乳糖凝集素9(或者对照的PBS)，在未刺激(Nostim)、TCR刺激(无倾斜的)及仅THl7分化诱导刺激条件下培养之后，将上清中的半乳糖凝集素9用ELISA定量的结果。(d)示使用上述(c)的细胞将半乳糖凝集素9mRNA量用实时RT-PCR定量的结果。(e)示将在上述(a)的各条件下培养的细胞的，细胞表面半乳糖凝集素9和CD25染色而用流式细胞术测定的结果。(f)示将在上述(e)的无倾斜的条件下培养的细胞分为细胞表面半乳糖凝集素9阳性(Gal-9+)和阴性(Gal-9-)而筛选，将半乳糖凝集素9mRNA用实时RT-PCR定量的结果(左)及将它们细胞固定化/细胞膜渗透化后，用抗半乳糖凝集素9抗体染色，将细胞的全半乳糖凝集素9染色之时的由流式细胞术的测定结果。
【图9】示在实施例中，研究THGAL9的功能的结果。(a)示将由小鼠脾脏细胞制备的幼稚T细胞(左侧)筛选为细胞表面半乳糖凝集素9阳性(THGAL9细胞：Gal-9+TH)和阴性(非-THGAL9：Gal-9-TH)(中侧)、将各自TCR刺激而将分泌到培养上清中的半乳糖凝集素9用ELISA定量的结果(右侧)。(b)示将上述细胞的细胞因子mRNA表达用实时RT-PCR研究的结果。(c)示将幼稚T细胞在TH17分化诱导刺激下培养后，将THGAL9细胞(Gal-9+TH)或非-THGAL9(Gal-9-TH)细胞以1∶1的比混合，其后仅给TCR刺激而共培养，将培养上清中的IL-17A用ELISA(左侧)、将Foxp3mRNA的表达用实时RT-PCR定量(右侧)的结果。(d)示将上述的共培养在半乳糖凝集素9的抑制剂、乳糖(或者对照的蔗糖)存在下进行，将培养上清中的IL-17A浓度用ELISA定量的结果。(e)示将上述(c)的共培养在IL-10中和抗体或TGF-β中和抗体存在下进行的结果。(f)示将幼稚T细胞在IL-10或人稳定化半乳糖凝集素9存在下实施TH17分化诱导刺激，将培养上清中的IL-17A浓度用ELISA定量的结果。
【图10】是示在实施例中，研究自CD25+THGAL9的半乳糖凝集素9、IL-10及TGF-β1的产生的结果的坐标图。(a)示将幼稚CD4T细胞在TCR刺激下培养，由筛选分离为CD25+THGAL9、CD25+非-THGAL9及CD25-非-THGAL9后，将各自的细胞再在TCR刺激下培养，将培养上清中的半乳糖凝集素9浓度用ELISA定量的结果。(b)示将上述(a)的细胞的IL-10及TGF-β1表达由实时RT-PCR定量的结果。
【图11】是示在实施例中，研究由半乳糖凝集素9添加而诱导THGAL9细胞的结果的坐标图。(a)示向幼稚CD4T细胞添加人稳定化半乳糖凝集素9(或者对照的PBS)，在未刺激(Nostim)、仅TCR刺激(Neutral)或TH17分化诱导刺激条件下(Thl7倾斜的)培养之后，将细胞表面的半乳糖凝集素9、CD25的表达用流式细胞术研究的结果。(b)示将幼稚CD4T细胞在IL-10中和抗体、IL-10R中和抗体或TGF-β中和抗体的存在下进行TCR刺激，将THGAL9细胞的出现用流式细胞术研究的结果。(c)示向幼稚CD4T细胞添加IL-10或人稳定化半乳糖凝集素9，在TCR刺激下培养之后，将THGAL9细胞的出现用流式细胞术研究的结果。
【图12】是示在实施例中，验证THGAL9和Tr1有高的类似性的结果的图。(a)示将幼稚CD4+T细胞将细胞表面半乳糖凝集素9染色的同时，用作为已报道的Tr1细胞标志物的LAP、NKG2D、LAG-3及CTLA-4的各抗体染色，用流式细胞术研究的结果。(b)示将幼稚CD4+T细胞进行TCR刺激，在成CD25阳性的T细胞集团中进行与(a)相同的染色及Foxp3染色，用流式细胞术研究的结果。(c)示对(b)中制备的细胞，将细胞表面的半乳糖凝集素9、Tim-3及CD25的表达用流式细胞术研究的结果。(d)示将幼稚CD4+T细胞在由IL-27添加的Tr1细胞分化刺激下培养之后，用PMA和离子霉素再刺激，将培养上清中的IL-10用ELISA定量的结果。(e)示将上述(d)的培养上清中的半乳糖凝集素9用ELISA定量的结果。(f)示在布雷菲德菌素A(10μg/ml)存在下进行上述(d)的PMA/离子霉素处理而在细胞内部蓄积IL-10，将细胞表面的半乳糖凝集素9和细胞内的IL-10染色而用流式细胞术测定的结果。
【图13】示在实施例中，研究在半乳糖凝集素9敲除小鼠中具有Tr1标志物的细胞减少的结果。(a)示将在半乳糖凝集素9敲除小鼠和野生型小鼠的脾脏细胞中的CD4、NKG2D、LAG-3、LAP、CTLA-4的表达用流式细胞术测定的结果。(b)示将半乳糖凝集素9敲除小鼠和野生型小鼠的幼稚CD4T细胞在仅TCR刺激(无倾斜的)或TH17分化诱导刺激条件下(Th17倾斜的)培养，将IL-10mRNA的表达用实时RT-PCR研究的结果。(c)示将在(b)的无倾斜的条件下培养的细胞在布雷菲德菌素A(10μg/ml)存在下进行PMA/离子霉素处理时，将细胞内部蓄积的IL-10染色而用流式细胞术测定的结果。
【图14】示在实施例中，研究对人TH17/Treg分化的半乳糖凝集素9的作用的结果及鉴定人THGAL9细胞的结果。(a)示向由健康人4人得到的末梢血CD4+T细胞添加人稳定化半乳糖凝集素9(或者对照的PBS)，在TCR刺激下或未刺激培养而将CD25阳性细胞用流式细胞术测定的结果。(b)示将上述(a)细胞的CD25+Foxp3+比例用流式细胞术测定的结果。(c)示向人CD4+T细胞添加人稳定化半乳糖凝集素9(或者对照的PBS)，在TH17细胞分化诱导刺激下培养，将培养上清中的IL-17用ELISA定量的结果。(d)示将人CD4+T细胞在TCR刺激下、或者未刺激下培养，将细胞表面的半乳糖凝集素9和CD25染色而用流式细胞术测定的结果。(e)示将人CD4+T细胞在TCR刺激下培养之后，由筛选分离为细胞表面半乳糖凝集素9阳性(CD25+THGAL9)和阴性(CD25+非-THGAL9)，将各自在TCR刺激下再培养后，将上清中的半乳糖凝集素9用ELISA定量、将各细胞因子mRNA表达用实时RT-PCR测定的结果。
【图15】是例示实施作为重症的腹膜炎模型的盲肠结扎穿刺法(cecal ligation and puncture：CLP)的处置的小鼠的照片。
【图16】是示在实施例中，研究人稳定化半乳糖凝集素9的在重症的腹膜炎模型中的有效性的结果的坐标图。由盲肠结扎穿刺法(cecalligationandpuncture：CLP)使腹膜炎发症，经时研究生存率。(a)示C57BL/6J野生型小鼠(WT)和小鼠半乳糖凝集素9的转基因小鼠(Gal-9Tg)的比较。(b)示向WT小鼠单次静脉内施用CLP和同时人稳定化半乳糖凝集素9(30μg/小鼠；或者作为对照PBS)之时的生存率。(c)示对WT小鼠实施CLP处置，其24小时后，单次静脉内施用人稳定化半乳糖凝集素9(30μg/小鼠；或者作为对照PBS)之时的生存率。(d)示对WT小鼠实施CLP处置，其24小时后，单次皮下施用人稳定化半乳糖凝集素9(30μg/小鼠；或者作为对照PBS)之时的生存率。(e)示向裸鼠单次皮下施用CLP和同时人稳定化半乳糖凝集素9(30μg/小鼠；或者作为对照PBS)之时的生存率。在各图中，横轴表示CLP处置后的经过天数，纵轴表示生存率。
【图17】是示在实施例中，研究通过向CLP小鼠施用人稳定化半乳糖凝集素9而发生的细胞因子平衡的变化的结果的坐标图。同图示向WT小鼠单次静脉内施用CLP和同时人稳定化半乳糖凝集素9(30μg/小鼠；或者作为对照PBS)，其24时后，将取出的脾脏细胞24小时培养，将培养上清中的细胞因子用ELISA定量的结果。纵轴表示细胞因子的浓度。
【图18】示在实施例中，研究通过向CLP小鼠施用人稳定化半乳糖凝集素9诱导的细胞表面半乳糖凝集素9阳性细胞的结果。向WT小鼠单次静脉内施用CLP和同时人稳定化半乳糖凝集素9(30μg/小鼠；或者作为对照PBS)，其24时后，将取出的脾脏细胞的细胞表面CD3ε、NK1.1、GL-3及细胞表面半乳糖凝集素9的表达用各抗体染色而用流式细胞术测定的结果。CD3+NK1.1+：NKT细胞、CD3-NK1.1+：NK细胞、CD3+GL-3+：γσT细胞。THGAL9细胞含在CD3+NK1.1-Gal-9+及CD3+GL-3-Gal-9+的级分中。同图中的“SpleencellsfromCLPmouse”是指“自CLP小鼠取出的脾脏细胞”。
【图19】示如已报道一样，将人稳定化半乳糖凝集素9施用于携癌小鼠，则生存率升高，将那时发生的免疫细胞的变化及它们细胞表面的半乳糖凝集素9表达在实施例中研究的结果。将小鼠纤维肉瘤MethA根据已报道的方法(非专利文献32)导入腹腔内，其后立即将人稳定化半乳糖凝集素9施用3次/周(30μg/小鼠)。自MethA移植7天后，取出腹腔内细胞和脾脏细胞而将表示的细胞表面标志物染色，示用流式细胞术测定的结果。(a)将腹腔细胞之内CD4阳性细胞用CD25和细胞表面半乳糖凝集素9表达展开的结果。由人稳定化半乳糖凝集素9施用在细胞表面表达半乳糖凝集素9的细胞的比例显著地增加，另一方面CD25+Gal-9-减少。CD25+Gal-9-细胞是含被认为抑制对癌的免疫的Treg的细胞集团。(b)示将腹腔细胞之内CD8阳性细胞用CD25和细胞表面半乳糖凝集素9表达展开的结果。由人稳定化半乳糖凝集素9施用在细胞表面表达半乳糖凝集素9的CD8细胞的比例显著地增加。(c)示将施用人稳定化半乳糖凝集素9的MethA携癌小鼠的脾脏细胞用PDCA-1、CD11c及细胞表面半乳糖凝集素9染色，用流式细胞术测定的结果。比较浆细胞样树突细胞：pDC、pDC样巨噬细胞：
Figure GSB00001106601900181
经典树突细胞：cDC、及与树突细胞或巨噬细胞不同的细胞：非
Figure GSB00001106601900182
(在图中是“otherspleen细胞”)的各自在细胞表面表达半乳糖凝集素9的水平。
【图20】示在实施例中，研究人稳定化半乳糖凝集素9的在自然发症性自身免疫疾病模型的有效性的结果。MRL/MpJUmmCrj-1pr/1pr小鼠是作为全身性红斑狼疮的模型被泛用的自然发症性自身免疫疾病模型。向此小鼠(♀、8周龄)以表示人稳定化半乳糖凝集素9的用量以3次/周的进度表至22周龄腹腔内施用，经时进行后肢足蹠浮肿容积测定(周一次)、体重测定(周三次)、尿中蛋白浓度测定(周一次)。在本图中示研究尿蛋白浓度变化(a)和体重变化(b)的结果。在图20(a)中，横轴表示施用后的经过周数，纵轴表示尿中蛋白浓度。全部的数据表示在指定的各时间点的n＝7～10的动物的平均值。统计的差异使用双因素的ANOVA进行分析，组间的差异使用邦弗朗尼的posttests进行评价(＊P＜0.05、＊＊P＜0.01、＊＊＊P＜0.001)。在图20(b)中，横轴表示施用后的经过天数，纵轴表示体重增加量。全部的数据表示在指定的各时间点的n＝6～8的动物的平均值±SEM。统计的差异使用双因素的ANOVA进行分析，组间的差异使用邦弗朗尼的posttests进行评价(＊P＜0.05、＊＊P＜0.01、＊＊＊P＜0.001)。
【图21】示研究在图20的实验的后肢足蹠浮肿容积变化(a)，和实验结束时(22周龄目)的血细胞容量值(b)的结果。在图21(a)中，横轴表示施用后的经过周数，纵轴表示后肢足蹠浮肿容积变化。全部的数据表示在指定的各时间点的n＝6～10的动物的平均值±SEM。统计的差异使用双因素的ANOVA进行分析，组间的差异使用邦弗朗尼的posttests进行评价(＊P＜0.05、＊＊P＜0.01、＊＊＊P＜0.001)。在图21(b)中，横轴表示人稳定化半乳糖凝集素9施用用量，纵轴表示实验结束时(22周龄目)的血细胞容量值。全部的数据表示在指定的各时间点的n＝6～8的动物的平均值±SEM。统计的差异使用双因素的ANOVA进行分析，组间的差异使用Dunnett的多重比较检验进行评价(＊P＜0.05、＊＊P＜0.01、＊＊＊P＜0.001)。
【图22】示在实施例中，研究给人稳定化半乳糖凝集素的抗体产生的影响的结果。将羊红细胞(SRBC)施用给小鼠，则由于对羊红细胞的IgM抗体产生显著地引发，此系统作为研究药物的向抗体产生的影响的目的被泛用。向C57BL/6J小鼠(♀)腹腔内施用SRBC，其后立即，单次腹腔内施用人稳定化半乳糖凝集素9(30μg/小鼠)或作为对照PBS。在各自的时间点，由3-5只的小鼠采血及进行脾脏摘出而研究抗体产生及B细胞。(a)示将SRBC特异性的IgM浓度、(b)示将全IgM浓度、(c)示将全IgG浓度用各自的特异性的ELISA研究的结果。(d)向MRL/MpJUmmCrj-1pr/1pr小鼠(♀、8周龄)3次/周施用30μg/小鼠的人稳定化半乳糖凝集素9或作为对照PBS，在第7天采血。示将血清中的抗双链DNA抗体(代表性的自身抗体)浓度用特异性的ELISA测定的结果。图中，“DaysafterSRBCinjection”是指SRBC腹腔内施用后的经过天数。
【图23】示在实施例中的，脾脏细胞中含的生发中心B细胞的由流式细胞术的解析方法。将脾脏细胞用抗CD19抗体和抗GL-7抗体染色，将CD19+GL-7+的细胞集团作为生发中心B细胞。已知构成生发中心B细胞的中央细胞和成中央细胞的细胞的大小不同，成中央细胞更大。从而将生发中心B细胞集团在FSC和SSC展开，用与细胞的大小相关的FSC将约350附近作为基准而分离为二个细胞集团，假设各自为中央细胞和成中央细胞。研究各自的CXCR4表达时，在成中央细胞确认高的表达。这与公知的成中央细胞和中央细胞的性质一致。从而在有在之后的解析中分离中央细胞和成中央细胞而解析的必要之时进行示于本图的方法、即将CD19+GL-7+的细胞集团在FSC和SSC展开而分离的方法。
【图24】示在实施例中，研究半乳糖凝集素9也作用于B细胞的结果。向C57BL/6J小鼠(♀)或半乳糖凝集素9敲除小鼠腹腔内施用SRBC，其后立即，单次腹腔内施用人稳定化半乳糖凝集素9(30μg/小鼠)或作为对照PBS。示在各自的时间点，由3-5只的小鼠采血及进行脾脏摘出，将B细胞由示于图23的流式细胞术研究的结果。(a)示SRBC施用后第4天的由流式细胞术的解析结果之一例。(b)示生发中心B细胞(GCBcell)、成中央细胞及中央细胞数的经时变化。“Daypostimmunization”是指免疫致敏后的经过天数。(c)示SRBC施用后第4天的生发中心B细胞(GCBcell)、成中央细胞及中央细胞数。在半乳糖凝集素9敲除小鼠(Gal-9KO)中在SRBC施用后，施用PBS。
【图25】示在实施例中，研究在B细胞的细胞表面表达半乳糖凝集素9的结果。(a)示将SRBC施用第7天的脾脏细胞，用示于图23的流式细胞术分离为生发中心B细胞和其他B细胞，研究各自的细胞集团的细胞表面半乳糖凝集素9表达的结果。(b)示将(a)的生发中心B细胞用示于图23的流式细胞术再分离为中央细胞和成中央细胞，研究各自的细胞集团的细胞表面半乳糖凝集素9表达的结果。(c)示研究在图24(B)中研究的生发中心B细胞的细胞表面半乳糖凝集素9表达的结果。由SRBC施用而在细胞表面表达半乳糖凝集素9的生发中心B细胞的比例增加，但施用人稳定化半乳糖凝集素9，其比例也无变化。
【图26】示在实施例中，解析产生抗体的刺激下的脾脏细胞中辅助性T细胞的亚型，和各自的细胞表面半乳糖凝集素9表达的结果。如前述一样半乳糖凝集素9也作用于抗体产生及B细胞。在活体内B细胞的分化、抗体产生受辅助性T细胞控制，特别是被称为FollicularBhelperT细胞(TFH)的CD4阳性细胞的作用较大。从而，将SRBC施用前(Day0)和施用第7天(Day7)的小鼠脾脏细胞用作为CD4及TFH的标志物的CXCR5及ICOS染色，将各自的细胞集团的细胞表面半乳糖凝集素9表达用流式细胞术研究。(a)示将CD4阳性细胞以CXCR4和ICOS表达展开的点标绘的例，和以CXCR4和ICOS表达4分割的各细胞集团的细胞表面半乳糖凝集素9表达。(b)示各自的细胞集团的比例的经时变化。(c)示研究由人稳定化半乳糖凝集素9施用各自的CD4阳性细胞的比例是否变化的结果。(d)示各自的细胞集团的细胞表面半乳糖凝集素9阳性比例在SRBC施用后升高的结果。(e)示各自的细胞集团的细胞表面半乳糖凝集素9的表达量(MFI)在SRBC施用后升高的结果。图中，“DaysafterSRBCinjection”是指SRBC腹腔内施用后的经过天数。
【图27】是将由人稳定化半乳糖凝集素9施用发生的作用以模式例示的图。
【图28】是在实施例中的，半乳糖凝集素9修饰体重组蛋白质的电泳图。
【图29】是示在实施例中，半乳糖凝集素9施用延长LLC携癌小鼠的生存，那时pDC样巨噬细胞增加的图。(a)是示研究向将小鼠肺癌来源肿瘤细胞株LLC腹腔接种的小鼠，将30μg的人稳定化半乳糖凝集素9(或者作为对照PBS)以3次/周，相比携癌时的腹腔内施用之时的生存率的结果的坐标图。横轴的“Daysaftertumorinoculation”是指肿瘤接种后的天数。纵轴的“Percentsurvival”表示生存率。(b)示将LLC接种7天后的腹腔内细胞用巨噬细胞标志物(Ly-6C及F4/80)、树突细胞标志物(CD11c)及浆细胞用树突细胞标志物(PDCA-1)的抗体染色，用流式细胞术解析的结果。
【图30】是示在实施例中，半乳糖凝集素9在试管内Tim-3非依赖性地促进由M-CSF的CD11c阳性细胞的分化的图。(a)研究将小鼠骨髓细胞在GM-CSF或M-CSF中7天培养而促进向树突细胞的分化，作为树突细胞的标志物之一的CD11c的表达。示研究给稳定化半乳糖凝集素9(30nM)的分化的影响的结果。(b)示在作为半乳糖凝集素9的抑制剂的乳糖(对照是蔗糖)或Tim-3的中和抗体中进行(a)的分化测定的结果。
【图31】是示在实施例中，确认用半乳糖凝集素9和M-CSF分化的CD11c阳性细胞是pDC样巨噬细胞之前体细胞的结果的图。(a)示将图30的M-CSF或M-CSF用半乳糖凝集素9培养7天的细胞用表示的巨噬细胞及树突细胞标志物的抗体染色，用流式细胞术解析的结果。用灰色内涂的直方图是同种型对照、灰色的实线是将用M-CSF分化的巨噬细胞用表示的抗体染色的，黑的实线是将用M-CSF和半乳糖凝集素9分化的巨噬细胞用表示的抗体染色的。(b)将上述细胞的转录因子mRNA表达用实时RT-PCR解析，用β2微球蛋白或甘油醛3磷酸脱氢酶的mRNA表达标准化的结果示于纵轴。各自样品数用4进行统计解析。(c)将上述细胞的Toll-样受体mRNA表达用实时RT-PCR解析，用β2微球蛋白或甘油醛3磷酸脱氢酶的mRNA表达标准化的结果(RelativemRNAlevel：相对的RNA水平)示于纵轴。各自样品数以4进行统计解析。(d)向上述细胞添加表示的Toll-样受体激动剂，将6小时后的IFN-α和IFN-βmRNA表达用实时RT-PCR解析，用β2微球蛋白或甘油醛3磷酸脱氢酶的mRNA表达标准化的结果示于纵轴。各自样品数以4进行统计解析。横轴的“Stimulatedwith”是指用何激动剂(或者，作为对照是PBS)刺激。
【图32】是示在实施例中，用半乳糖凝集素9和M-CSF分化的CD11c阳性细胞由LPS刺激而成熟为pDC样巨噬细胞的图。(a)示将在图30的方法中用M-CSF和半乳糖凝集素9分化的巨噬细胞在LPS中培养24小时(对照是PBS)、将CD11c、PDCA-1、F4/80及Ly-6C的表达由流式细胞术解析的结果。(b)将在图30的方法中用M-CSF和半乳糖凝集素9分化的巨噬细胞在LPS中培养6小时或24小时，将表示的mRNA表达用实时RT-PCR解析的结果(RelativemRNAlevel：相对的RNA水平)示于纵轴。(c)示将在图30的方法中用M-CSF和半乳糖凝集素9分化的巨噬细胞在LPS中培养24小时(对照是PBS))后，将I-A/I-E的表达用流式细胞术解析的结果之一例。灰色的直方图是同种型对照、虚线的直方图是PBS对照、实线的直方图是LPS刺激。在LPS处理组和对照PBS组(各自n＝4)中，将I-A/I-E阳性细胞的比例以柱状图表示，示统计解析的结果。
【图33】是示研究在实施例中，由LPS刺激而至成为具有更成熟的表现系统的pDC样巨噬细胞的功能的结果的图。(a)示在图32(a)的方法中向通过给LPS刺激而使成熟的pDC样巨噬细胞添加横轴中表示的各TLR激动剂(对照是PBS)，将18小时培养的培养上清中的IFN-α和IFN-β用ELISA研究的结果。纵轴表示浓度。样品数以各4进行统计解析。＊＊＊P＜0.001。(b)示在图32(a)的方法中研究通过给LPS刺激而使成熟的pDC样巨噬细胞将NK细胞活化而提高抗癌活性的结果。左图横轴表示的NK是将小鼠淋巴瘤Yac-1细胞和由小鼠制备的幼稚NK细胞共培养(Yac-1∶NK＝1∶30)时，
Figure GSB00001106601900231
是将Yac-1、幼稚NK及成熟的pDC样巨噬细胞以1∶30∶60的比例共培养时，(-)是将Yac-1单独培养的结果，各自5小时培养后，将引起细胞死的Yac-1细胞的比例用流式细胞术解析而示于纵轴。样品数以各自4进行统计解析。＊＊＊P＜0.001。右图示将幼稚NK细胞和成熟的pDC样巨噬细胞共培养5小时之后，将NK细胞的GranzymeB和Perforin表达用流式细胞术研究的结果。样品数以各自4进行统计解析。＊P＜0.05。
【实施方式】
以下，再详细地说明本发明。但是，本发明不限于以下的说明。
本发明人致力于，进行锐意研究，弄清楚由半乳糖凝集素9的免疫控制的细节，在其中也是TH17和Treg细胞的分化控制的细节，在活体内分泌半乳糖凝集素9，控制免疫反应的细胞的鉴定。其中，本发明人成功鉴定分泌半乳糖凝集素9的新颖的CD4阳性T细胞(THGAL9细胞)，明了此细胞控制TH17和Treg细胞的分化。再者本发明人发现在体外THGAL9细胞随着半乳糖凝集素9的添加而增加。THGAL9细胞不仅在细胞表面表达半乳糖凝集素9，也表达已知的Tr1细胞标志物，另外从分泌IL-10提示是与在现时间点定义的Tr1细胞相同或其部分集团的可能性。此时，半乳糖凝集素9作为Tr1细胞的标志物有用，对Tr1细胞的纯化和向其治疗的应用也极其重要。再有，在本发明中，“细胞表面”不特别限定，例如，是指细胞膜的面对细胞外的侧的表面。即，将半乳糖凝集素9在细胞表面表达的状态不特别限定，是指例如，将半乳糖凝集素9在细胞膜或其表面表达，半乳糖凝集素9的全体或一部分露出到细胞外的状态。
本发明人使用作为自身免疫疾病模型之一的小鼠EAE模型明了由半乳糖凝集素9的TH17细胞分化抑制和Treg细胞分化促进依赖于IL-2，但不依赖于Tim-3。另一方面，半乳糖凝集素9在分化的Tim-3阳性TH17细胞诱导Tim-3依赖性的凋亡。本发明人发现，在CD4阳性T细胞之中，有将半乳糖凝集素9在细胞表面表达的集团。在以下中，将半乳糖凝集素9在细胞表面表达的CD4阳性T细胞称为“THGAL9细胞”。将THGAL9细胞用TCR刺激，则例如，随CD25的表达升高而分泌半乳糖凝集素9或IL-10是可能的。Treg细胞虽也分泌IL-10，THGAL9细胞不表达作为Treg的标志物的Foxp3，Treg细胞被认为是不同的细胞。THGAL9表达已报道的IL-10产生类型1控制性T细胞(Tr1细胞)标志物的全部。然而，这些的Tr1标志物由于受TCR刺激的几乎全部CD25阳性CD4细胞表达诱导而不是Tr1的决定性的标志物。令人感兴趣的是，THGAL9以外的CD4+T细胞也在细胞内部THGAL9表达同等量的半乳糖凝集素9。将THGAL9细胞与付诸于TH17细胞分化的幼稚T细胞共培养，则抑制IL-17的产生，使Treg细胞增加。这些的作用与重组体半乳糖凝集素9同样，强提示在活体内进行经半乳糖凝集素9的分泌的免疫控制的细胞是THGAL9细胞。另外示，在人中也存在具有同样的性质的THGAL9细胞。以上的见解示，细胞表面的半乳糖凝集素9是Tr1的优良标志物，还示THGAL9细胞是可在自身免疫疾病、过敏疾病或肿瘤其他疾病治疗中直接或间接使用的极其有用的细胞。
再者，本发明人示，由THGAL9细胞的TH17细胞分化抑制被半乳糖凝集素9的抑制剂抑制，但不被IL-10或TGF-β抑制剂抑制，明了在本抑制中半乳糖凝集素9是活性的本体。
再者，本发明人发现，在CD4阳性T细胞以外的其他T细胞、γδT细胞、天然杀伤细胞(NK细胞)、B细胞等中，也同样地存在，在细胞表面表达半乳糖凝集素9的细胞，从而发明本发明的细胞。本发明的细胞，如前述，特征在于是含半乳糖凝集素9的细胞，将上述半乳糖凝集素9在细胞表面表达，此外不特别限定。
本发明的细胞将半乳糖凝集素9在细胞表面表达，本发明的细胞是分泌半乳糖凝集素9的细胞。即被认为，通过细胞内部的半乳糖凝集素9被分泌而排出到细胞外部的过程，观察到在细胞表面半乳糖凝集素9表达。但是，此说明是示有可能性的机制之一，本发明的细胞不限于此说明。
本发明的细胞(THGAL9细胞等)是，可在例如，自身免疫疾病、过敏疾病或肿瘤其他疾病治疗中直接或间接使用的极其有用的细胞，例如，进行免疫控制而在疾病的预防-治疗中有用，另外，例如，感染症对策、免疫疾病、器官移植等的医疗领域、还有，也作为测定、生物等的领域中使用的试剂等有用。
再有，在本发明中，“半乳糖凝集素9”不限于仅天然(野生型)半乳糖凝集素9，例如，是有与天然(野生型)半乳糖凝集素9实质上同等的活性的半乳糖凝集素9修饰体(变体)等也可。半乳糖凝集素9修饰体是，例如，提供对半乳糖凝集素9的糖链识别部位保有的特定的糖链特异性地结合的活性或与其类似的活性(可在本活性之中含定性的活性及/或定量的活性)的物质也可。半乳糖凝集素9(野生型半乳糖凝集素9)，例如，对特定的细胞有凋亡诱导活性，但在本发明中，上述半乳糖凝集素9修饰体可有野生型半乳糖凝集素9的凋亡诱导活性或有与其类似的活性，半乳糖凝集素9有的生物活性可改变或修饰，在某时优选。在本发明中，半乳糖凝集素9修饰体，作为有生物活性的试剂，在临床检查的领域、分析的领域、或者医学或药物等的领域也可示，与野生型半乳糖凝集素9同等或相比野生型半乳糖凝集素9更优选的性质。
在本发明中，“半乳糖凝集素9修饰体”不特别限定，例如，是专利文献1中记载的半乳糖凝集素9修饰体等也可，更具体而言，例如，如下。半乳糖凝集素9修饰体是，例如，野生型半乳糖凝集素9或有与其实质上同等的活性的蛋白质的接头肽或其近傍区域改变的蛋白质或其盐、包括野生型半乳糖凝集素9或有与其实质上同等的活性的蛋白质的接头肽或其近傍区域的氨基酸序列中1个或其以上的氨基酸缺失、取代或附加的氨基酸序列，与野生型半乳糖凝集素9相比实施至少被称为对接头肽的分解感受性改性的改变的蛋白质或其盐、是有与野生型半乳糖凝集素9实质上同等的活性的蛋白质并且与半乳糖凝集素9的氨基酸序列有至少70％以上的相同性、或者至少75％以上的相同性、或者至少80％以上的相同性、或者至少85％以上的相同性、或者至少90％以上的相同性、或者至少95％以上的相同性的蛋白质或其盐、经(1)野生型半乳糖凝集素9的N末端侧的糖链识别区域(NCRD)或有与其实质上同等的活性的多肽和(2)野生型半乳糖凝集素9的C末端侧的糖链识别区域(CCRD)或有与其实质上同等的活性的多肽，和(3)包含野生型半乳糖凝集素9的接头肽的氨基酸序列中1个或其以上的氨基酸缺失、取代或附加的氨基酸序列的改变接头肽而结合的蛋白质或其盐等也可。
优选的实施方式中，半乳糖凝集素9修饰体可举出例如，(1)有作为野生型半乳糖凝集素9的NCRD下述SEQ ID NO：7所示的氨基酸序列或其序列中1个或其以上的氨基酸缺失、取代或附加的序列，或者，相对于下述SEQ ID NO：7所示的氨基酸序列有至少70％以上的相同性、或者至少75％以上的相同性、或者至少80％以上的相同性、或者至少85％以上的相同性、或者至少90％以上的相同性、或者至少95％以上的相同性的氨基酸序列，并且，有乳糖结合能力，(2)有作为野生型半乳糖凝集素9的CCRD下述SEQ ID NO：8所示的氨基酸序列或其序列中1个或其以上的氨基酸缺失、取代或附加的序列，或者，相对于下述SEQ ID NO：8所示的氨基酸序列有至少70％以上的相同性、或者至少75％以上的相同性、或者至少80％以上的相同性、或者至少85％以上的相同性、或者至少90％以上的相同性、或者至少95％以上的相同性的氨基酸序列，并且，有乳糖结合能力，(3)作为结合上述(1)和(2)的接头区域下述SEQ ID NO：9所示的氨基酸序列或其序列中1个或其以上的氨基酸缺失、取代或附加的序列，优选为对于基质金属蛋白酶等的蛋白分解酶，相比天然的(野生型的)半乳糖凝集素9更稳定化的序列。作为所述接头区域(3)，也包括下述SEQ ID NO：9所示的氨基酸序列中的氨基酸残基缺失1个以上(例如，1～2个、优选为3～4个、再优选为5～6个、再优选为7～8个、特别是1～9个等)的缺失类似物、该氨基酸残基的1个以上(例如，1～9个、优选为1～8个、再优选为1～6个、再优选为1～4个、特别是1～2个等)被其他残基取代的取代类似物、附加1个以上(例如，1～60个、优选为1～40个、再优选为1～20个、再优选为1～10个、特别是1～5个等)的氨基酸残基(但是，排除下述SEQ ID NO：10及11所示的氨基酸序列之中除下述SEQ ID NO：9所示的氨基酸序列的部分所示的序列)的附加类似物。代表性的情形中，作为所述接头区域(3)，可举出将下述SEQ ID NO：9所示的氨基酸序列用HM，RIP，或任意的2氨基酸的序列取代的序列等。氨基酸的取代、缺失、或者插入是，在多肽的生理性的特性或化学特性上不引起大的变化的也可，在某时可给优选的变化。作为该氨基酸序列中的氨基酸的取代体，可选该氨基酸所属的类之中的其他氨基酸类。例如，作为非极性(疏水性)氨基酸，可举出丙氨酸、苯丙氨酸、亮氨酸、异亮氨酸、缬氨酸、脯氨酸、色氨酸、甲硫氨酸等，作为极性(中性)，可举出甘氨酸、丝氨酸、苏氨酸、半胱氨酸、酪氨酸、天冬酰胺、谷氨酰胺等，作为具有正电荷的氨基酸(碱性氨基酸)，可举出精氨酸、赖氨酸、组氨酸等，作为具有负电荷的氨基酸(酸性氨基酸)，可举出天冬氨酸、谷氨酸等。
另外，作为所述接头区域(3)，可举出将下述SEQ ID NO：10或11所示的氨基酸序列除去下述SEQ ID NO：9所示的氨基酸序列部分，用HM，RIP，或任意的2个氨基酸的序列取代的序列，下述SEQ ID NO：10或11所示的氨基酸序列之中除去下述SEQ ID NO：9所示的氨基酸序列部分，保留其中的6个氨基酸，删除其以外的残基的序列等。另外，作为所述接头区域(3)，也包括下述SEQ ID NO：10或11所示的氨基酸序列中的氨基酸残基(但是，例如，可除去下述SEQ ID NO：9所示的氨基酸序列部分，或者，下述SEQ ID NO：10的情况中，可除去下述SEQ ID NO：11所示的氨基酸序列部分)缺失1个以上(例如，1～5个、优选为3～10个、再优选为5～15个、再优选为7～20个、特别是1～32个等)的缺失类似物、该氨基酸残基的1个以上(例如，1～9个、优选为1～8个、再优选为1～6个、再优选为1～4个、特别是1～2个等)被其他残基取代的取代类似物、附加1个以上(例如，1～60个、优选为1～40个、再优选为1～20个、再优选为1～10个、特别是1～5个等)的氨基酸残基(但是，排除下述SEQ ID NO：10及11所示的氨基酸序列之中除去下述SEQ ID NO：9所示的氨基酸序列的部分所示的序列)的附加类似物。
例如，维持作为天然(野生型)的人半乳糖凝集素9蛋白质的特征的结构域结构或糖结合能的上述变体全部包括在本发明中。另外本发明的肽或多肽被认为可包含有与天然的人半乳糖凝集素9蛋白质实质上同等之一级结构构象或其一部分，再者也可包含有与天然序列实质上同等的生物学活性的序列。再者也可为天然发生的变体之一。在本发明中，人来源的蛋白质(或者肽或多肽)可举出例如，对选自WO02/37114A1的序列表的SEQ ID NO：1～3的氨基酸序列有60％、根据需要有相比70％更高的相同性的序引，更优选为可举出对其有80％或90％以上的相同氨基酸序列。在本发明中，人来源的蛋白质之一部分是指该人来源的蛋白质之一部分的肽(即，该蛋白质的部分肽)，只要有与本发明的半乳糖凝集素9蛋白质实质上同等的活性，则任何也可。例如，该本发明的蛋白质的部分肽，可举出有该人半乳糖凝集素9的构成氨基酸序列之中至少5个以上、优选为20个以上、再优选为50个以上、更优选为70个以上、最优选为100个以上、有时200个以上的氨基酸序列的肽，优选它们是对应于连续的氨基酸残基的，或者，例如，可举出关于对该WO02/37114Al的序列表的SEQ ID NO：1～3之任何一所示的氨基酸序列中对应的区域的相同性，有与上述同样的相同性的序列。
【SEQ ID NO：7】
Met Ala Phe Ser Gly Ser Gln Ala Pro Tyr Leu Ser Pro Ala Val Pro
1               5                   10                  15
Phe Ser Gly Thr Ile Gln Gly Gly Leu Gln Asp Gly Leu Gln Ile Thr
            20                  25                  30
Val Asn Gly Thr Val Leu Ser Ser Ser Gly Thr Arg Phe Ala Val Asn
        35                  40                  45
Phe Gln Thr Gly Phe Ser Gly Asn Asp Ile Ala Phe His Phe Asn Pro
    50                  55                  60
Arg Phe Glu Asp Gly Gly Tyr Val Val Cys Asn Thr Arg Gln Asn Gly
65                  70                  75                  80
Ser Trp Gly Pro Glu Glu Arg Lys Thr His Met Pro Phe Gln Lys Gly
                85                  90                  95
Met Pro Phe Asp Leu Cys Phe Leu Val Gln Ser Ser Asp Phe Lys Val
            100                 105                 110
Met Val Asn Gly Ile Leu Phe Val Gln Tyr Phe His Arg Val Pro Phe
        115                 120                 125
His Arg Val Asp Thr Ile Ser Val Asn Gly Ser Val Gln Leu Ser Tyr
    130                 135             140
Ile Ser Phe Gln
145
【SEQ ID NO：8】
rhr Pro Ala Ile Pro Pro Met Met Tyr Pro His Pro Ala Tyr Pro Met
1               5                   10                  15
Pro Phe Ile Thr Thr Ile Leu Gly Gly Leu Tyr Pro Ser Lys Ser Ile
            20                  25                  30
Leu Leu Ser Gly Thr Val Leu Pro Ser Ala Gln Arg Phe His Ile Asn
        35                  40                  45
Leu Cys Ser Gly Asn His Ile Ala Phe His Leu Asn Pro Arg Phe Asp
    50                  55                  60
Glu Asn Ala Val Val Arg Asn Thr Gln Ile Asp Asn Ser Trp Gly Ser
65                  70                  75                  80
Glu Glu ATg Ser Leu Pro Arg Lys Met Pro Phe Val Arg Gly Gln Ser
                85                  90                  95
Phe Ser Val Trp Ile Leu Cys Glu Ala His Cys Leu Lys Val Ala Val
            100                 105                 110
Asp Gly Gln His Leu Phe Glu Tyr Tyr His Arg Leu Arg Asn Leu Pro
        115                 120                 125
Thr Ile Asn Arg Leu Glu Val Gly Gly Asp Ile Gln Leu Thr His Val
    130                 135                 140
Gln Thr
145
【SEQ ID NO：9】
Thr Gln Thr Val Ile His Thr Val Gln Ser Ala Pro Gly Gln Met Phe
1               5                   10                  15
Ser
【SEQ ID NO：10】
Asn Pro Arg Thr Val Pro Val Gln Pro Ala Phe Ser Thr Val Pro Phe
1               5                   10                  15
Ser Gln Pro Val Cys Phe Pro Pro Arg Pro Arg Gly Arg Arg Gln Lys
            20                  25                  30
Pro Pro Gly Val Trp Pro Ala Asn Pro Ala Pro Ile Thr Gln Thr Val
        35                  40                  45
Ile His Thr Val Gln Ser Ala Pro Gly Gln Met Phe Ser
    50                  55                  60
【SEQ ID NO：11】
Pro Pro Gly Val Trp Pro Ala Asn Pro Ala Pro Ile Thr Gln Thr Val
1               5                   10                  15
Ile His Thr Val Gln Ser Ala Pro Gly Gln Met Phe Ser
            20                  25
在本发明中，半乳糖凝集素9修饰体的活性与野生型(天然)半乳糖凝集素9的活性“实质上同等”是指，例如，上述半乳糖凝集素9修饰体保持天然型半乳糖凝集素9的糖链识别活性。从另外的观点看，半乳糖凝集素9修饰体的活性与野生型(天然)半乳糖凝集素9的活性“实质上同等”是指，例如，蛋白质的活性、更具体而言，例如，指定的细胞伤害活性、凋亡诱发活性、抗炎症活性、抗过敏活性、免疫调节活性、糖链结合活性、生理性的活性、生物学的活性是实质上相同。再者另外，在该用语的含意之中，可包含有实质上同质的活性的情况，作为该实质上同质的活性，可举出结合活性、细胞伤害活性、凋亡诱发活性等。该实质上同质的活性是指，它们的活性在性质上同质，例如，生理性地，药理学地，或者生物学地同质。例如，结合活性、细胞伤害活性、凋亡诱发活性等的活性优选是同等(例如，约0.001～约1000倍、优选为约0.01～约100倍、更优选为约0.1～约20倍、再优选为约0.5～约2倍)，这些的活性的程度、蛋白质的分子量等的量的要素不同也可。
本发明的其他目的、特征、优秀性及其有的观点由本领域技术人员根据以下记载明晰。但是，包括以下的记载及具体性的实施例等的记载的本说明书的记载是本发明的优选的实施方式，仅旨在说明。在本领域技术人员容易明白在本说明书中公开的本发明的意图及范围内，根据以下的记载及本说明书的其他部知的知识实施各种的变化及/或改变(或者修饰)。本说明书中引用的全部的专利文献及参考文献是以说明的目的引用的，被解释为它们作为本说明书之一部分其内容包含在其中。
在本发明中发现将半乳糖凝集素9在细胞表面表达的CD4阳性T细胞，发现其分泌半乳糖凝集素9而控制TH17细胞和Treg细胞的平衡，将其命名为THGAL9细胞。THGAL9细胞产生IL-10及在细胞表面表达潜伏相关肽(LAP)、NKG2D、淋巴细胞活化基因-3(LAG-3)、细胞毒性T-淋巴细胞抗原4(CTLA-4)提示其与Foxp3阴性的抑制性T细胞即Tr1细胞(非专利文献20～22)相同或是其部分集团的可能性。
Tr1细胞是在由浆细胞样树突细胞诱导的免疫宽容中发挥重要的作用的细胞(非专利文献20、23～25、15～18)、在体外将幼稚CD4+T细胞在IL-27或维生素D3/地塞米松的存在下给予TCR刺激而被诱导(非专利文献26～29)。作为Tr1细胞的细胞表面标志物已知前述的LAP，NKG2D，LAG-3，CTLA-4，这些由于在不产生IL-10的CD4+CD25+细胞中也表达，足够信赖的Tr1细胞标志物是被认为其功能的本体的抑制性细胞因子IL-10的高表达。然而IL-10的产生不仅是Tr1细胞，在包括Treg细胞的其他细胞群中也能见到，因此无法成为确定的标志物(非专利文献30～31)、另外指标在细胞内存在的IL-10的表达，也不存在简便地纯化活着的细胞的技术，使Tr1研究及其应用变得困难。
在本发明中，如前所述，也发现在细胞表面表达半乳糖凝集素9的THGAL9以外的免疫细胞。提示作为对它们的细胞群也THGAL9细胞同样地诊断的替代品标志物，或者使用细胞表面的半乳糖凝集素9纯化而应用于细胞疗法的可能性。
本发明提供分泌半乳糖凝集素9的细胞及其应用技术。例如，本发明提供分泌Gal-9和IL-10的类型1控制性T细胞及其应用技术。本发明鉴定可分泌半乳糖凝集素9的新颖的T细胞(THGAL9细胞)，提供可利用其的技术。也提供利用该THGAL9细胞，控制TH17细胞和Treg细胞的分化的技术。THGAL9细胞不仅在细胞表面表达半乳糖凝集素9，例如，也表达已知的Tr1细胞标志物，另外可分泌IL-10。在本发明中，也提供将半乳糖凝集素9作为Tr1细胞的标志物利用，将该Tr1细胞纯化的同时将其向治疗的应用利用的技术。在本发明中，提供进行将THGAL9细胞用TCR刺激，CD25的表达升高、半乳糖凝集素9或IL-10的分泌诱导的技术。另外，在本发明中，也提供通过将THGAL9细胞与付诸TH17细胞分化的幼稚T细胞共培养，抑制IL-17的产生，及/或，增加Treg细胞的技术。本发明另外提供在活体内，由THGAL9细胞进行免疫控制的技术。另外，本发明提供将细胞表面的半乳糖凝集素9作为标志物使用，区别控制性免疫细胞的细胞分别技术或，还有，将细胞表面的半乳糖凝集素9作为标志物使用，区别IL-10产生类型1控制性T细胞(Tr1细胞)的Tr1细胞分别技术。
在本发明发现的细胞、例如，THGAL9细胞在作为有生物活性的试剂，诊断材、作为治疗剂等，剂临床检查的领域、分析的领域、或者医学或药物等的领域中有用。
将本发明的细胞(例如，THGAL9细胞)从活体(动物)的组织分离(或者单离)的方法不特别限定，只要是本领域技术人员，可基于本申请说明书及附图的记载、以及本申请申请时的技术常识，无需过度的试行错误地进行。例如，将本发明的细胞(例如，THGAL9细胞)从活体(动物)的组织分离(或者单离)的方法如后述的实施例记载的一样，将细胞用抗半乳糖凝集素9抗体染色，由筛选分离(或者单离)的方法也可。
本发明的细胞(例如，THGAL9细胞)的制造方法也不特别限定，例如，从已经有本发明的细胞的动物的组织，分离(或者单离)本发明的细胞的方法也可。另外，除其之外，或者作为其代替，本发明的细胞的制造方法也可包括使在不将半乳糖凝集素9在细胞表面表达的细胞的细胞表面表达半乳糖凝集素9而转变成本发明的细胞的步骤。此步骤是，例如，可在活体内(invivo)进行，也可在活体外(invitro)进行。作为在活体内(invivo)进行的方法，例如，是如本发明之上述第1制造方法一样，通过向动物施用半乳糖凝集素9，在上述动物的至少一部分的细胞的细胞表面表达半乳糖凝集素9的方法也可。作为在活体外(invitro)进行的方法，例如，是如本发明之上述第2制造方法一样，将动物的细胞，通过在半乳糖凝集素9的存在下培养，在上述动物的细胞的细胞表面表达半乳糖凝集素9的方法也可。另外，本发明之上述第2制造方法是，例如，上述动物的细胞包括在细胞表面表达半乳糖凝集素9的细胞，将上述动物的细胞，通过在半乳糖凝集素9的存在下培养，增加在细胞表面表达半乳糖凝集素9的细胞的比例的本发明的细胞的制造方法也可。
本说明书中使用的用语“诊断剂”是指恭献于在本发明中的诊断中使用的1个或其以上的其诊断行为的任意的药剂。这些剂的向诊断的使用也可包括用于决定产生半乳糖凝集素9的细胞的存在的方法或用于决定提示半乳糖凝集素9结合性物质的细胞的存在的方法。作为诊断剂，例如，可举出含有选自在细胞表面表达半乳糖凝集素9的细胞或其细胞匀浆的剂。
本说明书中使用的用语“治疗剂”是达成或恭献于达成的在本发明中的治疗中使用的1个或其以上的其治疗行为的任意的药剂也可。例如，治疗剂是在细胞表面表达半乳糖凝集素9的细胞或其细胞匀浆时，该药剂可给哺乳动物施用。该治疗剂可，单独，或者与其他药剂(例如，在与半乳糖凝集素9修饰体的施用一同使用，并且对特定的肿瘤或自身免疫等的其他公知的处置法中使用的药物、或者可容易地进行哺乳动物的半乳糖凝集素9的表达的基因送达媒质等)组合而达成其治疗目的也可。例如，该治疗剂含为了其他目的开发的半乳糖凝集素9修饰体也可，还有，含半乳糖凝集素9的激动剂、修饰或调节半乳糖凝集素9活性的药物也可，例如，有机低分子量化合物或物质、肽、肽样化合物或物质、是表达编码半乳糖凝集素9修饰体多肽的多核苷酸、半乳糖凝集素9修饰体多肽、对蛋白酶相比天然的半乳糖凝集素9更稳定化的半乳糖凝集素9修饰体的嵌合体体或变体等并且转化的细胞也可。
本说明书中“患者”是指活着且可实施任意的治疗或预防处置的生物，包括真核生物，但不限于这些。例如，作为是患者的真核生物，是脊椎动物也可。从而，例如，患者优选为哺乳动物。作为哺乳动物，例如，可举出人。
以下说明本发明的治疗剂及/或诊断剂之一般制造及使用法。在1个实施方式中，本发明提供处置半乳糖凝集素9具有的生理活性或生物活性的不足或缺乏所导致的疾病-疾病-异常状态的技术。作为该处置技术，可举出例如，提供含有本发明的细胞(例如，THGAL9细胞等)的治疗剂的步骤及/或向有所述疾病等的哺乳动物施用有效量的含有本发明的细胞(例如，THGAL9细胞等)的治疗剂的步骤等。可使用本发明的细胞(例如，THGAL9细胞等)，至发挥对恶性肿瘤细胞的细胞伤害活性、对恶性肿瘤细胞的凋亡诱导活性、对恶性肿瘤细胞的抗肿瘤活性(抗癌活性)、活化T细胞的凋亡诱导活性、特别是CD4阳性T细胞的凋亡诱导活性、免疫调节活性、抗炎症作用、抗过敏作用，可期待为抗肿瘤剂(抗癌剂)、抗过敏剂、免疫调节剂、自身免疫疾病用剂、抗炎症剂及肾上腺皮质类固醇激素代替用剂。
该处置技术包含活化T细胞处置显著的自身免疫疾病的方法。“自身免疫疾病”、及“自身免疫”是指全部，在哺乳动物中的以自身免疫为特征的障碍(这是对自身成分的免疫系统的应答)。自身免疫应答可进展到现临床迹象的症状。严格地说，移植排斥不算自身免疫反应，患者症状性地取代细胞、组织、或者器官或接受被称为移植的外科手术时，接受同种移植的体，对外来移植免疫学地反应。在从种之一的成员向其他种的，细胞、组织、或者器官的同种移植中，在受体(受者)中为拒绝移植的细胞、组织、或者器官而发生充分的免疫应答时，发生“移植排斥”。
作为可由本发明的方法及治疗剂处置的“肿瘤”的例，可包括恶性肿瘤，例如，发生转移的肿瘤是恶性肿瘤，一般而言其恶性肿瘤有上皮性的和非上皮性的，有时也区分为癌、肉瘤、白血病等而考虑，简称为“癌”时，一般人指恶性肿瘤的多。在本说明书中“癌”可广义解释，不应单单解释为上皮性的恶性肿瘤。本说明书中“癌”可包括上皮性恶性肿瘤及非上皮性恶性肿瘤(包括肿瘤形成性的肿瘤，也包括非形成性的肿瘤)，可举出皮肤癌(也可包括黑色素瘤)、乳腺癌、卵巢癌、子宫癌、睾丸恶性肿瘤、前列腺癌、膀胱癌、肾癌、甲状腺癌、咽头-喉头癌、舌癌、上颚癌、食道癌、胃癌、结肠-直肠癌、肺-支气管癌、肝癌(包括肝细胞癌、肝内胆管癌)、肝外胆管-胆囊癌、胰腺癌、白血病、恶性淋巴瘤、浆细胞瘤、骨肉瘤、软骨肉瘤、平滑肌肉瘤、横纹肌肉瘤、脂肪肉瘤、纤维肉瘤、恶性血管瘤、恶性血管内皮瘤、脑肿瘤(包括脑膜瘤、神经胶质瘤、星形细胞瘤等)等，不限于这些，应理节为可包括使用本发明的细胞(例如，THGAL9细胞等)得到优选的结果的瘤，还有与本发明的细胞(例如，THGAL9细胞等)相关而得到任何的生理的或生物学的应答的瘤。
作为可由本发明的方法及治疗剂处置的“自身免疫疾病”的例，可举出多发性硬化症、桥本甲状腺炎、全身性红斑狼疮(SLE)、肺出血肾炎(Goodpasture)综合征、天疱疮、受体自身免疫、自身免疫溶血性贫血、自身免疫血小板减少性紫癜、变形性关节症、慢性类风湿性关节炎、由抗胶原抗体的硬皮症(schleroderma)、复合化结缔组织病、多发性肌炎、恶性贫血、特发性Addison病、自发性不育症、肾小球肾炎、水疱性类天庖疮、肾上腺素作用性药物抗性、慢性活性肝炎、原发性胆汁性肝硬化、基于自身免疫的内分泌腺不全、白斑、脉管炎、心肌梗塞后遗症(post-myocardialinfarction)、心脏穿孔综合征、荨麻疹、特应性皮肤炎、基于自身免疫的哮喘、基于自身免疫的炎症性反应、肉芽肿症障碍、强直性(alkylizing)脊椎炎、链球菌感染后(poststreptococcal)肾小球肾炎、自身免疫溶血性贫血、脑炎、对淋巴瘤的二次的自身免疫反应、变性障碍、萎缩性障碍等。作为表现受体自身免疫的自身免疫疾病，可举出例如，格雷夫斯病、重症肌无力症、胰岛素抗性症等。作为肾上腺素性药物抗性的自身免疫疾病，可举出例如，哮喘及囊胞性纤维症等。
作为在本发明中的其他自身免疫疾病，可举出例如，存在动物模型的，可举出例如，斯耶格伦综合征(自身免疫泪腺炎(dacryodentis)或免疫媒介唾液腺炎)、自身免疫心肌炎、原发性胆汁性肝硬化(PBC)、炎症性心脏病、水银诱导性肾自身免疫、胰岛素依赖性糖尿病(I型糖尿病或IDD)、胸腺切除术后自身免疫、中枢神经系统(CNS)脱髓障碍、CNS狼疮、睡眠发作、免疫媒介PNS障碍、变形性关节症、慢性类风湿性关节炎、葡萄膜炎、髓质囊胞性纤维症、自身免疫溶血性疾病、自身免疫脉管炎、卵巢自身免疫疾病、硬皮症(scheroderma)等。作为以中枢神经系统(CNS)脱髓障碍为特征的自身免疫疾病，可举出例如，多发性硬化症(MS)等。末梢神经系统(PNS)自身免疫疾病是，例如，格林-巴利综合征(GBS)也可。
本发明公开将患包括癌等的恶性肿瘤的肿瘤、过敏性疾病、炎症、免疫异常、包括活化淋巴细胞(特别可举出活化T细胞，另外包括活化B细胞也可)的自身免疫疾病等的疾病或疾病的哺乳动物通过用含选自本发明的细胞(例如，THGAL9细胞等)、其破碎物及提取物的至少一种的治疗剂(例如，作为治疗活性成分含本发明的细胞(例如，THGAL9细胞等)或所述细胞刺激剂等的组合物)的施用处置的方法。作为可由本发明的方法及组合物处置的自身免疫疾病，可举出任意的自身免疫疾病或移植排斥(例如，包括本说明书中列举的自身免疫疾病，但不限于它们)。
关于本发明，对癌等的包括恶性肿瘤细胞的肿瘤细胞得到细胞伤害作用，或得到抗过敏作用，或得到抗炎症作用，或使免疫异常正常化，或对活化淋巴细胞(特别是包括活化T细胞也可)诱导凋亡时，也应与上述自身免疫的情况同样地理解。
含选自本发明的细胞(例如，THGAL9细胞等)、其破碎物及提取物的至少一种的，可为抗肿瘤剂、抗过敏剂、免疫调节剂、自身免疫疾病用剂、抗炎症剂、与肾上腺皮质类固醇激素利用同样的活性的药剂，被认为对如下所示的病的症状以及疾病示有用的生物活性。
在炎症性疾病中有在各器官发生的各种的急性及慢性炎症、过敏性及自身免疫性的炎症、感染症等。
作为急性及慢性疾病，在肺炎中可举出，例如，支气管炎、支气管肺炎、间质性肺炎、肺脏炎、细支气管炎或急性纵隔炎等，还包括其他器官的炎症、例如，心外膜炎、心内膜炎、心肌炎、口内炎、口角炎、扁桃炎、咽头炎、喉头炎、食道炎、腹膜炎、急性胃炎、慢性胃炎、急性肠炎、虫垂炎、虚血性大肠炎、药性质大肠炎、直肠炎、A型肝炎、B型肝炎、C型肝炎、剧症肝炎、慢性肝炎等的各种的急性及慢性肝炎或肝硬化、胆囊炎、急性胰炎、慢性胰炎、另外急性及慢性肾炎、膜性肾炎、肾小球肾炎、IgA肾症等或，各种的膀胱炎、脑髓炎、乳腺炎、皮肤炎、表层角膜炎、干性角结膜炎、各种中耳炎或鼻炎、副鼻腔炎或鼻茸等，齿肉炎、齿周炎、齿周围炎等，各种各种各样的炎症。
另外，含选自本发明的细胞(例如，THGAL9细胞等)、其破碎物及提取物的至少一种的，例如，对神经性炎症(例如，神经性胃炎、神经性膀胱炎等)也可发挥效果。例如，半乳糖凝集素9在辣椒素诱导神经性皮肤炎症模型中，确认对其炎症反应的强的抑制效果。辣椒素是通过刺激末梢神经，引起神经性炎症或痛的物质。辣椒素有作为储藏在知觉神经C纤维末端的神经肽的物质P的游离刺激作用。物质P有从肥胖细胞使组胺游离的作用，结果血管扩张，发生浮肿。另外，由游离的组胺而知觉神经受刺激，从C纤维末端放出物质P，作用于其周围的肥胖细胞，再成立被称为使组胺游离的增强循环。半乳糖凝集素有此病态形成的抑制作用。
再者，辣椒素与作为感觉神经终末的疼痛接受传感器的辣椒素受体(类香兰素受体)结合，引起疼痛。疼痛由化学刺激(酸等)、热刺激(热汤等)或过量的机械的刺激(打扑等)而感觉神经终末被活化而引起，辣椒素受体与由这样的刺激的疼痛也相关。从而提示，半乳糖凝集素9抑制由辣椒素受体的神经终末的活化，也可期待伴随癌或炎症的疼痛的减轻等、向镇痛作用的可能性。
在过敏性炎症疾病中，可举出全身性过敏反应、支气管哮喘、过敏性肺炎、花粉症、过敏性鼻炎、过敏性结膜炎、免疫复合物引起的过敏性疾病、血管神经性浮肿等。
另外，在自身免疫性的炎症(自身免疫疾病)中，有全身性(慢性类风湿性关节炎、全身性红斑狼疮(红斑狼疮)、结节性多发性动脉炎、硬皮症、多发性肌炎-皮肤肌炎、斯耶格伦综合征、贝切特病等)、神经系统(多发性硬化症、重症肌无力症、HAM(HTLV-1脊髓症)、肌萎缩性侧索硬化症等)、内分泌性(格雷夫斯病、桥本病、1型糖尿病等)、血液(特发性血小板减少性紫癜、自身免疫性溶血性贫血、再生不良性贫血等)、呼吸器(结节病、肺纤维症等)、消化管(溃疡性大肠炎、克隆病等)、肝脏(自身免疫性肝炎、原发性胆汁性肝硬化、原发性硬化性胆管炎、自身免疫性胆管炎等)、肾-尿路系统(抗嗜中性粒细胞细胞质抗体关联肾炎、血管炎、肺出血肾炎综合征、抗肾小球基底膜抗体病等)等。
感染症是病原体通过伤害活体的细胞-组织-器官而发生的疾病的总称。再有，对于感染症可参考，监修：町并陆生、编集：秦顺一、坂本穆彦、“标准病理学(第2版)”、医学书院、2002年3月15日发行。在给人带来感染症的病原体中，有1)细菌(包括螺旋体、衣原体、立克次氏体)、2)病毒、3)真菌、4)植物(藻类)、5)原虫、6)寄生虫(吸虫、条虫、线虫)、7)节足动物。在各病原体带来的主要的疾病中，可举出细菌性感染症(霍乱、瘟疫、大肠杆菌感染症等)、螺旋体感染症(钩端螺旋体症等)、衣原体感染症(鹦鹉热等)、立克次氏体感染症(斑疹伤寒、破伤风等)、病毒性感染症(带状疱疹、病毒性出血热、狂犬病等)、真菌症(念珠菌症、隐球菌症、曲霉菌症等)、原虫性疾病(阿米巴赤痢、疟疾、弓形虫症等)、寄生虫(吸虫症、线虫症等)、其他、支原体感染症(支原体肺炎等)、分枝杆菌感染症(结核、非定型抗酸菌症等)。
对于癌及肉瘤，可举出脑肿瘤(多型性胶芽肿等)、脊髓肿瘤、上颚洞癌、胰液腺癌、齿肉癌、舌癌、口唇癌、上咽头癌、中咽头癌、下咽头癌、喉头癌、甲状腺癌、副甲状腺癌、肺癌、胸膜肿瘤、癌性腹膜炎、癌性胸膜炎、食道癌、胃癌、大肠癌、胆管癌、胆囊癌、胰腺癌、肝癌、肾脏的癌、膀胱癌、前列腺癌、阴茎癌、精巢肿瘤、肾上腺的癌、子宫颈癌、子宫体癌、膣癌、外阴癌、卵巢癌、纤毛上皮肿、恶性骨肿瘤、软部肉瘤、乳腺癌、皮肤癌、恶性黑色肿、基底细胞瘤、白血病、伴随骨髓化性的骨髓纤维症、恶性淋巴瘤、霍奇金病、浆细胞瘤、神经胶质瘤等。
根据本发明，例如，如前所述，在含或不含上述本发明的细胞的动物组织中，由上述本发明的细胞检测方法，通过定性的或定量检测上述本发明的细胞，可诊断动物的疾病或源于上述疾病的症状。上述动物的疾病不特别限定，例如，可举出前述的各疾病。另外，根据本发明，例如，如前所述，动物的疾病的治疗效果的判断方法包括：对于上述动物进行上述疾病的治疗的步骤，在上述治疗之前后，分别由本发明的上述动物的疾病或源于上述疾病的症状的诊断方法，诊断上述疾病或源于上述疾病的症状的步骤，由在上述治疗之前后，对比上述诊断结果的步骤，可判断动物的疾病的治疗效果。上述动物的疾病不特别限定，例如，可举出前述的各疾病。
【实施例】
接下来用实施例具体说明本发明，但此实施例仅用于本发明的说明，为了该具体性的实施方式的参考提供。这些的例示为说明本发明的特定的具体性的实施方式，不是限定本申请中公开的发明的范围，或者表示限制。在本发明中，应理解为基于本说明书的思想的各种各样的实施方式是可能的。
以下的实施例只要是本领域技术人员，基于所述在实施例中的详细的记载及本申请申请时的技术常识，无需过度的试行错误就可实施。另外，在以下的实施例中，在观察的现象示发生的机制的考察时，其机制示可能性之一，不限制本发明。
〔实验材料及方法〕
接下来记特别是重要的实验材料及方法的明细。
【重组体半乳糖凝集素9】
本实施例中使用的重组体半乳糖凝集素9全部是人稳定化半乳糖凝集素9(G9NC(空))，根据已报道(非专利文献12、33、专利文献1)的方法制备。标品由SDS-PAGE及考马斯-亮蓝染色的蛋白质纯度检验是95％以上、另外由鲎比浊动态试验的内毒素混入量是每1mg人稳定化半乳糖凝集素0.1ng以下。另外，人稳定化半乳糖凝集素9的向小鼠Tim-3的结合亲和性与小鼠半乳糖凝集素9同等。摩尔浓度的计算作为分子量33065进行。
再有，专利文献1中记载的，人稳定化半乳糖凝集素9(G9NC(空))的制备方法如下。
(A)表达半乳糖凝集素9修饰体的载体的构建
在表达载体的制备，使用
(1)从Jurkat细胞的聚(A)+RNA级分制备的cDNA
(2)pET-11a载体(STRATAGENE)
(3)PCR用引物：
G9NCRD1                               ：
CGTCCTCATATGGCCTTCAGCGGTTCCCAGSEQ ID NO：1
G9NCRD6                               ：
CGACCGCATATGCTGGAAGCTGATGTAGGACAGSEQ ID NO：2
G9CCRD5                               ：
CGTCCTCATATGACTCCCGCCATCCCACCTATGSEQ ID NO：3
G9CCRD6                               ：
CGACCGGGATCCCTATGTCTGCACATGGGTCAGSEQ ID NO：4
。
Jurkat细胞(T细胞来源细胞)从美国典型培养物保藏中心(ATCC)得到。将细胞系在添加10％FCS的RPMI-1640培养基(Sigma、St.Louis、美国)中在5％CO2的条件下于37℃维持。从Jurkat细胞的总RNA的提取如以下一样进行。即，使用含10％FBS的RPMI-1640培养基将培养的Jurkat细胞离心集合。用10ml的PBS将细胞清洗2次。向清洗的细胞的沉淀加每细胞2×108个15ml的ISOGEN(商品名：日本基因)，根据手册(日本基因)提取总RNA。从总RNA的聚(A)+RNA的纯化和cDNA合成如以下一样进行。即，将从Jurkat细胞提取的总RNA溶解于DEPC处理水至成1mg/ml的浓度。使用聚ATtractmRNA分离系统(商品名：Promega)，根据手册从总RNA纯化聚(A)+RNA。将纯化的聚(A)+RNA溶解于DEPC处理水至成5μg/20μl的浓度。使用第一链cDNA合成试剂盒(商品名：AmershamBiosciences)，根据手册从5μg的聚(A)+RNA合成cDNA(在引物中使用NotI-d(T)18)。
接下来，以示于下述方案的顺序向pET-11a载体的NdeI-BamHI位点插入半乳糖凝集素9的N-末端侧糖链结合结构域(N-terminalcarbohydraterecognitiondomain，NCRD)和C-末端侧糖链结合结构域(CCRD)，制备缺失接头肽的改变型半乳糖凝集素9(G9NC(空))的表达载体。
Figure GSB00001106601900441
首先，从半乳糖凝集素9cDNA取得各自(1)对应于人半乳糖凝集素9的C-末端侧CRD的cDNA和(2)对应于人半乳糖凝集素9的N-末端侧CRD的cDNA。即，从cDNA使用PCR用引物：G9CCRD5+G9CCRD6扩增对应于人半乳糖凝集素9的C-末端侧CRD的cDNA(G9CCRD)。将G9CCRD用限制酶(NdeI+BamHI)切断之后，插入到用相同的限制酶处理的pET-11a载体而得到pET-G9CCRD。PCR使用KODDNA聚合酶试剂盒(TOYOBOCodeNo.KOD-101)进行。将PCR反应混合物(dNTPmix，25mMMgCl2，10×Buffer，KODDNA聚合酶(0.05u)，引物及模板cDNA)在如以下一样的PCR的循环的条件下反应：于94℃处理2分钟之后，循环(于98℃处理15秒钟、接下来于65℃处理2秒钟、然后于74℃处理30秒钟)25次，最后，于4℃停止反应。PCR扩增的片段的向载体的插入使用Ligationhighkit(TOYOBOCodeNo.LGK-101)进行。反应是，将插入子：载体的摩尔比以约5∶1混合，加该总DNA溶液(体积)量的1/2(体积)量的试剂Ligationhigh混合而进行。于16℃反应16小时(O/N)而插入。
另一方面，从该半乳糖凝集素9cDNA使用PCR用引物：G9NCRD1+G9NCRD6扩增对应于人半乳糖凝集素9的N-末端侧CRD的cDNA(G9NCRD)。将G9NCRD用限制酶(NdeI)切断之后，将得到的片段用相同的限制酶(NdeI)处理，再者插入到脱磷氧化的pET-G9CCRD而得到pET-G9NC(空)。PCR扩增以及向载体的组合与上述同样地进行。pET-G9NC(空)编码有将人的M型半乳糖凝集素9的从第149Pro至第177Ser的29个氨基酸序列置换成His-Met序列的氨基酸序列的多肽。即，具有下述SEQ ID NO：5所示的碱基序列，编码有下述SEQ ID NO：6所示的氨基酸序列的多肽。
【SEQ ID NO：5】
atg gcc ttc agc ggt tcc cag gct ccc tac ctg agt cca gct gtc ccc      48
Met Ala Phe Ser Gly Ser Gln Ala Pro Tyr Leu Ser Pro Ala Val Pro
1               5                   10                  15
ttt tct ggg act att caa gga ggt ctc cag gac gga ctt cag atc act      96
Phe Ser Gly Thr Ile Gln Gly Gly Leu Gln Asp Gly Leu Gln Ile Thr
            20                  25                  30
gtc aat ggg acc gtt ctc agc tcc agt gga acc agg ttt gct gtg aac     144
Val Asn Gly Thr Val Leu Ser Ser Ser Gly Thr Arg Phe Ala Val Asn
        35                  40                  45
ttt cag act ggc ttc agt gga aat gac att gcc ttc cac ttc aac cct     192
Phe Gln Thr Gly Phe Ser Gly Asn Asp Ile Ala Phe His Phe Asn Pro
    50                  55                  60
cgg ttt gaa gat gga ggg tac gtg gtg tgc aac acg agg cag aac gga     240
Arg Phe Glu Asp Gly Gly Tyr Val Val Cys Asn Thr Arg Gln Asn Gly
65                  70                  75                  80
agc tgg ggg ccc gag gag agg aag aca cac atg cct ttc cag aag ggg     288
Ser Trp Gly Pro Glu Glu Arg Lys Thr His Met Pro Phe Gln Lys Gly
                85                  90                  95
atg ccc ttt gac ctc tgc ttc ctg gtg cag agc tca gat ttc aag gtg     336
Met Pro Phe Asp Leu Cys Phe Leu Val Gln Ser Ser Asp Phe Lys Val
            100                 105                 110
atg gtg aac ggg atc ctc ttc gtg cag tac ttc cac cgc gtg ccc ttc     384
Met Val Asn Gly Ile Leu Phe Val Gln Tyr Phe His Arg Val Pro Phe
        115                 120                 125
cac cgt gtg gac acc atc tcc gtc aat ggc tct gtg cag ctg tcc tac     432
His Arg Val Asp Thr Ile Ser Val Asn Gly Ser Val Gln Leu Ser Tyr
    130                 135                 140
atc agc ttc cag cat atg act ccc gcc atc cca cct atg atg tac ccc     480
Ile Ser Phe Gln His Met Thr Pro Ala Ile Pro Pro Met Met Tyr Pro
145                 150                 155                 160
cac ccc gcc tat ccg atg cct ttc atc acc acc att ctg gga ggg ctg     528
His Pro Ala Tyr Pro Met Pro Phe Ile Thr Thr Ile Leu Gly Gly Leu
                165                 170                 175
tac cca tcc aag tcc atc ctc ctg tca ggc act gtc ctg ccc agt gct     576
Tyr Pro Ser Lys Ser Ile Leu Leu Ser Gly Thr Val Leu Pro Ser Ala
            180                 185                 190
cag agg ttc cac atc aac ctg tgc tct ggg aac cac atc gcc ttc cac     624
Gln Arg Phe His Ile Asn Leu Cys Ser Gly Asn His Ile Ala Phe His
        195                 200                 205
ctg aac ccc cgt ttt gat gag aat gct gtg gtc cgc aac acc cag atc     672
Leu Asn Pro Arg Phe Asp Glu Asn Ala Val Val Arg Asn Thr Gln Ile
    210                 215                 220
gac aac tcc tgg ggg tct gag gag cga agt ctg ccc cga aaa atg ccc     720
Asp Asn Ser Trp Gly Ser Glu Glu Arg Ser Leu Pro Arg Lys Met Pro
225                 230                 235                 240
ttc gtc cgt ggc cag agc ttc tca gtg tgg atc ttg tgt gaa gct cac     768
Phe Val Arg Gly Gln Ser Phe Ser Val Trp Ile Leu Cys Glu Ala His
                245                 250                 255
tgc ctc aag gtg gcc gtg gat ggt cag cac ctg ttt gaa tac tac cat     816
Cys Leu Lys Val Ala Val Asp Gly Gln His Leu Phe Glu Tyr Tyr His
            260                 265                 270
cgc ctg agg aac ctg ccc acc atc aac aga ctg gaa gtg ggg ggc gac     864
Arg Leu Arg Asn Leu Pro Thr Ile Asn Arg Leu Glu Val Gly Gly Asp
        275                 280                 285
atc cag ctg acc cat gtg cag aca tag                                 891
Ile Gln Leu Thr His Val Gln Thr
    290                 295
【SEQ ID NO：6】
Met Ala Phe Ser Gly Ser Gln Ala Pro Tyr Leu Ser Pro Ala Val Pro
1               5                   10                  15
Phe Ser Gly Thr Ile Gln Gly Gly Leu Gln Asp Gly Leu Gln Ile Thr
            20                  25                  30
Val Asn Gly Thr Val Leu Ser Ser Ser Gly Thr Arg Phe Ala Val Asn
        35                  40                  45
Phe Gln Thr Gly Phe Ser Gly Asn Asp Ile Ala Phe His Phe Asn Pro
    50                  55                  60
Arg Phe Glu Asp Gly Gly Tyr Val Val Cys Asn Thr Arg Gln Asn Gly
65                  70                  75                  80
Ser Trp Gly Pro Glu Glu Arg Lys Thr His Met Pro Phe Gln Lys Gly
                85                  90                  95
Met Pro Phe Asp Leu Cys Phe Leu Val Gln Ser Ser Asp Phe Lys Val
            100                 105                 110
Met Val Asn Gly Ile Leu Phe Val Gln Tyr Phe His Arg Val Pro Phe
        115                 120                 125
His Arg Val Asp Thr Ile Ser Val Asn Gly Ser Val Gln Leu Ser Tyr
    130                 135                 140
Ile Ser Phe Gln His Met Thr Pro Ala Ile Pro Pro Met Met Tyr Pro
145                 150                 155                 160
His Pro Ala Tyr Pro Met Pro Phe Ile Thr Thr Ile Leu Gly Gly Leu
                165                 170                 175
Tyr Pro Ser Lys Ser Ile Leu Leu Ser Gly Thr Val Leu Pro Ser Ala
            180                 185                 190
Gln Arg Phe His Ile Asn Leu Cys Ser Gly Asn His Ile Ala Phe His
        195                 200                 205
Leu Asn Pro Arg Phe Asp Glu Asn Ala Val Val Arg Asn Thr Gln Ile
    210                 215                 220
Asp Asn Ser Trp Gly Ser Glu Glu Arg Ser Leu Pro Arg Lys Met Pro
225                 230                 235                 240
Phe Val Arg Gly Gln Ser Phe Ser Val Trp Ile Leu Cys Glu Ala His
                245                 250                 255
Cys Leu Lys Val Ala Val Asp Gly Gln His Leu Phe Glu Tyr Tyr His
            260                 265                 270
Arg Leu Arg Asn Leu Pro Thr Ile Asn Arg Leu Glu Val Gly Gly Asp
        275                 280                 285
Ile Gln Leu Thr His Val Gln Thr
    290                 295
(B)半乳糖凝集素9修饰体重组蛋白质的表达及纯化
将在上述步骤(A)得的表达用质粒载体pET-G9NC(空)导入大肠杆菌(BL21(DE3))。导入由电穿孔法进行。即，将感受态BL21(DE3)与质粒载体水溶液混合，由在1.8kV的电压的电穿孔法进行转染。
重组蛋白质的表达通过将大肠杆菌在含有2％(w/v)葡萄糖及100μg/ml氨苄西林的2×YT培养基中培养，在600nm的吸光度达0.7的时间点添加0.1M异丙基-β-D-硫代吡喃半乳糖(最终浓度、0.1mM)，诱导重组蛋白质的表达来进行。于20℃培养18小时之后，由离心集合菌体，悬浮于10mMTris-HCl(pH7.5)，0.5MNaCl，1mMDTT，1mMPMSF。将悬浮液10分钟声波处理之后，加10％(w/v)TritonX-100(最终浓度、1％)于4℃搅拌30分钟。以15，000×g离心30分钟，将得到的上清液中的重组蛋白质由使用乳糖-琼脂糖的亲和层析纯化。在内毒素的除去中使用Cellufine ET CleanL(CHISSO)，内毒素除去通过使用毒素计量仪的鲎比浊动力学法确认。
结果，以比较高的收率得到纯度高的标品。得到的重组蛋白质的电泳的结果示于图28。SDS-PAGE条件如下：Gel，丙烯酰胺-BIS(12％gel)，电泳用缓冲液，25mMTris-192mM甘氨酸-0.1％SDS，电泳条件，180V，45min.，染色，CBB，60℃/30min。使电泳样品吸附到StrataCleanTMResin(Stratagene)，用1×样品缓冲液(62.5mMTris-HCl，Ph6.8，2％(w/v)SDS，5％(W/V)2-ME，甘油)调节到0.2mg/ml，用98℃/3min.的每热处理后泳道约2μg的蛋白量进行电泳。纯化的G9NC(空)可保存至于4℃稳定600天以上。
【抗体】
在细胞的染色中，使用以下的抗体。抗小鼠CD4-FITC抗体(BectonDiekinson或eBioscience，SanDiego，CA)、抗小鼠Tim-3-PE抗体(eBioscience)、抗小鼠半乳糖凝集素9-Alexa488抗体(克隆108A2、Gαrma)、抗小鼠半乳糖凝集素9-PE抗体(克隆108A2、Biolegend)、抗小鼠CD25-APC抗体(Biolegend)、抗小鼠Foxp3-APC抗体(eBioscience)、抗人/小鼠LAP-PE抗体(R&DSystems)、抗小鼠NKG2D-PE抗体(Biolegend)、抗小鼠LAG-3-PE抗体(Biolegend)、抗小鼠CTLA-4-PE抗体(Biolegend)、抗小鼠IL-17抗体-(FACS用)、抗小鼠PDCA-1-APC抗体(Biolegend)、抗小鼠CDllc-Alexa488抗体(Biolegend)、抗小鼠CD19抗体(Biolegend)、抗小鼠GL-7抗体(Biolegend)、抗小鼠CXCR4抗体(Biolegend)、抗小鼠ICOS-PE抗体(eBiosciences)、抗小鼠CXCR5-APC抗体(BDPharmingen)抗人半乳糖凝集素9-Alexa488抗体(克隆9M1-3、Gαrma)、抗人CD4-FITC抗体(Biolegend)、抗人CD4-PE抗体(Biolegend)、抗人CD25-APC抗体(Biolegend)、抗人/小鼠Foxp3-PE抗体(Biolegend)、抗小鼠IL-10抗体(Biolegend)、抗小鼠IL-10中和抗体(R&DSystems)、抗小鼠IL-10R中和抗体(R&DSystems)、抗小鼠TGF-β中和抗体(R&DSystems)。
【其他试剂】
在凋亡测定中使用膜联蛋白V-EGFP凋亡检测试剂盒(Medical&BiologicalLaboratories，Nagoya，Japan)。在细胞内部抗原的染色中使用BDCytofix/CytopermKit(BectonDickinson)进行细胞的固定化及细胞膜渗透化。这些试剂盒根据厂商提供的使用说明书使用。
【流式细胞术】
染色的细胞的测定使用FACSCalibur(BectonDickinson)进行，在数据的解析中使用FlowJosoftware(TreeStar，Ashland，OR)。在有必要进行细胞的分离时使用FACSAria(BectonDickinson)。
【ELISA】
人半乳糖凝集素9浓度的定量根据已报道的方法进行(非专利文献34)。
小鼠半乳糖凝集素9浓度的定量根据已报道的方法(非专利文献16)，改良以下的3点而进行。第一是将向板包被的抗小鼠半乳糖凝集素9抗体变更为克隆108A2(Gαrma)的点，第二是向检测用的抗体使用生物素标记的抗小鼠半乳糖凝集素9多克隆抗体(Gαrma)的点、第三是伴随检测用抗体的变更而代替第三抗体而使用辣根过氧化物酶标记的链霉亲和素(Endogen)来进行发色反应的点。此系统特异性地检测小鼠半乳糖凝集素9，向测定样品中添加30nM人稳定化半乳糖凝集素9也不反应。小鼠或人IL-17A、小鼠TNF-α、小鼠IL-12、小鼠IFN-γ、小鼠IL-13的检测使用各自适当的DuoSet(R&DSystems)，在小鼠IL-10的检测中使用小鼠IL-10ELISAMAXStandard(Biolegend)，在抗小鼠SRBCIgM的检测中，使用小鼠抗-SRBCIgMELISA试剂盒(LifeDiagnostics)、小鼠全IgM抗体及小鼠全IgG抗体的检测分别使用小鼠总IgMELISA试剂盒和小鼠总IgGELISA试剂盒(一同Bethyl)，抗dsDNA抗体的检测使用Lewis抗dsDNA-小鼠ELISA试剂盒(柴山羊)，各自根据厂商提供的使用说明书进行。
【动物】
C57BL/6J小鼠及MRL/MpJUmmCrj-1pr/1pr小鼠由日本Charles River(Yokohama，Japan)，同系统的半乳糖凝集素9敲除小鼠及小鼠半乳糖凝集素9转基因小鼠由Gαrma(Takamatsu，Japan)得到。Lewis系大鼠(LEW/Ssn)由日本SLC(Hamamatsu，Japan)得到。在供于实验的小鼠中，给以每12小时的日夜节律可自由采食-采水的通常的环境，根据国法和国际指针的人道的关怀饲育。另外本研究流程得到香川大学实验动物委员会的承认。
接下来说明实验方法。
〔小鼠幼稚T细胞的单离和培养〕
CD4+CD62L+幼稚T细胞由从8～10周龄的雄性C57BL/6J小鼠得到的脾脏细胞使用CD4+CD62L+T细胞分离试剂盒(MiltenyiBiotec，BergischGladbach，Germany)，根据厂商提供的使用说明书单离，得到纯度是94％以上的幼稚T细胞。将幼稚T细胞悬浮于含10％的热灭活的牛胎儿血清及青霉素G(10IU/ml，Sigma-Aldrich)和链霉素(100μg/ml，Sigma-Aldrich)的RPMI1640(Sigma-Aldrich，St.Louis，MO)培养基中，将抗CD3抗体向以1μg/ml的浓度包被的96-孔板(BectonDickinson)以2×105细胞/0.1ml/孔的密度接种而添加抗CD28抗体(2μg/ml，BectonDickinson)后，在37度的CO2温育器内培养72-96小时。在TH17细胞分化诱导中，向此系中添加人TGF-β1(3ng/ml，R&Dsystems)、小鼠IL-2(5ng/ml，R&Dsystems)及小鼠IL-6(20ng/ml，R&Dsystems)。在TH1细胞分化诱导中，添加小鼠IL-12(10mg/ml，R&Dsystems)及抗IL-4抗体(10μg/ml，BectonDickinson)，在TH2细胞分化诱导中，添加小鼠IL-4(20mg/ml，R&Dsystems)及抗IL-12抗体(10μg/ml，BectonDickinson)。在Tr1分化中，使用将抗CD3抗体以10μg/ml的浓度包被的96-孔板，在2μg/ml的抗CD28抗体和25ng/ml的IL-27存在下将幼稚T细胞培养3天。另外根据实验添加人稳定化半乳糖凝集素9(30nM)、乳糖(3，10，30mM)、蔗糖(3，10，30mM)、抗Tim-3中和抗体(10μg/ml，eBioscience)或大鼠IgG2a(10μg/ml，eBioscience)等而进行培养。
〔THGAL9细胞的向THl7细胞分化的作用〕
将CD25阴性THGAL9(在细胞表面表达半乳糖凝集素9的CD25-CD4+T细胞)和非-THGAL9细胞(细胞表面半乳糖凝集素9-CD25-CD4+T细胞)通过筛选单离(细胞纯度97％以上)。另一方面，将幼稚T细胞在THl7分化诱导条件下培养6小时而付诸于向TH17的分化之后，回收，与CD25阴性THGAL9或非-THGAL9细胞以1∶1(5×104细胞∶5×104细胞)的比混合，其后用仅TCR刺激培养90小时。为了抑制半乳糖凝集素9的作用，向系统中添加30mM的乳糖。
〔人CD4T细胞的单离和培养〕
末梢血单核细胞是将健康人的末梢血覆盖到比重分离液(Lymphosepar、NakalaiTesque，Kyoto，Japan)，根据厂商提供的使用说明书离心分离而单离。由得到的末梢血单各细胞使用CD4+T细胞分离试剂盒II(MiltenyiBiotec)，根据厂商提供的使用说明书单离CD4T细胞。为了对CD4+T细胞进行TCR刺激，与小鼠幼稚T细胞的培养同样地，将细胞悬浮于含10％的热灭活的牛胎儿血清及青霉素G和链霉素的RPMI1640培养基中，向将抗CD3抗体以1μg/ml的浓度包被的96-孔板以2×105细胞/0.1ml/孔的密度接种而添加抗CD28抗体(2μg/ml，BectonDickinson)后，培养96小时。
为了由此培养细胞分离人THGAL9细胞及人非-TH17细胞，将细胞用抗人半乳糖凝集素9-Alexa488抗体(克隆9M1-3、Gαrma)染色，使用FACSAria进行筛选。筛选后的细胞纯度是97％以上。将细胞在上述的TCR刺激下再培养96小时，供于实验。人CD4+T细胞的向TH17细胞的分化诱导使用已报道(非专利文献35)的方法。简言之，除了上述TCR刺激之外使用人IL-2(5ng/ml，R&Dsystems)，再在人IL-1β(50ng/ml，R&Dsystems)或同IL-1β和IL-6的组合，或者同IL-lβ和小鼠IL-23(50ng/ml，R&Dsystems)的组合刺激下培养9天。
〔实时RT-PCR〕
mRNA的定量根据已报道用实时RT-PCR法进行，在扩增的核酸的染色中使用SYBRGreenI，在测定中使用ABIPRISM7000测序仪(AppliedBiosystems，FosterCity，CA)(非专利文献36)。引物由宝生物(Otsu，Japan)购入。特定的表达mRNA的量是将由同方法定量的甘油醛-3-磷酸脱氢酶(GAPDH)的表达mRNA的量作为内部标准以其比表示。
〔统计解析〕
在数据的统计解析中使用解析软件Prism(Graphpadsoftware)，由非参数两尾Mann-whitney法、Logranktest法、及2-wayANOVA法等判断统计的显著差异的有无，p＜0.05为显著。柱状图或折线坐标图的数据全部是平均值±SEM(n＞3)。
〔实验结果和考察〕
〔人稳定化半乳糖凝集素9向大鼠关节炎示持续的治疗效果〕
图1示在大鼠胶原诱导性关节炎中的人稳定化半乳糖凝集素9的治疗效果。致敏中使用的胶原溶液周以下的方法调节。将牛II型胶原(BCII；CollagenResearchCenter)和胞壁酰二肽(MDP；PeptideInstitute)混合至各自成1.6mg/ml和0.4mg/ml，添加与其同体积的不完全弗氏佐剂(IFA；Difco)而混合，乳化。将此胶原溶液对Lewisrat(♀，6～7周龄)每一只1ml施用到背部皮内(第0天)。施用分散到至少10位置/大鼠进行。在第7天将同样地制备的胶原溶液0.3ml/大鼠向尾基底部加强施用。稳定化半乳糖凝集素9根据由加强施用后第7天表示的用量-进度表皮下施用(a)。伴随关节炎发症的足的肿胀的测定是2人的观察者各自独立地使用器官充满度测量器(MuromachiKikaiCo.，Ltd)进行。经时测定两后足的体积的合计，以自初期值的变化比例(％)表示。将人稳定化半乳糖凝集素9在本模型中每周3次皮下施用，则将已经发症的关节的肿大用量依赖性地缩小，以0.06mg/kg呈大致完全的治疗效果(b)。接下来将施用量固定到0.6mg/kg，以每周1次和每周2次施用比较治疗效果时，两者均示大致同等的治疗效果(c)。熟知由皮下注射药效持续的例，例如由抗体药皮下施用则由于缓慢地放出到血中，相比全身施用在体内更长循环。
〔人稳定化半乳糖凝集素9皮下施用中的体内动态〕
从而研究稳定化半乳糖凝集素9皮下施用时的体内动态。单次皮下施用Lewisrat(♀，6～7周龄)中表示的用量的人稳定化半乳糖凝集素9，在施用前(0分钟)、施用后5分钟、15分钟、30分钟、1小时、2小时、4小时、8小时、16小时、24小时、48小时及72小时经时血浆采血，由特异性的ELISA测定血中稳定化半乳糖凝集素9浓度。ELISA的第一抗体使用抗人半乳糖凝集素9单克隆抗体9S2-3。此抗体识别半乳糖凝集素9的N末侧的糖链识别结构域，在用SDS变性的人半乳糖凝集素9不反应，由此被认为识别正确的立体结构的蛋白质。另一方面，在第二抗体使用抗人半乳糖凝集素9CT兔多克隆抗体。此抗体是将兔用人半乳糖凝集素9的C末侧的糖链识别结构域免疫而制备的，吸收除去对其他半乳糖凝集素的交叉反应。另外本ELISA不与小鼠及大鼠的半乳糖凝集素9交叉。即本ELISA可测定不受分解-变性的完全的人稳定化半乳糖凝集素9。
将血中人稳定化半乳糖凝集素9浓度原来使用瞬间解析软件(田端健司、藤泽药品工业、相比京都大学大学院药学研究科更提供)，进行由瞬间解析法的药物动态解析。结果，如示于图2及表2，血中的稳定化半乳糖凝集素9浓度非常地低，在先前的的关节炎模型中示充分的治疗效果的0.6mg/kg施用中，血中最高浓度是0.943ng/ml、t1/2是7.6小时、MRT是12.5小时。在体外的IL-17产生抑制中见到稳定化半乳糖凝集素9的效果，但需要10nM(约0.3μg/ml)以上的浓度，以30nM(约1μg/ml)见到统计的显著差异(非专利文献7)。即不认为到血中的人稳定化半乳糖凝集素9示药效，恐怕是在施用部位及经由淋巴管-淋巴节的比较高浓度之间给免疫系统细胞影响。另外由本实验及别的体内动态试验确认施用后快速从体内排出。即认为稳定化半乳糖凝集素9的持续的药效得到自施用时短时间受作用的细胞的支持，不是稳定化半乳糖凝集素9的直接的作用。在活体内存在产生-放出半乳糖凝集素9而控制免疫的细胞是，如上述背景技术中说明是显而易见的，但其鉴定非常地困难。鉴定分泌半乳糖凝集素9而控制免疫的细胞与解明半乳糖凝集素9的作用机制的详细一同是重要的课题，达成其成为向医学-产业的大的贡献。
〔半乳糖凝集素9是抑制EAE的内在性因子〕
图3示向MOG诱导性实验的过敏性脑炎(EAE)的半乳糖凝集素9的治疗效果。已知在此模型的脑炎发症是Th17依赖性的。(a)在EAE发症中使用雌性C57BL/6J小鼠(WT)或同系统的半乳糖凝集素9敲除小鼠(Gal-9KO)。给小鼠皮下施用在添加300μg的结核分枝杆菌(H37RA，Difo)的CFA中制备的150μg的MOG(35-55)肽而致敏，其同日及2天后，静脉施用200ng的百白咳毒素(ListBiologicalLaboratory)，经时目测临床分值而记录。临床分值在据以下的基准判断。
临床分值0：无异常
临床分值1：尾的紧张降低
临床分值2：后肢的不全对麻痹
临床分值3：后肢的对麻痹
临床分值4：四肢麻痹
临床分值5：濒死或死亡
(b)致敏后第20周的上述小鼠脊髓的苏木精/伊红染色和由抗CD3抗体的免疫染色。与野生型(wT)比较，在半乳糖凝集素9敲除小鼠(Gal-9-/-)的脊髓中显著地见到细胞的浸润和组织破坏。浸润细胞多是CD3阳性，因此认为是T细胞。
(c)由组合致敏后第20周的EAE致敏野生型小鼠(WT)、EAE致敏半乳糖凝集素9敲除小鼠(Gal-9KO)及周龄的未致敏小鼠(Naive)制备脾脏细胞，用CD4、CD25、IL-17及Foxp3抗体染色。半乳糖凝集素9敲除小鼠相比野生型CD4+CD25+IL-17+细胞显著地增，而CD4+CD25+Foxp3+细胞显著地减少。
(d)幼稚T细胞由野生型小鼠(WT)及半乳糖凝集素9敲除小鼠(Gal-9KO)的脾脏细胞制备，向包被抗CD3抗体的96-孔板(BectonDickinson)以2×105细胞/0.1ml/孔的密度接种而添加抗CD28抗体(2μg/ml，BectonDickinson)后，培养96小时(无倾斜的)。在TH17细胞分化诱导中，此系统中在添加人TGF-β1(3ng/ml，R&Dsystems)、小鼠IL-2(5ng/ml，R&Dsystems)及小鼠IL-6(20ng/ml，R&Dsystems)的条件下培养96小时(TH17倾斜的)。将各自的细胞培养上清中的IL-17A浓度用ELISA定量时，由TH17分化诱导刺激IL-17A表达被显著诱导，其诱导是与野生型相比，半乳糖凝集素9敲除小鼠显著地更高。
(e)在上述提取培养上清后，将残留的细胞内的IL-10mRNA量用实时RT-PCR法定量。IL-10mRNA表达量是将由同方法测定的甘油醛-3-磷酸脱氢酶(GAPDH)的信号作为内部标准，以其比表示。表达IL-10mRNA的水平是无倾斜的、TH17倾斜的均是半乳糖凝集素9敲除小鼠相比野生型显著地更低。
(f)在前述(a)的系统中使野生型雌性C57BL/6J小鼠发EAE症，致敏后第14天和第16天将人稳定化半乳糖凝集素9以0.3μg/小鼠或3μg/小鼠皮下施用。在对照组施用PBS。至致敏第19天记录临床分值，其后将小鼠的脊髓苏木精/伊红染色。人稳定化半乳糖凝集素9施用是以0.3μg/小、鼠的施用示降低临床分值的倾向，3μg/小、鼠中示统计性地显著的临床分值降低(p＜0.05、2-wayANOVA法)。
在半乳糖凝集素9敲除小鼠中，与野生型的小鼠相比，用MOG(33-55)诱导的实验的过敏性脑炎(EAE)的症状更重并且持续(图3a)。在野生型小鼠中从EAE发症20周后的局部几乎见不到CD3阳性细胞的浸润，在敲除小鼠中CD3阳性细胞的浸润是明显的(图3b)。在发症后第20周的敲除小鼠的脾脏中，与野生型相比，观察到产生IL-17的CD4+CD25+细胞的增加和Foxp3阳性细胞的减少(图3c)。再者，在敲除小鼠的幼稚T细胞(CD4+CD62L+CD25-)中分化诱导TH17，则与使用野生型的细胞相比，IL-17产生明显升高(图3d)、另一方面，IL-10mRNA表达在敲除小鼠降低(图3e)。从而当检查半乳糖凝集素9的在EAE模型中的治疗效果时，由症状变得显著的免疫后14天，每周2次皮下施用半乳糖凝集素9，则即使0.3μg，临床症状及组织学所见也明显改善(图3f)。
这些的结果示半乳糖凝集素9作为内在性的免疫控制因子调节Th17/Treg平衡，在EAE中再确认-验证由已报道的小鼠关节炎的实验结果抽出的结论(非专利文献7)。
〔由半乳糖凝集素9的TH17细胞分化抑制不依赖于Tim3〕
在图4示半乳糖凝集素9不依赖于Tim3/Gal-9相互作用而抑制TH17细胞分化的效果。
(a)在图3(d)的方法中，向由C57BL/6J小鼠制备的CD4+CD62L+幼稚T细胞给TH17细胞分化诱导刺激。刺激开始时为0小时，示于图的各自的期间在30nM的人稳定化半乳糖凝集素9或对照的PBS存在下培养。其后，将细胞用培养基清洗，继续TH17细胞分化诱导刺激。提取第96小时的培养上清，将培养基中的IL-17浓度用前述的ELISA定量。在TH17细胞分化诱导的0～18小时存在人稳定化半乳糖凝集素9，则TH17细胞分化被显著地抑制。另一方面，分化诱导前24小时的人稳定化半乳糖凝集素9处理是无效的。
(b)将前述的30nM人稳定化半乳糖凝集素9从TH17细胞分化诱导开始24小时添加的细胞及对照的PBS添加细胞的IL-17F、IL-21、IL-22及IL23RmRNA表达用实时RT-PCR法定量。由人稳定化半乳糖凝集素9，这些全部的mRNA表达显著地降低。
(c)将幼稚T细胞在TH17分化诱导刺激下培养24小时(TH17倾斜的)、将CD4+Tim-3+细胞用流式细胞术测定。将在由同分化诱导刺激除去TGF-β1及IL-6的条件下培养24小时的幼稚T细胞作为对照(无倾斜的)。不管哪方均几乎检测不到Tim-3的表达细胞。另外在前述(a：0～96)的条件下进行由人稳定化半乳糖凝集素9的TH17分化诱导抑制试验，在人稳定化半乳糖凝集素9存在时添加抗Tim-3中和抗体(10μg/ml、αTim-3)或同种型对照抗体(10μg/ml、IgG2a)。将培养第96小时之上清中的IL-17A用ELISA定量时，见不到由抗Tim-3抗体的人稳定化半乳糖凝集素9的作用抑制。
(d)将幼稚T细胞在TH17分化诱导刺激下培养96小时后，向含分化的TH17细胞的细胞集团添加人稳定化半乳糖凝集素9(30nM)，4小时后，将引起凋亡的Tim-3阳性细胞、即，TH17用流式细胞术检测。在人稳定化半乳糖凝集素9添加时添加抗Tim-3抗体(10μg/ml、αTim-3)或同种型对照抗体(10μg/ml、IgG2a)的条件下也进行实验。由人稳定化半乳糖凝集素9诱导TH17细胞的凋亡，其效果被抗Tim-3抗体显著地抑制。结果提示，分化的TH17细胞Tim-3依赖性地由半乳糖凝集素9受凋亡的诱导。
IL-17产生是在将幼稚T细胞抗CD3抗体包被的板中用抗CD28抗体、IL-2、TGF-β1及IL-6刺激，培养4天则被强诱导。向此TH17分化诱导系统添加30nM的半乳糖凝集素9时，由从分化开始至18小时的半乳糖凝集素9处置而IL-17产生被显著抑制，在最初的24小时进行半乳糖凝集素9处理，则与经4天的半乳糖凝集素9处理示同等的IL-17产生抑制效果(图4a)。与其相反，在TH17分化诱导前24小时前处置无抑制效果(图4a)。当检查与TH17的分化关联的IL-17F、IL-21、IL-22及IL-23R的mRNA水平时，在由TH17分化开始24小时进行半乳糖凝集素9处置时，不仅是IL-17A，这些全部的TH17关联基因的表达被抑制(图4b)、由此提示TH17细胞分化被抑制的可能性。半乳糖凝集素9是Tim-3的配体，与表达Tim-3的TH1细胞相互作用而诱导凋亡(非专利文献4)。在TH17细胞中也报告Tim-3的表达(非专利文献5～6)、检查了由半乳糖凝集素9的TH17分化抑制与Tim-3相关的可能性。然而由半乳糖凝集素9示分化抑制作用的TH17细胞分化诱导开始第24小时几乎检测不到表达Tim-3的细胞(图4c)、另外由半乳糖凝集素9的TH17分化抑制即使添加Tim-3中和抗体也不被解除(图4c)。另一方面在分化诱导第4天5～10％的T细胞表达Tim-3，此TH17细胞由半乳糖凝集素9引发凋亡，抗Tim-3中和抗体将其显著地抑制(图4d)。这些的结果强烈提示，在半乳糖凝集素9的TH17细胞分化抑制中无Tim-3的相关，在表达Tim-3的活化TH17细胞的凋亡诱导中Tim-3与之相关。
〔在由半乳糖凝集素9的TH17分化诱导抑制中的O联糖链相关〕
图5示提示在由半乳糖凝集素9的TH17分化诱导抑制中不是N联糖链，而是O联糖链相关的结果。
(a)将幼稚T细胞在TH17分化诱导刺激条件下培养，在最初的24小时添加人稳定化半乳糖凝集素9(30nM)或作为对照PBS。在该24小时之间将作为半乳糖凝集素的抑制剂的乳糖以3mM、10mM或30mM的浓度添加，96小时后，将培养上清中的IL-17A浓度定量。作为乳糖的对照使用与半乳糖凝集素9不具有作用的蔗糖。由人稳定化半乳糖凝集素9的抑制作用由乳糖而浓度依赖性地消失，由此示人稳定化半乳糖凝集素9的凝集素活性对于TH17分化抑制必要。
(b)在前述(a)的条件下，这次代替乳糖添加N-糖基化抑制剂的苦马豆素(2μg/ml)或O-糖基化抑制剂的苄基N-乙酰-α-D-氨基半乳糖苷(苄基-α-GalNAc，2mM)。96小时后，当定量培养上清中的IL-17A浓度时，用苦马豆素时人稳定化半乳糖凝集素9的效果显著地残留，但用苄基-α-GalNAc时人稳定化半乳糖凝集素9的效果中见不到显著差异。结果暗示，在由半乳糖凝集素9的TH17分化抑制中，受O-糖基化的糖蛋白与之相关。
在作为半乳糖凝集素9的低分子配体的乳糖存在下进行由半乳糖凝集素9的TH17细胞分化抑制时，TH17分化抑制效果以添加的乳糖的浓度依赖性地减少，但不与半乳糖凝集素9结合的蔗糖完全末给影响(图5a)。结果提示，在TH17分化抑制中半乳糖凝集素9的凝集素活性是必要的，与靶细胞表达的多糖结合而发挥作用。从而为了弄清半乳糖凝集素9的靶是O-聚糖还是N-聚糖，当使用O-聚糖的抑制剂苄基-α-GalNAc及N-聚糖的抑制剂苦马豆素时，由半乳糖凝集素9的TH17分化抑制活性由苄基-α-GalNAcniyotte显著地抑制(图5b)。至今已知在由半乳糖凝集素9的凋亡诱导中N-聚糖是重要的(非专利文献4、37)，但暗示在TH17细胞分化抑制中O-聚糖是重要的。
〔对由半乳糖凝集素9的TH1，TH2及TH17细胞分化的作用〕
在图6示，给TH1，TH2及TH17细胞分化带来的Gal-9的效果。
(a)向幼稚T细胞添加30nM的人稳定化半乳糖凝集素9(或者对照的PBS)，在TH1、TH2、TH17的各分化诱导刺激、或者由抗CD3抗体及抗CD28抗体的仅TCR刺激(无倾斜的)的各自的条件下培养96小时后，将对于各TH亚型特异性的mRNA表达用实时RT-PCR定量。人稳定化半乳糖凝集素9不给对于TH1及TH2细胞特异性的mRNA的表达影响，显著地抑制对于唯一TH17细胞特异性的IL-17A及RORγt的mRNA表达。
(b)当测定上述实验的TH17分化诱导条件中的IFN-γ和IL-4mRNA时，无论何方均见不到由人稳定化半乳糖凝集素9的表达的变化。TH17分化已知被这些的细胞因子抑制，半乳糖凝集素9的作用不是为了升高这些的细胞因子表达。
由半乳糖凝集素9的辅助性T细胞分化抑制对于TH17细胞是特异性，对于由IL-12的TH1细胞分化或由IL-4的TH2细胞分化是无效的，在TH1、TH2、TH17各自的分化特异性的转录因子的表达中被半乳糖凝集素9抑制的也是仅TH17的转录因子RORγ(图6a)。另外已知在向TH1或TH2的分化增强时，TH17细胞分化被抑制(非专利文献38)、添加半乳糖凝集素9的TH17分化诱导系统中IFN-γ或IL-4的mRNA不增强，从而从可能性排除TH1或TH2的增强(图6b)。
〔半乳糖凝集素9以IL-2依赖性地抑制IL-17产生，另外增强CD25和Foxp3表达〕
图7示由半乳糖凝集素9的CD25和Foxp3表达升高依赖于IL-2的结果。
(a)向幼稚T细胞添加30nM的人稳定化半乳糖凝集素9(或者对照的PBS)、在TH17分化诱导条件下培养24小时，则由人稳定化半乳糖凝集素9添加而CD4+CD25+细胞的比例显著地升高，这也反映在CD25mRNA的升高。
(b)在上述(a)的条件下培养96小时后，研究CD4+CD25+Foxp3+细胞的比例，则由稳定化半乳糖凝集素9的添加而显著地升高。
(c)向幼稚T细胞添加30nM的人稳定化半乳糖凝集素9(对照是PBS)及示于图的浓度的IL-2，在TH17分化诱导条件下培养96小时，将培养上清中的IL-17A浓度定量。由半乳糖凝集素9的产生IL-17A的抑制作用仅在IL-2存在下发挥。另一方面IL-2单独也可见到产生IL-17A的抑制倾向，但其作用弱，在100ng/mlIL-2中也无统计的显著差异。
(d)在上述(c)的条件下测定培养96小时的细胞中的Treg细胞的比例。由稳定化半乳糖凝集素9而CD4+CD25+Foxp3+细胞、即Treg细胞增加仅限于添加IL-2的情况。
(e)向幼稚T细胞添加30nM的人稳定化半乳糖凝集素9(对照是PBS)，在TH17分化诱导条件下培养96小时之后，在PMA(50ng/ml)和离子霉素(1μg/ml)及布雷菲德菌素A(10μg/ml)存在下再培养6小时。将CD4阳性细胞中的IL-17+Foxp3-细胞和IL-17-Foxp3+细胞的比例用流式细胞术测定，则半乳糖凝集素9诱导IL-17+Foxp3-细胞的减少和IL-17-Foxp3+细胞的增加。
(f)将幼稚T细胞在上述(e)的条件下培养，在示于图的各时间点将CD25及Foxp3的mRNA表达用实时RT-PCR定量。CD25的表达在TH17分化诱导刺激开始24小时升高，在Foxp3的升高中要求72小时。无论哪方的mRNA表达均由稳定化半乳糖凝集素9添加而显著地升高。
半乳糖凝集素9在TH17细胞分化诱导条件下CD4+CD25+细胞的增加和增加CD25的mRNA水平(图7a)、仅管TH17细胞分化条件，提示通过增加CD4+CD25+Foxp3+细胞(图7b)、在半乳糖凝集素9中有强力的Treg细胞分化诱导作用。作为CD25的配体的IL-2被报告抑制TH17细胞分化(非专利文献39)、实际上本实施例中使用的TH17细胞分化诱导系统中，IL-2也浓度依赖性地抑制IL-17产生，但IL-2单独的效果弱(图7c)、由半乳糖凝集素9的添加而协同性地提高(图7c)。另外由半乳糖凝集素9的Foxp3表达增强仅在IL-2存在下被诱导(图7d)。由TH17细胞分化诱导而CD25阳性CD4细胞中的约7％成为Foxp3-IL-17A+，约25％成为Foxp3+IL17A-细胞，如果添加半乳糖凝集素9，则Foxp3-IL-17A+细胞约减少至2％，另一方面Foxp3+IL17A-细胞增加至约50％(图7e)。此系中的CD25的表达相比分化诱导后24，但在Foxp3表达增强中需要72小时，均由半乳糖凝集素9而表达量升高(图7f)。
〔细胞表面Gal-9阳性细胞的鉴定〕
在图8示进行在细胞表面表达半乳糖凝集素9的TH细胞的鉴定的结果。
(a)将幼稚T细胞在图6a的各条件、及未刺激(Nostim)下培养96小时，将培养上清中的半乳糖凝集素9浓度用ELISA定量。半乳糖凝集素9的分泌在向仅TCR刺激(无倾斜的)、TH1及TH2细胞的分化条件下升高，但在向TH17的分化条件下被抑制。
(b)在将幼稚T细胞分化诱导为TH17的系统中，除TCR刺激之外添加IL-2、TGF-β1及IL-6。由此将在完全系统(TH17倾斜的)除IL-6的(仅TGF-β1)、除TGF-β1的(仅IL-6)及仅TCR刺激(无倾斜的)的各条件下培养96小时后的上清中含的半乳糖凝集素9用ELISA定量。由IL-6的添加而半乳糖凝集素9浓度显著地降低。另一方面TGF-β1的添加中也见到降低半乳糖凝集素9的浓度的倾向，但无显著差异。
(c)向幼稚T细胞添加30nM的人稳定化半乳糖凝集素9(或者对照的PBS)，在未刺激(Nostim)、仅TCR刺激(无倾斜的)及TH17分化诱导刺激条件下各自培养96小时之后，将上清中的半乳糖凝集素9用ELISA定量。ELISA是对于小鼠半乳糖凝集素9特异性的，不受添加的30nM的人稳定化半乳糖凝集素9的影响。人稳定化半乳糖凝集素9使从在这些的条件下培养的幼稚T细胞的半乳糖凝集素9分泌升高。
(d)使用上述(c)的细胞将半乳糖凝集素9mRNA量用实时RT-PCR定量，无法确认图中的各条件的细胞中统计的显著差异。
(e)另一方面，当将上述(a)的细胞表面的半乳糖凝集素9和CD25染色而用流式细胞术测定时，在细胞表面表达半乳糖凝集素9的细胞的比例是未刺激是CD4阳性细胞的2％弱，但在TH1、TH2分化诱导刺激下、或者TCR刺激下升高到约4％。另一方面，在TH17分化诱导条件下，停在2％弱。由各分化刺激的细胞表面半乳糖凝集素9阳性细胞的比例与半乳糖凝集素9的分泌良好一致。
(f)将上述的细胞就细胞表面半乳糖凝集素9阳性和阴性筛选而分开，将半乳糖凝集素9mRNA用实时RT-PCR定量时，两者间见不到统计学差异。另外将它们细胞固定化/细胞膜渗透化后，用抗半乳糖凝集素9抗体染色而将细胞含有的全部的半乳糖凝集素9染色而由流式细胞术测定，此时也见不到两细胞间的差异。
如至今所示，半乳糖凝集素9的添加强力地抑制TH17分化。另外如已经报告，仅TCR的刺激时或，向TH1或TH2的细胞分化条件抑制TH17细胞分化。从而研究在这些的条件下培养的幼稚T细胞的培养上清中半乳糖凝集素9浓度时，在向TH1及TH2细胞的分化条件下其浓度高，在TH17细胞分化条件下被抑制(图8a)。在TH17细胞分化诱导中需要TGF-β和IL-6，判断IL-6引起半乳糖凝集素9的分泌抑制(图8b)。如已经示，在TH17细胞分化条件添加重组体半乳糖凝集素9，则TH17分化被抑制，但由此半乳糖凝集素的添加而内在性半乳糖凝集素9的分泌也增强(图8c)。顺便而言，添加的重组体半乳糖凝集素9是人型，在小鼠细胞中也示生理活性，但在培养上清中的半乳糖凝集素9测定中使用的ELISA则检测不到。另外在半乳糖凝集素9的分泌量虽有差异，但半乳糖凝集素9的mRNA量在TH17诱导条件下和在非诱导条件下不呈现显著的差异(图8d)。
由这些的结果判断，在无倾斜的、TH1或TH2分化诱导系统中，存在分泌半乳糖凝集素9的细胞。半乳糖凝集素9不具有信号肽，对其分泌机制完全不明，但认为是从其所在位置场所的细胞质直接、或者通过何种输送装置通过细胞膜是没错的。发明人考虑到，在分泌半乳糖凝集素9的细胞中，是否可检测到分泌到细胞表面的中间状态的半乳糖凝集素9，使用抗半乳糖凝集素9抗体将细胞染色。结果，成功检测在细胞表面表达半乳糖凝集素9的细胞集团。即便如此，此半乳糖凝集素9染色在乳糖存在下进行。半乳糖凝集素9与在细胞表面大量存在的糖脂质或糖蛋白质结合，所以为了区别分泌的半乳糖凝集素9二次性地结合细胞表面的，和目的细胞。预备检查的结果，30mM的乳糖完全地抑制二次的半乳糖凝集素9的向细胞的结合，另一方面确认不给抗原抗体反应影响，在细胞表面的半乳糖凝集素9染色时常常添加30mM乳糖。TCR刺激前的幼稚T细胞的2％弱是在细胞表面表达半乳糖凝集素9，当然是几乎全部是CD25-细胞(图8e)。TCR刺激增加CD25+细胞，但同时也增加半乳糖凝集素9阳性细胞，高于CD25+细胞集团的约10％(图8e)。对此，在TH17细胞分化诱导条件下CD25+细胞和CD25+Gal-9+细胞也明显减少(图8e)。与各自的TH细胞分化系统中的半乳糖凝集素9分泌(图8a)和在细胞表面表达半乳糖凝集素9的细胞的比例(图8e)良好相关，提示分泌半乳糖凝集素9的细胞是在这些细胞表面表达半乳糖凝集素9的细胞集团的可能性高。认为分泌半乳糖凝集素9的细胞高表达半乳糖凝集素9的可能性高，将CD4+CD25+T细胞就细胞表面的半乳糖凝集素9表达的有无使用流式细胞术分离纯化，将各自的半乳糖凝集素9mRNA量用实时：RT-PCR研究，与预计相反，两者间观察不到显著差异(图8f)。另外将各自的细胞使用细胞膜渗透化试剂盒(BDCytofix/Cytoperm)将在细胞内外存在的全部的半乳糖凝集素9染色时，观察不到半乳糖凝集素9的表达的差异(图8f)。这些的结果与图8d良好一致，对于细胞表面的半乳糖凝集素9表达与分泌的关系，用进一步的实验证明变得必要。之后，将半乳糖凝集素9在细胞表面表达的CD4T细胞暂称为THGAL9。
〔THGAL9细胞的活性〕
在图9示THGAL9由TCR刺激分泌半乳糖凝集素9，使IL-10及TGF-β表达升高，及THGAL9控制TH17/Treg平衡的结果。
(a)由小鼠脾脏细胞制备幼稚T细胞，再者将细胞表面半乳糖凝集素9阳性细胞(THGAL9细胞：Gal-9+TH)和阴性细胞(非-THGAL9：Gal-9-TH)通过筛选分离。将各自的细胞在TCR刺激(在抗CD3抗体包被板中添加抗CD28抗体)的有无的条件下培养96小时，将分泌到培养上清的半乳糖凝集素9用ELISA定量。仅THGAL9细胞由TCR刺激而诱导半乳糖凝集素9分泌。
(b)将上述细胞的细胞因子mRNA表达用实时RT-PCR研究。THGAL9细胞与非-THGAL9细胞比较IL-10及TGF-β的表达高，另一方面IL-4及IL-17A的表达低。
(c)将幼稚T细胞在TH17分化诱导刺激下培养6小时后，将THGAL9细胞(Gal-9+TH)或非-THGAL9(Gal-9-TH)细胞以1∶1的比混合，其后给仅TCR刺激而共培养90小时。将培养上清中分泌的IL-17A用ELISA定量，另一方面将Foxp3mRNA的表达用实时RT-PCR定量。由THGAL9细胞的添加而IL-17A分泌被抑制，另一方面Foxp3的表达升高。
(d)将上述的共培养在拮抗抑制半乳糖凝集素9的30mM的乳糖(或者对照的蔗糖)存在下进行。由乳糖添加而由THGAL9细胞的产生IL-17A的抑制被解除。结果提示，THGAL9细胞产生抑制性细胞因子IL-10或TGF-β，在TH17分化抑制中半乳糖凝集素9必须发挥作用。
(e)为了证明由THGAL9的TH17分化抑制作用而IL-10和TGF-β的相关性低，前述(c)的THGAL9是向由共培养的TH17抑制系统将IL-10及TGF-β的中和抗体以各自10μg/ml的浓度添加时，这些中和抗体不抑制THGAL9的作用。
(f)再者为了弄清IL-10的相关，同前述(c)的测定系统添加重组体IL-10而研究对于IL-17产生的作用。在研究的范围的浓度中IL-10未示统计性地显著的抑制效果。
图8中将表达的细胞表面表达半乳糖凝集素9的CD4T细胞暂称为THGAL9，假定这是分泌半乳糖凝集素9而控制TH17/Treg平衡的细胞，另一方面，THGAL9与其以外的T细胞相比，不仅是表达显著地高的半乳糖凝集素9(图8f)。图9中将THGAL9通过筛选纯化，研究其性质而发现THGAL9实际上释放出半乳糖凝集素9。THGAL9也高表达作为抑制性细胞因子的IL-10、TGF-β，另一方面IL-4、IL-17的表达显著地低。再者由共培养实验证明THGAL9抑制TH17而促进Treg分化。在使用抑制剂的实验(d、e)及使用重组体IL-10的实验(f)中显示，THGAL9高表达的IL-10是抑制性细胞因子的代表，也被报告抑制TH17分化(非专利文献40)、至少抑制图9中使用的测定系统中TH17分化诱导的药效的本体是大部分半乳糖凝集素9。即便如此从THGAL9分泌的半乳糖凝集素9的培养上清中浓度，在图9a的实验结果中是150pg/ml左右，相比使用稳定化半乳糖凝集素9而见药效的浓度(30nM：1μg/ml)远低。恐怕是是否THGAL9在与靶细胞非常地近接的状态、或者粘接的状态下旁分泌或使用细胞表面的半乳糖凝集素9相互作用，作用于靶细胞。半乳糖凝集素9以高浓度在多种细胞中诱导细胞死。从而无节制的分泌是危险的，THGAL98靶细胞接触而识别，预计进行由半乳糖凝集素9的控制。
在图10示CD25+THGAL9由TCR刺激产生IL-10和TGF-β1的结果。
(a)将幼稚CD4T细胞在TCR刺激下培养96小时，由筛选分离为CD25+THGAL9、CD25+非-THGAL9及CD25-非-THGAL9。将各自的细胞再在TCR刺激下培养96小时，将培养上清中的半乳糖凝集素9用ELISA定量。
(b)将上述(a)的细胞的IL-10及TGF-β1表达由实时RT-PCR定量。
结果观察到，将THGAL9细胞TCR反复刺激，则半乳糖凝集素9分泌量的增加和IL-10及TGF-β的表达mRNA的水平的增加。
〔THGAL9由稳定化半乳糖凝集素9添加而增加〕
在图11中示THGAL9由稳定化半乳糖凝集素9添加而增加的结果。
(a)示将图8(c)的细胞用CD25和细胞表面半乳糖凝集素9染色，用流式细胞术测定的结果。人稳定化半乳糖凝集素9的添加在未刺激的幼稚CD4T细胞中也作用，增加Gal-9+CD25-细胞。在TH17分化诱导条件下THGAL9减少(图8e)、由稳定化半乳糖凝集素9添加而THGAL9的比例显著地升高。另外大量分泌半乳糖凝集素9的Gal-9+CD25+细胞的比例也以TCR刺激依赖性地人稳定化半乳糖凝集素9添加显著地升高。另一方面，稳定化半乳糖凝集素9添加也使Gal-9-CD25+细胞的比例以TCR刺激依赖性地升高。在此细胞集团中含Treg，被认为是半乳糖凝集素9的Treg分化促进作用的结果。
(b)THGAL9除了半乳糖凝集素9之外还产生IL-10、TGF-β。为了研究这些的细胞因子与由TCR刺激的THGAL9的增加相关的可能性，将幼稚CD4T细胞在IL-10中和抗体、IL-10R中和抗体或TGF-β中和抗体的存在下TCR刺激，示将THGAL9细胞的出现用流式细胞术研究的结果。这些细胞因子之中和完全不给THGAL9的增加影响。
(c)IL-10已知促进作为抑制性的T细胞的Tr1的分化，考虑了也影响THGAL9的增加的可能性，由(b)的结果，至少由TCR刺激的THGAL9的增加中IL-10的相关性被低估。从而这次向幼稚CD4T细胞添加IL-10(或者作为对照人稳定化半乳糖凝集素9)，在TCR刺激下培养而将THGAL9细胞的出现用流式细胞术研究的结果，本实验系统中见不到由IL-10的THGAL9的增加。
〔THGAL9细胞和Tr1细胞的比较〕
在图12示进行THGAL9细胞和Tr1细胞的比较的结果。IL-10产生类型1控制性T细胞(Tr1细胞)在各种各样的场控制免疫，也议论了对于使用Tr1细胞的自身免疫疾病或癌治疗的可能性。在此Tr1细胞中现在提唱几种标志物，但此细胞的最显著的特征是大量地分泌IL-10。本发明人发现的THGAL9细胞也产生IL-10，由此进行了与Tr1细胞的比较。在至今报告的小鼠的Tr1细胞标志物中有LAP(非专利文献21)、NKG2D(非专利文献20)、LAG-3(非专利文献22)及CTLA-4(非专利文献41)。另外与Treg对照性地Tr1细胞不被认为表达Foxp3(非专利文献42～43)。从而在幼稚CD4+T细胞的TCR刺激前后检查Tr1细胞标志物表达。
(a)将幼稚CD4+T细胞用作为已报道的Tr1细胞标志物的LAP、NKG2D、LAG-3及CTLA-4染色，将与THGAL9细胞的关联用流式细胞术研究。CD25-THGAL9细胞表达这些全部的Tr1细胞标志物，在CD25-非-THGAL9细胞中观察不到表达。
(b)将这些细胞TCR刺激，用成为CD25阳性的T细胞集团进行相同的测定的，则几乎全部的CD25阳性CD4细胞表达Tr1标志物。
(c)示将(b)的细胞用细胞表面半乳糖凝集素9和Tim-3染色的结果。在THGAL9中显示无Tim-3表达。
(d，e，f)将幼稚CD4+T细胞在IL-27(25ng/ml)的存在下或非存在下加TCR刺激，培养3天而促进向Tr1的分化诱导。回收一部分3天后的培养上清而将IL-10(d)及半乳糖凝集素9浓度(e)由ELISA定量。残留的细胞在布雷菲德菌素A(10μg/ml)存在下用PMA(50ng/ml)和离子霉素(1μg/ml)刺激4小时，用细胞内部的IL-10和细胞表面的半乳糖凝集素9染色而用流式细胞术测定(f)。
TCR刺激前的CD25-THGAL9细胞表达已知的Tr1细胞标志物的全部，在不在细胞表面表达半乳糖凝集素9的CD25-CD4+非-THGAL9细胞中见不到表达(图12a)。结果示THGAL9和Tr1是非常地近似的细胞。另一方面，在由TCR刺激而表达CD25的细胞中，虽在表达量上有差异，但几乎全部细胞表达上述的Tr1细胞标志物(图12b)。原本作为Tr1标志物报告的这些的标志物也是细胞的活化标志物，在受TCR刺激的细胞中尽管量的多少有变化，但都见到了表达。另外在THGAL9细胞中不表达Foxp3，确认是与Treg不同的细胞(图12b)。另外在THGAL9中也见不到Tim-3的表达(图12c)。THGAL9和Tr1具有类似的性质，提示THGAL9是与Tr1相同或是其部分集团的可能性。从而作为Tr1的分化因子之一的IL-27存在下将幼稚T细胞在TCR刺激下培养3天时，通过添加IL-27而示IL-10及半乳糖凝集素9分泌显著地升高(图12d，e)。再者将分化诱导后的细胞分为细胞表面半乳糖凝集素9阳性和阴性，与各自的表达IL-10的量比较时，半乳糖凝集素9阳性的细胞集团的约一半表达IL-10，另一方面在半乳糖凝集素9阴性的细胞集团是20％以下(图12f)。本次的结果示THGAL9是与Tr1具有非常近似的性质的细胞。实际上THGAL9满足现在的Tr1的定义的意义上认为是Tr1的部分集团。至今Tr1的免疫控制活性多认为依赖于IL-10，但如图9所示，在TH17/Treg的平衡控制中半乳糖凝集素9是必须的，而不是IL-10。即便如此，在示Tr1的诱导法中，也有使用高浓度IL-10的方法，在此时要求数周的培养。图11c中在通过IL-10的添加研究THGAL9的增加之时96小时的培养，也考虑了对于IL-10的效果发挥是短时间的可能性。
为了更明了在图13中THGAL9和Tr1的关系，用半乳糖凝集素9敲除小鼠研究具有Tr1标志物的细胞。
(a)示将半乳糖凝集素9敲除小鼠和野生型小鼠的脾脏细胞用CD4及NKG2D、LAG-3、LAP或CTLA-4染色，用流式细胞术测定的结果。在半乳糖凝集素9敲除小鼠中Tr1标志物阳性细胞的比例相比野生型减少。
(b)示将半乳糖凝集素9敲除小鼠和野生型小鼠的幼稚CD4T细胞在仅TCR刺激(无倾斜的)或TH17分化诱导刺激条件下(Th17倾斜的)培养，将IL-10mRNA的表达用实时RT-PCR研究的结果。在半乳糖凝集素9敲除小鼠中IL-10产生显著地减少。
(c)示将在(b)的无倾斜的条件下培养的细胞在布雷菲德菌素A(10μg/ml)存在下进行PMA(50ng/ml)和离子霉素(1μg/ml)处理4小时，将在细胞内部蓄积的IL-10染色而用流式细胞术测定的结果。在半乳糖凝集素9敲除小鼠中IL-10阳性细胞显著减少。
这些的结果全部示，THGAL9和Tr1是非常近似的细胞，在现在的Tr1定义中THGAL9与Tr1相同或是其部分集团。
在下述表1中示研究各器官中的CD4阳性T细胞中的细胞表面半乳糖凝集素9阳性细胞(THGAL9)的比例的结果。下述表1中，“Organs”是指“器官”。“Thymus”是指“胸腺”。“LN”是指淋巴节。“Spleen”是指“脾脏”。“Peyer'spatch”是指“派尔集合淋巴结”。“PBMC”是指“末梢血单核细胞”。“Phenotype”是指“表现型(Phenotype)”。“cells”是指“细胞”。Thymus(胸腺)中虽然T细胞多但由于在CD4和CD8的双阳性的未成熟的状态下，这里仅关注CD4SP(CD4单阳性)的T细胞。再有，在各种的淋巴器官研究的THGAL9细胞的存在的结果，是胸腺的CD4单阳性细胞的约1/4、淋巴节、脾脏、末梢血及派尔集合淋巴结来源的CD4+CD25-T细胞的各4％、7％、15％及7％。
【表1】
器官 表型 Gal-9+CD25-细胞的％ SD
胸腺 CD4SP中 24.6 0.4
LN CD4中 3.6 0.4
脾脏 CD4中 6.5 0.8
派尔集合淋巴结 CD4中 14.8 0.7
PBMC CD4中 7.2 0.9
〔对人TH17/Treg分化的半乳糖凝集素9的作用和人THGAL9细胞的鉴定〕
熟知人和小鼠的免疫系统不相同，因此使用本研究中的小鼠及小鼠的细胞解明的半乳糖凝集素9的功能无法保证在人中也相当。在人中半乳糖凝集素9也进行TH17/Treg平衡控制，及在人中确认存在THGAL9细胞在考虑到临床应用时是必须的。在图14中示向人T细胞的半乳糖凝集素9的作用和鉴定THGAL9细胞的结果。
(a)向由健康人4人得到的末梢血CD4+T细胞添加人稳定化半乳糖凝集素9(30nM)或对照的PBS，在TCR刺激下培养96小时。将CD25染色，用流式细胞术测定。
(b)将上述(a)的细胞用CD25及Foxp3染色，将各自的表达用流式细胞术测定。
(c)向人CD4+T细胞添加人稳定化半乳糖凝集素9(30nM)或对照的PBS，在向TH17细胞的分化诱导刺激下培养9天，将培养上清中的IL-17浓度用ELISA定量。
(d)将人CD4+T细胞在TCR刺激下、或者未刺激下培养96小时，将细胞表面的半乳糖凝集素9和CD25染色而用流式细胞术测定。
(e)将人CD4+T细胞在TCR刺激下培养96小时之后，由筛选在细胞表面分离为半乳糖凝集素9阳性细胞(CD25+THGAL9)和阴性细胞(CD25+非-THGAL9)。将各自在TCR刺激下再培养96小时，将培养上清中的半乳糖凝集素9用ELISA定量，另一方面将示于图的各细胞因子mRNA表达用实时RT-PCR测定。
将由人末梢血得到的CD4+T细胞在半乳糖凝集素9存在下培养，由半乳糖凝集素9而CD25阳性细胞和CD25+Foxp3+细胞的比例增加，其增加由TCR刺激而再增强(图10a～b)。接下来，向人TH17分化诱导系统添加半乳糖凝集素9，以IL-17的放出作为指标研究TH17分化时，IL-17分泌被半乳糖凝集素9抑制(图10c)。这些的见解与在小鼠细胞中解明的半乳糖凝集素9的功能相同。再者，在健康人的末梢血中，在细胞表面存在1-4％表达半乳糖凝集素9的CD4+CD25-T细胞，将其TCR刺激，则在细胞表面表达半乳糖凝集素9的CD4+CD25+T细胞显著地增加(图10d)。此细胞与不在细胞表面表达半乳糖凝集素9的CD4+CD25+T细胞相比分泌显著地多的半乳糖凝集素9，IL-10及TGF-β的mRNA表达也高(图10e)。在另一方面，IL-2及INF-γ的mRNA表达无显著差异，IL-4及IL-17mRNA表达在细胞表面表达半乳糖凝集素9的细胞中示低值(图10e)。由这些的结果知，半乳糖凝集素9的功能在人和小鼠中相同，人中也存在THGAL9细胞。
由本实施例确认THGAL9可发挥分泌半乳糖凝集素9，调节TH17/Treg平衡的细胞的功能。半乳糖凝集素9的作用在小鼠中和在人中相同是半乳糖凝集素9、特别是稳定化半乳糖凝集素9的临床应用中非常重要的见解。再者THGAL9在人中也显示存在，由此认为由半乳糖凝集素9的免疫控制超越动物种而良好保守。THGAL9因为可用细胞表面的半乳糖凝集素9检测，如图9a所示，单离纯化活着的细胞是可能的，利用此细胞的应用技术的开发也容易。再者THGAL-9通过稳定化半乳糖凝集素9添加而显示增加，也发现将此被认为对将来各种各样的应用有用的细胞体外增加的技术之一。尽管THGAL9以外的T细胞也表达同等的半乳糖凝集素9，但不分泌其。仅THGAL9可分泌半乳糖凝集素9，被认为源于此细胞中存在的分泌机制，只要可控制其，可成为免疫控制的新的方法。认为THGAL9的发现对于半乳糖凝集素9分泌机制的解明也有重要的贡献。认为例如在mRNA水平或蛋白水平进行使用THGAL9和其以外的T细胞的一并的表达表征是方法。另外THGAL9也有可被作为间接知免疫平衡的替代品标志物而利用的可能性，例如以研究各种各样的免疫性疾病、癌、感染症等的诊断或向它们的感受性的诊断或药剂的效果作为指标。
〔在THGAL9以外的细胞表面表达半乳糖凝集素9的细胞〕
已显示人稳定化半乳糖凝集素9施用除了在前述的自身免疫疾病模型以外也在各种各样的病态模型中示药效。在这些情况中施用的半乳糖凝集素9也成为扳机，有含THGAL9半乳糖凝集素9的半乳糖凝集素9分泌细胞被诱导的可能性。THGAL9被鉴定为在细胞表面表达半乳糖凝集素9的细胞，确认其具有半乳糖凝集素9分泌能力。发明人考虑细胞表面的半乳糖凝集素9作为分泌的中间体被检测，从而预计以细胞表面的半乳糖凝集素9表达作为指标可探索THGAL9以外的表达半乳糖凝集素9的细胞。至少露出到细胞表面是已经转位细胞膜的结果，广义上说也是分泌。从而在各种各样的病态模型中研究在细胞表面表达半乳糖凝集素的细胞群的存在。
〔在腹膜炎模型的稳定化半乳糖凝集素9的作用和这时被诱导的在细胞表面表达半乳糖凝集素9的细胞〕
在图15示作为重症的腹膜炎模型的实施由盲肠结扎穿刺法的腹膜炎(cecalligationandpuncture：CLP)的处置的小鼠。其中使用BALB/c小鼠。是使用G21的针在结扎的盲肠上开孔，经时研究其后的生存的模型。
在图16示研究人稳定化半乳糖凝集素9施用的在CLP的有效性的结果。此见解由冈山大学医学部、松川昭博教授进行，已经在学会等发表，在这里说明结果的概略。由CLP使腹膜炎发症，经时研究生存率。(a)C57BL/6J野生型小鼠(WT)和小鼠半乳糖凝集素9的转基因小鼠(Gal-9Tg)的比较。(b)向WT小鼠单次静脉内施用CLP和同时人稳定化半乳糖凝集素9(30μg/小鼠；或者作为对照PBS)之时的生存率。(c)向WT小鼠实施CLP处置，其24小时后，单次静脉内施用人稳定化半乳糖凝集素9(30μg/小鼠；或者作为对照PBS)之时的生存率。(d)向WT小鼠实施CLP处置，其24小时后，单次皮下施用人稳定化半乳糖凝集素9(30μg/小鼠；或者作为对照PBS)之时的生存率。(e)向裸鼠单次皮下施用CLP和同时人稳定化半乳糖凝集素9(30μg/小鼠；或者作为对照PBS)之时的生存率。
稳定化半乳糖凝集素9对此重症的腹膜炎也以CLP后立即或自CLP起24小时后的单次施用显著地延长小鼠的生存率。但是，此效果在裸鼠中见不到(图16e)、强提示稳定化半乳糖凝集素9经T细胞发挥作用。
在图17示由CLP后24小时的小鼠取出脾脏细胞而培养24小时，研究培养上清中的细胞因子浓度的结果。这也由冈山大学医学部、松川昭博教授等在学会等已报道。在稳定化半乳糖凝集素9施用的小鼠脾脏细胞中TNF-α、IL-12、IL-10的产生降低，另一方面IL-17的产生升高。至今在自身免疫疾病模型中半乳糖凝集素9示降低IL-17的作用，但在其中升高。半乳糖凝集素9是两方向性的免疫调节因子，根据情况，或者根据细胞而作用不同。已报道例如在自身免疫疾病中抑制TNF-α，另一方面作用于单核细胞或树突细胞而刺激TNF-α产生(非专利文献13)、在IL-17中也根据情况半乳糖凝集素9的方向性发生变化不难想像。TNF-α、IL-12、IL-17等的炎症性细胞因子作用于微生物排除，而另一方面由过度的炎症引发而还引起组织破坏。虽然详细的机制不明，稳定化半乳糖凝集素9施用使生存率升高的事实被认为是，其中见的细胞因子平衡的变化对于在腹膜炎下的生存有利地作用。在半乳糖凝集素9腹膜炎(或者败血症)中也发挥重要的作用是显而易见的。
图18示将CLP24小时后的脾脏细胞用CD3、NK1.1、GL-3及细胞表面半乳糖凝集素9染色，用流式细胞术解析的结果。通过稳定化半乳糖凝集素9施用而在细胞表面表达半乳糖凝集素9的细胞增加。特别是呈现显著的增加的是NKT细胞(CD3+NK1.1+)、含THGAL9的细胞集团(CD3+NK1.1-及CD3+GL-3-)、γδT细胞(CD3+GL3+)。特别是NKT细胞、NK细胞及γδT细胞至少在此模型中，其首次显示几乎全部是在细胞表面半乳糖凝集素9阳性。这些的细胞与THGAL9同样地，由半乳糖凝集素9控制免疫的可能性非常地高。提示移入这些细胞对重症的腹膜炎治疗有用。
图19示给携癌小鼠施用稳定化半乳糖凝集素9，研究那时的细胞表面半乳糖凝集素9阳性细胞的结果。如已报道一样，稳定化半乳糖凝集素9施用是如果施用到将小鼠纤维肉瘤MethA移植到腹腔内的小鼠，则延长生存(非专利文献32)。根据该方法，将MethA导入到腹腔内，由其后立即将人稳定化半乳糖凝集素9以3次/周腹腔内施用(30μg/小鼠)。示自MethA移植7天后，取出腹腔内细胞和脾脏细胞而将表示的细胞表面标志物染色，并用流式细胞术测定的结果。
(a)示将腹腔细胞之内CD4阳性细胞用CD25和细胞表面半乳糖凝集素9表达展开的结果。由人稳定化半乳糖凝集素9施用在细胞表面表达半乳糖凝集素9的细胞的比例显著地增加，另一方面CD25+Gal-9-减少。CD25+Gal-9-细胞是含被认为抑制对癌的免疫的Treg的细胞集团。
(b)示将(a)的细胞中的内CD8阳性细胞用CD25和细胞表面半乳糖凝集素9表达展开的结果。由人稳定化半乳糖凝集素9施用在细胞表面表达半乳糖凝集素9的CD8细胞的比例显著地增加。
(c)示将施用人稳定化半乳糖凝集素9的MethA携癌小鼠的脾脏细胞用PDCA-1、CD11c及细胞表面半乳糖凝集素9染色，用流式细胞术测定的结果。浆细胞样树突细胞：pDC、pDC样巨噬细胞：
Figure GSB00001106601900761
经典树突细胞：cDC、及与树突细胞或巨噬细胞不同的细胞：用非的各自比较在细胞表面表达半乳糖凝集素9的水平。在急性肺障碍的模型中，如果将pDC样巨噬细胞进行细胞移入，则示抑制症状(非专利文献44)。此时也想像pDC样巨噬细胞分泌的半乳糖凝集素9成效果的主体。
在此携癌模型中，施用的稳定化半乳糖凝集素9示药效之时如前述出现在细胞表面表达半乳糖凝集素9的细胞。提示这些的细胞的移入对于癌治疗有用，另外提示可将这些细胞作为标志物诊断癌的进行或治疗的效果的可能性。
图20～21示研究人稳定化半乳糖凝集素9的在自然发症性自身免疫疾病模型的有效性的结果。MRL/MpJUmmCrj-1pr/1pr小鼠是作为全身性红斑狼疮的模型泛用的自然发症性自身免疫疾病模型。向此小鼠(♀、8周龄)将人稳定化半乳糖凝集素9以表示的用量以3次/周的进度表腹腔内施用至22周龄，进行经时后肢足蹠浮肿容积测定(每周一次；与图1同样地使用器官充满度测量器而测定)、体重测定(每周三次)、尿中蛋白浓度测定(每周一次)。在高用量30μg/小鼠中，在尿蛋白浓度(图20a)、体重变化(图20b)、后肢足蹠浮肿容积变化(图21a)，和实验结束时(第22周龄)的血细胞容量值(图21b)的全部中示统计性地显著的治疗效果。全身性红斑狼疮是非常地重度的自身免疫疾病，过去50年间无除了高用量的类固醇施用以外的治疗选择。此疾病的自身抗体的产生显著，从而认为抑制抗体产生的治疗法是解决策。2011年由FDA认可的belimumab是抑制B细胞的抗体，由临床研究证实B细胞及自身反应性抗体的产生抑制作为此疾病治疗的靶是重要的。
图22示研究稳定化半乳糖凝集素9的对抗体产生的作用的结果。如前所述，由于稳定化半乳糖凝集素9对全身性红斑狼疮的模型小鼠示有效性，提示对抗体产生及B细胞抑制作用的可能性。从而使用由在研究向抗体产生的药物的效果之时泛用的羊红细胞(SRBC)施用的产生抗羊红细胞IgM抗体的系统，研究稳定化半乳糖凝集素9的作用。向C57BL/6J小鼠(♀)腹腔内施用SRBC，其后立即，单次腹腔内施用人稳定化半乳糖凝集素9(30μg/小鼠)或作为对照PBS。在各自的时间点，由3-5只的小鼠采血及进行脾脏摘出而研究抗体产生及B细胞。结果判明，由人稳定化半乳糖凝集素9施用而SRBC特异性的IgM的浓度降低，而在(a)、全IgM浓度(b)、全IgG浓度(c)中不给统计学变化。再向MRL/MpJUmmCrj-1pr/1pr小鼠(♀、8周龄)施用3次/周30μg/小鼠的人稳定化半乳糖凝集素9或作为对照PBS，在第7天采血，研究血清中的抗双链DNA抗体(自身免疫性抗体的代表)浓度，判断由稳定化半乳糖凝集素9施用而抗双链DNA抗体显著地抑制。这些的作用是提示稳定化半乳糖凝集素9作用于作为抗体产生的本体的B细胞的可能性。
在图23B示细胞解析方法。已知将脾脏细胞的CD19和GL-7染色而用流式细胞术展开，则分为生发中心B细胞(CD19+GL-7+)和其以外的B细胞(CD19+GL-7-)。再者将生发中心B细胞根据FSC值由细胞的大小分离，则可分离成比较大的细胞的成中央细胞和比较小的细胞的中央细胞。由此FSC的成中央细胞和中央细胞的分离与各自是CXCR4高表达、低表达的报告良好一致，在往后的解析中采用。
图24是对由图22的小鼠摘出的脾脏细胞的经时研究。在稳定化半乳糖凝集素9施用后第4天生发中心B细胞减少，判断成中央细胞和中央细胞一同减少(a，b)。另外给半乳糖凝集素9敲除小鼠施用SRBC，在第4天解析脾脏细胞，则生发中心B细胞、成中央细胞及中央细胞的两者均与野生型相比多。这与由稳定化半乳糖凝集素9施用推定的活体内的半乳糖凝集素9的作用不矛盾。即提示半乳糖凝集素9在活体内也是抑制B细胞及抗体产生的因子。从而为了负向控制B细胞及抗体产生，需存在分泌半乳糖凝集素9的细胞。
在图25中，首先研究B细胞的细胞表面半乳糖凝集素9表达。结果判断B细胞是无论生发中心B细胞，还是其以外的B细胞全部在细胞表面表达半乳糖凝集素9，在生发中心B细胞中其表达高(a)。另外判断在生发中心B细胞之中，成中央细胞的细胞表面半乳糖凝集素9表达高(b)。另一方面，只要以生发中心B细胞研究，稳定化半乳糖凝集素9施用不给细胞表面的半乳糖凝集素9表达影响，判断通过由SRBC的致敏而在细胞表面表达半乳糖凝集素9的细胞的比例升高。
认为CD4T细胞与B细胞的成熟强相关，特别是被称为滤泡B辅助T细胞(TFH)的CD4阳性细胞的作用大。从而，在图26中，将SRBC施用第7天的小鼠脾脏细胞用被称为CD4及TFH的标志物的CXCR5及ICOS染色，将各自的细胞集团的细胞表面半乳糖凝集素9表达用流式细胞术研究。如示于(a～d)，这些CD4T细胞的在细胞表面表达半乳糖凝集素9的水平是各异的。特别是示高的表达的是ICOS-CXCR5+的CD4阳性细胞和ICOS+CXCR5-的CD4阳性细胞。示这些的细胞分泌半乳糖凝集素9而控制抗体产生的可能性。
这些在细胞表面表达半乳糖凝集素9的细胞群示对于包括全身性红斑狼疮的自身免疫疾病治疗或诊断有用的可能性。
在图27中模式性地例示由人稳定化半乳糖凝集素9施用的作用。如图1所示，将人稳定化半乳糖凝集素9皮下施用，则其药理效果持续。但是，如图2所示施用后，血中呈现的浓度非常地低，至少免疫控制中不具有药效的可能性高。在皮下施用的施用部位及经由淋巴管-淋巴节时，被认为以更高的浓度存在，认为那时给免疫细胞作用的可能性。然而，如图2所示，考虑了施用的人稳定化半乳糖凝集素9由于快速由体内排出，受高浓度的半乳糖凝集素9作用的免疫细胞在稳定化半乳糖凝集素9排出后，代替其而进行免疫控制的可能性。在本发明中，发明人发现将半乳糖凝集素9在细胞表面表达，再者分泌其而调节TH17/Treg平衡的新颖细胞THGAL9。再者发现THGAL9由人稳定化半乳糖凝集素9添加而增加。即认为施用的人稳定化半乳糖凝集素9除其直接作用之外诱导THGAL9，其诱导的THGAL9在局部以必要的用量分泌半乳糖凝集素9而作用于各种细胞。说明这与稳定化半乳糖凝集素9的免疫控制活性持续不矛盾。发明人认为处于在细胞表面分泌半乳糖凝集素9的中间状态，以细胞表面半乳糖凝集素9表达作为指标，发现THGAL9以外的分泌半乳糖凝集素9的(有可能性)各种各样的细胞集团。它们的细胞被认为如THGAL9一样通过分泌半乳糖凝集素9调节免疫。
〔半乳糖凝集素9施用延长LLC携癌小鼠的生存，那时pDC样巨噬细胞增加〕
如示于图19(c)，发明人使用利用MethA携癌小鼠模型得到的细胞示经典树突细胞(cDC)、浆细胞样树突细胞(pDC)、及pDC样巨噬细胞在细胞表面表达半乳糖凝集素9。再者，在本实施例中示在别的癌种的检查例。即，如示于图29，半乳糖凝集素9施用延长携癌小鼠的生存，那时pDC样巨噬细胞增加。
(a)示向C57BL/6(♀、7～10周龄)腹腔接种5×105细胞的小鼠肺癌来源肿瘤细胞株LLC(第0天)、经时研究自当日将人稳定化半乳糖凝集素9以30μg、3次/周腹腔内施用(对照是PBS)之时的生存率变化的结果。横轴(肿瘤接种后日)表示LLC接种后的天数，纵轴(％生存)以百分率表示生存率。统计解析由时序检验进行。
(b)示将(a)的第7天的腹腔细胞用CD11c、PDCA-1、Ly-6C及F4/80的抗体染色，用流式细胞术解析的结果。在半乳糖凝集素9施用组中表达作为pDC标志物的CD11c和PDCA-1，并且表达作为巨噬细胞标志物的Ly-6C或F4/80的细胞、即pDC样巨噬细胞的比例显著升高。推定pDC样巨噬细胞与由半乳糖凝集素9的生存延长相关。使用各组5只的小鼠以平均值±SEM表示。＊＊＊P＜0.001。
〔半乳糖凝集素9在试管内Tim-3非依赖性地促进由M-CSF的CD11c阳性细胞的分化〕
如图30所示，在本实施例中，半乳糖凝集素9在试管内Tim-3非依赖性地促进由M-CSF的CD11c阳性细胞的分化。
(a)从小鼠的大腿骨及胫骨洗出骨髓细胞，在含10％的牛胎儿血清和抗生物质的RPMI-1640培养基中培养2小时而除去粘接细胞(成熟巨噬细胞)。将残留的骨髓细胞在含GM-CSF(Peprotech、20ng/ml)或M-CSF(R&Dsystems、20ng/ml)的培养基中培养7天，这次将非粘接细胞清洗除去，将粘接细胞用流式细胞术解析。粘接细胞的＞95％是F4/80和CD11b双阳性，由此判断是成熟的巨噬细胞。示研究该细胞中的CD11c的表达以何种程度受分化过程中给的人稳定化半乳糖凝集素9(30nM)的影响的结果。半乳糖凝集素9不给以GM-CSF分化的巨噬细胞的CD11c表达影响，但使以M-CSF分化的巨噬细胞的CD11c表达升高。
(b)示在作为半乳糖凝集素9的抑制剂的乳糖(30mM)或作为对照蔗糖(30mM)的存在下进行由(a)的M-CSF的分化测定的结果，和在Tim-3中和抗体(eBiosciences、RMT-3-23、10μg/ml)或同种型对照抗体(eBiosciences、10μg/ml)中进行的结果。乳糖抑制由半乳糖凝集素9的CD11c表达升高，但Tim-3的中和抗体不给CD11c表达升高影响。Tim-3是最熟知的半乳糖凝集素9的靶分子，但提示与本实验的由半乳糖凝集素9的CD11c表达升高无相关。
〔用半乳糖凝集素9和M-CSF分化的CD11c阳性细胞是pDC样巨噬细胞之前体细胞〕
图30从半乳糖凝集素9升高用M-CSF分化的巨噬细胞的CD11c表达，示使巨噬细胞向树突细胞分化的可能性。如已报道一样半乳糖凝集素9促进人末梢血单核细胞的向经典树突细胞的分化(Dai，S.Y.etal，JImmunol，2005175：2974-81)。从而，在本实施例中，详细地研究得到的细胞的表现型。结果示于图31。
(a)由流式细胞术的解析判断由半乳糖凝集素9而B220、I-A/I-E表达升高，另一方面CD14表达减少。另一方面，作为巨噬细胞的标志物泛用的F4/80不由半乳糖凝集素9的添加而高表达，维持巨噬细胞的表现系统。
(b)将转录因子mRNA用实时RT-PCR解析时，对树突细胞的分化必要的IRF4及IRF8由半乳糖凝集素9而升高。另外被认为在pDC之前体细胞中表达的SpiB由半乳糖凝集素9而升高，被认为抑制成熟pDC的转录因子E2-2的Id2也由半乳糖凝集素9添加而升高。
(c)再者TLR7、TLR8及TLR9的mRNA也由半乳糖凝集素9添加而升高。
(d)示向在M-CSF和半乳糖凝集素9存在下分化7天的巨噬细胞添加表示的TLR激动剂，在培养6小时之后将IFN-α和IFN-βmRNA表达用实时RT-PCR测定的结果。使用的激动剂各自是LPS(100ng/ml、Sigma)：TLR4激动剂、R848(5μg/ml、Imgenex)：TLR7/8激动剂、CpG(TypeACpGODN1585、10μg/ml、Invivogen)：TLR9激动剂。只要是成熟的pDC，必然由这些TLR激动剂刺激而高表达类型1干扰素，但观察不到高的升高。
这些的结果，由M-CSF和人稳定化半乳糖凝集素9分化的巨噬细胞示与pDC相近的表现型，但达不到成熟的pDC，从而被认为是pDC样巨噬细胞之前体。提示半乳糖凝集素9将巨噬细胞向pDC样巨噬细胞分化诱导。
〔用半乳糖凝集素9和M-CSF分化的CD11c阳性细胞由LPS刺激而成熟为pDC样巨噬细胞〕
如图32所示，用半乳糖凝集素9和M-CSF分化的CD11c阳性细胞由LPS刺激而成熟为pDC样巨噬细胞。
(a)由至今的结果示，半乳糖凝集素9将用M-CSF分化的巨噬细胞分化为被认为是pDC样巨噬细胞之前体的表现系统的细胞。检查是否通过向该细胞给LPS刺激而进行向pDC样巨噬细胞分化。示在图30的方法中由M-CSF和半乳糖凝集素9将分化的巨噬细胞在100ng/ml的LPS(对照是PBS)中培养24小时而将CD11c、Ly-6C及F4/80的表达用流式细胞术解析的结果。以各自4的样品数进行统计解析。由LPS刺激而作为pDC的表现型的CD11c和PDCA-1双阳性细胞的比例升高，另一方面，作为巨噬细胞的表现型的Ly-6C及F4/80的表达也升高。这被认为是由LPS刺激而从前体向成熟度高的pDC样巨噬细胞进行分化的结果。
(b)示在图30的方法中由M-CSF和半乳糖凝集素9将分化的巨噬细胞在100ng/ml的LPS(对照是PBS)中培养6小时或24小时，将表示的mRNA表达用实时RT-PCR测定的结果。表达mRNA的量用β2微球蛋白或甘油醛3磷酸脱氢酶的mRNA表达标准化，在纵轴表示。以各自4的样品数进行统计解析。＊＊P＜0.01、＊＊＊P＜0.001。作为对于赋于pDC特征的类型1型干扰素的表达必须的转录因子的IRF7由LPS刺激而显著地升高。另外被认为在成熟的pDC中高表达的E2-2通过处理6小时LPS而显著升高，24小时后相反降低。＊P＜0.05、＊＊P＜0.01、＊＊＊P＜0.001。
(c)示将在图30的方法中用M-CSF和半乳糖凝集素9分化的巨噬细胞以100ng/ml的LPS培养24小时(对照是PBS)、将I-A/I-E的表达用流式细胞术解析的结果之一例。灰色的直方图是同种型对照、虚线的直方图是PBS对照、实线的直方图是LPS刺激。在LPS处理组和对照PBS组(各自n＝4)中，将I-A/I-E阳性细胞的比例用柱状图表示，示统计解析的结果。I-A/I-E的表达由LPS刺激而升高。＊P＜0.05。
这些的结果确认，由半乳糖凝集素9而使分化为被认为是pDC样巨噬细胞之前体的细胞的巨噬细胞由LPS刺激而示更成熟的pDC样巨噬细胞的表现型。
图32示由半乳糖凝集素9而使分化的pDC样巨噬细胞前体由LPS刺激而成为成熟的pDC样巨噬细胞的表现型。再者，研究该成熟型pDC样巨噬细胞的功能。结果示于图33。
(a)已知pDC高表达类型1型干扰素，用ELISA检查在体外成熟的pDC样巨噬细胞是否分泌作为类型1型干扰素的代表的IFN-α和IFN-β。用图32的方法向加LPS刺激24小时的pDC样巨噬细胞添加表示于横轴的TLR激动剂(对照是PBS)，将培养18小时的培养上清中的IFN-α和IFN-β的浓度利用由PBLInterferonSource购入的特异性ELISA试剂盒定量，浓度示于纵轴。以各自4的样品数进行统计解析。＊＊＊P＜0.001。使用的TRL激动剂浓度是LPS∶100ng/ml、R848∶5μg/ml、CpG∶10μg/ml。结果确认IFN-β的产生，示其表达由R848(TLR7/8激动剂)而相比对照更升高。
(b)示研究在体外成熟的pDC样巨噬细胞示抗癌作用的结果。作为癌细胞使用小鼠淋巴瘤YAC-1细胞。将此细胞用染色细胞膜的染料DIOC18(3)(3，39-二-十八烷基氧杂羰花青高氯酸盐、Sigma)染色，将其与30倍的细胞数的幼稚NK细胞共培养的时，及除了幼稚NK细胞之外加其2倍细胞数的在体外分化的成熟pDC样巨噬细胞而共培养的时研究Yac-1细胞的细胞死。使用MACS抗-D×5珠(MiltenyiBiotech)由小鼠脾脏细胞纯化幼稚NK细胞。进行5小时共培养，其后用碘化丙啶将死细胞染色，由流式细胞术解析DIOC18(3)阳性细胞(全Yac-1细胞)之内多少百分率在细胞死亡。作为对照也进行Yac-1单独培养(横轴(-)的样品)。以4的各样品数进行统计解析。＊＊＊P＜0.001。结果在体外成熟的pDC样巨噬细胞显著地升高由NK细胞的抗癌活性。由NK细胞的抗癌活性是作为其内包而放出的细胞障碍性蛋白质的GranzymeB和Perforin的作用大。从而示将在体外成熟的pDC样巨噬细胞和NK细胞以前述的比率共培养5小时，将细胞使用Cytofix/Cytoperm溶液(BDBioscienees)固定化-渗透化，用抗GranzymeB抗体(Clone16G6、eBiosciences)和抗Perforin抗体(CloneeBioMAK-D、eBiosciences)染色，用流式细胞术解析的结果。对照是NK细胞单独培养(图中表示为横轴)。以各自4的样品数进行统计解析。结果判断在体外成熟的pDC样巨噬细胞升高NK细胞的GranzymeB及Perforin表达。
由这些的结果在体外确认，半乳糖凝集素9促进向pDC样巨噬细胞的分化，示将该细胞用LPS成熟，则促进经NK细胞的活化的抗癌作用。如图29所示施用半乳糖凝集素9，则延长携癌小鼠的生存，在那时pDC样巨噬细胞增加。pDC样巨噬细胞被认为经如示于图33的NK细胞的活化等而提高活体的抗癌作用，认为其是携癌小鼠的生存延长之一个原因。
〔参考例〕
下述表2示基于人稳定化半乳糖凝集素9的血中动态(图1)的结果，用瞬间解析法解析各种药物动态参数的结果。下述表2中，“ModelIndependentPharmacokineticAnalysis”是指“独立的药物动态解析模型”。“Dose”是指人稳定化半乳糖凝集素9的用量。“Cmax”是指最高血中浓度。“Tmax”是指最高血中浓度到达时间。“AUC”是指血中浓度曲线下面积。“t1/2”是指半衰期。“MRT”是指平均滞留时间。“CLtot”是指全身清除。
【表2】独立的药物动态解析模型(瞬时)
Figure GSB00001106601900841
【工业实用性】
以上、如所说明，本发明的细胞(例如，THGAL9细胞等)，例如，可通过在活体内进行经半乳糖凝集素9的分泌的免疫控制，用于自身免疫疾病、过敏疾病、肿瘤其他疾病的治疗或源于上述疾病的症状的减轻等。另外，本发明的细胞，例如，通过细胞表面半乳糖凝集素9是鉴定分泌半乳糖凝集素9和IL-10的类型1控制性T细胞(Tr1细胞)的优良的标志物，可应用于使用所述标志物分离Tr1细胞等。
再者，本发明不限于上述说明以及前述的实施方式及实施例的记载，只要不脱离专利权利要求，任意的改变及变形是可能的。
Figure IPA00001734952100021
Figure IPA00001734952100031
Figure IPA00001734952100041
Figure IPA00001734952100051
Figure IPA00001734952100061

Claims (62)

1.细胞，其特征在于，是含半乳糖凝集素9的细胞，
将上述半乳糖凝集素9在细胞表面表达。
2.权利要求1所述的细胞，其是T细胞。
3.权利要求2所述的细胞，其是CD4阳性T细胞。
4.权利要求3所述的细胞，其是滤胞性B辅助性T细胞(FollicularBhelperT细胞：TFH)。
5.权利要求3或4所述的细胞，其中通过用T细胞受体(TCR)刺激，CD25的表达量升高，还分泌半乳糖凝集素9及白细胞介素10(IL-10)的至少一方。
6.权利要求3～5之任一项所述的细胞，其不表达Foxp3。
7.权利要求2所述的细胞，其是γδT细胞。
8.权利要求1所述的细胞，其是天然杀伤细胞(NK细胞)。
9.权利要求1所述的细胞，其是B细胞。
10.权利要求1所述的细胞，其是NKT细胞。
11.权利要求1所述的细胞，其是经典树突细胞(cDC)。
12.权利要求1所述的细胞，其是浆细胞样树突细胞(pDC)。
13.权利要求1所述的细胞，其是pDC样巨噬细胞
Figure FPA00001734952700021
14.权利要求1～13之任一项所述的细胞的制造方法，其中通过向动物施用半乳糖凝集素9，在上述动物的至少一部分的细胞的细胞表面表达半乳糖凝集素9。
15.权利要求1～13之任一项所述的细胞的制造方法，其中将动物的细胞，通过在半乳糖凝集素9的存在下培养，在上述动物的细胞的细胞表面表达半乳糖凝集素9。
16.权利要求15所述的细胞的制造方法，其中所述动物的细胞包括在细胞表面表达半乳糖凝集素9的细胞，
将上述动物的细胞，通过在半乳糖凝集素9的存在下培养，增加在细胞表面表达半乳糖凝集素9的细胞的比例。
17.权利要求14～16之任一项所述的制造方法，其中所述动物是哺乳类。
18.权利要求17所述的制造方法，其中所述哺乳类是人。
19.药物，其选自下列的至少一种：权利要求1～13之任一项所述的细胞、其破碎物及提取物。
20.权利要求19所述的药物，其用于半乳糖凝集素9的生理活性或生物活性的不足或缺乏所导致的疾病的治疗或症状的减轻。
21.权利要求19所述的药物，其是在含半乳糖凝集素9或半乳糖凝集素9结合性物质的细胞的有无的诊断中使用的诊断剂。
22.权利要求19所述的药物，其是免疫调节剂。
23.权利要求19所述的药物，其是抗肿瘤剂。
24.权利要求23所述的药物，其中所述肿瘤是恶性肿瘤。
25.权利要求24所述的药物，其中所述恶性肿瘤是上皮性恶性肿瘤。
26.权利要求24所述的药物，其中所述恶性肿瘤是非上皮性恶性肿瘤。
27.权利要求26所述的药物，其中所述非上皮性恶性肿瘤是肿瘤形成性的非上皮性恶性肿瘤及肿瘤非形成性的非上皮性恶性肿瘤的至少一方。
28.权利要求24所述的药物，其中所述恶性肿瘤是选自下列的至少一种：皮肤癌、黑色素瘤、乳腺癌、卵巢癌、子宫癌、睾丸恶性肿瘤、前列腺癌、膀胱癌、肾癌、甲状腺癌、咽头-喉头癌、舌癌、上颚癌、食道癌、胃癌、结肠-直肠癌、肺-支气管癌、肝癌、肝细胞癌、肝内胆管癌、肝外胆管-胆囊癌、胰腺癌、白血病、恶性淋巴瘤、浆细胞瘤、肉瘤、骨肉瘤、软骨肉瘤、平滑肌肉瘤、横纹肌肉瘤、脂肪肉瘤、纤维肉瘤、恶性血管瘤、恶性血管内皮瘤、脑肿瘤、脑膜瘤、神经胶质瘤、及星形细胞瘤。
29.权利要求19所述的药物，其是抗过敏剂。
30.权利要求19所述的药物，其是自身免疫疾病用剂。
31.权利要求19所述的药物，其是抗炎症剂。
32.权利要求19所述的药物，其是肾上腺皮质类固醇激素代替用剂。
33.权利要求19所述的药物，其是伴随细胞、组织、或者器官的移植的排斥反应的抑制剂。
34.权利要求19所述的药物，其用于败血症的治疗或症状的减轻。
35.权利要求19所述的药物，其用于感染症的治疗或症状的减轻。
36.在被检细胞中诊断半乳糖凝集素9或半乳糖凝集素9结合性物质的有无的方法，其使用选自下列的至少一种：权利要求1～13之任一项所述的细胞、其破碎物及提取物。
37.动物的疾病的治疗或源于上述疾病的症状的减轻方法，其包括给上述动物施用选自下列的至少一种的步骤：权利要求1～13之任一项所述的细胞、其破碎物及提取物。
38.权利要求37所述的方法，其中所述动物是哺乳类。
39.权利要求38所述的方法，其中所述哺乳类是人。
40.权利要求37～39之任一项所述的方法，其中所述疾病是半乳糖凝集素9的生理活性或生物活性的不足或缺乏所导致的疾病。
41.权利要求37～40之任一项所述的方法，其中所述疾病是免疫的异常所导致的疾病。
42.权利要求37～40之任一项所述的方法，其中所述疾病是自身免疫性疾病。
43.权利要求37～40之任一项所述的方法，其中所述疾病是肿瘤。
44.权利要求43所述的方法，其中所述肿瘤是恶性肿瘤。
45.权利要求44所述的方法，其中所述恶性肿瘤是上皮性恶性肿瘤。
46.权利要求44所述的方法，其中所述恶性肿瘤是非上皮性恶性肿瘤。
47.权利要求46所述的方法，其中所述非上皮性恶性肿瘤是肿瘤形成性的非上皮性恶性肿瘤及肿瘤非形成性的非上皮性恶性肿瘤的至少一方。
48.权利要求44所述的方法，其中所述恶性肿瘤是选自下列的至少一种：皮肤癌、黑色素瘤、乳腺癌、卵巢癌、子宫癌、睾丸恶性肿瘤、前列腺癌、膀胱癌、肾癌、甲状腺癌、咽头-喉头癌、舌癌、上颚癌、食道癌、胃癌、结肠-直肠癌、肺-支气管癌、肝癌、肝细胞癌、肝内胆管癌、肝外胆管-胆囊癌、胰腺癌、白血病、恶性淋巴瘤、浆细胞瘤、肉瘤、骨肉瘤、软骨肉瘤、平滑肌肉瘤、横纹肌肉瘤、脂肪肉瘤、纤维肉瘤、恶性血管瘤、恶性血管内皮瘤、脑肿瘤、脑膜瘤、神经胶质瘤、及星形细胞瘤。
49.权利要求37～40之任一项所述的方法，其中上述疾病是过敏性疾病。
50.权利要求37～40之任一项所述的方法，其中所述疾病是伴随细胞、组织、或者器官的移植的排斥反应。
51.权利要求37～40之任一项所述的方法，其中所述疾病是败血症。
52.权利要求37～40之任一项所述的方法，其中所述疾病是感染症。
53.权利要求37～52之任一项所述的方法，其中源于所述疾病的症状是炎症。
54.控制动物的免疫的免疫控制方法，其给动物施用权利要求1～13之任一项所述的细胞。
55.检测细胞的方法，其通过将在权利要求1～13之任一项所述的细胞的细胞表面表达的半乳糖凝集素9作为标志物检测。
56.权利要求55所述的细胞检测方法，其中权利要求1～13之任一项所述的细胞是IL-10产生类型1控制性T细胞(Tr1细胞)。
57.权利要求55所述的细胞检测方法，其中权利要求1～13之任一项所述的细胞是控制性免疫细胞。
58.动物的疾病或源于上述疾病的症状的诊断方法，其包括在含或不含权利要求1～13之任一项所述的细胞的上述动物组织中，由权利要求55～57之任一项所述的细胞检测方法，定性的或定量检测权利要求1～13之任一项所述的细胞的步骤。
59.动物的疾病的治疗效果的判断方法，其特征在于，包括：
对于上述动物进行上述疾病的治疗的步骤，
在上述治疗之前后，分别由权利要求58所述的诊断方法，诊断上述疾病或源于上述疾病的症状的步骤，
在上述治疗之前后，对比上述诊断结果的步骤。
60.细胞的分离方法，其在包括权利要求1～13之任一项所述的细胞的动物组织中，由权利要求55～57之任一项所述的细胞检测方法，检测上述细胞，将检测的上述细胞从上述动物组织中的其他细胞分离。
61.权利要求1～13之任一项所述的细胞的制造方法，其包括由权利要求60所述的细胞的分离方法将权利要求1～13之任一项所述的细胞从上述动物组织分离的步骤。
62.权利要求14～16之任一项所述的制造方法，其再包括由权利要求60所述的细胞的分离方法将权利要求1～13之任一项所述的细胞从上述动物组织分离的步骤。
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