JP2006124299A - ガレクチン９誘導因子 - Google Patents

Abstract

【課題】 ガレクチン-9は、レクチンとしての活性を有する生理活性物質で種々の細胞で発現が認められ、発現量と腫瘍の転移能間に相関が認められるなど、様々な生理現象に関与することが予測されつつある。該ガレクチン-9の産生・遊離をコントロールすることを可能にする物質は、抗腫瘍や抗炎症作用を誘導するなどの活性を期待でき、その解明が求められている。
【解決手段】 ある種の腫瘍細胞膜可溶化分画にガレクチン９の産生・遊離を誘導する因子「ガレクチン９誘導因子」が存在することを見出した。該因子は、コンカナバリンＡ吸着分画、Resource Q^TMイオン交換カラム、ハイドロキシアパタイトカラムなどを利用し、濃縮化活性保有分画として得られる。該因子のガレクチン９誘導活性を利用した測定試薬、医薬、アッセイなどの開発が可能になる。
【選択図】 なし

Description

本発明は、ガレクチン９誘導活性を有する因子、すなわち、ガレクチン９誘導因子に関し、特にはヒトのガレクチン９誘導因子を含む哺乳動物のガレクチン９誘導因子に関する。本発明は、該ガレクチン９誘導因子の利用技術にも関する。

本発明者等のグループはヒトＴ細胞由来好酸球遊走因子のクローニングに成功し、それによりそれが Tureci 等が報告したヒトガレクチン９（非特許文献１）のバリアント、エカレクチンであることを見出した（非特許文献２）。さらに、本発明者等のグループはエカレクチンとガレクチン９は同一の物質であることを明らかにし、ヒトのガレクチン９はそのリンクペプチドの長さの違いにより、ショートタイプ、メディアムタイプ、ロングタイプの３種類があることをも明らかにした。

Tureci O. et al., J Biol Chem., Mar. 7, 1997, 272(10):6416-22 Matsumoto R. et al., J Biol Chem., 1998, 273:16976-84

ガレクチン-9は、レクチンとしての活性を有する生理活性物質であって、組織肥満細胞、好酸球、マクロファージ、Ｔ細胞、Ｂ細胞、線維芽細胞、血管内皮細胞、種々の腫瘍細胞などでその発現が認められてきており、その発現量と腫瘍の転移能との間に相関が認められるなど、様々な生理現象に関与することが予測されつつある。該ガレクチン-9の産生や遊離をコントロールすることを可能にする物質は、抗腫瘍効果や抗炎症作用を誘導するなどの活性を期待できることから、その解明が求められている。ガレクチン９は、活性化Ｔリンパ球のアポトーシスを誘導するなど様々な生体に重要な生理活性に関与していると考えられる。したがって、ガレクチン９の産生・遊離などを制御することにより、様々な生理現象、生物活性現象を制御することが可能になると思われる。生体でのガレクチン９量、ガレクチン９発現及び遊離の制御を可能とする因子は、医薬としても有望と期待される。

本発明者等は、鋭意研究を行った結果、ある種の細胞膜可溶化分画（以下、「mf」という）に、ガレクチン９（以下、「Gal-9」という）産生・遊離を誘導する因子が存在することを見出した。特に、腫瘍細胞膜可溶化分画にGal-9産生・遊離を誘導する因子が存在することを見出した。また、該mfに、投与部位にGal-9産生細胞の浸潤とそれらの細胞からのGal-9の産生・遊離を誘導する因子が存在することも見出している。本明細書では、該因子を「ガレクチン９誘導因子」と呼称することとする。該因子の生物活性・生理活性からみて、該因子を利用することで、抗腫瘍効果や抗炎症作用を誘導することが可能になる。

本発明は以下のものを提供している。
〔１〕 Ｂ細胞リンパ腫由来細胞株BALL-1細胞より得られる細胞膜可溶化分画にその生物活性が存在することが同定できるガレクチン９誘導因子であって、該ガレクチン９誘導因子の生物活性は、少なくとも以下：
(1) ガレクチン９誘導活性、
(2) 標的腫瘍細胞としてMeth-Aザルコーマを使用したインビボ試験で腫瘍細胞の増殖抑制又は腫瘍の拒絶を誘起する、
(3) 抗腫瘍活性、
(4) インビトロ試験で末梢血単核球におけるナチュラル・キラー活性を誘導する、
(5) 末梢血単核球を使用した試験で、ガレクチン９ mRNAの発現のアップレギュレーション、
(6) 末梢血単核球を使用した試験で、細胞質におけるガレクチン９タンパクの発現の有意な上昇、
(7) 組織病理学的検査で注射した部位に好酸球及び単核細胞からなり、少ない数の好中球を伴った肉芽組織が認められる、
(8) 注射した部位の皮筋層の上や下の結合組織で多くの肥満細胞が見出される、
(9) 腫瘍の周囲組織の組織病理学的検査で腫瘍の周り又は腫瘍組織に炎症細胞（主には好酸球及びいくらかの肥満細胞）の浸潤を有している領域が見出される、
(10) 腫瘍の周囲組織の組織病理学的検査で核濃縮を示す腫瘍細胞が見出される、及び
(11) 腫瘍の周囲組織の組織病理学的検査で腫瘍の周囲又は腫瘍組織にメタクロマジーを示す肥満細胞の集積が確認される、
から成る群から選ばれたものにより同定できるものであることを特徴とするヒト由来のガレクチン９誘導因子。
〔２〕 Ｂ細胞リンパ腫由来細胞株BALL-1細胞が放射線照射処理されたものであることを特徴とする上記〔１〕記載のガレクチン９誘導因子。
〔３〕 BALL-1 細胞をプロテアーゼ阻害剤の存在下、界面活性剤と一緒にホモジュナイズ処理して可溶化した細胞膜可溶化分画に存在することを特徴とする上記〔１〕又は〔２〕記載のガレクチン９誘導因子。
〔４〕 Ｂ細胞リンパ腫由来細胞株より得られた細胞膜可溶化分画より、コンカナバリンＡカラムクロマトグラフィー、陰イオンカラムカラムクロマトグラフィー、及びハイドロキシアパタイトカラムクロマトグラフィー等のカラムクロマトグラフィーから成る群から選ばれた処理で精製及び／又は濃縮できるものであることを特徴とする上記〔１〕〜〔３〕のいずれか一記載のガレクチン９誘導因子。
〔５〕 上記〔１〕〜〔４〕のいずれか一記載のガレクチン９誘導因子を含有することを特徴とする細胞にガレクチン９を誘導する試薬。
〔６〕 上記〔１〕〜〔４〕のいずれか一記載のガレクチン９誘導因子と細胞とを接触せしめることを特徴とする細胞にガレクチン９を誘導する方法。
〔７〕 上記〔１〕〜〔４〕のいずれか一記載のガレクチン９誘導因子を含有することを特徴とする医薬。
〔８〕 抗腫瘍剤、抗炎症剤、抗アレルギー剤、免疫抑制剤、自己免疫疾患用剤又は副腎皮質ステロイドホルモン代替剤であることを特徴とする上記〔７〕記載の医薬。
〔９〕 ヒト由来のものであることを特徴とする上記〔１〕〜〔４〕のいずれか一記載のガレクチン９誘導因子。
特には、本発明は以下のものを提供している。
〔Ａ〕 タンパク質80K-H、GRP94、GRP78、GRP58、及びS100 calcium-binding protein、並びにそれらの分解物から成る群から選ばれたものをヒト由来のガレクチン９誘導因子として含有することを特徴とする生物活性剤。
〔Ｂ〕 少なくとも以下：
(1) ガレクチン９誘導活性、
(2) 標的腫瘍細胞としてMeth-Aザルコーマを使用したインビボ試験で腫瘍細胞の増殖抑制又は腫瘍の拒絶を誘起する、
(3) 抗腫瘍活性、
(4) インビトロ試験で末梢血単核球におけるナチュラル・キラー活性を誘導する、
(5) 末梢血単核球を使用した試験で、ガレクチン９ mRNA の発現のアップレギュレーション、
(6) 末梢血単核球を使用した試験で、細胞質におけるガレクチン９タンパクの発現の有意な上昇、
(7) 組織病理学的検査で注射した部位に好酸球及び単核細胞からなり、少ない数の好中球を伴った肉芽組織が認められる、
(8) 注射した部位の皮筋層の上や下の結合組織で多くの肥満細胞が見出される、
(9) 腫瘍の周囲組織の組織病理学的検査で腫瘍の周り又は腫瘍組織に炎症細胞（主には好酸球及びいくらかの肥満細胞）の浸潤を有している領域が見出される、
(10) 腫瘍の周囲組織の組織病理学的検査で核濃縮を示す腫瘍細胞が見出される、及び
(11) 腫瘍の周囲組織の組織病理学的検査で腫瘍の周囲又は腫瘍組織にメタクロマジーを示す肥満細胞の集積が確認される、
から成る群から選ばれた活性を有するガレクチン９誘導因子であることを特徴とする上記〔Ａ〕の生物活性剤。
〔Ｃ〕 上記〔Ａ〕又は〔Ｂ〕記載のガレクチン９誘導因子を含有することを特徴とする細胞にガレクチン９を誘導する試薬。
〔Ｄ〕 上記〔Ａ〕又は〔Ｂ〕記載のガレクチン９誘導因子と細胞とを接触せしめることを特徴とする細胞にガレクチン９を誘導する方法。
〔Ｅ〕 上記〔Ａ〕又は〔Ｂ〕記載のガレクチン９誘導因子を含有することを特徴とする医薬。
〔Ｆ〕 抗腫瘍剤、抗炎症剤、抗アレルギー剤、免疫抑制剤、自己免疫疾患用剤又は副腎皮質ステロイドホルモン代替剤であることを特徴とする上記〔Ｅ〕記載の医薬。

本発明により、ガレクチン９誘導因子が同定され、その精製が行われたことから、その精製ガレクチン９誘導因子を使用しての医薬品開発、ガレクチン９の関与する生理現象、生物活性についての研究開発が進展する。特に、ガレクチン９誘導因子は、細胞膜可溶化分画及び該画分よりコンカナバリンＡ吸着分画、Resource Q^TMイオン交換カラム、ハイドロキシアパタイトカラムなどを利用することにより、濃縮した活性保有分画として得られる。該因子を投与することで、NK様活性を増強する活性、抗腫瘍活性などの生物活性を得ることができるので、そのガレクチン９誘導活性を利用した測定試薬、医薬、アッセイなどの開発が可能になる。
本発明のその他の目的、特徴、優秀性及びその有する観点は、以下の記載より当業者にとっては明白であろう。しかしながら、以下の記載及び具体的な実施例等の記載を含めた本件明細書の記載は本発明の好ましい態様を示すものであり、説明のためにのみ示されているものであることを理解されたい。本明細書に開示した本発明の意図及び範囲内で、種々の変化及び／又は改変（あるいは修飾）をなすことは、以下の記載及び本明細書のその他の部分からの知識により、当業者には容易に明らかであろう。本明細書で引用されている全ての特許文献及び参考文献は、説明の目的で引用されているもので、それらは本明細書の一部としてその内容はここに含めて解釈されるべきものである。

本明細書中、Gal-9産生・遊離細胞としては、肥満細胞、好酸球、マクロファージ、Ｔ細胞、Ｂ細胞、線維芽細胞、血管内皮細胞、種々の腫瘍細胞などが挙げられる。該ガレクチン９誘導因子を含むものとしては、Ｂ細胞株由来のmf（例えば、human acute lymphoblastoid leukemia (ALL) から樹立されたhuman cell line: BALL-1 など）、そのコンカナバリンＡ吸着分画に溶出されるmf、Resource Q^TMイオン交換カラムから溶出されるmf、ハイドロキシアパタイトカラムから溶出される分画などが挙げられる。
該ガレクチン９誘導因子は、その有する生物活性、例えばガレクチン９誘導活性をインビトロあるいはインビボにて検知・測定することにより、確認することが可能である。例えば、インビトロでのガレクチン９誘導活性は、上記したようなGal-9産生・遊離細胞をmfで刺激した後、RT-PCR、ウエスタンブロット法、フローサイトメトリー法、免疫組織染色法、ELISA 法、ELISPOT 法、RIA 法などにより、Gal-9 mRNAやGal-9 タンパク質を定量的あるいは定性的に解析して測定される。当該細胞の細胞培養液を使用し、RT-PCR、ウエスタンブロット法、フローサイトメトリー法、免疫組織染色法、ELISA 法、ELISPOT 法、RIA 法などにより、Gal-9 タンパク質を定量的あるいは定性的に解析して測定することもできる。また、インビボにおけるガレクチン９誘導活性は、マウス、ラット、モルモット、ウサギ、サルなどの動物に、mfを投与した後、ガレクチン-9産生細胞の浸潤やGal-9遊離の増強を指標に測定できる。また、腫瘍細胞におけるGal-9 の直接的ないし間接的な増強を指標にそれを測定することもできる。該動物としては、代表的には実験動物が挙げられ、投与法としては、皮内、皮下、筋肉内、静脈又は動脈、腹腔内注射したり、飲食させるなどが挙げられる。 ガレクチン９誘導因子を作用させることにより、腫瘍細胞の凝集やアポトーシスを誘導することができ、さらには抗腫瘍活性を得ることができ、CD4陽性Ｔ細胞のアポトーシスを誘導することができ、その過剰な反応に起因するアレルギーや自己免疫疾患を制御することが可能となり、炎症の抑制を図ることが可能となる。

本発明によるガレクチン９誘導因子は、ガレクチン９の発現を誘導する活性を有することによって特徴付けられる。該因子は、その存在あるいはその発現により、有意にガレクチン９の発現を誘導することによって特徴付けられる。該因子は、ガレクチン９を誘導することを介して様々な生理活性及び／又は生物活性を発現する。
本発明のガレクチン９誘導因子は、例えば放射線照射処理されたＢ細胞リンパ腫由来細胞株BALL-1細胞より得られる。本発明のガレクチン９誘導因子を得るために利用することができるBALL-1細胞は、アメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション(American Type Culture Collection (ATCC), Manassas, Virginia, USA)、厚生労働省国立医薬品食品衛生研究所JCRB Cell Bank: ヒューマンサイエンス研究資源バンク (Japanese Collection of Research Bioresources (JCRB), National Institute of Health Sciences (NIHS), Ministry of Health, Labor and Welfare, Japan: Health Science Research Bioresources Bank, Japan Health Sciences Foundation, Osaka, Japan) より入手することができる。上記細胞株は、10% 牛胎児血清(fetal calf serum; FCS) 含有のRPMI1640培地等のヒト由来細胞の培養に用いられる一般的な培地で培養される。培養培地は、該細胞株が増殖し得るものである限り特に限定されないが、例えば、糖類、アミノ酸類、ビタミン類、その他の有機栄養素、微量無機塩類等を含有する液体栄養培地などが使用できる。増殖させた後に、必要に応じて放射線照射処理をし、場合によっては、さらに培養した後、細胞を回収し（例えば、遠心分離などして回収し）、緩衝液中で破砕等（例えば、ガラスビーズを使用した物理的破砕、超音波処理あるいは酵素などによる生化学的手法）して無細胞抽出液とする。

典型的には、本発明のガレクチン９誘導因子は、BALL-1細胞より得られる細胞膜可溶化分画より濃縮あるいは分離及び／又は精製することができる。該細胞膜可溶化分画は、例えば BALL-1 細胞をプロテアーゼ阻害剤（例えば、フェニルメチルスルホニルフルオリドなど）の存在下界面活性剤と一緒にホモジュナイズ処理して可溶化せしめ、次に遠心処理して、上清液を得、これを透析せしめ、次に0.2 μm の孔径のフィルターを通過せしめることにより調製できる。本発明のガレクチン９誘導因子は、該細胞膜可溶化分画から、蛋白質の溶解度による分画（有機溶媒による沈澱や硫安などによる塩析など）、透析、陽イオン交換クロマトグラフィー、陰イオン交換クロマトグラフィー、ゲルろ過、疎水性クロマトグラフィーや、キレート、色素、抗体などを用いたアフィニティークロマトグラフィーなどを単独あるいは適宜組み合わせることにより精製する事ができる。例えば、DEAE-セファロース(Sepharose) などを用いた陰イオン交換クロマトグラフィー、ブルー−セファロースを用いたアフィニティークロマトグラフィー、Mono Q HR 5/5(FPLCシステム、アマシャム・ファルマシアバイオテク) などの高性能液体クロマトグラフィーシステム等を経て電気泳動的にほぼ単一バンドにまで精製することができる。代表的な場合では、ポリアクリルアミドゲル電気泳動によりほぼ単一バンドのものとして取得することが可能である。
具体的な場合、本発明のガレクチン９誘導因子は、前記BALL-1細胞の細胞膜可溶化分画より、コンカナバリンＡカラムクロマトグラフィー、陰イオンカラムカラムクロマトグラフィー、及びハイドロキシアパタイトカラムクロマトグラフィーから成る群から選ばれた処理で精製及び／又は濃縮できる。なお、タンパク質の定量は、市販のタンパク質アッセイキットを使用して行われ、例えば色素結合法により行うことができ、タンパク質自動分析装置を使用しても行うことができる。
本発明のガレクチン９誘導因子をコードするDNAは、例えば、以下のような方法によってそれを単離処理に付すことが可能である。本発明の誘導因子を精製後、Ｎ末端アミノ酸配列を解析する。該誘導因子のアミノ酸配列解析では、精製物を必要に応じて、リジルエンドペプチダーゼ、V8プロテアーゼなどの酵素により切断後、逆相液体クロマトグラフィーなどによりペプチド断片を精製後、プロテインシーケンサーによりアミノ酸配列を解析する。配列解析では、複数のペプチド断片を利用してそのアミノ酸配列を決めることができる。決定したアミノ酸配列を元にPCR用のプライマーを設計し、誘導因子生産細胞の染色体DNAもしくは、cDNAライブラリー（市販のものであってもよい）を鋳型とし、アミノ酸配列から設計したPCRプライマーを用いてPCRを行うことにより本発明のDNAの一部を得ることができる。この際、ヒトゲノムデータベース（GenBank^TM, DNA Data Bank of Japan (DDBJ) など) を適切なプログラム（例えば、BLAST プログラムなど）を使用して検索するなどして利用することができる。さらに、得られたDNA断片をプローブとして、誘導因子生産細胞の染色体DNAの制限酵素消化物をファージ、プラスミドなどに導入し、大腸菌を形質転換して得られたライブラリーやcDNAライブラリーを利用して、コロニーハイブリダイゼーション、プラークハイブリダイゼーションなどにより、所望のDNAを得ることができる。また、PCRにより得られたDNA断片の塩基配列を解析し、得られた配列から、既知のDNAの外側に伸長させるためのPCRプライマーを設計し、誘導因子生産細胞の染色体DNAを適当な制限酵素で消化後、自己環化反応によりDNAを鋳型としてインバースPCRを行うことにより（Ochman, H. et al., Genetics, 120: 621-623 (1988); Innis, M. et al. (Ed.), PCR: Application & Protocols, Academic Press, New York (1989))、また、RACE法（Rapid Amplification of cDNA Ends, Frohman, M.A. et al. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 85: 8998 (1988); Innis, M.A. et al. (Ed.), PCR Protocols: A guide to methods and applications, pp28-38, Academic Press, New York (1990), 駒野徹編、生物化学実験法47 PCR実験マニュアル、学会出版センター(JSSP)) などにより所望のDNAを得ることも可能である。なお、当該所望のDNAは、以上のような方法によってクローニングされたゲノムDNA、あるいはcDNAの他、合成によって得ることもできる。

本発明のガレクチン９誘導因子は、その生物活性を、少なくとも以下：
(1) ガレクチン９誘導活性、
(2) 標的腫瘍細胞としてMeth-Aザルコーマを使用したインビボ試験で腫瘍細胞の増殖抑制又は腫瘍の拒絶を誘起する、
(3) 抗腫瘍活性、
(4) インビトロ試験で末梢血単核球におけるナチュラル・キラー活性を誘導する、
(5) 末梢血単核球を使用した試験で、ガレクチン９ mRNA の発現のアップレギュレーション、
(6) 末梢血単核球を使用した試験で、細胞質におけるガレクチン９タンパクの発現の有意な上昇、
(7) 組織病理学的検査で注射した部位に好酸球及び単核細胞からなり、少ない数の好中球を伴った肉芽組織が認められる、
(8) 注射した部位の皮筋層の上や下の結合組織で多くの肥満細胞が見出される、
(9) 腫瘍の周囲組織の組織病理学的検査で腫瘍の周り又は腫瘍組織に炎症細胞（主には好酸球及びいくらかの肥満細胞）の浸潤を有している領域が見出される、
(10) 腫瘍の周囲組織の組織病理学的検査で核濃縮を示す腫瘍細胞が見出される、及び
(11) 腫瘍の周囲組織の組織病理学的検査で腫瘍の周囲又は腫瘍組織にメタクロマジーを示す肥満細胞の集積が確認される、
から成る群から選ばれたものにより同定して行われることができる。典型的には、ガレクチン９誘導活性を指標にすることができる。ガレクチン９誘導活性は、本発明のガレクチン９誘導因子を添加した場合と、それを添加していない場合とで、ガレクチン９の存在量の変化、ガレクチン９活性の変化、ガレクチン９発現活性の変化、ガレクチン９ mRNA 量の変化などをアッセイして同定できる。ガレクチン９並びにガレクチン９発現活性は、例えば国際公開第02/37114号パンフレット(WO 02/37114 A1)に開示のアッセイ法などを参考にして行うことができる。

本発明では、「遺伝子組換え技術」を利用して所定の核酸・ポリヌクレオチドなどを単離・配列決定したり、組換え体を作製したり、所定のタンパク質・ペプチドを得ることができる。本明細書中使用できる遺伝子組換え技術としては、当該分野で知られたものが挙げられ、例えば J. Sambrook et al., "Molecular Cloning: A Laboratory Manual", Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, New York (2nd Edition, 1989 & 3rd Edition, 2001); D. M. Glover et al. ed., "DNA Cloning", 2nd ed., Vol. 1 to 3, (The Practical Approach Series), IRL Press, Oxford University Press (1995); "Methods in Enzymology" series, Academic Press, New York、例えば R. Wu ed., "Methods in Enzymology", Vol. 68 (Recombinant DNA), Academic Press, New York (1980); R. Wu et al. ed., "Methods in Enzymology", Vol. 100 (Recombinant DNA, Part B) & 101 (Recombinant DNA, Part C), Academic Press, New York (1983); R. Wu et al. ed., "Methods in Enzymology", Vol. 153 (Recombinant DNA, Part D), 154 (Recombinant DNA, Part E) & 155 (Recombinant DNA, Part F), Academic Press, New York (1987); R. Wu ed., "Methods in Enzymology", Vol. 216 (Recombinant DNA, Part G), Academic Press, New York (1992); R. Wu ed., "Methods in Enzymology", Vol. 217 (Recombinant DNA, Part H) & 218 (Recombinant DNA, Part I), Academic Press, New York (1993); P. M. Conn ed., "Methods in Enzymology", Vol. 302 (Green Fluorescent Protein), Academic Press, New York (1999); S. Weissman ed., "Methods in Enzymology", Vol. 303 (cDNA Preparation and Characterization), Academic Press, New York (1999) などに記載の方法あるいはそこで引用された文献記載の方法あるいはそれらと実質的に同様な方法や改変法が挙げられる（それらの中にある記載はそれを参照することにより本明細書の開示に含められる) 。

本明細書中、「オリゴヌクレオチド」とは、比較的短い一本鎖又は二本鎖のポリヌクレオチドで、好ましくはポリデオキシヌクレオチドが挙げられ、Angew. Chem. Int. Ed. Engl., Vol.28, p.716-734 (1989) に記載されているような既知の方法、例えば、フォスフォトリエステル法、フォスフォジエステル法、フォスファイト法、フォスフォアミダイト法、フォスフォネート法などの方法により化学合成されることができる。通常合成は、修飾された固体支持体上で合成を便利に行うことができることが知られており、例えば、市販されている自動化された合成装置、例えば、Applied Biosystems 3400 DNA synthesizer (Applied Biosystems), ABI 3900 High-Throughput DNA synthesizer (Applied Biosystems) などを用いて行うことができる。該オリゴヌクレオチドは、一つ又はそれ以上の修飾された塩基を含有していてよく、例えば、イノシンなどの天然においては普通でない塩基あるいはトリチル化された塩基などを含有していてよいし、場合によっては、マーカーの付された塩基を含有していてよい。

本明細書中、「ポリメラーゼ・チェイン・リアクション(polymerase chain reaction)」又は「PCR」とは、一般的に、H. A. Erlich ed., PCR Technology, Stockton Press, 1989などに記載されたような方法を指し、例えば、所望のヌクレオチド配列をインビトロで酵素的に増幅するための方法を指している。一般に、PCR 法は、鋳型核酸と優先的にハイブリダイズすることのできる２個のオリゴヌクレオチドプライマーを使用して、プライマー伸長合成を行うようなサイクルを繰り返し行うことを含むものである。典型的には、PCR 法で用いられるプライマーは、鋳型内部の増幅されるべきヌクレオチド配列に対して相補的なプライマーを使用することができ、例えば、該増幅されるべきヌクレオチド配列とその両端において相補的であるか、あるいは該増幅されるべきヌクレオチド配列に隣接しているものを好ましく使用することができる。プライマーは、好ましくは 5個以上の塩基、さらに好ましくは10個以上の塩基からなるオリゴヌクレオチド、より好ましくは18〜25個の塩基からなるオリゴヌクレオチドが挙げられる。
PCR 反応は、当該分野で公知の方法あるいはそれと実質的に同様な方法や改変法により行うことができるが、上記文献の他、例えば R. Saiki, et al., Science, 230: 1350, 1985; R. Saiki, et al., Science, 239: 487, 1988; D. M. Glover et al. ed., "DNA Cloning", 2nd ed., Vol. 1, (The Practical Approach Series), IRL Press, Oxford University Press (1995); M. A. Innis et al. ed., "PCR Protocols: a guide to methods and applications", Academic Press, New York (1990)); M. J. McPherson, P. Quirke and G. R. Taylor (Ed.), PCR: a practical approach, IRL Press, Oxford (1991); M. A. Frohman et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 85, 8998-9002 (1988) などに記載された方法あるいはそれを修飾したり、改変した方法に従って行うことができる。また、PCR 法は、それに適した市販のキットを用いて行うことができ、キット製造業者あるいはキット販売業者により明らかにされているプロトコルに従って実施することもできる。

PCR 反応は、代表的な場合には、例えば鋳型（代表的にはDNA)と対象核酸に基づいてデザインされたプライマーとを、10×反応緩衝液 (Taq DNA ポリメラーゼに添付されている) 、dNTPs ( デオキシヌクレオシド三リン酸dATP, dGTP, dCTP, dTTPの混合物）、Taq DNA ポリメラーゼ及び脱イオン蒸留水と混合する。混合物を、例えば、GeneAmp^TM PCR system 2700 (Applied Biosystems) などの自動サーマルサイクラーを用いて一般的なPCR サイクル条件下にそのサイクルを25〜60回繰り返すが、増幅のためのサイクル数は適宜目的に応じて適当な回数とすることができる。PCR サイクル条件としては、例えば、変性90〜95℃ 5〜100 秒、アニーリング40〜60℃ 5〜150 秒、伸長65〜75℃ 30 〜300 秒のサイクル、好ましくは変性 94 ℃ 15 秒、アニーリング 58 ℃ 15 秒、伸長 72 ℃ 45 秒のサイクルが挙げられるが、アニーリングの反応温度及び時間は適宜実験によって適当な値を選択できるし、変性反応及び伸長反応の時間も、予想されるPCR 産物の鎖長に応じて適当な値を選択できる。アニーリングの反応温度は、通常プライマーと鋳型DNAとのハイブリッドのTm値に応じて変えることが好ましい。伸長反応の時間は、通常1000bpの鎖長当たり1 分程度がおおよその目安であるが、より短い時間を選択することも場合により可能である。

所定の核酸を同定したりするには、ハイブリダイゼーション技術を利用することができる。該ハイブリダイゼーションは、上記「遺伝子組換え技術」を開示する文献記載の方法あるいはそれと実質的に同様な方法や改変法により行うことができ、例えば、コロニーハイブリダイゼーション法、プラークハイブリダイゼーション法、ハイブリダイゼーション・トランスレーションアッセイ法、プラス・マイナス法などを使用できる。例えば、ハイブリダイゼーションは、DNAなどの核酸を含有しているサンプルを担体（ナイロンフィルターなどの膜を含めたもの）に転写せしめ、必要に応じ変成処理、固定化処理、洗浄処理などを施した後、その担体（例えば、膜など）に転写せしめられたものを、必要に応じ変成させた標識プローブDNA断片と、ハイブリダイゼーション用バッファ中で反応させて行われる。なお、プローブなどを放射性同位体などによって標識するには、市販の標識キット、例えばランダムプライムドDNAラベリングキット (Boehringer Mannheim)などを使用してプローブ用DNAを [α-³²P]dCTP （Amersham）などを用いて標識し、放射活性を持つプローブを得ることにより行うことが出来る。また、該標識は、当該分野で知られた方法で行うことができ、例えばジゴキシゲニン、蛍光色素、ビオチン- アビジン系などによって行うこともできる。

ハイブリダイゼーション処理は、普通約35℃〜約80℃、より好適には約50℃〜約65℃で、約15分〜約36時間、より好適には約1 時間〜約24時間行われるが、適宜最適な条件を選択して行うことができる。例えば、ハイブリダイゼーション処理は、約55℃で約18時間行われる。ハイブリダイゼーション用バッファとしては、当該分野で普通に使用されるものの中から選んで用いることができる。転写した担体（例えば、膜など）の変成処理としては、アルカリ変性液を使用する方法が挙げられ、その処理後中和液や緩衝液で処理するのが好ましい。また担体（例えば、膜など）の固定化処理としては、普通約40℃〜約 100℃、より好適には約70℃〜約90℃で、約15分〜約24時間、より好適には約1 時間〜約4 時間ベーキングすることにより行われるが、適宜好ましい条件を選択して行うことができる。例えば、フィルターなどの担体を約80℃で約2 時間ベーキングすることにより固定化が行われる。転写した担体（例えば、膜など）の洗浄処理としては、当該分野で普通に使用される洗浄液、例えば1M NaCl 、1mM EDTAおよび 0.1％ Sodium Dodecyl sulfate (SDS) 含有 50mM Tris-HC1緩衝液，pH8.0 などで洗うことにより行うことができる。膜を含めた担体としては、当該分野で普通に使用されるものの中から選んで用いることができ、例えば、ナイロンフィルターなどを挙げることができる。

上記アルカリ変性液、中和液、緩衝液としては、当該分野で普通に使用されるものの中から選んで用いることができ、アルカリ変性液としては、例えば、0.5M NaOH および1.5M NaCl を含有する液などを挙げることができ、中和液としては、例えば、1.5M NaCl 含有0.5M Tris−HCl 緩衝液，pH8.0 などを挙げることができ、緩衝液としては、例えば、 2×SSPE（0.36M NaCl、20mM NaH₂PO₄および2mM EDTA）などを挙げることができる。またハイブリダイゼーション処理に先立ち、非特異的なハイブリダイゼーション反応を防ぐために、必要に応じて転写した担体（例えば、膜など）はプレハイブリダイゼーション処理することが好ましい。このプレハイブリダイゼーション処理は、例えば、プレハイブリダイゼーション溶液[50% formamide, 5×Denhardt's溶液（0.2 ％ウシ血清アルブミン、0.2% polyvinyl pyrrolidone), 5×SSPE, 0.1% SDS, 100μg/mL熱変性サケ精子DNA]などに浸し、約35℃〜約50℃、好ましくは約42℃で、約 4〜約24時間、好ましくは約 6〜約8 時間反応させることにより行うことができるが、こうした条件は当業者であれば適宜実験を繰り返し、より好ましい条件を決めることができる。ハイブリダイゼーションに用いる標識プローブDNA断片の変成は、例えば、約70℃〜約100℃、好ましくは約100℃で、約1 分間〜約60分間、好ましくは約 5分間加熱するなどして行うことができる。なお、ハイブリダイゼーションは、それ自体公知の方法あるいはそれに準じた方法で行うことができるが、本明細書でストリンジェントな条件とは、例えばナトリウム濃度に関し、約15〜約50mM、好ましくは約19〜約40mM、より好ましくは約19〜約20mMで、温度については約35〜約85℃、好ましくは約50〜約70℃、より好ましくは約60〜約65℃の条件を示す。

ハイブリダイゼーション完了後、フィルターなどの担体を十分に洗浄処理し、特異的なハイブリダイゼーション反応をした標識プローブDNA断片以外の標識プローブを取り除くなどしてから検出処理をすることができる。フィルターなどの担体の洗浄処理は、当該分野で普通に使用されるものの中から選んで用いて行うことができ、例えば、0.1% SDS含有0.5×SSC (O.15M NaCl, 15mM クエン酸）溶液などで洗うことにより実施できる。
ハイブリダイズした核酸は、代表的にはオートラジオグラフィーにより検出することができるが、当該分野では各種の技術手法が知られており、そうした方法の中から適宜選択して検出に用いることもできる。検出したシグナルに相当する核酸バンドを、適切な緩衝液、例えば、SM溶液(100mM NaCl および10mM MgSO₄含有50mM Tris-HCl 緩衝液、pH7.5)などに懸濁し、ついでこの懸濁液を適度に希釈して、所定の核酸を単離・精製、そしてさらなる増幅処理にかけることができる。所定の核酸を保有するサンプル（例えば、ファージ粒子、組換えプラスミド又はベクターなど）は、当該分野で普通に使用される方法でそれを精製分離することができ、例えば、グリセロールグラジエント超遠心分離法（Molecular cloning, a laboratory manual, ed. T. Maniatis, Cold Spring Harbor Laboratory, 2nd ed. 78, 1989）などにより精製することができる。ファージ粒子などからは、当該分野で普通に使用される方法でDNAを精製分離することができ、例えば、得られたファージなどをTM溶液（10mM MgSO₄含有50mM Tris-HCl 緩衝液、pH7.8 ）などに懸濁し、DNase I およびRNase A などで処理後、20mM EDTA 、50μg/ml Proteinase K 及び0.5 ％SDS 混合液などを加え、約65℃、約1 時間保温した後、これをフェノール抽出ジエチルエーテル抽出後、エタノール沈殿によりDNAを沈殿させ、次に得られたDNAを70％エタノールで洗浄後乾燥し、TE溶液（10mM EDTA 含有10mM Tris-HC1 緩衝液、pH8.0)に溶解するなどして得られる。また、目的としているDNAは、サブクローニングなどにより大量に得ることも可能であり、例えばサブクローニングは、宿主として大腸菌を用いプラスミドベクターなどを用いて行うことができる。こうしたサブクローニングにより得られたDNAも、上記と同様にして遠心分離、フェノール抽出、エタノール沈殿などの方法により精製分離できる。本明細書において、核酸は、一本鎖DNA、二本鎖DNA、RNA、DNA:RNAハイブリッド、合成DNAなどの核酸であり、またゲノムDNA、ゲノミックDNAライブラリー、細胞由来のcDNA、合成DNAのいずれであってもよい。

本発明に従えば、解明されているガレクチン９遺伝子の構造並びに当該DNA配列についての知見を利用し、ターゲットの、ゲノムDNA 、mRNAのスクリーニング及びガレクチン９発現活性、ガレクチン９活性、さらにはガレクチン９誘導活性などの検知のためのプローブ並びにプライマーの設計などが可能である。特異的検出用プローブ並びにプライマーとしては、実質的にガレクチン９誘導活性を特異的に検出することを可能にするものであればよい。代表的には、国際公開第02/37114号パンフレット(WO 02/37114 A1)に開示の遺伝子のうちの特徴的な配列部分を検出することを可能にするものが挙げられ、好ましくは特異的検出に役立つものであれば該ガレクチン９遺伝子の一部を検出するものも許容される。 例えば、ヒトガレクチン９をPCR で得るには、
Gal-9 センス配列: CAGGCACCCATGGCTCAAACTAC 〔配列番号:1〕
アンチセンス配列: TATCAGACTCGGTAACGGGGGT 〔配列番号:2〕
のプライマーセットを使用できる他、実施例に記載のプライマーセットなどが挙げられる。
検出に使用されるプローブ並びにプライマーは、好適には核酸断片あるいはオリゴヌクレオチドであり、そうしたものは所定の遺伝子に特異的にハイブリダイズすることが求められる。検出に有効な場合では、ハイブリダイズ形成をして有効に結合しているものが好ましく、そうした目的では、例えば５個又は10個以上の連続した塩基を含んでいるオリゴヌクレオチド、好ましくは15個又は25個以上の連続した塩基を含んでいるオリゴヌクレオチド、さらに好ましくは30個又は50個以上の連続した塩基を含んでいるオリゴ（又はポリ）ヌクレオチドが挙げられる。標的配列に有効にハイブリダイズ形成できる塩基配列を有するオリゴ（又はポリ）ヌクレオチドは、当該選択された塩基配列の一端又は両端に別のヌクレオチドあるいはヌクレオチド鎖が付加されていてもよいし、本明細書で説明してあるような標識（マーカーあるいはレポーターなども含む）などが結合せしめてあってもよい。標識は、例えばPCR の過程で取り込まれるものであってもよい。標識は、当該分野で広く利用されているものを使用でき、例えば放射性物質、蛍光性物質、発光性物質、酵素など、さらにビオチン-アビジン系などであってよい。好適にはプローブは、検知を容易にするため標識されていてよい。遺伝子の単離にあたっては、PCR 法、さらには逆転写酵素 (RT) を用いたPCR 法 (RT-PCR) を利用することが出来る。定量的な測定を目的として競合PCR法を行うこともできる。例えば、所定のcDNAをプローブとして用いれば、例えばノーザン・ブロティング、サザン・ブロティング、in situ ハイブリダイゼーションなどにより細胞中での特有の遺伝子などを検出・測定できる。

検知に際して所定の遺伝子を特異的に増幅するためには、プライマーとしては増幅すべき配列の両端を規定する一対のオリゴヌクレオチドからなるものを使用するが、本明細書で開示したオリゴヌクレオチドあるいは本発明で定義した所定の特異的オリゴヌクレオチドの一つとユニバーサルプライマーの一つとからなる一対のオリゴヌクレオチドから構成されるものを使用することもできる。
当該プライマーは、増幅すべき配列の鎖の延長の開始に使用され、PCR法だけでなく、LCR法、TAS法などの増幅法で使用できる。該プライマーの用途は、特定の核酸増幅法に限定されるものではなく、様々な用途・適用・目的に利用できる。該検出方法では、核酸試料を上記「遺伝子組換え技術」に記載の方法で入手し、必要に応じて、ターゲット遺伝子を特異的に増幅することができるプライマーを用いて増幅反応を行ない、増幅が生じたか否かを検定する。従って、本発明の方法においては、既知のDNA, mRNAなどの核酸抽出法又は他の適当な核酸抽出方法を用いることができる。抽出されたDNA, mRNAなどの核酸の増幅は、任意の増幅方法、例えばPCR法、RT-PCR法等により行なうことができる。増幅操作からの生成物は、例えば、電気泳動、例えばアガロースゲル電気泳動を行なった後、増幅されたDNAの有無について常法により、例えばエチジウムブロマイドの染色剤で染色した後UV照射により検出することができる。あるいは、所定のプローブにより検出することができる。例えば、ガレクチン９遺伝子の発現が被験試料中にない場合には増幅が生じないかあるいは低レベルであるから、例えば、ブロッティング法、逆ブロッティング法等、増幅生成物の分離を伴わない検出方法を用いることもできる。

本明細書中で標的とする関連タンパク質あるいはポリペプタイド、そのフラグメント、さらにはDNAを含めた核酸(mRNA やオリゴヌクレオチドを含む) は、それらを単独あるいは有機的に使用し、更にはアンチセンス技術、モノクローナル抗体を含めた抗体、組換え細胞（形質転換体）などとも適宜組合わせて、ゲノミックス及びプロテオミックス技術に応用できる。核酸アレイ、タンパク質アレイを使用した遺伝子発現解析、遺伝子機能解析、タンパク質間相互作用解析、関連遺伝子解析をすることが可能である。例えば、核酸アレイ技術では、cDNAライブラリーを使用したり、PCR技術で得たDNAを基板上にスポッティング装置で高密度に配置して、ハイブリダイゼーションを利用して試料の解析が行われる。

該アレイ化は、針あるいはピンを使用して、あるいはインクジェトプリンティング技術などでもって、スライドガラス、シリコン板、プラスチックプレートなどの基板のそれぞれ固有の位置にDNAが付着せしめられることによりそれを実施することができる。該核酸アレイ上でのハイブリダイゼーションの結果得られるシグナルを観察してデータを取得する。該シグナルは、螢光色素などの標識（例えば、Cy3, Cy5, BODIPY, FITC, Alexa Fluor dyes（商品名), Texas red（商品名) など) より得られるものであってよい。検知にはレーザースキャナーなどを利用することもでき、得られたデータは適当なアルゴリズムに従ったプログラムを備えたコンピューターシステムで処理されてよい。また、タンパク質アレイ技術では、タグを付された組換え発現タンパク質産物を利用してよく、二次元電気泳動(2-DE)、酵素消化フラグメントを含めての質量分析 (MS)(これにはエレクトロスプレーイオン化法(electrospray ionization: ESI), マトリックス支援レーザー脱離イオン化法(matrix-assisted laser desorption/ionization: MALDI)などの技術が含まれ、MALDI-TOF 分析計、ESI-3 連四重極分析計、ESI-イオントラップ分析計などを使用してよい) 、染色技術、同位体標識及び解析、画像処理技術などが利用されることができる。したがって、本発明には上記で得られるあるいは利用できる酵素遺伝子系など及びそれに対する抗体に関連したソフトウエア、データベースなども含まれてよい。

本発明での検知・測定は、免疫染色、例えば組織あるいは細胞染色、免疫電子顕微鏡、イムノアッセイ、例えば競合型イムノアッセイまたは非競合型イムノアッセイで行うことができ、放射免疫測定法(RIA), FIA, LIA, EIA, ELISA などを用いることができ、B-F 分離を行ってもよいし、あるいは行わないでその測定を行うことができる。好ましくはRIA, EIA, FIA, LIAであり、さらにサンドイッチ型アッセイが挙げられる。例えばサンドイッチ型アッセイでは、一方を本発明のガレクチン９ポリペプチドに対する抗体あるいはガレクチン９の関連ペプチド断片に対する抗体とし、他方をガレクチン９のC 末端側残基に対する抗体とし、そして一方を検出可能に標識化する（もちろん、その他の組み合わせも可能であり、目的に応じて適宜デザインできる）。同じ抗原を認識できる他の抗体を固相に固定化する。検体と標識化抗体及び固相化抗体を必要に応じ順次反応させるためインキュベーション処理し、ここで非結合抗体を分離後、標識物を測定する。測定された標識の量は抗原、すなわちガレクチン９ポリペプチド抗原の量と比例する。このアッセイでは、不溶化抗体や、標識化抗体の添加の順序に応じて同時サンドイッチ型アッセイ、フォワード（forward)サンドイッチ型アッセイあるいは逆サンドイッチ型アッセイなどと呼ばれる。例えば洗浄、撹拌、震盪、ろ過あるいは抗原の予備抽出等は、特定の状況のもとでそれら測定工程の中で適宜採用される。特定の試薬、緩衝液等の濃度、温度あるいはインキュベーション処理時間などのその他の測定条件は、検体中の抗原の濃度、検体試料の性質等の要素に従い変えることができる。当業者は通常の実験法を用いながら各測定に対して有効な最適の条件を適宜選定して測定を行うことが出来る。

ガレクチン９の測定系としては、例えば組織に対しては免疫染色(METHODS, 24, 289-296(2001); J Immunol Methods, 47(2), 129-144(1981); ibid., 150(1-2), 5-21, 23-32 & 151-158(1992); Cancer J, 7(1), 24-31(2001) 等) 、免疫電子顕微鏡(Mol Biotechnol, 7(2), 145-151(1997); J Electron Microsc Tech., 19(1), 57-63 & 64-79(1991); ibid., 19(3), 305-315(1991) 等) といった蛋白測定系、in situ hybridization といった発現遺伝子測定系が、組織抽出物に対してはEIA, RIA, FIA, LIA, ウエスタンブロッティング(J Electron Microsc (Tokyo), 45(2), 119-127(1996); Methods Biochem Anal., 33, 1-58(1988); Methods Enzymol., 271, 177-203(1996); ibid., 305, 333-345(2000); J Immunol Methods, 152(2), 227-236(1992); ibid., 170(2), 177-184(1994); ibid., 195(1-2), 149-152(1996);口野嘉幸他編、「遺伝子・タンパク質、実験操作 ブロッティング法」、株式会社ソフトサイエンス社、昭和62年11月10日発行など) といった蛋白測定系、ノーザンブロッティング、ドットブロット、RNase プロテクションアッセイ、RT-PCR (reverse transcription polymerase chain reaction)、Real-Time PCR (Clinical Chemistry, 46: 11, 1738-1743 (2000))といった発現遺伝子測定系、そして血中、体液などに対してはEIA, RIA, FIA, LIA, ウエスタンブロッティングといった蛋白測定系を有利に利用できる。また直接ガレクチン９誘導因子の測定系を構築してそれを有利に利用できる。

EIA の測定系において、例えば競合法では、抗ガレクチン９抗体を固相化抗体として使用し、標識抗原及び非標識抗原（抗原としては、ガレクチン９あるいはそのフラグメントペプチドなどが挙げられる）を使用するし、また非競合法で、例えばサンドイッチ法では、固相化抗ガレクチン９抗体や標識抗ガレクチン９抗体を利用できる他、抗ガレクチン９抗体を直接標識したり、固相化せずに、抗ガレクチン９抗体に対する抗体を標識したり、固相化して行うこともできる。感度増幅法としては、例えば、非酵素標識一次抗体との組み合わせでは、高分子ポリマーと酵素と一次抗体を利用するもの（Envision試薬を応用したもの; Enhanced polymer one-step staining (EPOS))が挙げられ、非酵素標識二次抗体との組合せでは、例えば PAP (peroxidase-antiperoxidase)法などの酵素と抗酵素抗体複合体の組合せ、SABC (avidin-biotinylated peroxidase complex) 法などのビオチン標識二次抗体とビオチン標識酵素−アビジン複合体の組合せ、ABC (streptavidin-biotin complex) 法、LSAB (labeled streptavidin-biotin)法などのビオチン標識二次抗体とビオチン標識酵素−ストレプトアビジン複合体の組合せ、CSA (catalyzed signal amplification)法などのSABCとビオチン標識タイラマイドと酵素標識ストレプトアビジンの組合せ、高分子ポリマーで二次抗体と酵素を標識してあるものなどが挙げられる。

本発明の測定法においては、好適に免疫学的測定法が用いられるが、その際の固相担体としては、抗体などタンパク質を良く吸着するポリスチレン製、ポリカーボネイト製、ポリプロピレン製あるいはポリビニル製のボール、マイクロプレート、スティック、微粒子あるいは試験管などの種々の材料および形態を任意に選択し、使用することができる。
測定にあたっては至適pH、例えばpH約４〜約９に保つように適当な緩衝液系中で行うことができる。特に適切な緩衝剤としては、例えばアセテート緩衝剤、クエン酸塩緩衝剤、フォスフェート緩衝剤、トリス緩衝剤、トリエタノールアミン緩衝剤、ボレート緩衝剤、グリシン緩衝剤、炭酸塩緩衝剤、トリス−塩酸緩衝剤、ベロナール緩衝剤などが挙げられる。緩衝剤は互いに任意の割合で混合して用いることができる。抗原抗体反応は約０℃〜約60℃の間の温度で行うことが好ましい。
これら個々の免疫学的測定法を含めた各種の分析・定量法を本発明の測定方法に適用するにあたっては、特別の条件、操作等の設定は必要とされない。それぞれの方法における通常の条件、操作法に当業者の通常の技術的配慮を加えて、本発明の当該対象物質あるいはそれと実質的に同等な活性を有する物質に関連した測定系を構築すればよい。

これらの一般的な技術手段の詳細については、総説、成書などを参照することができる〔例えば、入江 寛編，「ラジオイムノアッセイ」，講談社，昭和49年発行；入江 寛編，「続ラジオイムノアッセイ」，講談社，昭和54年発行；石川栄治ら編，「酵素免疫測定法」，医学書院，昭和53年発行；石川栄治ら編，「酵素免疫測定法」（第２版），医学書院，昭和57年発行；石川栄治ら編，「酵素免疫測定法」（第３版），医学書院，昭和62年発行；H. V. Vunakis et al. (ed.), "Methods in Enzymology", Vol. 70 (Immunochemical Techniques, Part A), Academic Press, New York (1980); J. J. Langone et al. (ed.), "Methods in Enzymology", Vol. 73 (Immunochemical Techniques, Part B), Academic Press, New York (1981); J. J. Langone et al. (ed.), "Methods in Enzymology", Vol. 74 (Immunochemical Techniques, Part C), Academic Press, New York (1981); J. J. Langone et al. (ed.), "Methods in Enzymology", Vol. 84 (Immunochemical Techniques, Part D: Selected Immunoassays), Academic Press, New York (1982); J. J. Langone et al. (ed.), "Methods in Enzymology", Vol. 92 (Immunochemical Techniques, Part E: Monoclonal Antibodies and General Immunoassay Methods), Academic Press, New York (1983); J. J. Langone et al. (ed.), "Methods in Enzymology", Vol. 121 (Immunochemical Techniques, Part I: Hybridoma Technology and Monoclonal Antibodies), Academic Press, New York (1986); J. J. Langone et al. (ed.), "Methods in Enzymology", Vol. 178 (Antibodies, Antigens, and Molecular Mimicry), Academic Press, New York (1989); M. Wilchek et al. (ed.), "Methods in Enzymology", Vol. 184 (Avidin-Biotin Technology), Academic Press, New York (1990); J. J. Langone et al. (ed.), "Methods in Enzymology", Vol. 203 (Molecular Design and Modeling: Concepts and Applications, Part B: Anibodies and Antigens, Nucleic Acids, Polysaccharides, and Drugs), Academic Press, New York (1991) などあるいはそこで引用された文献 (それらの中にある記載はそれを参照することにより本明細書の開示に含められる) 〕。

ガレクチン９発現遺伝子(cDNA などのDNA 及びmRNAなどのRNA を含む) を、上記した「遺伝子組換え技術」に従い、当該分野で特定の遺伝子の発現を検知測定するために知られた手法、例えばin situ ハイブリダイゼーション、ノーザンブロッティング、ドットブロット、RNase プロテクションアッセイ、RT-PCR、Real-Time PCR (Journal of Molecular Endocrinology, 25, 169-193(2000)及びそこで引用されている文献) 、DNA アレイ解析法(Mark Shena編、"Microarray Biochip Technology", Eaton Publishing(2000年３月))などによって検知・測定して、ガレクチン９誘導因子活性を検知できる。こうした技術を利用したガレクチン９発現遺伝子測定系、それに利用する試薬、方法、プロセスなどは、すべて本発明のガレクチン９誘導因子活性検出剤、ガレクチン９誘導因子活性検出法及びそれに利用するシステムに含まれる。該in situ ハイブリダイゼーションには、例えばノンRI in situ ハイブリダイゼーションが含まれてよく、そこには、例えば直接法及び間接法が含まれてよい。該直接法は、例えば核酸プローブに検出可能な分子（レーポーター）が直接結合しているものを使用し、該間接法は、例えばレーポーター分子に対する抗体などを使用してシグナルを増幅せしめているものである。核酸プローブ中のオリゴヌクレオタイドには、官能基（例えば、第一級脂肪族アミノ基、SH基など) が導入されており、こうした官能基にハプテン、螢光色素、酵素などが結合せしめられていてもよい。核酸プローブの標識としては、代表的にはジゴキシゲニン(DIG) 、ビオチン、フルオレッセインなどが挙げられるが、上記したように抗体のところで説明した標識から適宜選択して使用することができるし、また多重ラベリングも利用でき、さらに標識抗体も利用できる。核酸プローブの標識法としては、当該分野で知られた方法から適宜選択して使用できるが、例えばランダムプライム法、ニック・トランスレーション法、PCR によるDNA の増幅、ラベリング／テイリング法、in vitro transcription法などが挙げられる。処理された試料の観察には、当該分野で知られた方法から適宜選択して使用できるが、例えば暗視野顕微鏡、位相差顕微鏡、反射コントラスト顕微鏡、螢光顕微鏡、デジタルイメージング顕微鏡、電子顕微鏡なども使用できるし、さらにフローサイトメトリーなどによることもできる。本発明では、ガレクチン９及びガレクチン９発現遺伝子をガレクチン９誘導因子のマーカーとして使用することができ、それにより、様々な形態のガレクチン９誘導因子活性検出剤あるいはガレクチン９誘導因子検出及び／又は測定剤、ガレクチン９誘導因子活性検出法あるいはガレクチン９誘導因子検出及び／又は測定法、さらにはガレクチン９誘導因子活性検出あるいはガレクチン９誘導因子検出及び／又は測定試薬セットあるいはシステムを作成でき、ガレクチン９誘導因子の精製・同定・単離・利用において役立つばかりでなく、それらは優れている。

本発明では、ガレクチン９の産生・遊離を誘導することによる、ガン転移抑制作用を得るための方法、それに使用する試薬、あるいはキット、システム（検知・測定系を含む）などを提供する。ガレクチン９の生体内濃度、あるいは発現をコントロールすることで、抗腫瘍剤、抗アレルギー剤、免疫抑制剤、自己免疫疾患用剤、抗炎症剤及び副腎皮質ステロイドホルモン代替用活性成分剤を提供できる。また、ガレクチン９誘導因子を利用して、グルココルチコイドの示す薬理作用・生物活性を利用した分野への応用が可能である。 アレルギーや自己免疫疾患はCD4 陽性Tリンパ球の過剰免疫反応により惹起されるし、難治性アレルギーや自己免疫疾患の治療にはステロイドや免疫抑制剤が用いられる。ガレクチン９は、これらの反応においてその関与が明らかであることから、ガレクチン９誘導因子は、免疫抑制作用、抗炎症作用、抗アレルギー活性を示すことが期待でき、抗腫瘍剤、抗アレルギー剤、免疫抑制剤、自己免疫疾患用剤、抗炎症剤及び副腎皮質ステロイドホルモン代替剤として利用可能である。

本発明の活性成分〔例えば、ガレクチン９誘導因子、それを含有する液体等〕を医薬として用いる場合、通常単独或いは薬理的に許容される各種製剤補助剤と混合して、医薬組成物又は医薬調製物などとして投与することができる。好ましくは、経口投与、局所投与、または非経口投与等の使用に適した製剤調製物の形態で投与され、目的に応じていずれの投与形態（吸入法、あるいは直腸投与も包含される）によってもよい。
また、本発明の活性成分は、各種医薬、例えば抗腫瘍剤（抗がん剤）、腫瘍移転阻害剤、血栓形成阻害剤、関節破壊治療剤、鎮痛剤、消炎剤及び／又は免疫抑制剤と配合して使用することもでき、それらは、有利な働きを持つものであれば制限なく使用でき、例えば当該分野で知られたものの中から選択することができる。

そして、非経口的な投与形態としては、局所、経皮、静脈内、筋肉内、皮下、皮内もしくは腹腔内投与を包含し得るが、患部への直接投与も可能であり、またある場合には好適でもある。好ましくはヒトを含む哺乳動物に経口的に、あるいは非経口的（例、細胞内、組織内、静脈内、筋肉内、皮下、皮内、腹腔内、胸腔内、脊髄腔内、点滴法、注腸、経直腸、点耳、点眼や点鼻、歯、皮膚や粘膜への塗布など）に投与することができる。具体的な製剤調製物の形態としては、溶液製剤、分散製剤、半固形製剤、粉粒体製剤、成型製剤、浸出製剤などが挙げられ、例えば、錠剤、被覆錠剤、糖衣を施した剤、丸剤、トローチ剤、硬カプセル剤、軟カプセル剤、マイクロカプセル剤、埋込剤、粉末剤、散剤、顆粒剤、細粒剤、注射剤、液剤、エリキシル剤、エマルジョン剤、灌注剤、シロップ剤、水剤、乳剤、懸濁剤、リニメント剤、ローション剤、エアゾール剤、スプレー剤、吸入剤、噴霧剤、軟膏製剤、硬膏製剤、貼付剤、パスタ剤、パップ剤、クリーム剤、油剤、坐剤（例えば、直腸坐剤）、チンキ剤、皮膚用水剤、点眼剤、点鼻剤、点耳剤、塗布剤、輸液剤、注射用液剤などのための粉末剤、凍結乾燥製剤、ゲル調製品等が挙げられる。
医薬用の組成物は通常の方法に従って製剤化することができる。例えば、適宜必要に応じて、生理学的に認められる担体、医薬として許容される担体、アジュバント剤、賦形剤、補形剤、希釈剤、香味剤、香料、甘味剤、ベヒクル、防腐剤、安定化剤、結合剤、ｐＨ調節剤、緩衝剤、界面活性剤、基剤、溶剤、充填剤、増量剤、溶解補助剤、可溶化剤、等張化剤、乳化剤、懸濁化剤、分散剤、増粘剤、ゲル化剤、硬化剤、吸収剤、粘着剤、弾性剤、可塑剤、崩壊剤、噴射剤、保存剤、抗酸化剤、遮光剤、保湿剤、緩和剤、帯電防止剤、無痛化剤などを単独もしくは組合わせて用い、それとともに本発明のタンパク質等を混和することによって、一般に認められた製剤実施に要求される単位用量形態にして製造することができる。
非経口的使用に適した製剤としては、活性成分と、水もしくはそれ以外の薬学的に許容し得る媒体との無菌性溶液、または懸濁液剤など、例えば注射剤等が挙げられる。一般的には、水、食塩水、デキストロース水溶液、その他関連した糖の溶液、エタノール、プロピレングリコール、ポリエチレングリコールなどのグリコール類が好ましい注射剤用液体担体として挙げられる。注射剤を調製する際は、蒸留水、リンゲル液、生理食塩液のような担体、適当な分散化剤または湿化剤及び懸濁化剤などを使用して当該分野で知られた方法で、溶液、懸濁液、エマルジョンのごとき注射しうる形に調製する。

注射用の水性液としては、例えば生理食塩液、ブドウ糖やその他の補助薬（例えば、D-ソルビトール、D-マンニトール、塩化ナトリウムなど）を含む等張液などが挙げられ、薬理的に許容される適当な溶解補助剤、たとえばアルコール（たとえばエタノールなど）、ポリアルコール（たとえばプロピレングリコール、ポリエチレングリコールなど）、非イオン性界面活性剤（たとえばポリソルベート 80 ^TM, HCO-50など）などと併用してもよい。油性液としてはゴマ油、大豆油などが挙げられ、溶解補助剤として安息香酸ベンジル、ベンジルアルコールなどと併用してもよい。また、緩衝剤（例えば、リン酸塩緩衝液、酢酸ナトリウム緩衝液など）又は浸透圧調節のための試薬、無痛化剤（例えば、塩化ベンザルコニウム、塩酸プロカインなど）、安定剤（例えば、ヒト血清アルブミン、ポリエチレングリコールなど）、保存剤（例えば、ベンジルアルコール、フェノールなど）、アスコルビン酸などの酸化防止剤、吸収促進剤などと配合してもよい。調製された注射液は通常、適当なアンプルに充填される。

非経口投与には、界面活性剤及びその他の薬学的に許容される助剤を加えるか、あるいは加えずに、水、エタノール又は油のような無菌の薬学的に許容される液体中の溶液あるいは懸濁液の形態に製剤化される。製剤に使用される油性ベヒクルあるいは溶剤としては、天然あるいは合成あるいは半合成のモノあるいはジあるいはトリグリセリド類、天然、半合成あるいは合成の油脂類あるいは脂肪酸類が挙げられ、例えばピーナッツ油、トウモロコシ油、大豆油、ゴマ油などの植物油が挙げられる。例えば、この注射剤は、通常本発明化合物を0.1 〜10重量％程度含有するように調製されることができる。
局所的、例えば口腔、又は直腸的使用に適した製剤としては、例えば洗口剤、歯磨き剤、口腔噴霧剤、吸入剤、軟膏剤、歯科充填剤、歯科コーティング剤、歯科ペースト剤、坐剤等が挙げられる。洗口剤、その他歯科用剤としては、薬理的に許容される担体を用いて慣用の方法により調製される。口腔噴霧剤、吸入剤としては、本発明化合物自体又は薬理的に許容される不活性担体とともにエアゾール又はネブライザー用の溶液に溶解させるかあるいは、吸入用微粉末として歯などへ投与できる。軟膏剤は、通常使用される基剤、例えば、軟膏基剤（白色ワセリン、パラフィン、オリーブ油、マクロゴール400 、マクロゴール軟膏など）等を添加し、慣用の方法により調製される。

歯、皮膚への局所塗布用の薬品は、適切に殺菌した水または非水賦形剤の溶液または懸濁液に調剤することができる。添加剤としては、例えば亜硫酸水素ナトリウムまたはエデト酸二ナトリウムのような緩衝剤；酢酸または硝酸フェニル水銀、塩化ベンザルコニウムまたはクロロヘキシジンのような殺菌および抗真菌剤を含む防腐剤およびヒプロメルローズのような濃厚剤が挙げられる。
坐剤は、当該分野において周知の担体、好ましくは非刺激性の適当な補形剤、例えばポリエチレングリコール類、ラノリン、カカオ脂、脂肪酸トリグリセライド等の、好ましくは常温では固体であるが腸管の温度では液体で直腸内で融解し薬物を放出するものなどを使用して、慣用の方法により調製されるが、通常本発明化合物を0.1 〜95重量％程度含有するように調製される。使用する賦形剤および濃度によって薬品は、賦形剤に懸濁させるかまたは溶解させることができる。局部麻酔剤、防腐剤および緩衝剤のような補助薬は、賦形剤に溶解可能である。 経口的使用に適した製剤としては、例えば錠剤、丸剤、カプセル剤、粉末剤、顆粒剤、トローチのような固形組成物や、液剤、シロップ剤、懸濁剤のような液状組成物等が挙げられる。製剤調製する際は、当該分野で知られた製剤補助剤などを用いる。錠剤及び丸剤はさらにエンテリックコーティングされて製造されることもできる。調剤単位形態がカプセルである場合には、前記タイプの材料にさらに油脂のような液状担体を含有することができる。

また、活性成分がタンパク質やポリペプチドである場合、ポリエチレングリコール（PEG)は、哺乳動物中で極めて毒性が低いことから、それを結合させることは特に有用である。また、PEG を結合せしめると、異種性化合物の免疫原性及び抗原性を効果的に減少せしめることができる場合がある。該化合物は、マイクロカプセル装置の中に入れて与えてもよい。PEG のようなポリマーは、アミノ末端のアミノ酸のα-アミノ基、リジン側鎖のε-アミノ基、アスパラギン酸又はグルタミン酸側鎖のカルボキシル基、カルボキシ末端のアミノ酸のα-カルボキシル基、又はある種のアスパラギン、セリン又はトレオニン残基に付着したグリコシル鎖の活性化された誘導体に、簡便に付着させることができる。
タンパク質との直接的な反応に適した多くの活性化された形態のPEG が知られている。タンパク質のアミノ基と反応させるのに有用なPEG 試薬としては、カルボン酸、カルボネート誘導体の活性エステル、特に、脱離基がN-ヒドロキシスクシンイミド、p-ニトロフェノール、イミダゾール、又は1-ヒドロキシ-2-ニトロベンゼン-4-スルフォネートであるものが挙げられる。同様に、アミノヒドラジン又はヒドラジド基を含有するPEG 試薬は、タンパク質中の過ヨウ素酸酸化によって生成したアルデヒドとの反応に有用である。
本発明の活性成分は、その投与量を広範囲にわたって選択して投与できるが、その投与量及び投与回数などは、処置患者の性別、年齢、体重、一般的健康状態、食事、投与時間、投与方法、排泄速度、薬物の組み合わせ、患者のその時に治療を行なっている病状の程度に応じ、それらあるいはその他の要因を考慮して決められる。

医薬品製造にあたっては、その添加剤等や調製法などは、例えば日本薬局方解説書編集委員会編、第十四改正 日本薬局方解説書、平成13年６月27日発行、株式会社廣川書店；一番ヶ瀬 尚 他編 医薬品の開発12巻（製剤素剤〔Ｉ〕）、平成２年10月15日発行、株式会社廣川書店；同、医薬品の開発12巻（製剤素材〔II〕）平成２年10月28日発行、株式会社廣川書店などの記載を参考にしてそれらのうちから必要に応じて適宜選択して適用することができる。
本発明の活性成分は、本明細書で説明している、(a) ガレクチン９産生及び遊離の誘導を介して、ガレクチン９が担う生物活性をコントロールして、例えばヒトガレクチン９が正常細胞には傷害活性を示さず、腫瘍細胞に対して細胞傷害活性を示すという性状、腫瘍細胞に対してアポトーシスを誘導するが、正常細胞にはアポトーシスを誘導しないという性状、悪性細胞の転移性を抑制するという性状、活性化された免疫細胞、特には活性化したCD4陽性T細胞のアポトーシスを誘導する活性（これに対しレスティングT細胞、特にCD4陽性レスティングT細胞（ヘルパーT細胞）のアポトーシス誘導はそれを誘導しないという性状）などを利用する上で有用であり、抗腫瘍剤、抗アレルギー剤、免疫抑制剤、自己免疫疾患用剤、抗炎症剤、副腎皮質ステロイドホルモンと同様な活性を利用する薬剤として有望である。
本明細書において、ナチュラル・キラー細胞の細胞傷害性の測定を行うことができる。活性物質の刺激によるナチュラル・キラー(NK)細胞の細胞傷害性の測定法については、当該分野で知られた方法の中から選んでそれを適用できるし、市販のアッセイキットを利用して行うことができる。市販アッセイキットとしては、例えばLDH Cytotoxicity Detection Kit (TaKaRa) などが挙げられる。代表的な細胞傷害性の測定法は、細胞から放出される乳酸脱水素酵素(LDH) を測定することにより細胞傷害を測定するもので、該LDH は通常では細胞膜を通過しないが、細胞膜が傷害を受けると細胞外、すなわち培地中に放出される。そこで放出されたLDH をその乳酸を脱水素化してピルビン酸とNADHを生成する活性に基づいてアッセイするものである。該生成NADHはジアホラーゼの触媒でテトラゾリウム塩を還元し、490nm の吸収をもつ赤色のホルマザン色素を形成するので、490nm の吸光度量の増大でLDH 活性をの測定できる。この手法では、死細胞又は細胞膜に傷害をうけた細胞の数は、培養上清中のLDH 酵素活性の増加として現れるので、これにより細胞傷害活性が測定される。
別のアッセイ法では、単核白血球(mononuclear leukocyte; MNL)を取得して、該細胞(3×10⁶ 個/mL)を活性物質（例えば、BALL-mf 、IL-2など) による刺激あるいはコントロールの無刺激( 例えば、PBS による処理) をし、適切な培地（例えば、抗菌・抗真菌性溶液(antibiotic antimycotic solution; Sigma chemicals, St. Louis, MO, USA)を添加した10% FCS 含有RPMI 1640 培地など）中で培養する。培養後その細胞を標的細胞に対するエフェクター細胞として使用する。一方、標的細胞 K562 は Na₂ ⁵¹CrO₄ (Daiichi Radioisotope Laboratories,東京; 比活性, 1mCi/mL)でもって処理してラベルする(50 μCi/10⁶個細胞) 。その細胞を２回洗った後、さらに37℃で30分間培養する。細胞は洗った後に1×10⁵ 個/mL となるように再懸濁される。そのラベルされた細胞を96-ウェルの丸底型マイクロタイタープレートの各ウェルに入れ(1×10⁴ 個細胞/ ウェル、３セット）、エフェクター細胞：標的細胞比(E:T比) 10〜40でもってエフェクター細胞と一緒にインキュベーション処理する。自然に生ずるCr放出をみるために培地単独の中でインキュベーション処理した標的細胞を使用し、最大のCr放出をみるために1N HClを加えた中でインキュベーション処理した標的細胞を使用する。プレートは、37℃で４時間インキュベーション処理され、350 g で６分間遠心処理され、上澄み液(100μL)を得、ガンマカウンター(Aloka, 東京) を使用して上清液の放射活性を測定する。細胞のリシス％を次式により計算する：

平均値±SEで細胞毒性を示し、統計的な有意性は Student'sテストを使用して評価できる。
明細書及び図面において、用語は、IUPAC-IUB Commission on Biochemical Nomenclatureによるか、あるいは当該分野において慣用的に使用される用語の意味に基づくものである。
ガレクチン９誘導因子を使用することにより、ガレクチン９の機能や該機能を発揮するのに関与しているガレクチン９結合分子、特にはアポトーシス関連ガレクチン９結合タンパク質などを探索・同定することを行うことができる。探索対象としては、特に限定されず種々の生物由来材料を使用できる。相互作用分子探索法としては、当該分野で知られた様々な方法を単独あるいは任意に組合せて行うことができる。例えば、候補タンパク質からガレクチン９と相互作用するタンパク質を同定するには、例えば以下の方法から選択してそれを適用できる。相互作用しているタンパク質を知ることのより、標的タンパク質の新規の機能並びに調節機構、例えばガレクチン９を介したもの、を知ることが可能である。利用できる方法としては、(1) 免疫沈降法、(2) ウェストウェスタン法（West Western法, またはファーウェスタン法: Far Western 法、リガンド・ブロッティング法を含む）、(3) 分子間架橋法、(4) 発現クローニング法、(5) ツー・ハイブリッド・システム(Two-Hybrid system) 、(6) ファージディスプレイ法、(7) 表面プラズモン共鳴法、(8) 蛍光偏光法などが挙げられるが、これらに限定されず、当該分野で知られた方法並びにその改変法を適用できる。

免疫沈降法とは、試料である種々様々なタンパク質溶液に、目的のタンパク質に特異的な抗体を加えて、目的のタンパク質と相互作用しているタンパク質を免疫複合体のまま免疫沈降物として単離し、SDS-PAGEや、さらにウェスタンブロッティングなどで同定するといった手法で、目的のタンパク質と相互作用しあうタンパク質の存在を検討するのに有効である。ここでは、目的のタンパク質に対する特異的な抗体あるいは既知タンパク質に対する特異的な抗体、プロテインA 又はプロテインG セファロースなどの抗体をトラップする樹脂などが使用できるほか、好ましくはRIなどで標識したタンパク質溶液を準備できることが好ましい。市販のキットを利用することも可能であり、例えば Affi-Prep 10, Affi-Gel Hz (BIO-RAD 社), NHS Sepharose HP (Pharmacia社) などが挙げられる。
測定対象タンパク質としては、融合タンパク質として作製・精製したものを利用でき、この場合、Tag に対する抗体を有効に利用できて便利である、組換えタンパク質としては、大腸菌、酵母、哺乳動物細胞などの宿主発現系を利用できるほか、網状赤血球の無細胞翻訳系を利用することも可能である。また、タンパク質溶液に目的の融合タンパク質を過剰に加えるなどし、融合タンパク質を簡便に精製するときに co-purificationすることも利用できる。それらの方法は、例えば、Rudner, D.Z. et al., Mol. Cell Biol., 116, 1765-1773, 1998 (His-tag 利用), Cleveland, d.w. et al., J. Mol. Biol., 116, 207-225, 1977 (tau (microtubule-associated protein)利用) などを参照することができる。

ウェストウェスタン法またはファーウェスタン法とは、ウェスタン法の変法で、抗体の代わりに標識した目的タンパク質などや既知のタンパク質などのプローブ・タンパク質を用いて、膜にトランスファーしたタンパク質との結合をみることにより、検知・測定を行うものである。目的タンパク質をプローブとして、結合するタンパク質の分布、局在、分子量などを知ることが可能な手法である。この方法は、発現ライブラリーのスクリーニングに応用してcDNAクローニングに利用することが可能である（野村照明、他、「免疫'92 」（蛋白質プローブを用いたcDNAクローニング) 、中山書店、pp169-175 (1992)）。プローブとしてのタンパク質がポロテインキナーゼでリン酸化標識できるものは有効にこれを利用できる。リガンド・ブロッティング法とは、リガンドと結合するタンパク質の解析手法であって、ファーウェスタンブロットの一種を指した方法で、RIで標識したリガンドを用いてそのRIで検出、ビオチン-リガンドを用いてストレプトアビジン・コンジュゲート抗体でもって検出、未標識リガンドを用いて、特異的な抗体と標識二次抗体を用いて検出するなどの手法である。標識としては、非RI標識を利用することも可能である。本法は、例えば Soutar, A.K. & Wade, D.P., Protein function: a practical approach (Creighton, T.E. eds.), IRL press, pp55-76, 1989 などを参照することができる。

分子間架橋法は、化学架橋剤を用いてタンパク質−タンパク質間を架橋せしめ、SDS-PAGEで分離、ウェスタンブロット法や免疫沈降法などを併せて行い検出するもので、目的のタンパク質のオリゴマー構造の解析や相互作用しているタンパク質あるいは近傍に存在するタンパク質（あるいはドメイン) の検討並びにレセプターなどのサブユニット構造の解析に有効な手法である。化学架橋剤などの情報は、PIERCE社のウェブサイト(http://www.piercenet.com/) を参照することができる。本法は、例えば Hermanson, G.T., Bioconjugate Techniques, Academic Press, 1996 などを参照できる。
発現クローニング法は、cDNAプールの中の任意のものを細胞で発現させて、目的のタンパク質あるいはタグ(Tag) 付きのタンパク質をプローブとして用いて、相互作用が認められた細胞に関連して、用いたcDNA群から特定のcDNAをクローニングするものであり、受容体、リガンドなどのクローニングを介して解析するものである。発現クローニングには、大腸菌などの原核細胞を利用したは発現系、哺乳動物細胞などの培養細胞を利用したは発現系、アフリカツメガエル卵細胞を利用したは発現系など、当該分野で知られた発現系を利用できる。本法は、例えば 佐々木博己編、「無敵のバイオテクニカルシリーズ特別編・バイオ実験の進めかた」、第６章、羊土社、1997などを参照できる。大腸菌などでの発現クローニングでは、λgt11, λZAPII などのcDNAライブラリーを大腸菌などにトランスフォーメションしてスクリーニングすることができ、基本的にはファーウェスタン法でそれを行うことがなされる。また培養細胞での発現クローニングでは、特定のcDNAをもった発現ベクターを培養細胞にトランスフェクションして、発現が認められる細胞の中から目的のタンパク質と結合するものを選別し、クローニングすることでスクリーニングできる。選別には、それには限定されないが、ELISA 法やFACS (Fluorescence Activated Cell Sorting)法などが好適に使用できる。また、特定のcDNAからin vitroでmRNAを合成してアフリカツメガエルの卵にマイクロインジェクションして発現したタンパク質が目的のタンパク質と相互作用することやその結果引き起こされる細胞の反応を利用して選別しクローニングすることも可能である。

ツー・ハイブリッド・システムは、目的のタンパク質あるいはそのタンパク質のドメイン構造部分が独立したタンパク質ドメインと相互作用すると、レポーター遺伝子が発現するように構築した転写活性因子の機能回復という現象を利用して相互作用するタンパク質を探索する手法で、クローニングシステムである。本方法には、市販のプリメイドライブラリーを利用することも可能であり、これに限定されるものではないが、例えばMATCHMAKER GAL4 cDNA LIBRARY, MATCHMAKER LexA cDNA LIBRARY (Clontech社) などが挙げられる。また自作のライブラリー作製用としては、これに限定されるものではないが、例えばHybriZAP Two-hybrid vector system (Stratagene 社) などが挙げられる。本法は、例えば山本雅編、バイオマニュアルシリーズ1.遺伝子工学の基礎技術、羊土社、1993, Downward, J., FEBL Lett., 338, 113-117, 1994などを参照することができる。
ファージディスプレイ法とは、５〜７残基のランダムなアミノ酸配列をファージの表面にもつタイブラリーを用いて、目的のタンパク質と結合したファージを集め、ファージを増殖させる、との操作を繰り返すことにより、特異性の高いアミノ酸配列を検索する手法である。また、得られた結果からタンパク質データベースを検索し、既知のタンパク質の中から対応するものを選びだすことも可能である。本法は、例えば Smith, G.P. & Scott, J.K., Methods in Enzymology, Vol. 217, pp228-257, 1993などを参照できる。

表面プラズモン共鳴法は、典型的には、BIACORE^TMシステムを利用して、センサーチップ上での生体分子間の相互作用をリアルタイムにモニターする目的で開発された手法である。該BIACORE^TMでは、生体分子の固定化されていない側のセンサーチップ（金薄膜）に光を全反射するように当てると、反射光の一部に、反射光強度が低下した部分が観察される（SPR シグナル発生）。この光の暗い部分の現れる角度（＝屈折率の変化）は、センサーチップ上での質量に依存することを利用するものである。当該センサーチップとしては、センサーチップCM5:カルボキシメチルデキストラン表面をもつ、センサーチップSA: ストレプトアビジンをあらかじめ固定化してあるもの、センサーチップNTA: NTAを固定化したもので、ニッケルでキレートし、poly-His融合タンパク質を固定化することができるものなどが挙げられる。本法は、例えば橋本せつ子、ぶんせき５、表面プラズモン共鳴現象を利用する生体分子相互作用の解析、pp362-368, 1997 、夏目徹、バイオマニュアル UP シリーズ、タンパク質の分子間相互作用実験法、pp211-230, 羊土社、1996などが挙げられる。
蛍光偏光法は、平面偏光で励起された蛍光ラベルをもった分子が励起状態中に回転などの運動を行った場合放射された蛍光は励起光とは異なった平面になるという現象を利用するもので、分子の純度宇はその大きさに影響されるため、複合体形成などで高分子になると偏光を保ち、低分子で運動性が高い場合には偏光は解消される。そこでこの偏光度を測定してその相互作用を知ることができるのである。蛍光標識には、様々なものが利用できるが、例えばFS, FITC, FXS などを使用することができる。測定は、例えばFBEACON^TMなどを使用して行うことができる。特定の対象物質に対する結合活性物質を探索・同定するのはアフィニティーカラムを利用して行うことができる。アフィニティーカラムのリガンドとしては、合成ペプチド、融合タンパク質、抗体などを使用することができる。

タンパク質80K-H、GRP94、GRP78、GRP58、及びS100 calcium-binding protein、並びにそれらの分解物から成る群から選ばれたものをヒト由来のガレクチン９誘導因子として使用して、上記(1) 免疫沈降法、(2) ウェストウェスタン法（West Western法, またはファーウェスタン法: Far Western 法、リガンド・ブロッティング法を含む）、(3) 分子間架橋法、(4) 発現クローニング法、(5) ツー・ハイブリッド・システム(Two-Hybrid system) 、(6) ファージディスプレイ法、(7) 表面プラズモン共鳴法、(8) 蛍光偏光法などを適用して、ガレクチン９の機能やガレクチン９と相互作用するタンパク質などの性状を詳しく調べることができる。

以下に実施例を掲げ、本発明を具体的に説明するが、この実施例は単に本発明の説明のため、その具体的な態様の参考のために提供されているものである。これらの例示は本発明の特定の具体的な態様を説明するためのものであるが、本願で開示する発明の範囲を限定したり、あるいは制限することを表すものではない。本発明では、本明細書の思想に基づく様々な実施形態が可能であることは理解されるべきである。
全ての実施例は、他に詳細に記載するもの以外は、標準的な技術を用いて実施したもの、又は実施することのできるものであり、これは当業者にとり周知で慣用的なものである。なお、以下の実施例において、特に指摘が無い場合には、具体的な操作並びに処理条件などは、DNA クローニングでは J. Sambrook, E. F. Fritsch & T. Maniatis, "Molecular Cloning", 2nd ed., Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, N. Y. (1989) 及び D. M. Glover et al. ed., "DNA Cloning", 2nd ed., Vol. 1 to 4, (The Practical Approach Series), IRL Press, Oxford University Press (1995);PCR 法を使用する場合には、H. A. Erlich ed., PCR Technology, Stockton Press, 1989 ; D. M. Glover et al. ed., "DNA Cloning", 2nd ed., Vol. 1, (The Practical Approach Series), IRL Press, Oxford University Press (1995) 及び M. A. Innis et al. ed., "PCR Protocols", Academic Press, New York (1990)に記載の方法に準じて行っているし、また市販の試薬あるいはキットを用いている場合はそれらに添付の指示書(protocols) や添付の薬品等を使用している。

〔腫瘍細胞膜可溶化〕
腫瘍細胞として、Ｂ細胞リンパ腫由来細胞株, BALL-1細胞及びDaudi 細胞を使用して、その細胞膜可溶化分画を調製した。可溶化処理は、Hirashima, M. et al., Immunol. Letters, 36: 273-281 (1993)及びSeki, M. et al., Int. Arch. Allergy Immunol., 114: 2-5 (1997) に記載の方法に改変を加えた方法で行った。10% FCS 含有のRPMI1640培地中で培養されたBALL-1細胞を出発原料とした。収穫されたBALL-1細胞を1 mMフェニルメチルスルホニルフルオリド(PMSF)-PBSにて再浮遊した(1×10⁹ cells/5 mL)。液体窒素と室温水とを使用し、凍結・融解処理を４回行った（凍結・融解×４回）。次にソニケーター処理(output=4, duty cycle%=50 、氷上、４分間（実質２分間程度））を行った。ソニケーター処理は２分間行って次に休み、また２分間行うという操作をした。得られた破砕物を遠心分離にかけた。遠心分離処理は、100,000 G,１時間，4 ℃の条件で実施した。
遠心分離処理して得られたペレットを、上記BALL-1細胞を1 mM PMSF-PBS にて再浮遊した時と同量の50 mM Tris-HCl (pH 8.2), 1 mM EDTA及び1% CHAPSからなる液に再浮遊し、ホモジナイゼーション処理した。ホモジナイズ処理は、10 mL 又は20 mL のテフロン（登録商標）・ガラスホモジナイザーを使用し、氷上でペレットが完全に無くなるまで数分間行った。得られた生成物を遠心分離にかけた。遠心分離処理は、20,000 G (15,000 rpm), 30 分間，4 ℃の条件で実施した。上清液(Sup(MF)) を回収した。吸光度(Optical Density: OD) を測定した。ブランクには、50 mM Tris-HCl (pH 8.2), 1 mM EDTA及び1% CHAPSからなる液を用いた。得られた上清液をPBS に対して徹底的に透析せしめ、次に0.2 μmLの孔径のフィルターを通過せしめ、腫瘍細胞膜可溶化分画(mf)を得る(BALL-mf画分)。それを使用まで-80 ℃で保存した。また、20% FCS 含有のRPMI1640培地中で培養されたDaudi 細胞(2×10⁸ 個/mL)についても同様に処理し mf を得(Daudi-mf画分)、それを使用まで-80 ℃で保存した。

〔腫瘍細胞の調製〕
標的腫瘍細胞として、Meth-Aザルコーマを使用した。Meth-Aザルコーマ細胞は、10% ウシ胎児血清(FBS), 100U/mLペニシリン, 100 μg/mLストレプトマイシン及び0.25μg/mLアムホテリシンB を含有するRPMI 1640 培地中で維持された。培養された細胞(1×10⁶ 個/100μL PBS 液) をBalb/cマウスの背中に皮下接種した。３週間後、生育した腫瘍を切取り、2 cmの大きさに切り分け、1 mg/mL コラーゲナーゼ(I型、Sigme C-0130; Sigma, St. Louis, MO, USA)を添加した10%FBS含有RPMI 1640 培地中に置いた。混合物をマグネチックスタラーで一定に撹拌しながら37℃で1.5 時間ホモジュネート化処理し、綿のガーゼを通した後、PBS で２回洗い、ついでPBS に再度懸濁した(2×10⁶ 個/mL;生細胞率, 約90%)。

〔腫瘍の増殖及び拒絶〕
Meth-A細胞(1×10⁵ 個/50 μL)をBALB/cマウス(7週齢の雄, n=10/群) の背中に皮下接
種した。接種後直ぐに100 ng/200μL のBALL-mf あるいはDaudi-mfをその動物の該腫瘍細胞接種部位の周りに皮下注射した(100μL/部位) 。コントロールとしては、PBS を使用した。注射を３日毎に繰り返した。週に３回該動物の体重及び該腫瘍の大きさ（短軸, a 及び長軸, b)を測定した。腫瘍の容積 (V)をAttia et al., Cancer Res., 26: 1787-1800 (1966) に記載の方法に従って次式: V (mm³)=0.4 ×a ×b² により計算して求めた。

〔ガレクチン９のRT-PCR〕
BALL-mf, Daudi-mf あるいはPBS でもって処理された細胞よりTRIZOL試薬(Gilbco, BRL) を使用して全RNA を単離した。Gene Amp RNA PCRキット(Perkin Elmer)を使用して0.5 μg の全RNA をワンステップの逆転写処理をしてDNA を調製し、次にポリメラーゼ・チェイン・リアクション(PCR) により、マウスガレクチン９又はヒトガレクチン９及びGAPDH の転写産物を増幅した。逆転写(RT)反応及びPCR は、キット製造業者の指示に従って行った。すなわち、Amersham Pharmacia Biotechを通じて合成した次なるプライマー配列:

ヒトガレクチン９
センス配列, hG9S: CGTCAATGGCTCTGTGCAGCTGTC 〔配列番号:3〕
アンチセンス配列, hG9AS: AGATCCACACTGAGAAGCTCTGGC 〔配列番号:4〕
マウスガレクチン９
センス配列, mG9SQ1: GGTCAGAGTTCAAGGTGATGGTGA 〔配列番号:5〕
アンチセンス配列, mG9SQ2: GCCTGATATCATGATGGACTTGGA 〔配列番号:6〕
を使用した。

30回PCR サイクルを繰り返してすべての転写産物を増幅した。すべての反応は、GeneAmp PCR System 9600 (Perkin Elmer Applied Biosystems) 中で行った。PCR 産物は、UVで可視化するように臭化エチジウム(1μg/mL) を含有する1.5%アガロースゲルにかけた。それぞれのPCR 産物は精製した。ガレクチン９ PCR産物のシークエンシングは、ABI PRISM Big Terminator Dye Cycle Sequencing Ready Reaction Kit (Perkin Elmer Applied Biosystems)を使用して行った。
各反応において、次なる試薬: 8 μL のTerminator Reaction Mix, 500 ng のPCR 産物, 3.2 pmolのGal-9 用プライマー及び脱イオン水をチューブに添加した。DNA のシークエンシングは、GeneAmp PCR System 2400 上で行った。低分子のバンドのところのPCR 産物及び高分子のバンドのところのPCR 産物の双方から得られた配列が、リンカーペプチド領域の長さが異なっているガレクチン９の配列に対応していた。最終的には、NIH image 1.61プログラムを使用してバンドの強度を測定した。

〔ウエスタン・ブロティング〕
(1) ウサギ抗ヒト組換え体ガレクチン-9CT血清からのヒト組換え体ガレクチン-9CT特異抗体の精製
ヒトGal-9のC-末端側ドメインで免疫したウサギから精製ポリクローナル抗体（ヒトGal-9に対する抗体) を得た。その抗体はGal-9 のC-末端側ドメイン結合Sepharose を使用して精製したもので、該抗体はマウスGal-9 を認識することも確認している。
1. 抗血清の硫安分画（粗IgG画分の作製)
氷冷下ガラス製ビーカーに抗血清（ウサギ抗ヒト組換え体ガレクチン-9CT血清、100 mL)とリン酸緩衝生理食塩液（以下、PBS, 100 mL)を入れ, 該液を30 mmのテフロン（登録商標）撹拌子を使ってマグネチックスターラーの上で撹拌しながら飽和硫酸アンモニウム溶液(100 mL)を毎分5 mLの速さで滴下した。飽和硫酸アンモニウム溶液をすべて添加した後、さらに30分間撹拌を続けた。得られた液を遠心管に移し、13,000 rpm(RPR-16 ローター、17,000 x G、高速遠心機、日立工機（株))で30分間(4℃; 以後特に指定のない場合、遠心操作は4℃で行う) 遠心した。上清を捨て、沈殿物に100 mLのPBS（氷冷；以後特に指定のない場合、氷冷したPBSを使用する) を加えて溶解した。得られた液を20 mmのテフロン（登録商標）撹拌子を入れたビーカーに移した。上記と同様の操作で、氷冷下飽和硫酸アンモニウム溶液(67 mL) を滴下し、さらに30分間撹拌した。得られた液を遠心管に移し、13,000 rpm(RPR-16 ローター、高速遠心機、日立工機（株))で30分間遠心した。上清を捨て、沈殿をPBS(50 mL)に溶解した。液を透析チューブ（ダイアライシスメンブラン27、和光純薬工業（株))に入れ、PBSに対して透析処理した。透析後透析チューブ内の液を遠心管に移し、13,000 rpm(RPR-16 ローター) で30分間遠心した。上清10 mL あたり0.05 mLの10% (w/v) アジ化ナトリウムを加え、プラスチックボトルに入れて 4℃で保存した（粗IgG画分) 。

2. 抗原カラムを用いたアフィニティー精製
上記行程1.で作製した粗IgG画分 (50 mL)に等量のPBS(40 mmol/L ラクトース及び0.05%(w/v) アジ化ナトリウムを含有)を加え、希釈粗IgG画分液とした。GST-組換え体ガレクチン-9CT(10〜20 mg)固定化ハイトラップ NHS-活性化カラム(5 ml、Amersham Biosciences社) をペリスタポンプに接続し、20 mLのPBS(20 mmol/Lラクトース含有) でカラムを洗浄することにより平衡化した（流速：毎分2 ml) 。平衡化したカラムに希釈粗IgG画分液を流し（流速：毎分1 ml) 、カラムから流出する最初の5 mLを捨て、その後の流出液をプラスチックボトルに集めた。粗IgG画分を流し終わったら、さらに5 mLのPBSを流してその流出液も同じプラスチックボトルに集めた。プラスチックボトル内の液を再度同じ条件でカラムに流し、その際の流出液もプラスチックボトルに集めた。次に、カラムを50 mLのPBS(20 mmol/L ラクトース含有) で洗浄する（流速：毎分2 mL) 。流出液の最後の2 mLを試験管に集め、PBS(20 mmol/L ラクトース含有) を対照として280 nmの吸光度を測定する。吸光度が0.02以上であった場合は、さらに10 mLのPBS(20 mmol/L ラクトース含有)で洗浄する。流出液の最後の2 mLの吸光度を測定し、吸光度が0.02以下になるまでこの操作を繰り返す。次に、カラムに30 mLの0.2 mol/Lグリシン−塩酸(pH 2.5)を流し（流速：毎分1 mL)、流出液を2 mLずつ分画する。各画分の280 nmの吸光度を測定し、吸光度0.1以上の画分を一つにまとめる。1mol/L 2-アミノ-2-ヒドロキシメチル 1,3-プロパンジオール（以下、トリス）とpHメーターを用いて、この溶出画分のpHを7〜7.5 に調節する。カラムは、40 mLのPBS(0.05% (w/v) アジ化ナトリウム含有) で平衡化して（流速：毎分2 mL)4℃で保存した。溶出画分を透析チューブ（ダイアライシスメンブラン20、和光純薬工業（株))に入れ、PBSに対して透析処理した(4℃) 。透析チューブ内の液を遠心管に移し、13,000 rpm(RPR-18 ローター、17,000 x G、高速遠心機、日立工機（株)) で30分間遠心した。上清10 mL あたり0.1 mLの10% (w/v) アジ化ナトリウムを加え、プラスチックボトルに入れて 4℃で保存した（アフィニティー精製抗-9CT抗体)。

3. アフィニティー精製抗組換え体ガレクチン-9CT抗体からの組換え体ガレクチン-7交差抗体の除去
GST-組換え体ガレクチン-7(5-10 mg) 固定化ハイトラップ NHS-活性化カラム(5 mL、Amersham Biosciences社) をペリスタポンプに接続し、20 mLのPBSで洗浄した (流速：毎分2 m L)。GST-組換え体ガレクチン-7固定化カラムカラムに上記2.で得られたアフィニティー精製抗組換え体ガレクチン-9CT抗体を流し（流速：毎分0.5 mL) 、カラムから流出する最初の4 mLを捨てその後の液をプラスチックボトルに集めた。アフィニティー精製抗組換え体ガレクチン-9CT抗体を流し終わったら、さらに5 mLのPBSを流してその流出液も同じプラスチックボトルに集めた。プラスチックボトルに集めた流出液を、再度同じ条件でカラムに流し、同じ要領で流出液を集める。280 nmの吸光度を測定し、4 ℃にて保存した（最終精製抗組換え体ガレクチン-9CT抗体標品) 。該カラムに0.2 mol/Lグリシン−塩酸(pH 2.5)を流し（流速：毎分1 mL)、吸着したガレクチン-7交差抗体を溶出して得ることができる。

(2) 免疫染色
細胞ペレットにリシスバッファ(10 mM Tris-HCl, 0.15 M NaCl, 2 mM EDTA, 2 mM EGTA、そして新しく添加した0.5 mM PMSF, 10 μg/mLのleupeptin, antipain, pepstatin A及び1 mM DTT) を加えてからソニケーション処理して細胞ライゼートを調製した。
次に細胞ライゼートにSDS を加え、サンプル混合物を100 ℃で５分間加熱処理し、次いで氷の上に置いた。各サンプルは、12% アクリルアミド-SDSゲルにかけ、分離せしめられたタンパク質をPVDF膜(BioRad Laboratories) に転写せしめた。非特異的結合を0.1% Tween-20 含有PBS 液(PBS-T) 中の5%スキムミルク液を使用してブロックした。該PVDF膜をPBS-T で数回洗った後、PBS-T で希釈した10μg/mLの精製抗組換え体ガレクチン-9CT抗体と共に１時間インキュベーション処理した。次にPVDF膜を洗った後、ペルオキシダーゼ結合ヤギ抗ウサギIgG (Amersham Pharmacia Biotech)を含有するPBS-T と共に45分間インキュベーション処理した。ELC キット(Amersham Pharmacia Biotech)中のECL-HRP 基質液に該PVDF膜を浸漬し、XJB-1 X 線フィルム(Kodak) にあてて露光せしめてバンドを可視化せしめた。

〔フロー・サイトメトリー解析〕
細胞表面に結合したガレクチン９の発現を調べるため、遠心処理して細胞を集め、0.05% NaN₃及び2%仔ウシ胎児血清(FCS) を含有するPBS (PBS+)でもって洗い25μg/mLのウサギ抗ヒトGal-9 抗体の存在下に氷の上で30分間インキュベーション処理した。細胞をPBS+で数回洗った後、FITC結合ヤギ抗ウサギIgG 抗体(Santa Cruz Biotechnology)と共に30分間氷の上でインキュベーション処理した。
ガレクチン９の細胞内での発現を調べるには、Jacob, M.C. et al., Cytometry, 12: 550-558(1991)及びSumner, H. et al., J. Immunol. Methods, 136: 259-267 (1991) に記載の方法をすこし改変して行った。すなわち、細胞を氷冷4%パラフォルムアルデヒド含有のPBS でもって10分間固定化処理した。細胞をPBS+で洗った後、サポニンバッファ(0.1% サポニン及び0.01 M HEPESバッファを含有するPBS, pH 7.4)中の25μg/mLのウサギ抗ヒトGal-9 抗体を添加した後、その細胞を室温で30分間インキュベーション処理し、ついで氷の上で30分間FITC結合ヤギ抗ウサギIgG 抗体(Santa Cruz Biotechnology)と共にインキュベーション処理した。SYSTEM II^TM Software Version 1.0を使用しているCOULTER EPICS XL-MCLフローサイトメトリーでスキャッターゲージ(15000 events)で規定した細胞全部のガレクチン９染色につき解析した。フローサイトメトリーの至適配置及び流動系を確認するためには、Flow-check^TM蛍光粒子(fluorospheres; COULTER Corporation)を用いた。

〔組織病理解析〕
腫瘍細胞の接種27日後に腫瘍を切取り、その重量を測定した。10% 中性に緩衝化されたホルムアルデヒド溶液で組織病理検査用サンプルを固定化した後、パラフィン包埋組織を4 μm の厚さの切片とし、脱パラフィン処理、再水和化処理、そしてヘマトキシリンとエオシンあるいはギムサ試薬(Giemsa's reagent)で染色した。

〔in situ ハイブリダイゼーション〕
BALL-mf を注射された部位に蓄積した細胞がガレクチン９ mRNA を含有しているか否かを調べるためにin situ ハイブリダイゼーションを行った。
DIG RNAラベリングキット(SP6/T7; Roche Molecular Biochemicals, Mannheim,独国) を使用してin vitroトランスクリプション法によりジゴキシゲニンでラベルされたRNA プローブを合成した。PCR で増幅されたガレクチン９のcDNA断片（ヌクレオチド配列の第500〜1208番の塩基; Matsumoto, R. et al., J. Biol. Chem., 273: 16976-16984 (1998))を、pGEM-T Easy Vector (Promege, Madison, WI, 米国) に入れてクローニングし、線型にされたプラスミドDNA をin vitroトランスクリプションのための鋳型DNA として使用した。センスプローブ及びアンチセンスプローブを合成し、ネガティブコントロールとしてセンスプローブを使用した。ハイブリダイゼーションプロトコルは4 μm のパラフィン切片に適用され、試薬製造業者のプロトコルに従って行われた。37℃で2時間プロテイナーゼＫで消化処理した後ハイブリダイゼーションは20μL のハイブリダイゼーション液中の1 μg/mLのプローブと共に43℃で一晩カバースリップ下に行われた。ストリンジェント条件下の洗浄の後、ジゴキシゲニン検出キット(Roche Molecular Biochemicals)を使用してジゴキシゲニンラベルを可視化した。コントロールとしては、当該センスプローブを使用した場合及びプローブを除いた場合を使用した。

〔結果〕
〔腫瘍の増殖カーブ及び腫瘍の拒絶比率〕
Balb/cマウスにMeth-Aザルコーマを接種した後、腫瘍の増殖の及ぼすBALL-mf, Daudi-mf 及びPBS の効果を調べた結果、すべての群で腫瘍細胞は最初の２週間同様に増殖した（図1(a)) 。Daudi-mf処置群及びPBS 処置群のマウスの双方においては、その後も腫瘍細胞は増殖を続け、この二つの群のマウスのうちには腫瘍の大きさについては格別の差異は無かった（図1(a))。
一方、BALL-mf 処置群のマウスでは、２週間後には腫瘍の大きさは減少に転じはじめ、18日後ではDaudi-mf処置群及びPBS 処置群のマウスの場合よりも顕著に腫瘍の大きさは小さくなっていた（図1(a)）。ところで、実験期間中これら三群のマウスの間ではその体重に格別の差異は無かった。10匹のマウスのうちの１匹ではじめてBALL-mf 処置後第20日目に腫瘍が拒絶されているのが観察され、そして第22日目にはさらに３匹のマウスで、第25日目にはさらに４匹のマウスでもそれぞれ観察された。BALL-mf 処置されたマウス10匹のうち８匹で腫瘍は第27日目には完全に拒絶されたが、PBS 処置群のマウスやDaudi-mf処置群のマウスでは10匹のうち僅かに１匹で拒絶されただけであった。
これらの結果から、BALL-mf が抗腫瘍活性（図1(b), カイ二乗（χ²)解析, p=0.0006)を有することが示された。
図１において、各符号は次のものを指している。
図１(a) では、

図１(b) では、

〔組織病理学的検査〕
組織病理学的に調べて、腫瘍周囲のBALL-mf 注射部位における細胞の反応を解明した。図2aに示すように、BALL-mf を注射したマウスではその注射した部位に主に好酸球（Ｅを付した矢印）及び単核細胞からなり、少ない数の好中球を伴った肉芽組織がみられた。Daudi-mfで処理されたマウスでも肉芽組織がみられたが、浸潤細胞は主に単核細胞であり、好酸球ではなかった（図2b）。BALL-mf を注射した部位の皮筋層の上や下の結合組織には多くの肥満細胞が見出されたが、Daudi-mfを注射した部位の皮筋層の上の結合組織ではほんの僅かの肥満細胞があっただけであった。
さらに、腫瘍の周囲組織の組織病理学的検査を行った。図3aに示すように、BALL-mf で処理されたマウスでは腫瘍の周りに又は腫瘍組織に炎症細胞（主には好酸球〔Ｅを付した矢印〕及びいくらかの肥満細胞〔Ｍを付した矢印〕であって、好中球ではない）の浸潤を有している領域が見出された（図3a)。核濃縮（矢印のみの付されたもの）を示す腫瘍細胞も見出した（図3a)。図3bに示すように、腫瘍の周囲又は腫瘍組織にメタクロマジーを示す肥満細胞の集積が確認された。比較してみると、Daudi-mfで処理されたマウスの腫瘍の周囲の組織では著しい細胞内浸潤が見られた（図3c)が、驚いたことに、無数の好中球（Ｎを付した矢印）及び単核細胞が腫瘍組織の周りに見出された。該部位には少ない数の好酸球及び肥満細胞が検出され、核濃縮を示す腫瘍細胞をみつけることはできなかった（図3c)。

〔in situ ハイブリダイゼーション〕
注射部位でのガレクチン９を発現している細胞の種類を決定するためin situ ハイブリダイゼーションを行った。その結果、皮下の筋板(panniculus carnosus muscle)下に好酸球の浸潤がみられ、その部では主として肥満細胞、その他の線維芽細胞、リンパ球、好酸球がガレクチン９を産生していることが分かった（図6a）。正常では通常筋板の周辺では肥満細胞は見られないが、BALL-mf 注射により筋板部にガレクチン9 を持つ肥満細胞の浸潤が見られた（図6b）。図6aに示すように、BALL-mf を注射した部位にGal-9 mRNAを発現している細胞をみつけた。そのGal-9 mRNAを強く発現している細胞は、形態学的並びにギムサ染色では肥満細胞であるようにみえる（図6a及び6b)。当該部位の単核細胞、好酸球、線維芽細胞等もGal-9 mRNAを発現していたが、肥満細胞と比較するとはるかに低いレベルであった（図6a)。一方、Daudi-mfを注射した部位では陽性の細胞は殆どみられなかっ
た（図6c)。

Meth-A ザルコーマ担癌マウスをBALL-mf でもってin vivo 処置すると、腫瘍の排除がみられ、その腫瘍排除はおそらくナチュラル・キラー(NK)細胞の活性化やガレクチン９の産生・遊離増強によるものである。また、腫瘍の周囲組織に好酸球増加が生じている。悪性腫瘍の予後と腫瘍の支持組織中に浸潤する細胞の種類との間には相関性があることはよく知られている。例えば、腫瘍の周囲にリンパ球浸潤がある患者では良好な予後となっている。これはリンフォカイン産生及び／又はNK細胞の活性化の結果であるかもしれない。
腫瘍の支持組織の好酸球増加は、良好な予後と結びついているのかもしれないが、好中球の増加している組織及び／又は末梢血中の好中球：リンパ球の比率が高いと、予後が良くないことに相関しているようである。この説明の一つとしては、好酸球は、好中球よりもより細胞毒活性を示し、おそらくはそれは好酸球ペルオキシダーゼに依存したヒドロキシラジカルの生成によるものであるのかもしれない。殺腫瘍性好酸球が腫瘍細胞に接着することが、プロテインキナーゼの活性化と関連性があることも示されている。

BALL-mf で処理されたマウスでは腫瘍の周囲組織で好中球でなくて好酸球の浸潤が見出された。一方、Daudi-mfで処理されたマウスでは主に好中球の浸潤が誘導されていた（図2a及び図2b)。
BALL-mf で誘導された組織の好酸球増加はBALL-mf により当該部位に誘導されたガレクチン９と相関していると考えられる。これまで本発明者等はガレクチン９がガレクチンファミリーに属するもので、新規な且つ強力な好酸球ケモアトラクタントであることを見出している。

好酸球に加えて、肥満細胞の浸潤が腫瘍及びBALL-mf の注射部位の周囲組織で誘導されている（図２及び６）。ところで、肥満細胞も好酸球と同様に良好な予後と結びついているかもしれないことが既に示されている。また、好酸球は、IL-4に仲介される抗腫瘍活性に関与するかもしれないことが既に示されている。本発明者等はこれまでにIL-4でもっての短時間の刺激によりPPD の誘導によるガレクチン９の産生が増加せしめられるが、末梢血単核細胞からのIL-5産生が抑制されることを示している。肥満細胞は、炎症部位における主要なIL-4源でありうることから、当該部位の肥満細胞は好酸球の集積に関与しているのかもしれない。また、in situ ハイブリダイゼーションの結果に基づくなら肥満細胞はBALL-mf 処置部位においての重要なガレクチン９源であるようにみえる（図６）。

また、本発明者等はこれまでにヒトの末梢血単核細胞を放射線照射処理BALL-1細胞と共に培養すると、NK活性〔腫瘍細胞株K562(NK-感受性細胞)及びその他の腫瘍細胞株（例えば、LAK-感受性細胞 Daudi, KMG-2 （グリオブラストーマ細胞）, KATOIII （胃癌）など）の両方に対して〕が増強されることを示している。本発明では、ガレクチン９によりMeth-Aに対して細胞傷害性とNK様活性（その活性は低いものであるが）を増強することを見出している。総合すると、BALL-mf により活性化されたNK細胞はその他の腫瘍細胞にも有効であることが示唆されるものであった。
腫瘍接種後２週間までの間はBALL-mf で処理されたマウス, Daudi-mfで処理されたマウス及びPBS で処理されたマウスの間では腫瘍の成長は同様なものであった（図1(a)）。このことにより、BALL-mf はNK活性やガレクチン-9産生の原因となっている因子を有していることが示唆される。

BALL-mf で処理されたマウスとDaudi-mfで処理されたマウスとの間では腫瘍細胞の外観は異なっている。BALL-mf で処理されたマウスでは腫瘍の周囲の繊維状の組織に極めて近接した腫瘍細胞の幾つかで核濃縮を発見しているが、一方、Daudi-mfで処理されたマウスでは核濃縮を示す細胞は、見られなかった（図3a及び図3c)。ガレクチン類がアポトーシスに重要な役割を果たしていることは良く知られている。例えば、ガレクチン１はＴ細胞のアポトーシスを誘導することが示されている一方で、ガレクチン３は細胞死を妨げることも示されている。最近、ガレクチン７の過剰な発現が、UVBで誘導される日焼けのケラチノサイトのアポトーシスプロセスに関与するかもしれないことが示されている。ガレクチン９に関しては、マウスのガレクチン９が胸腺細胞や活性化Ｔリンパ球のアポトーシスを誘導することが報告されている。
BALL-mf で腫瘍細胞を刺激してもガレクチン9 の発現やアポトーシスの誘導は見られなかった。ガレクチン9 そのものでは、腫瘍細胞のアポトーシスが誘導された。このことからBALL-mf は直接的に腫瘍細胞に作用することにより抗腫瘍効果を示すのではなく、Ｔ細胞や肥満細胞におけるガレクチン9 発現や遊離を誘導することにより、抗腫瘍効果を示すことが示唆された。
インビトロの組織標本の結果及びPCでの免疫染色の結果を総合すると、肥満細胞、マクロファージ、顆粒球（特に好酸球）がガレクチン9 保有細胞であることが明らかで、肥満細胞株MC9 を用いて実験を行った。肥満細胞株MC9 におけるガレクチン9 発現を調べた。
MC9 細胞をBALL-mfで刺激すると、細胞表面ガレクチン9 発現は、24時間では軽度増強されたが、細胞質内ガレクチン9発現の増強は見られない。

〔ガレクチン９誘導因子の精製〕
実施例１で得られたBALL-1細胞由来膜可溶化分画(BALL mf) を出発物質として使用し、精製処理を行った。レンチルレクチンカラムで非吸着分画と吸着分画に分けたところ、主に吸着分画にガレクチン９誘導活性が見られた。また、抗腫瘍実験では、該吸着分画にオリジナルに匹敵する抗腫瘍活性が認められた。好酸球や肥満細胞の浸潤もオリジナルと同様の結果が得られた。
レクチンカラム吸着分画をロトフォー法にて等電点分画して得られた分画を使用して刺激した末梢血単核球からRNAを採取し、RT-PCR法でガレクチン９発現について検討した。RT-PCR法では、上記等電点分画して得られた分画F-1, F-2及びF-4に明らかなガレクチン９発現の増強が認められた。これらの等電点分画して得られた分画の抗腫瘍活性について検討した。その結果、分画F-2とF-3 に強い抗腫瘍活性が誘導されていることが認められた。F-1 及びF-4 では、PBS と同様か、逆に、腫瘍細胞の増殖を亢進せしめている。分画F-2とF-3 に含まれる誘導因子に抗腫瘍活性が認められる。その画分では、組織染色で、好酸球や肥満細胞の浸潤が認められた。

〔BALL-1細胞の可溶化〕
10% FCS 含有のRPMI1640培地中で培養されたBALL-1細胞を出発原料とした。収穫されたBALL-1細胞を1 mMフェニルメチルスルホニルフルオリド(PMSF)-PBSにて再浮遊した(1×10⁹ cells/5 mL)。液体窒素と室温水とを使用し、凍結・融解処理を４回行った（凍結・融解×４回）。次にソニケーター処理(output=4, duty cycle%=50 、氷上、４分間（実質２分間程度））を行った。ソニケーター処理は２分間行って次に休み、また２分間行うという操作をした。得られた破砕物を遠心分離にかけた。遠心分離処理は、100,000 G,１時間，4 ℃の条件で実施した。
遠心分離処理して得られたペレットを、上記BALL-1細胞を1 mM PMSF-PBS にて再浮遊した時と同量の50 mM Tris-HCl (pH 8.2), 1 mM EDTA及び1% CHAPSからなる液に再浮遊し、ホモジナイゼーション処理した。ホモジナイズ処理は、10 mL 又は20 mL のテフロン（登録商標）・ガラスホモジナイザーを使用し、氷上でペレットが完全に無くなるまで数分間行った。得られた生成物を遠心分離にかけた。遠心分離処理は、20,000 G, 30分間，4 ℃の条件で実施した。
上清液(Sup(MF)) を回収した。吸光度(Optical Density: OD) を測定した。ブランクには、50 mM Tris-HCl (pH 8.2), 1 mM EDTA及び1% CHAPSからなる液を用いた。

〔カラムクロマトグラフィー精製〕
(1) 上記で得られたMFをコンカナバリンＡ(Con A) をリガンドとした担体を使用したカラムクロマトグラフィーにかけた。
Con A セファロースビーズとMFとを(1:1) で混合し、４℃、O/N でローテート。MFの濃度が濃いときは、PBS(-)で２倍に希釈して混合した。次に、これをカラムにアプライした。
カラム条件:
ポリプレップ クロマトグラフィーカラム(BIO-RAD 731-1550)
カラムボリューム 1.6〜2 mL
落下＝Elu: 22Gで自然落下、Ft, wash: 針なしで自然落下
ビーズ＝Con A セファロースビーズ（ファルマシア）
（ビーズ前処理: H₂O で洗った(wash)後、1,000 rpm で1 分間、4 ℃
で遠心した後、平衡化した）
平衡化バッファ＝ 1 mM CaCl₂, 0.1% CHAPS 含有のTBS
（ゲル量の10倍以上の量流す)
WASH＝平衡化バッファ
Elute ＝Fr. 1 〜2: 0.1 Mホウ酸バッファ(pH 6.5) (Borate)
Fr. 3 〜 : 0.2 Mホウ酸、0.15 M NaCl
保存＝0.02% NaN₃含有PBS 、４℃キープ
溶出してきたFtを回収した。WASHは平衡化バッファをアプライボリュームと同じ量流した。Elution バッファをアプライし、栓をして20分間室温に保つ。1 mLずつ、５分おきにチューブに回収する。OD (280 nm) をチェックする。

(2) Con A アフィニティカラムクロマトグラフィー処理分画を陰イオンカラムクロマトグラフィーにかけた。
上記で得られたBALL-1 Mf ConA-fraction, 9 mL (0.1 M borate-NaOH (pH 6.5) で溶出) を陰イオンカラム RESOURCE Q カラム(1 mL, アマシャム・バイオサイエンス) のクロマトグラフィーにかけた。
バッファ: A, 10 mM Tris-HCl (pH 7.5), 0.03% CHAPS
B, 10 mM Tris-HCl (pH 7.5), 1 M NaCl, 0.03% CHAPS
グラジエント: %B＝0 → 100 in 25 min.
Flow rate: 1 mL/min.
Fraction volume: 1 mL
モニター: UV (A_{280 nm}) 0-0.05
Conductivity, 0-100 mS
サンプルは Strata Clean Resin (Stratagene, CA, USA)を使用して濃縮した（×10)。濃縮したサンプルは SDS-PAGE: 12%ゲル、SYPRO Orange (Molecular Probes, Inc., USA)で染色にかけた。本RESOURCE Qで分画した結果（溶出パターン）及び取得した各分画の電気泳動の結果を示す写真を図23に示す。

(3) RESOURCE Qカラムクロマトグラフィー処理分画をハイドロキシアパタイトカラムクロマトグラフィーにかけた。
上記で得られたRESOURCE Q-fraction (fraction Nos. 14-17)をハイドロキシアパタイトカラム CHT2-I カラム(Bio-Rad)を使用したクロマトグラフィーにかけた。
カラム: CHT2-I (Bio-Rad), 2 mL
バッファ: A, 10 mM Na-Pi (pH 6.8), 0.03% CHAPS, 0.05% NaN₃
B, 500 mM Na-Pi (pH 6.8), 0.03% CHAPS, 0.05% NaN₃
グラジエント: %B＝0 → 80 in 30 min.
Flow rate: 1 mL/min.
Fraction volume: 1 mL
モニター: UV (A_{280 nm}) 0-0.02
Conductivity, 0-50 mS
サンプルは Strata Clean Resin (Stratagene, CA, USA) を使用して濃縮した（×40) 。濃縮したサンプルは SDS-PAGE: 12%ゲル、SYPRO Orange (Molecular Probes, Inc., USA)で染色)にかけた。

(4) RESOURCE Qカラムクロマトグラフィー処理分画Dをハイドロキシアパタイトカラムクロマトグラフィーにかけた。
上記のRESOURCE Q処理で得られた分画Dをハイドロキシアパタイトカラム CHT2-I カラム(Bio-Rad)を使用したクロマトグラフィーにかけた。
カラム: CHT2-I (Bio-Rad)
バッファ: A, 10 mM Na-Pi (pH 6.8), 0.03% CHAPS
バッファ: B, 500 mM Na-Pi (pH 6.8), 0.03% CHAPS
グラジエント: %B 0 → 180 in 30 min.
Flow rate: 1 mL/min.
Fraction volume: 1 mL
モニター: UV (A_{280 nm}) 0-0.02
Conductivity, 0-50 mS
サンプルは Strata Clean Resin (Stratagene, CA, USA) を使用して濃縮した（×40)。濃縮したサンプルは SDS-PAGE: 12%ゲル、SYPRO Orange (Molecular Probes, Inc., USA)で染色にかけた。

〔BALL-mf クロマトグラフィー精製分画の生物活性〕
細胞腫瘍株膜可溶化分画をレンチルレクチンカラム、続いて等電点分画法により精製を行うことにより、抗腫瘍活性を有する4分画がガレクチン９誘導因子含有画分候補として絞り込まれた。しかし、回収される蛋白量が少なく、次の精製ステップに進むには多大な労力と時間を要するため、改めて抽出法や精製法を調査し、検討を行った。かくして、レンチルレクチンカラムと同様の結合特異性を有し、かつ結合量の多いコンカナバリンA（Con A）カラムを用いて精製を行った。膜可溶化分画をCon Aカラムの吸着・非吸着分画に分画した。BALL-mf をCon A カラムで非吸着分画、吸着分画に分画し、SDS-PAGEで電気泳動したところ、異なるタンパク質のバンドが認められた（図16) 。各分画をMeth-A担癌マウスに皮下注射したところ、吸着分画(A) に強い抗腫瘍活性が認められた（図17) 。非吸着分画(B) ではPBSに比して腫瘍増殖は抑制されたが、腫瘍は排除されなかった（表1)。

吸着分画を投与した周囲の組織標本を光学顕微鏡下で観察すると、腫瘍細胞では表層の細胞に核濃縮を示す細胞が見られ、アポトーシスの可能性が示唆された（図18)。一方で正常細胞に対する細胞障害活性は認められなかった。
次に、陰イオン交換カラム(RESOURCE Q)により精製を試みた。各フラクションの電気泳動パターンより、７つに分画（溶出順に仮称: A, B, C, D, E, F, G)し、各分画の抗腫瘍活性を検討した（図19) ところ、分画Dに最も強い抗腫瘍活性が認められた。図23において、フラクション番号7-10を一緒にしてフラクションAとし、フラクション番号11-13を一緒にしてフラクションBとし、フラクション番号14-16を一緒にしてフラクションCとし、フラクション番号17-20を一緒にしてフラクションDとし、フラクション番号21-24を一緒にしてフラクションEとした。これらRESOURCE Qフラクションの電気泳動パターン並びに各分画の抗腫瘍活性測定結果を図31に示す。
更に分画Dの濃度を変えて（希釈倍率：1,200 、6,000 、30,000 倍）抗腫瘍活性を調べたところ、濃度依存性に抗腫瘍活性が認められた（図20及び32）。組織標本を作製しての実験により、細胞障害活性のがん細胞特異性について検討することができる。

陰イオンカラムRESOURCE Qにて精製後、RESOURCE Qカラムクロマトグラフィー処理分画Dをハイドロキシアパタイトカラムクロマトグラフィーにかけて、A〜E の分画を得た（図21）。図21には、各分画のSDS-PAGEの結果も示してある。上記と同様にして抗腫瘍活性を調査したところ、ヒドロキシアパタイトカラムCHT2-I分画Dの抗腫瘍活性が他の分画と比較して最も強いことを観察した（図22）。図22には、該分画のSDS-PAGEの結果も示してある。

〔アミノ酸配列分析〕
CHT2-Iカラム処理で得られた分画B, D及びEを、それぞれアミノ酸配列分析にかけた。アミノ酸配列分析はプロテインシークエンサー: Model 492 Procise^TM (Applied Biosystems)を使用して行った。サンプル調製は、サンプル全量を濃縮しSDS-PAGE（12% PAGE、還元条件下）後、PVDF膜へ転写（セミドライブロッティング装置）したバンド（CBB染色）を切り出し、プロテインシークエンサーにて分析し、N末端アミノ酸配列を決定する。CHT2-I分画Bからは、タンパク質GRP58が同定され、CHT2-I分画Dからは、タンパク質80K-Hが同定され、CHT2-I分画Eからは、タンパク質GRP94並びにGRP78が同定された。(a) GRP94 (glucose-regulated protein 94): gp96, TRA-1 (tumor rejection antigen-1), endoplasmin (HSP100?/90 family); (b) GRP78: Bip/BiP (HSP70 family); (c) GRP58: ERp57, PDI (protein disulfide isomerase); (d) 80K-H: a substrate for protein kinase C, glucosidase II b-subunit, AGE-receptor, participation in FGF signaling
ガレクチン９誘導因子の候補タンパクであるGRP94、GRP78、GRP58、80K-Hについて、それぞれを認識する抗体が市販されているものでは、CHT2-Iカラム精製分画に候補物質が存在するか否かはそれを確認した。認識する抗体としては、以下のものが挙げられる。
Anti-GRP94 MoAb: Stressgen, SPA-850
Anti-GRP94 PoAb: Santa Cruz, sc-11402
Anti-GRP78 PoAb: Santa Cruz, sc-13968
Anti-80K-H(C-20): Santa Cruz, sc-6451
CHT2-Iカラム分画処理により得られたフラクションのSDS-PAGEでのバンドと各ガレクチン９誘導因子候補タンパクとの対応関係を図33に示す。

〔BALL-1細胞の可溶化〕
BALL-1細胞(4×10⁹ cells)を1 mM PMSF-PBSにて再浮遊した(1×10⁹ cells/5 mL)。液体窒素と室温水とを使用し、凍結・融解処理を４回行った（凍結・融解×４回）。次にソニケーター処理(output=4, duty cycle%=50 、氷上、４分間（実質２分間程度））を行った(ソニケーター処理は２分間行って次に休み、また２分間行うという操作をした）。得られた細胞破砕物を遠心分離にかけた。遠心分離処理は、100,000 G(34,000 rpm),１時間，4 ℃の条件で実施した(機器: 日立 CP75β, Rotor RP55T-298アングル, 半径8.05 cm, 使用チューブ: 日立 12PC Tube（PC製）-ふた使用）。
遠心分離処理して得られたペレットを、上記BALL-1細胞を1 mM PMSF-PBS にて再浮遊した時と同量の50 mM Tris-HCl (pH 8.2), 1 mM EDTA及び1% CHAPSからなる液に再浮遊し、ホモジナイゼーション処理した。ホモジナイズ処理は、10 mL 又は20 mL のテフロン（登録商標）・ガラスホモジナイザーを使用し、氷上でペレットが完全に無くなるまで数分間行った。得られた生成物を遠心分離にかけた。遠心分離処理は、20,000 G(15,000 rpm), 30分間，4 ℃の条件で実施した（SIGMA卓上遠心機を使用し、2 mL Tubeにわけてスピンした）。上清液を回収した。吸光度(Optical Density: OD) を測定した。ブランクには、50 mM Tris-HCl (pH 8.2), 1 mM EDTA及び1% CHAPSからなる液を用いた。かくして、BALL-1 mf(膜画分; BALL-mf)を得た。

〔カラムクロマトグラフィー精製〕
(1) 上記で得られたBALL-1 mfをCon Aをリガンドとした担体を使用したカラムクロマトグラフィーにかけた。Con A セファロースビーズとBALL-1 mfとを混合し、４℃、O/N でローテート。BALL-1 mfは、PBS(-)で２倍に希釈して混合した。次に、これをカラムにアプライした。Washとして平衡化バッファをアプライボリュームと同じ量流した。まず溶出バッファを2 mLカラムにアプライして、４℃で1時間保持した後、溶出処理を行った。
カラム条件:
ポリプレップ クロマトグラフィーカラム(BIO-RAD 731-1550)
カラムボリューム 1 mL(2×10⁹ cellsあたりの上清液に対して)
流速＝自然落下
ビーズ＝Con A セファロースビーズ（Amersham Bioscience）
（ビーズ前処理: 蒸留水で洗った後、1,000 rpm で1 分間、4 ℃で遠心した後、
平衡化した）
平衡化バッファ＝ 1 mM CaCl₂, 0.1% CHAPS 含有のTBS
（ゲル量の10倍以上の量流す)
Wash＝平衡化バッファ
Elute＝0.5M メチル α-D-マンノピラノシド, 0.1% CHAPS, 0.5M NaCl含有の
10 mM Tris-HCl (pH7.5)
フラクション(fraction)ボリューム: 1 mL/tube
片付け＝平衡化バッファ
保存＝0.02% NaN₃含有PBS 、４℃キープ
溶出バッファをアプライし、1 mLずつ、チューブ(tube)に回収する。OD (280 nm) をチェックする。溶出フラクションNo.1〜6を回収。BALL-1 mfは二回に分けてカラムにかけたので、全部で11 mLが目的タンパク画分として得られた(OD₂₈₀＝0.405, Total protein=0.405×11=4.455)。

(2) Con A アフィニティカラムクロマトグラフィー処理分画の陰イオンカラムクロマトグラフィー処理
上記で得られたBALL-1 mf Con A-fractionサンプルを10 mM Tris-HCl (pH 7.5)及び0.03% CHAPSからなる液で透析処理した。
透析前: Total 11 mL, OD₂₈₀＝0.405, Total protein=0.405×11=4.455
透析後: Total 8 mL, OD₂₈₀＝0.321, Total protein=0.321×8=2.568
次に、サンプルを陰イオンカラム RESOURCE Q カラムのクロマトグラフィーにかけた。
カラム: RESOURCE Q (Amersham Bioscience)
バッファA: 10 mM Tris-HCl (pH 7.5), 0.03% CHAPS
バッファB: 10 mM Tris-HCl (pH 7.5), 0.03% CHAPS, 1 M NaCl
グラジエント: %B＝0 → 100 in 50 min.
Flow rate: 1 mL/min.
Fraction volume: 1 mL
モニター: UV (A_{280 nm})
溶出パターンを図24に示す。サンプルは各フラクションを濃縮した後、SDS-PAGEにより確認した（ゲル電気泳動は変性条件下に行い、1×SDS バッファ, pH 6.8 (0.0625M Tris-HCl, 6.25% グリセリン, 2% SDS, 5%(v/v) 2-メルカプトエタノール)を使用して12%ゲル上、室温で行った）。図25には、SDS-PAGE Silver stainの結果を示す(M: 予め染色されているタンパク質マーカー, 6〜175 kDa; S.T.: BALL-1 mf Con A-fractionの透析後サンプル, A₂₈₀=0.05, 500ng/10μL/lane)。上記の結果からlane 17〜24付近に目的の分画があると判断できる。図26には、SDS-PAGE SYPRO ORANGEの結果を示す(M: タンパク質マーカー, 2〜212 kDa; S.T.: BALL-1 mf Con A-fractionの透析後サンプル, A₂₈₀=0.05, 500ng/10μL/lane)。上記の結果からlane 17〜21付近に目的の分画80-90 kDaがあると判断できる。RESOURCE Qカラムクロマトグラフィー処理分画につきウエスタンブロットを行った。結果を図27に示す（SDS-PAGEは変性条件下に行い、1×SDS バッファ, pH 6.8 (0.0625M Tris-HCl, 6.25% グリセリン, 2% SDS, 5%(v/v) 2-メルカプトエタノール)を使用して12%ゲル上、室温で行った後、80K-H(C-20)抗体(Santa Cruz Biotech)並びにアルカリホスファターゼ(AP)-標識α-ヤギIgGを使用してウエスタンブロッティング分析した）。図27中、M: 予め染色されているタンパク質マーカー, 6〜175 kDa; S.T.: BALL-1 mf Con A-fractionの透析後サンプル, S: 実施例３のRESOURCE Qカラムクロマトグラフィー処理で得られた分画D。この結果からlane 19, 21に関して目的のサイズである80 kDa付近に全長(full-length)のバンドが確認された。また、43 kDa付近に80K-H由来のtruncated proteinのバンドも見えている。

(3) RESOURCE Qカラムクロマトグラフィー処理分画のハイドロキシアパタイトカラムクロマトグラフィー処理
上記(2)で得られたRESOURCE Q-fraction (fraction Nos. 16-22, total volume=5 Ml, A₂₈₀=0.13〜0.027)をハイドロキシアパタイトカラム CHT2-I カラムを使用したクロマトグラフィーにかけた。
カラム: ハイドロキシアパタイトカラム(CHT2-I)
バッファ: A, 10 mM Na-Pi (pH 6.8), 0.03% CHAPS
B, 500 mM Na-Pi (pH 6.8), 0.03% CHAPS
グラジエント: %B＝0 → 80 in 30 min.
Flow rate: 1 mL/min.
Fraction volume: 1 mL
サンプルは各フラクションを濃縮した後、SDS-PAGEにより確認した（ゲル電気泳動は変性条件下に行い、1×SDS バッファ, pH 6.8 (0.0625M Tris-HCl, 6.25% グリセリン, 2% SDS, 5%(v/v) 2-メルカプトエタノール)を使用して12%ゲル上、室温で行った）。図28には、SDS-PAGE Silver stainの結果を示す(M: タンパク質マーカー, 2〜212 kDa, 予め染色されているタンパク質マーカー, 6〜175 kDa; S.T.: BALL-1 mf Con A-fractionの透析後サンプル, A₂₈₀=0.20, 2μg/10μL/lane)。上記の結果からフラクション番号(fraction No.) 25〜31付近にバンドが確認された。CHT2-Iカラムクロマトグラフィー処理分画につきウエスタンブロットを行った。結果を図29及び30に示す（SDS-PAGEは変性条件下に行い、1×SDS バッファ, pH 6.8 (0.0625M Tris-HCl, 6.25% グリセリン, 2% SDS, 5%(v/v) 2-メルカプトエタノール)を使用して12%ゲル上、室温で行った後、80K-H(C-20)抗体(Santa Cruz Biotech)並びにアルカリホスファターゼ(AP)-標識α-ヤギIgGを使用してウエスタンブロッティング分析した）。図29及び30中、M: 予め染色されているタンパク質マーカー, 6〜175 kDa; S.T.: BALL-1 mf Con A-fractionの透析後サンプル, A₂₈₀=0.20, 2μg/10μL/lane。フラクション番号(fraction No.) 25〜30に関して80 kDa付近に全長(full-length)のバンドが確認された。また、フラクション番号(fraction No.) 25〜28に関して43 kDa, 36 kDa付近に80K-H由来の分解物らしいバンドも見えている。

CHT2-I処理して得られたフラクション番号26〜27（実施例３のCHT2-I分画Dに相当）を液体クロマトグラフ質量分析(LC-MS分析)にかけた。LC-MS分析は（株）アプロサイエンス（徳島県鳴門市）に委託して行った。サンプル全量をSDS-PAGE、銀染色後に目的のバンドを切り出し、脱色後、トリプシンで35℃、20時間処理した。その後、サンプルはLC-MS分析に用いた。LC-MS分析の結果、S100 calcium-binding proteinを見出した。
図34には、サンプルのSDS-PAGEにおけるバンドとLC-MS分析で得られたタンパク質の名称とが示してある。
ヒドロキシアパタイトカラムクロマトグラフィーによって得られた５つのフラクション(A-E)の中で最も高い抗腫瘍活性を示したフラクションDには、主成分として80K-Hが、またマイナー成分としてGRP94（TRA-1/gp96/ERp99/endoplasmin）、GRP78（BiP）、GRP58（ERp57/PDI）、S-100 proteinなどが含まれていた。
80K-Hは、in vitroにおいてprotein kinase Cの基質となる蛋白質として最初に同定された（その後、生理的な基質ではないことが明らかとなっている）。80K-Hはこの他に、glucosidase IIのβ-subunit、AGE-receptor（AGE: advanced glycation endoproducts）あるいはFGF受容体（FGF: fibroblast growth factor）刺激の細胞内シグナル伝達に関与する因子であるとも報告されている。さらに、ADPLD（autosomal dominant polycystic liver disease）の原因遺伝子としても同定されているが、その生物機能はほとんど明らかにされていない。80K-HはそのC-末端に小胞体移行シグナルを持つことから、小胞体において何らかの機能を果たしていると考えられるが、細胞表面に存在するとの報告もある。フラクションＤが活性を示す濃度とフラクションＤに占める各成分の割合を考慮すると、80K-Hがインデューサー（抗腫瘍活性）の本体である可能性が高い。しかし、マイナー成分のうちGRP94、GRP78、GRP58は小胞体蛋白質であり、GRP94に関しては細胞表面にも存在するとの報告があることや、80K-Hと同様グルタミン酸に富む配列を有することから、これらの成分もフラクションＤの活性に寄与している、あるいは80K-Hと協同的に作用している可能性がある。S-100はカルシウム結合蛋白質であり、機能的に80K-Hに存在するEF-hand構造（カルシウム結合モチーフ）との類似性がある。また、フラクションDにはこれらの成分の分解産物と考えられるものも含まれているため、特定のフラグメントが強い活性を持つ可能性も否定できない。
以上より、ガレクチン９誘導活性を有する因子（ガレクチン９誘導因子）あるいはその候補物質として、タンパク質80K-H、GRP94、GRP78、GRP58、そしてS100 calcium-binding proteinが提供される。

ガレクチン９誘導因子に関連しては、以下によりその遺伝子配列（塩基配列）並びにそれによりコードされているアミノ酸配列を参照することができるので、それら配列の一部あるいは全部を利用して様々な試験・解析を行うことができる。
(1)-1 S100 calcium-binding protein A8
(a)NM#002964
Homo sapiens S100 calcium binding protein A8 (calgranulin A) (S100A8), mRNA
gi|21614543|ref|NM#002964.3|[21614543]
(b)NP#002955
S100 calcium-binding protein A8; calgranulin A; cystic fibrosis antigen;
S100 calcium-binding protein A8 (calgranulin A) [Homo sapiens]
gi|21614544|ref|NP#002955.2|[21614544]
(1)-2 S100 calcium-binding protein A9
(a)NM#002965
Homo sapiens S100 calcium binding protein A9 (calgranulin B) (S100A9), mRNA
gi|9845520|ref|NM#002965.2|[9845520]
(b)NP#002956
S100 calcium-binding protein A9; calgranulin B; S100 calcium-binding protein A9
(calgranulin B) [Homo sapiens]
gi|4506773|ref|NP#002956.1|[4506773]
(2)GRP94 (glucose-regulated protein 94)
(a)NM#003299
Homo sapiens tumor rejection antigen (gp96) 1 (TRA1), mRNA
gi|4507676|ref|NM#003299.1|[4507676]
(b)NP#035761
tumor rejection antigen gp96; tumor rejection antigen (gp96) 1 [Mus musculus]
gi|6755863|ref|NP#035761.1|[6755863]
(3)GRP78 Bip/BiP
(a)NM#005347
Homo sapiens heat shock 70kDa protein 5 (glucose-regulated protein, 78kDa)
(HSPA5), mRNA
gi|21361242|ref|NM#005347.2|[21361242]
(b)NP#005338
heat shock 70kDa protein 5 (glucose-regulated protein, 78kDa); Heat-shock
70kD protein-5 (glucose-regulated protein, 78kD); heat shock 70kD protein
5 (glucose-regulated protein, 78kD) [Homo sapiens]
gi|16507237|ref|NP#005338.1|[16507237]
(4)GRP58 ERp57, PDI(protein disulfide isomerase)
(a)NM#005313
Homo sapiens glucose regulated protein, 58kDa (GRP58), mRNA
gi|21361656|ref|NM#005313.3|[21361656]
(b)NP#031978
glucose regulated protein; endoplasmic reticulum protein; glucose
regulated protein, 58 kDa; phospholipase C, alpha [Mus musculus]
gi|6679687|ref|NP#031978.1|[6679687]
(5)80K-H a substrate for protein kinase C, glucosidase II β-subunit,
AGE-receptor, participation in FGF signaling
(a)NM#001001329
Homo sapiens protein kinase C substrate 80K-H (PRKCSH), transcript variant
2, mRNA
gi|48255890|ref|NM#001001329.1|[48255890]
(b)NM#002743
Homo sapiens protein kinase C substrate 80K-H (PRKCSH), transcript variant
1, mRNA
gi|48255888|ref|NM#002743.2|[48255888]
(c)NP#001001329
protein kinase C substrate 80K-H isoform 2; glucosidase II, beta subunit;
AGE-binding receptor 2; hepatocystin; 80K-H protein; protein kinase C
substrate, 80 Kda protein [Homo sapiens]
gi|48255891|ref|NP#001001329.1|[48255891]
(d)NP#002734
protein kinase C substrate 80K-H isoform 1; glucosidase II, beta subunit;
AGE-binding receptor 2; hepatocystin; 80K-H protein; protein kinase C
substrate, 80 Kda protein [Homo sapiens]
gi|48255889|ref|NP#002734.2|[48255889]

本発明では、ガレクチン９誘導因子が同定され、その精製が行われたことから、その精製ガレクチン９誘導因子を使用しての医薬品開発、ガレクチン９の関与する生理現象、生物活性についての研究開発に利用できる。特に、ガレクチン９誘導因子は、細胞膜可溶化分画及び該画分よりコンカナバリンＡ吸着分画、Resource Q^TMイオン交換カラム、ハイドロキシアパタイトカラムなどを利用することにより、濃縮した活性保有分画として得られる。該因子を投与することで、NK様活性を増強する活性、抗腫瘍活性などの生物活性を得ることができるので、そのガレクチン９誘導活性を利用した測定試薬、医薬、アッセイなどの開発が可能である。
本発明は、前述の説明及び実施例に特に記載した以外も、実行できることは明らかである。上述の教示に鑑みて、本発明の多くの改変及び変形が可能であり、従ってそれらも本件添付の請求の範囲の範囲内のものである。

SEQ ID NO: 1, Oligonucleotide to act as a primer for PCR
SEQ ID NO: 2, Oligonucleotide to act as a primer for PCR
SEQ ID NO: 3, Oligonucleotide to act as a primer for PCR
SEQ ID NO: 4, Oligonucleotide to act as a primer for PCR
SEQ ID NO: 5, Oligonucleotide to act as a primer for PCR
SEQ ID NO: 6, Oligonucleotide to act as a primer for PCR

BALL-mf の抗腫瘍活性についての試験結果を示す。(a) 腫瘍増殖に及ぼすBALL-mf の抑制作用を示す。中黒丸：BALL-mf で処置された動物における腫瘍の重量。中黒四角：Daudi-mfで処置された動物における腫瘍の重量。中抜き丸：PBS で処置された動物における腫瘍の重量。処置後18日目でBALL-mf による腫瘍増殖抑制作用は顕著であった(n=10, p<0.05)。(b)Meth-A 担癌マウスにおける腫瘍の拒絶作用についての試験結果を示す。中黒丸：BALL-mf で処置された動物のうち腫瘍拒絶のあった動物の数。中黒四角：Daudi-mfで処置された動物のうち腫瘍拒絶のあった動物の数。中抜き丸：PBS で処置された動物のうち腫瘍拒絶のあった動物の数。χ二乗解析(n=10, p=0.0006)。 組織病理学的検査：Meth-A担癌マウスを処置した後27日目に皮膚部位を切り出し、固定化処理後、ギムザ染色した生物組織の形態を示す写真である。BALL-mf 処理(a) 。Daudi-mf処理(b) 。好酸球はＥを付した矢印で示してある。 組織病理学的検査：Meth-A担癌マウスをBALL-mf 処置した後27日目に腫瘍部位を切り出し、固定化処理後、ギムザ染色(a) 又はトルイジン青染色(b) した生物組織の形態を示す写真である。同様に、Daudi-mf処理したマウスの腫瘍部位を切り出し、固定化処理後、ギムザ染色(c) した生物組織の形態を示す写真も示す。好酸球はＥを付した矢印で示してあり、肥満細胞はＭを付した矢印で、好中球はＮを付した矢印で、そして核濃縮を示すMeth-A細胞は矢印単独で示されている。 BALL-mf をマウス背部皮内に注射後24時間後の組織を採取し、ギムザ染色後組織学的に検討した結果を示す生物組織の形態を示す写真である。リンパ球や組織肥満細胞とともに著明な好酸球の浸潤が見られる。浸潤細胞を検討すると、多くの肥満細胞や好酸球（矢印）と少数のリンパ球やマクロファージの浸潤が認められた。 コントロールとしてDaudi-mfをマウス背部皮内に注射した場合では、リンパ球系の細胞の浸潤が著明であるが好酸球の浸潤は見られない。肥満細胞や好酸球の浸潤は見られず、リンパ球の浸潤が著明であった。 BALL-mf 注射後の浸潤細胞がガレクチン9 mRNAを有するか否かの検討のためin situ ハイブリダイゼーションを行った。結果は(a) 肥満細胞は大量のガレクチン9 mRNAを有していた。好酸球、マクロファージ、線維芽細胞も軽度有していた。(b) 筋板(panniculus carnosus muscle)直上部に肥満細胞の浸潤が見られ、大量のガレクチン9 mRNAを有していた。コントロールのDaudi-mf注射では、筋板部には肥満細胞の浸潤は見られなかった(c)。また、浸潤したリンパ球にはガレクチン9 は見られなかった。 ガレクチン9 誘導因子によるインビボ効果を示す。BALL-mf 注射局所におけるガレクチン9 産生細胞及び保有細胞を明らかにするためにin situ ハイブリダイゼーション(A) 、及び免疫染色法(B) を用いてそれぞれ検討した。in situ ハイブリダイゼーション(A) では、ガレクチン9 産生細胞は肥満細胞がメインで、その他線維芽細胞、リンパ球、好酸球などがガレクチン9 の遺伝子を持っていた。免疫染色(B) でも、上記の細胞がガレクチン9 を細胞質内に保有していることが分かった。これらのことから、BALL-mf 刺激によりこれらの炎症細胞からガレクチン9 の産生・遊離が惹起され、炎症反応が誘導されることが示唆された。 BALL-mf によるガレクチン9 産生・遊離効果についての検討結果を示す。マウス腹腔細胞をBALL-mf で刺激した後、mRNAを抽出し、ガレクチン9 mRNA量をRT-PCR法で検討すると、ガレクチン9 mRNAの発現がBALL-mf によって軽度ではあるが、増強されることが分かった。さらに、ウェスタンブロット法やFACS解析を行った。FACS解析によりBALL-mf 刺激細胞において細胞質内ガレクチン9 蛋白は減少していることが明らかになった。この結果は、BALL-mf は、ガレクチン9 の産生を増強するが、むしろガレクチン9 遊離を誘導することが示唆された。 BALL-mf によるガレクチン9 産生・遊離効果についての検討結果を示す。BALL-mf 刺激PCの培養上清中にガレクチン9 の遊離が誘導されたか否かを検討するために、好酸球遊走活性を測定した。結果は、好酸球遊走活性の増強が見られ、しかもその活性は抗ガレクチン９抗体カラムに吸収されることから、ガレクチン9 の遊離が増強されることが分かった。BALL-mfによる好酸球遊走活性は抗ガレクチン9 抗体によっては吸収されるが、抗ガレクチン8 抗体によっては吸収されない。よって、ガレクチン9 誘導因子による作用と考えられる。肥満細胞系細胞のみならず、好酸球系、マクロファージ系細胞、Ｔ細胞系細胞でもガレクチン9 誘導因子によってガレクチン9 の産生が誘導された。 インビボでのBALL-mf の抗腫瘍活性を調査した結果を示す。BALL-mf はMeth-A腫瘍の生着及び増殖を抑制することが分かった。χ２乗検定でもコントロール群（PBS 処置群）での35匹中29匹、Daudi-mf処置群で25匹中22匹で生着、増殖したが、BALL-mf 処置群では30匹中24匹で排除されるか、生着しなかった。 腫瘍組織の免疫組織学的解析を行った結果を示す組織の形態を示す写真である。抗ガレクチン9 抗体を用いて免疫組織染色を行うと、BALL-mf 処置群では周囲にはガレクチン9 を著明に持つ肥満細胞の浸潤が見られ(A)、腫瘍内にも肥満細胞が浸潤していた(B)。腫瘍細胞内にもガレクチン9 が発現していた(A)。一方、Daudi-mf処置群ではガレクチン9 発現細胞の浸潤は見られず、腫瘍細胞における発現もほとんど見られなかった。 ガレクチン9 によるMeth-A腫瘍細胞のアポトーシス誘導活性を調べた結果を示す。ガレクチン9 はMeth-A細胞のアポトーシスを誘導する。 BALL-mf をレンチル-レクチン(Lentil-Lecftin)アフィニティによるガレクチン9 誘導因子の精製と抗腫瘍効果について調べた結果を示す。レンチル-レクチンカラムで非吸着、吸着分画に分け、その活性について調べた結果、ガレクチン9 誘導活性は主に吸着分画に見られた。また、抗腫瘍活性測定実験では、吸着分画にはオリジナルに匹敵する抗腫瘍活性が認められた。好酸球や肥満細胞の浸潤もオリジナルと同様であった。 誘導因子の等電点分画と抗腫瘍活性について調べた結果を示す。レクチンカラム吸着分画をロトフォー法にて等電点分画して得られた分画で刺激した末梢血単核球からRNAを採取し、ガレクチン9 発現をRT-PCR法にて検討した。RT-PCR法にてF-1, F-2及びF-4 に明らかなガレクチン9 発現の増強が見られた。 図１４で示された等電点分画して得られた分画の抗腫瘍活性について調べた結果を示す。F-2 とF-3 に強い抗腫瘍活性が誘導されている。F-1 及びF-4 では、PBS と同様か、逆に、腫瘍細胞の増殖を亢進している。F-2 及びF-3 に含まれる誘導因子に抗腫瘍活性が見られる。組織染色で好酸球や肥満細胞の浸潤が認められた。 BALL-mfをCon A アフィニティカラムクロマトグラフィーで精製した結果を示す。BALL-mf をCon A カラムで非吸着、吸着分画に分画し、SDS-PAGEを行った結果、異なるタンパク質のバンドが見られた。 Con A カラムで分画された分画について、抗腫瘍効果を検討した結果を示す。吸着分画により強い抗腫瘍活性が見られた。このことから抗腫瘍効果を示す誘導因子はマンノース又はグルコースを持つ糖タンパク質であることが分かった。 BALL-mfのCon A カラム吸着分画の細胞傷害活性について検討した結果を示す組織の写真である。 Con A カラム吸着分画を陰イオンカラム(RESOURCE Q)で精製処理し得られた分画について、各画分(A〜G)の抗腫瘍効果を検討した結果を示す。 Con A カラム吸着分画を陰イオンカラムで分画した結果得られた分画Dの濃度を変えての抗腫瘍活性を調べた結果を示す。濃度依存性に抗腫瘍活性が認められる。 陰イオンカラム(RESOURCE Q)精製処理し取得分画D をヒドロキシアパタイトカラム(CHT2-I)で分画した結果（溶出パターン）及び取得した各分画の電気泳動の結果を示す写真である。 ヒドロキシアパタイトカラム(CHT2-I)で精製処理されて得られた各分画につき抗腫瘍活性を調べた結果を示す。同時に、分画Dの電気泳動の結果を示す写真も示してある。 陰イオンカラム(RESOURCE Q)で分画した結果（溶出パターン）及び取得した各分画の電気泳動の結果を示す写真である。 Con A溶出フラクションを陰イオンカラム(RESOURCE Q)で分画した結果（溶出パターン）を示す。 Con A溶出フラクションを陰イオンカラム(RESOURCE Q)にかけて得られた分画の電気泳動の結果を示す写真(Silver stain)である。 Con A溶出フラクションを陰イオンカラム(RESOURCE Q)にかけて得られた分画の電気泳動の結果を示す写真(SYPRO ORANGE)である。 Con A溶出フラクションを陰イオンカラム(RESOURCE Q)にかけて得られた分画のウエスタンブロットを行った結果を示す写真である。 RESOURCE Q溶出フラクションをハイドロキシアパタイトカラム(CHT2-I)にかけて得られた分画の電気泳動の結果を示す写真(Silver stain)である。 RESOURCE Q溶出フラクションをハイドロキシアパタイトカラム(CHT2-I)にかけて得られた分画のウエスタンブロットを行った結果を示す写真である。 RESOURCE Q溶出フラクションをハイドロキシアパタイトカラム(CHT2-I)にかけて得られた分画のウエスタンブロットを行った結果を示す写真である。 RESOURCE Qフラクションの抗腫瘍活性と電気泳動パターン（写真）の結果を示す。 RESOURCE QフラクションDの抗腫瘍活性の結果を示す。 ハイドロキシアパタイトカラム(CHT2-I)溶出フラクションの電気泳動の結果得られたバンドと各ガレクチン９誘導因子候補タンパクとの対応関係を示す。 ハイドロキシアパタイトカラム(CHT2-I)溶出フラクションサンプルのLC-MS分析で得られたタンパク質と該サンプルの電気泳動バンドとの対応関係を示す。

Claims (6)

1. タンパク質80K-H、GRP94、GRP78、GRP58、及びS100 calcium-binding protein、並びにそれらの分解物から成る群から選ばれたものをヒト由来のガレクチン９誘導因子として含有することを特徴とする生物活性剤。
2. 少なくとも以下：
   (1) ガレクチン９誘導活性、
   (2) 標的腫瘍細胞としてMeth-Aザルコーマを使用したインビボ試験で腫瘍細胞の増殖抑制又は腫瘍の拒絶を誘起する、
   (3) 抗腫瘍活性、
   (4) インビトロ試験で末梢血単核球におけるナチュラル・キラー活性を誘導する、
   (5) 末梢血単核球を使用した試験で、ガレクチン９ mRNA の発現のアップレギュレーション、
   (6) 末梢血単核球を使用した試験で、細胞質におけるガレクチン９タンパクの発現の有意な上昇、
   (7) 組織病理学的検査で注射した部位に好酸球及び単核細胞からなり、少ない数の好中球を伴った肉芽組織が認められる、
   (8) 注射した部位の皮筋層の上や下の結合組織で多くの肥満細胞が見出される、
   (9) 腫瘍の周囲組織の組織病理学的検査で腫瘍の周り又は腫瘍組織に炎症細胞（主には好酸球及びいくらかの肥満細胞）の浸潤を有している領域が見出される、
   (10) 腫瘍の周囲組織の組織病理学的検査で核濃縮を示す腫瘍細胞が見出される、及び
   (11) 腫瘍の周囲組織の組織病理学的検査で腫瘍の周囲又は腫瘍組織にメタクロマジーを示す肥満細胞の集積が確認される、
   から成る群から選ばれた活性を有するガレクチン９誘導因子であることを特徴とする請求項１記載の生物活性剤。
3. 請求項１又は２記載のガレクチン９誘導因子を含有することを特徴とする細胞にガレクチン９を誘導する試薬。
4. 請求項１又は２記載のガレクチン９誘導因子と細胞とを接触せしめることを特徴とする細胞にガレクチン９を誘導する方法。
5. 請求項１又は２記載のガレクチン９誘導因子を含有することを特徴とする医薬。
6. 抗腫瘍剤、抗炎症剤、抗アレルギー剤、免疫抑制剤、自己免疫疾患用剤又は副腎皮質ステ
   ロイドホルモン代替剤であることを特徴とする請求項５記載の医薬。
   

Images