CN103230622A - 一种组织工程神经移植用导管及其制备方法 - Google Patents
一种组织工程神经移植用导管及其制备方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN103230622A CN103230622A CN2013101366595A CN201310136659A CN103230622A CN 103230622 A CN103230622 A CN 103230622A CN 2013101366595 A CN2013101366595 A CN 2013101366595A CN 201310136659 A CN201310136659 A CN 201310136659A CN 103230622 A CN103230622 A CN 103230622A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- conduit
- preparation
- layer
- acid
- poly
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Images
Landscapes
- Materials For Medical Uses (AREA)
Abstract
一种组织工程神经移植用导管及其制备方法,它涉及高分子材料生物医学应用领域,它由多层纤维膜组成,其最内层纤维膜是由平行排列的直径为40~300nm的纳米纤维组成,其余纤维膜均为无规排列的纳米到微米级纤维构成;所述的多层纤维膜由内到外,其降解速度逐渐变慢,最内层纤维膜的降解速度为1-2周,最外层的降解速度为6-20周,中间层介于两者之间。它可以提高纤维取向、快速收集排列规整的纳米纤维,引导和促进轴突生长,提高神经修复能力,便于营养传输,能够保证神经修复的最终完成,可使神经再生速度与降解速度相匹配。
Description
技术领域:
本发明涉及高分子材料生物医学应用领域,具体涉及一种含有取向纳米纤维可梯度降解的神经移植导管及其制备方法。
背景技术:
失神经支配会导致支配区域感觉和运动功能障碍,不同程度上影响患者的生活质量。自体神经移植是最基本、安全和有效的方法,临床上自体移植恢复率可达到80%。但自体移植属二次手术,供体来源有限,组织结构和尺寸难匹配,移植供区长期失神经支配,移植疗效存在差异等缺陷,极大限制了自体神经移植的广泛开展。
应用组织工程方法制备人工神经是理想的选择,人工神经移植物主要采用导管桥接神经断端,引导和支持神经再生。人工神经的结构、生物相容性、降解率和机械强度等对轴突再生能力产生重要影响,因此开发合适的引导神经再生的材料成为神经修复组织工程的研究重点。
通过静电纺丝技术构建的纳米纤维材料支架材料能够产生表明效应,其特有的高比表面积与高孔隙率能够模仿天然细胞外基质结构,保证细胞以高密度转载,促进细胞黏附与繁殖和基质的沉积,在制备人工神经方面显示出诸多优势。然而,由于静电纺丝的极高速分化拉伸和固化特点,致使纤维只能以无序状沉积,这种无序结构极大限制了其在神经组织工程中的应用。有研究表明静电纺丝的支架材料上纤维的取向对神经细胞的生长以及轴突的延伸都有很大的影响[S.Patel,K.Kurpinski,R.Quigley,et al.Bioactive nanofibers:synergistic effects of nanotopography and chemical signalingon cell guidance.Nano Lett,2007,7(9):2122-2128.]。此外,研究还证明具有取向排列的纳米纤维上生长的轴突要比无规则排列的纤维上要长[Xiao Liu,Jun Chen,Kerry J.Gilmore,et al.Guidance of neurite outgrowth on aligned electrospunpolypyrrole/poly(styrene-b-isobutylene-b-styrene)fiberplatforms,Journal of Biomedical Materials Research PartA,2010,94A:1004-1011]。
传统静电纺丝将正极与金属针头相连,利用喷射流的不断分化拉伸获得纳米纤维,由于喷射流的相互排斥,导致了纳米纤维的杂乱无序状排列。目前,能够静电纺丝并用于组织工支架的生物材料主要有丝素、胶原、明胶、层粘连蛋白和壳聚糖等天然高聚物,以及外消旋聚乳酸(PDLA)、左旋聚乳酸(PLLA)、聚羟基乙酸(PGA)、聚己内酯(PCL)和不同共聚比例的PLGA等合成高聚物。上述材料均具有较好的生物相容性、更低的致免疫性(immunogenicity)和更高的细胞粘附性,因此利用上述材料进行静电纺丝构建组织工程神经导管,将满足人工神经的要求。
在材料组成满足静电纺丝及人工神经的基础上,尚面临另一技术难题,即所构建的神经导管的降解要与神经再生的速度匹配,神经再生的同时,导管材料要有次序和梯度的降解,这既有利于促进神经再生的正常进行,又能够提供神经再生的微环境,保护再生的神经组织。
发明内容:
本发明的目的是提供一种组织工程神经移植用导管及其制备方法,它可以提高纤维取向、快速收集排列规整的纳米纤维,引导和促进轴突生长,提高神经修复能力,便于营养传输,能够保证神经修复的最终完成,可使神经再生速度与降解速度相匹配。
为了解决背景技术所存在的问题,本发明是采用以下技术方案:它由多层纤维膜组成,其最内层纤维膜是由平行排列的直径为40~300nm的纳米纤维组成,其余纤维膜均为无规排列的纳米到微米级纤维构成。
所述的多层纤维膜由内到外,其降解速度逐渐变慢,最内层纤维膜的降解速度为1-2周,最外层的降解速度为6-20周,中间层介于两者之间。
所述的多层纤维膜除内层外,均为外消旋聚乳酸(PDLA)、左旋聚乳酸(PLLA)、聚羟基乙酸(PGA)、聚己内酯(PCL)和不同共聚比例的PLGA中的一种或多种构成,内层纤维膜的材料由丝素、胶原、明胶、层粘连蛋白和纤维蛋白原中的一种或多种构成,也可由降解速度较快的外消旋聚乳酸(PDLA)、聚羟基乙酸(PGA)或含GA比例较高(GA比例大于70%)的羟基乙酸与羟基丙酸的共聚物(PLGA)中的一种或多种合成高聚物构成,按重量计,最内层纤维重量占5-10%。
本发明的制备方法为:
(1)制备取向纳米纤维层:
a.称取丝素、胶原、明胶、层粘连蛋白和纤维蛋白原中的一种或多种,采用甲酸、六氟异丙醇和六氟丙酮中的一种或多种溶剂溶解,获得9-15%的纺丝原液;也可采用左旋聚乳酸(PDLA)、聚羟基乙酸(PGA)或含GA比例较高的羟基乙酸与羟基丙酸的共聚物(PLGA)中的一种或多种合成高聚物溶解在2,2,2-三氟乙醇、六氟异丙醇、三氯甲烷、二氯甲烷、四氢呋喃(THF)、丙酮和二甲基甲酰胺中的一种或多种溶剂中,形成3-8%的纺丝原液。
b.将步骤a的纺丝原液吸入注射针管,注射针管放在微量泵中,由其控制纺丝液喂入速度,高压电源发生器正极连接针管金属针头,负极连接收集转辊表明平行排列的金属丝;在针头与收集转辊之间放置线圈,线圈连接另一台高压发生器正极,开启电源和微量泵,利用表明平行排列金属丝的收集辊收集取向纳米纤维。
(2)将步骤(1)制备的取向纳米纤维膜从转辊取下,经乙醇处理5-30min,再在水中浸泡30min,室温下晾干。
(3)将晾干后的取向纳米纤维膜包裹在直径为1-4mm的金属转轴上,纤维取向与金属轴轴向平行,金属转轴与连接针头的高压发生器负极相连。
(4)从外消旋聚乳酸(PDLA)、左旋聚乳酸(PLLA)、聚羟基乙酸(PGA)、聚己内酯(PCL)和不同共聚比例的PLGA中选取一种或多种合成高聚物,形成不同的材料组合,分别溶解在2,2,2-三氟乙醇、六氟异丙醇、三氯甲烷、二氯甲烷、四氢呋喃(THF)、丙酮和二甲基甲酰胺中的一种或多种溶剂中,制备质量分数为3~8%的合成高聚物纺丝原液,采用静电纺丝工艺,在上述包覆取向纳米纤维膜的金属轴上喷覆由不同材料组成的纤维层,逐层构建含有取向纳米纤维并可梯度降解的神经移植用导管。
所述的步骤b中的线圈为方框形、圆形或者其他形状的线圈。
所述的含有取向纳米纤维并可梯度降解的神经移植用导管,其口径为1~4mm,长度4-7cm,导管管壁厚度为40~120μm。
本发明技术方案中,导管最内层的取向纳米纤维能够引导神经再生,且其降解速度最快。除此之外,由内到外的纤维层是根据不同材料具有不同降解速度的特点,可通过改变合成高聚物的组成与比例,使其具有由快到慢的降解速度,满足梯度降解要求,与神经再生的速度相匹配。
本发明具有以下明显的有益效果:
1.本发明内层由平行排列的直径为40~300nm的纳米纤维组成,能够引导神经再生,促进轴突生长。
2.本发明由内到外的纤维层是根据不同材料具有不同降解速度的特点,通过改变合成高聚物的组成、比例与纺丝工艺,使其具有由快到慢的降解速度,满足梯度降解要求,与神经再生的速度相匹配。
附图说明:
图1为本发明中神经移植用导管的结构示意图,
图2为本发明中神经移植用导管内层取向纳米纤维的结构示意图,
图3为本发明中神经移植用导管外层纳米到微米级纤维的结构示意图。
具体实施方式:
参照图1-图3,本具体实施方式采用以下技术方案:它由多层纤维膜组成,其最内层纤维膜是由平行排列的直径为40~300nm的纳米纤维组成,其余纤维膜均为无规排列的纳米到微米级纤维构成。
所述的多层纤维膜由内到外,其降解速度逐渐变慢,最内层纤维膜的降解速度为1-2周,最外层的降解速度为6-20周,中间层介于两者之间。
所述的多层纤维膜除内层外,均为外消旋聚乳酸(PDLA)、左旋聚乳酸(PLLA)、聚羟基乙酸(PGA)、聚己内酯(PCL)和不同共聚比例的PLGA中的一种或多种构成,内层纤维膜的材料由丝素、胶原、明胶、层粘连蛋白和纤维蛋白原中的一种或多种构成,也可由降解速度较快的外消旋聚乳酸(PDLA)、聚羟基乙酸(PGA)或含GA比例较高(GA比例大于70%)的羟基乙酸与羟基丙酸的共聚物(PLGA)中的一种或多种合成高聚物构成,按重量计,最内层纤维重量占5-10%。
本具体实施方式的制备方法为:
(1)制备取向纳米纤维层:
a.称取丝素、胶原、明胶、层粘连蛋白和纤维蛋白原中的一种或多种,采用甲酸、六氟异丙醇和六氟丙酮中的一种或多种溶剂溶解,获得9-15%的纺丝原液;也可采用左旋聚乳酸(PDLA)、聚羟基乙酸(PGA)或含GA比例较高的羟基乙酸与羟基丙酸的共聚物(PLGA)中的一种或多种合成高聚物溶解在2,2,2-三氟乙醇、六氟异丙醇、三氯甲烷、二氯甲烷、四氢呋喃(THF)、丙酮和二甲基甲酰胺中的一种或多种溶剂中,形成3-8%的纺丝原液。
b.将步骤a的纺丝原液吸入注射针管,注射针管放在微量泵中,由其控制纺丝液喂入速度,高压电源发生器正极连接针管金属针头,负极连接收集转辊表明平行排列的金属丝;在针头与收集转辊之间放置方框形或圆形线圈,线圈连接另一台高压发生器正极,开启电源和微量泵,利用表明平行排列金属丝的收集辊收集取向纳米纤维。
(2)将步骤(1)制备的取向纳米纤维膜从转辊取下,经乙醇处理5-30min,再在水中浸泡30min,室温下晾干。
(3)将晾干后的取向纳米纤维膜包裹在直径为1-4mm的金属转轴上,纤维取向与金属轴轴向平行,金属转轴与连接针头的高压发生器负极相连。
(4)从外消旋聚乳酸(PDLA)、左旋聚乳酸(PLLA)、聚羟基乙酸(PGA)、聚己内酯(PCL)和不同共聚比例的PLGA中选取一种或多种合成高聚物,形成不同的材料组合,分别溶解在2,2,2-三氟乙醇、六氟异丙醇、三氯甲烷、二氯甲烷、四氢呋喃(THF)、丙酮和二甲基甲酰胺中的一种或多种溶剂中,制备质量分数为3~8%的合成高聚物纺丝原液,采用静电纺丝工艺,在上述包覆取向纳米纤维膜的金属轴上喷覆由不同材料组成的纤维层,逐层构建含有取向纳米纤维并可梯度降解的神经移植用导管。
所述的含有取向纳米纤维并可梯度降解的神经移植用导管,其口径为1~4mm,长度4-7cm,导管管壁厚度为40~120μm。
本具体实施方式技术方案中,导管最内层的取向纳米纤维能够引导神经再生,且其降解速度最快。除此之外,由内到外的纤维层是根据不同材料具有不同降解速度的特点,可通过改变合成高聚物的组成与比例,使其具有由快到慢的降解速度,满足梯度降解要求,与神经再生的速度相匹配。
本具体实施方式设计了不同形状(方形与圆形线圈)的喷射流分化控制器,在喷射流分化区施加与纺丝电极相同的电场,控制喷射流的“弯曲不稳定性”,以提高纤维取向。此外,以高速旋转的表面平行排列金属丝的转辊为收集装置,快速收集排列规整的纳米纤维。特别设计了以降解速度较快、具有高度取向的纳米级纤维形成导管内层,引导和促进轴突生长,提高神经修复能力。此外,由内到外,选取降解速度逐渐降低的高聚物或其组合,逐层构建由纳米到微米级纤维构成的纤维膜。通过该方法制备的神经导管,便于营养传输,能够保证神经修复的最终完成,可使神经再生速度与降解速度相匹配
实施例一:
1.称取4.4g再生丝素膜和2.1g医用明胶溶于无水甲酸中,获得11.5%的丝素/明胶共混纺丝液。称取2g聚羟基乙酸(PGA)和1g左旋聚羟基丙酸(PLLA),溶于四氢呋喃(THF)中,形成4%的纺丝液。将2.5g左旋聚羟基丙酸(PLLA)溶解在氯仿/丙酮(体积比1∶1)混合溶剂中,获得4.9%纺丝液;
2.将步骤1制得的丝素/明胶纺丝液吸入针管,针管放在微量泵中,调节流速达到0.1ml/h。高压发生器正极与针头相接,电压为15kV,负极与转辊表明平行排列的金属丝连接,金属丝排列方向与转辊轴向平行,转辊直径10cm,转速3500rpm。针头与收集辊间距为10cm,另一高压发生器连接方框型线圈,电压为10kV,线圈边长6cm,距离喷嘴3cm。开启静电发生器和微量注射泵,连续静电纺丝10min,在转辊上收集到丝素/明胶共混取向纳米纤维膜;
3.将步骤2所制得的丝素/明胶取向纳米纤维膜于100ml无水乙醇中浸泡30分钟,再在水中浸泡30min,取出室温下晾干;
4.将步骤3制备的取向纳米纤维膜包裹在直径为3mm的金属轴上,纤维取向与金属轴轴向平行,金属轴转速为500rpm,连接高压发生器负极。将步骤1所制得的PGA/PLLA纺丝液吸入注射针管,针头连接高压发生器正极,电压为25kV,针头到金属轴距离13cm,纺丝液流速0.25ml/h。在包覆有取向纳米纤维纤维膜的金属轴上收集PGA/PLLA纳米到微米级纤维,静电纺丝10min;
5.将步骤4中的纺丝液更换为步骤1制得的PLLA纺丝液,电压调整为26kV,针头到金属轴距离13cm,纺丝液流速0.30ml/h。继续静电纺丝15min,即可构建含有取向纳米纤维的神经移植导管。它的内层纤维直径为40nm~180nm,排列规整,壁厚为85μm,口径为3mm,最内层降解速度为1-2周,中间层为4-7周,最外层为8-13周。
实施例二:
1.称取2g外消旋聚乳酸(PDLA),溶于2,2,2-三氟乙醇中,获得3%纺丝液。称取1.8g聚羟基乙酸(PGA)和1.2g PLGA(LA∶GA=60∶40),溶解于四氢呋喃(THF)中,形成4.2%纺丝液。将2g PLGA(LA∶GA=85∶15)溶解在氯仿/丙酮(体积比2∶1)混合溶剂中,获得5.0%的纺丝原液;
2.将步骤1制得的PDLA纺丝原液吸入针管内,针管放在微量泵中,调节流速达到0.13ml/h。高压发生器正极与针头相接,电压为15kV,负极与转辊表明平行排列的金属丝连接,金属丝排列方向与转辊轴向平行,转辊直径10cm,转速4000rpm。针头与收集辊间距为13cm,另一高压发生器连接圆形线圈,电压为10kV,线圈直径6cm,距离喷嘴3cm。开启静电发生器和微量注射泵,连续静电纺丝6min,在转辊上收集PDLA取向纳米纤维膜;
3.将步骤1所制得的PDLA取向纳米纤维膜于100ml无水乙醇中浸泡10分钟,再在水中浸泡30min,取出室温下晾干;
4.将步骤3制备的PDLA取向纳米纤维膜包裹在直径为2mm的金属轴上,纤维取向与金属轴轴向平行,金属轴转速为300rpm,连接高压发生器负极。将步骤1所制得的PGA/PLGA纺丝液吸入注射针管,针头连接高压发生器正极,电压为23kV,针头到金属轴距离15cm,纺丝液流速0.30ml/h。在包覆有取向纳米纤维纤维膜的金属轴上收集PGA/PLGA纳米到微米级纤维,静电纺丝8min;
5.将步骤4中的纺丝液更换为步骤1制得的PLGA纺丝液,电压调整为25kV,针头到金属轴距离15cm,纺丝液流速0.40ml/h。继续静电纺丝10min,即可构建含有取向纳米纤维的神经移植导管。它的内层纤维直径为60nm~165nm,排列规整,壁厚为95μm,口径为2mm,最内层降解速度为1.5-2周,中间层为3-6周,最外层为7-11周降解。
实施例三:
1.称取1g聚羟基乙酸(PGA),溶于四氢呋喃中,获得3.5%纺丝液。称取2.0g聚羟基乙酸(PGA)和1.2g PLGA(LA∶GA=70∶30),溶解于三氟乙醇中,形成4.0%纺丝液。称取2g PLGA(LA∶GA=85∶15),溶解于三氟乙醇中,获得4.8%的纺丝液。称取2g PLLA溶解在氯仿/丙酮(体积比2∶1)混合溶剂中,获得6.0%的纺丝原液;
2.将步骤1制得的PGA纺丝原液吸入针管内,针管放在微量泵中,调节流速达到0.10ml/h。高压发生器正极与金属喷嘴相接,电压为15kV,负极与转辊表明平行排列的金属丝连接,金属丝排列方向与转辊轴向平行,转辊直径10cm,转速4500rpm。金属喷嘴头端与收集辊间距为15cm,另一高压发生器连接圆形线圈,电压为13kV,线圈直径6cm,距离喷嘴4cm。开启静电发生器和微量注射泵,连续静电纺丝5min,在转辊上收集PGA取向纳米纤维膜;
3.将步骤1所制得的PGA取向纳米纤维膜于100ml无水乙醇中浸泡5分钟,再在水中浸泡30min,取出室温下晾干;
4.将步骤3制备的PGA取向纳米纤维膜包裹在直径为1.5mm的金属轴上,纤维取向与金属轴轴向平行,金属轴转速为500rpm,连接高压发生器负极。将步骤1所制得的PGA/PLGA纺丝液吸入注射针管,针头连接高压发生器正极,电压为20kV,针头到金属轴距离15cm,纺丝液流速0.25ml/h。在包覆有取向纳米纤维纤维膜的金属轴上收集PGA/PLGA纳米到微米级纤维,静电纺丝5min;
5.将步骤4中的纺丝液更换为步骤1制得的PLGA纺丝液,电压调整为23kV,针头到金属轴距离15cm,纺丝液流速0.30ml/h,继续静电纺丝8min,收集PLGA纳米到微米级纤维。
6.将步骤5中的纺丝液更换为步骤1制得的PLLA纺丝液,电压调整为25kV,针头到金属轴距离15cm,纺丝液流速0.50ml/h,静电纺丝10min,即可构建含有取向纳米纤维的神经移植导管。
它的内层纤维直径为50nm~185nm,排列规整,壁厚为115μm,口径为1.5mm,最内层降解速度为1-2周,由内到外,第二层为3-5周,第三层5-8周,最外层为8-15周降解。
Claims (5)
1.一种组织工程神经移植用导管及其制备方法,其特征在于它山多层纤维膜组成,其最内层纤维膜是由平行排列的直径为40~300nm的纳米纤维组成,其余纤维膜均为无规排列的纳米到微米级纤维构成;所述的多层纤维膜由内到外,其降解速度逐渐变慢,最内层纤维膜的降解速度为1-2周,最外层的降解速度为6-20周,中间层介于两者之间。
2.一种组织工程神经移植用导管及其制备方法,其特征在于它的制备方法为:
(1)制备取向纳米纤维层:
(a).称取丝素、胶原、明胶、层粘连蛋白和纤维蛋白原中的一种或多种,采用甲酸、六氟异丙醇和六氟丙酮中的一种或多种溶剂溶解,获得9-15%的纺丝原液;
(b).将步骤(a)的纺丝原液吸入注射针管,注射针管放在微量泵中,由其控制纺丝液喂入速度,高压电源发生器正极连接针管金属针头,负极连接收集转辊表明平行排列的金属丝;在针头与收集转辊之间放置线圈,线圈连接另一台高压发生器正极,开启电源和微量泵,利用表明平行排列金属丝的收集辊收集取向纳米纤维;
(2)将步骤(1)制备的取向纳米纤维膜从转辊取下,经乙醇处理5-30min,再在水中浸泡30min,室温下晾干;
(3)将晾干后的取向纳米纤维膜包裹在直径为1-4mm的金属转轴上,纤维取向与金属轴轴向平行,金属转轴与连接针头的高压发生器负极相连;
(4)从外消旋聚乳酸、左旋聚乳酸、聚羟基乙酸、聚己内酯和不同共聚比例的PLGA中选取一种或多种合成高聚物,形成不同的材料组合,分别溶解在2,2,2-三氟乙醇、六氟异丙醇、三氯甲烷、二氯甲烷、四氢呋喃、丙酮和二甲基甲酰胺中的一种或多种溶剂中,制备质量分数为3~8%的合成高聚物纺丝原液,采用静电纺丝工艺,在上述包覆取向纳米纤维膜的金属轴上喷覆由不同材料组成的纤维层,逐层构建含有取向纳米纤维并可梯度降解的神经移植用导管。
3.根据权利要求2所述的一种组织工程神经移植用导管及其制备方法,其特征在于所述的步骤(a)替换为采用左旋聚乳酸、聚羟基乙酸或含GA比例较高的羟基乙酸与羟基丙酸的共聚物中的一种或多种合成高聚物溶解在2,2,2-三氟乙醇、六氟异丙醇、三氯甲烷、二氯甲烷、四氢呋喃、丙酮和二甲基甲酰胺中的一种或多种溶剂中,形成3-8%的纺丝原液。
4.根据权利要求1所述的一种组织工程神经移植用导管及其制备方法,其特征在于所述的多层纤维膜除内层外,均为外消旋聚乳酸、左旋聚乳酸、聚羟基乙酸、聚己内酯和不同共聚比例的PLGA中的一种或多种构成,内层纤维膜的材料由丝素、胶原、明胶、层粘连蛋白和纤维蛋白原中的一种或多种构成,也可由降解速度较快的外消旋聚乳酸、聚羟基乙酸或含GA比例较高的羟基乙酸与羟基丙酸的共聚物中的一种或多种合成高聚物构成,按重量计,最内层纤维重量占5-10%。
5.根据权利要求1所述的一种组织工程神经移植用导管及其制备方法,其特征在于所述的神经移植用导管,其口径为1~4mm,长度4-7cm,导管管壁厚度为40~120μm。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN2013101366595A CN103230622A (zh) | 2013-04-19 | 2013-04-19 | 一种组织工程神经移植用导管及其制备方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN2013101366595A CN103230622A (zh) | 2013-04-19 | 2013-04-19 | 一种组织工程神经移植用导管及其制备方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN103230622A true CN103230622A (zh) | 2013-08-07 |
Family
ID=48878734
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN2013101366595A Pending CN103230622A (zh) | 2013-04-19 | 2013-04-19 | 一种组织工程神经移植用导管及其制备方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN103230622A (zh) |
Cited By (17)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103638560A (zh) * | 2013-12-04 | 2014-03-19 | 天津工业大学 | 一种具有微纳米结构的支架制备方法 |
CN104382672A (zh) * | 2014-11-14 | 2015-03-04 | 东华大学 | 一种双层多通道神经导管及其制备方法 |
CN105310794A (zh) * | 2015-02-14 | 2016-02-10 | 李贵才 | 一种内壁具有取向性结构的多孔人工神经导管的制备方法 |
CN106046135A (zh) * | 2016-08-08 | 2016-10-26 | 南通大学 | 具有不同降解速度的丝素蛋白及应用 |
CN106110396A (zh) * | 2016-05-18 | 2016-11-16 | 江苏工程职业技术学院 | 一种含有微通道和取向纳米纤维的神经导管及其制备方法 |
CN106400314A (zh) * | 2016-09-10 | 2017-02-15 | 华南理工大学 | 一种结构仿生皮肤细胞外基质的复合纳米纤维膜及其制备方法与应用 |
CN106693071A (zh) * | 2016-12-12 | 2017-05-24 | 芜湖孙杨信息咨询有限公司 | 一种可生物降解的医用神经修复导管及其制备方法 |
CN107596448A (zh) * | 2017-11-14 | 2018-01-19 | 四川大学 | 可梯度降解的生物膜支架材料及其制备方法 |
CN108273138A (zh) * | 2018-02-05 | 2018-07-13 | 北京诺康达医药科技有限公司 | 一种智能调控的可吸收外周神经修复导管及其制备方法 |
CN109010914A (zh) * | 2018-08-15 | 2018-12-18 | 重庆大学 | 一种应用于铁超载区域的干细胞支架及其制备方法 |
CN109457309A (zh) * | 2018-09-10 | 2019-03-12 | 中国科学院宁波材料技术与工程研究所 | 一种聚羟基乙酸取向纳米纤维束及其制备方法 |
CN109847101A (zh) * | 2018-12-28 | 2019-06-07 | 广州市妇女儿童医疗中心 | 一种组织工程尿道支架及其制备工艺 |
CN110935068A (zh) * | 2019-12-20 | 2020-03-31 | 广州新诚生物科技有限公司 | 一种双层神经导管及制备方法 |
CN111035811A (zh) * | 2019-12-20 | 2020-04-21 | 中山大学 | 一种双层神经导管及制备方法 |
CN111097069A (zh) * | 2019-07-04 | 2020-05-05 | 南开大学 | 一种利用拓扑结构调控免疫微环境并引导再生的仿生可降解人工神经导管及其制备方法 |
CN112528727A (zh) * | 2015-05-28 | 2021-03-19 | 阿克松根股份公司 | 神经移植物的定量结构测定 |
CN115957379A (zh) * | 2021-10-13 | 2023-04-14 | 北京化工大学 | 一种神经修复膜及其制备方法和应用 |
Citations (8)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20020161450A1 (en) * | 2001-04-26 | 2002-10-31 | Nobutoshi Doi | Instrument for regenerating living organism tissue or organ |
CN1843307A (zh) * | 2005-04-07 | 2006-10-11 | 首都医科大学北京神经科学研究所 | 一种双层人工神经导管及其制备方法 |
CN101007443A (zh) * | 2007-01-26 | 2007-08-01 | 北京化工大学 | 纳米纤维增韧碳纤维树脂基复合材料的制备方法 |
CN101439205A (zh) * | 2008-12-29 | 2009-05-27 | 上海市第六人民医院 | 一种神经导管及其制备方法和用途 |
CN101664346A (zh) * | 2009-09-02 | 2010-03-10 | 南通大学 | 静电纺丝制备的人工神经移植物及其制备方法和专用装置 |
CN101912318A (zh) * | 2010-07-30 | 2010-12-15 | 东华大学 | 一种三层静电纺丝有序纤维神经导管及其制备和应用 |
CN102048595A (zh) * | 2010-12-21 | 2011-05-11 | 东华大学 | 具有高度取向管中管结构的可降解神经导管及其制备方法 |
US20110264235A1 (en) * | 2010-04-21 | 2011-10-27 | Taipei Medical University | Electrostatic-assisted fiber spinning method and production of highly aligned and packed hollow fiber assembly and membrane |
-
2013
- 2013-04-19 CN CN2013101366595A patent/CN103230622A/zh active Pending
Patent Citations (8)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20020161450A1 (en) * | 2001-04-26 | 2002-10-31 | Nobutoshi Doi | Instrument for regenerating living organism tissue or organ |
CN1843307A (zh) * | 2005-04-07 | 2006-10-11 | 首都医科大学北京神经科学研究所 | 一种双层人工神经导管及其制备方法 |
CN101007443A (zh) * | 2007-01-26 | 2007-08-01 | 北京化工大学 | 纳米纤维增韧碳纤维树脂基复合材料的制备方法 |
CN101439205A (zh) * | 2008-12-29 | 2009-05-27 | 上海市第六人民医院 | 一种神经导管及其制备方法和用途 |
CN101664346A (zh) * | 2009-09-02 | 2010-03-10 | 南通大学 | 静电纺丝制备的人工神经移植物及其制备方法和专用装置 |
US20110264235A1 (en) * | 2010-04-21 | 2011-10-27 | Taipei Medical University | Electrostatic-assisted fiber spinning method and production of highly aligned and packed hollow fiber assembly and membrane |
CN101912318A (zh) * | 2010-07-30 | 2010-12-15 | 东华大学 | 一种三层静电纺丝有序纤维神经导管及其制备和应用 |
CN102048595A (zh) * | 2010-12-21 | 2011-05-11 | 东华大学 | 具有高度取向管中管结构的可降解神经导管及其制备方法 |
Cited By (22)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103638560A (zh) * | 2013-12-04 | 2014-03-19 | 天津工业大学 | 一种具有微纳米结构的支架制备方法 |
CN104382672A (zh) * | 2014-11-14 | 2015-03-04 | 东华大学 | 一种双层多通道神经导管及其制备方法 |
CN105310794A (zh) * | 2015-02-14 | 2016-02-10 | 李贵才 | 一种内壁具有取向性结构的多孔人工神经导管的制备方法 |
CN105310794B (zh) * | 2015-02-14 | 2019-10-25 | 南通大学 | 一种内壁具有取向性结构的多孔人工神经导管的制备方法 |
CN112528727A (zh) * | 2015-05-28 | 2021-03-19 | 阿克松根股份公司 | 神经移植物的定量结构测定 |
CN106110396A (zh) * | 2016-05-18 | 2016-11-16 | 江苏工程职业技术学院 | 一种含有微通道和取向纳米纤维的神经导管及其制备方法 |
CN106046135A (zh) * | 2016-08-08 | 2016-10-26 | 南通大学 | 具有不同降解速度的丝素蛋白及应用 |
CN106400314A (zh) * | 2016-09-10 | 2017-02-15 | 华南理工大学 | 一种结构仿生皮肤细胞外基质的复合纳米纤维膜及其制备方法与应用 |
CN106693071A (zh) * | 2016-12-12 | 2017-05-24 | 芜湖孙杨信息咨询有限公司 | 一种可生物降解的医用神经修复导管及其制备方法 |
CN107596448A (zh) * | 2017-11-14 | 2018-01-19 | 四川大学 | 可梯度降解的生物膜支架材料及其制备方法 |
CN107596448B (zh) * | 2017-11-14 | 2020-06-05 | 四川大学 | 可梯度降解的生物膜支架材料及其制备方法 |
CN108273138A (zh) * | 2018-02-05 | 2018-07-13 | 北京诺康达医药科技有限公司 | 一种智能调控的可吸收外周神经修复导管及其制备方法 |
CN109010914A (zh) * | 2018-08-15 | 2018-12-18 | 重庆大学 | 一种应用于铁超载区域的干细胞支架及其制备方法 |
CN109457309A (zh) * | 2018-09-10 | 2019-03-12 | 中国科学院宁波材料技术与工程研究所 | 一种聚羟基乙酸取向纳米纤维束及其制备方法 |
CN109457309B (zh) * | 2018-09-10 | 2020-04-28 | 中国科学院宁波材料技术与工程研究所 | 一种聚羟基乙酸取向纳米纤维束及其制备方法 |
CN109847101A (zh) * | 2018-12-28 | 2019-06-07 | 广州市妇女儿童医疗中心 | 一种组织工程尿道支架及其制备工艺 |
CN109847101B (zh) * | 2018-12-28 | 2022-04-12 | 广州市妇女儿童医疗中心 | 一种组织工程尿道支架及其制备工艺 |
CN111097069A (zh) * | 2019-07-04 | 2020-05-05 | 南开大学 | 一种利用拓扑结构调控免疫微环境并引导再生的仿生可降解人工神经导管及其制备方法 |
WO2021000641A1 (zh) * | 2019-07-04 | 2021-01-07 | 南开大学 | 一种利用拓扑结构调控免疫微环境并引导再生的仿生可降解人工神经导管及其制备方法 |
CN111035811A (zh) * | 2019-12-20 | 2020-04-21 | 中山大学 | 一种双层神经导管及制备方法 |
CN110935068A (zh) * | 2019-12-20 | 2020-03-31 | 广州新诚生物科技有限公司 | 一种双层神经导管及制备方法 |
CN115957379A (zh) * | 2021-10-13 | 2023-04-14 | 北京化工大学 | 一种神经修复膜及其制备方法和应用 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN103230622A (zh) | 一种组织工程神经移植用导管及其制备方法 | |
Zaarour et al. | A mini review on the generation of crimped ultrathin fibers via electrospinning: Materials, strategies, and applications | |
Kai et al. | Electrospun synthetic and natural nanofibers for regenerative medicine and stem cells | |
Sun et al. | Electrospun anisotropic architectures and porous structures for tissue engineering | |
Yang et al. | A novel electrospun-aligned nanoyarn-reinforced nanofibrous scaffold for tendon tissue engineering | |
Beachley et al. | Highly aligned polymer nanofiber structures: fabrication and applications in tissue engineering | |
CN105288730B (zh) | 一种仿基底膜管结构的神经缺损修复材料的制备方法 | |
CN104774762B (zh) | 一种取向聚合物纳米纤维细胞培养板及其制备方法 | |
O’Connor et al. | Electrospun nanofibre bundles and yarns for tissue engineering applications: A review | |
CN105658850B (zh) | 静电纺丝长丝 | |
CN102813965B (zh) | 一种多层有序的丝素蛋白组织工程支架及其制备方法 | |
CN1327912C (zh) | 用于修复管状组织与器官的导管支架制备方法及其装置 | |
Yukseloglu et al. | Biomaterial applications of silk fibroin electrospun nanofibres | |
CN102552976A (zh) | 物理包埋活性物质的组织工程支架材料及其制备方法 | |
Zdraveva et al. | Electrospun nanofibers | |
Jana et al. | Fabrication of 3D aligned nanofibrous tubes by direct electrospinning | |
CN110331486A (zh) | 一种多层结构纳米纤维纱线针织肌腱支架及其制备和应用 | |
CN106492277B (zh) | 一种仿生人工骨支架及其制备方法 | |
Beachley et al. | A novel method to precisely assemble loose nanofiber structures for regenerative medicine applications | |
CN104739473A (zh) | 一种纳米纤维纱线神经导管及其制备方法 | |
CN103357067B (zh) | 一种蚕丝蛋白基人工韧带修复材料及其制备方法 | |
CN106668944A (zh) | 一种三层复合小口径血管支架及其制备方法 | |
CN106512087A (zh) | 一种纤维取向排列的人造血管支架及其制备方法 | |
CN111150522A (zh) | 一种纤维取向复合结构的人工血管及其制备方法 | |
Hiremath et al. | Melt blown polymeric nanofibers for medical applications-an overview |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C02 | Deemed withdrawal of patent application after publication (patent law 2001) | ||
WD01 | Invention patent application deemed withdrawn after publication |
Application publication date: 20130807 |