CN103196982A - 磁性固相萃取-毛细管区带电泳测定生物样本中吡咯并喹呤醌含量的方法 - Google Patents

磁性固相萃取-毛细管区带电泳测定生物样本中吡咯并喹呤醌含量的方法 Download PDF

Info

Publication number
CN103196982A
CN103196982A CN2013101211378A CN201310121137A CN103196982A CN 103196982 A CN103196982 A CN 103196982A CN 2013101211378 A CN2013101211378 A CN 2013101211378A CN 201310121137 A CN201310121137 A CN 201310121137A CN 103196982 A CN103196982 A CN 103196982A
Authority
CN
China
Prior art keywords
magnetic
phase extraction
capillary electrophoresis
capillary
milk
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
CN2013101211378A
Other languages
English (en)
Other versions
CN103196982B (zh
Inventor
周杏琴
毛师师
张建康
曹国宪
钦晓峰
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Jiangsu Institute of Nuclear Medicine
Original Assignee
Jiangsu Institute of Nuclear Medicine
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Jiangsu Institute of Nuclear Medicine filed Critical Jiangsu Institute of Nuclear Medicine
Priority to CN201310121137.8A priority Critical patent/CN103196982B/zh
Publication of CN103196982A publication Critical patent/CN103196982A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN103196982B publication Critical patent/CN103196982B/zh
Expired - Fee Related legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Images

Landscapes

  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)

Abstract

磁性固相萃取-毛细管区带电泳测定生物样本中吡咯并喹呤醌含量的方法,属于生命分析技术领域。本发明采用SiO2与不同极性的吸附剂混合组成,这些吸附剂对疏水性能不同的化合物具有不同的选择性,从而能够有效的进行分离。本方法采用的毛细管电泳法加入了修饰剂β-环糊精,首次在毛细管电泳缓冲体系中加入三氟乙酸,解决了毛细管电泳图中峰的拖尾问题,峰的对称性明显好于文献报道。本方法快速、简便,首次应用磁固相萃取技术结合毛细管电泳测定牛奶中PQQ的含量。与文献方法对比,分离效率提高了6倍。

Description

磁性固相萃取-毛细管区带电泳测定生物样本中吡咯并喹呤醌含量的方法
技术领域
磁性固相萃取-毛细管区带电泳测定生物样本中吡咯并喹呤醌含量的方法,属于生物分析技术领域。
背景技术
吡咯并喹呤醌(pyrroloquinoline quinine PQQ)是一种新的氧化还原酶辅基,主要分布于原核生物以及部分植物和哺乳动物之中,在牛奶尤其母乳中含量较高,被认为是体内必需的维生素之一。
生物样本中PQQ的分析方法有气相色谱-质谱法、高效液相色谱、毛细管电泳法等[文献方法1:Zdeneˇk Glatz*,Martina Moravcova′,Oldrˇich Janiczek,Determination of pyrroloquinoline quinone by capillary zone Electrophoresis,Journalof Chromatography B,739(2000)101–107.]。毛细管电泳是二十世纪80年代发展起来的一种快速分析方法,具有分析速度快、分离效率高、样品和试剂消耗量少的优点。与高效液相色谱法相比,毛细管柱容易清洗、使用寿命长。文献报道的PQQ毛细管电泳检测法是在缓冲体系加入β-丙氨酸,采用反相C18小柱固相萃取分离富集细胞培养基中的PQQ,检出限为0.1~0.2μM,PQQ峰型存在拖尾现象,固相萃取所用的C18小柱价格昂贵,而且步骤繁琐,工作量大。
近年来,磁纳米固相萃取技术在生物样品制备领域受到广泛关注。由于磁性萃取介质直接分散于样品溶液中,接触面大,对生物样品和液体中含固体悬浮物的样品尤其适合,样品处理简单。本发明采用SiO2与不同极性的吸附剂混合组成,这些吸附剂对疏水性能不同的化合物具有不同的选择性,从而能够有效的进行分离。本方法快速、简便,首次应用磁固相萃取技术结合毛细管电泳测定牛奶中PQQ的含量。
本方法采用的毛细管电泳法加入了修饰剂β-环糊精,首次在毛细管电泳缓冲体系中加入三氟乙酸,解决了毛细管电泳图中峰的拖尾问题。峰的对称性明显好于文献报道。与文献方法对比,分离效率提高了6倍。
发明内容
本发明的目的在于提供一种磁性固相萃取-毛细管区带电泳测定生物样本中吡咯并喹呤醌含量的方法,使PQQ与其他较难分离的电中性杂质达到高效快速的分离。
本发明的技术方案:一种磁性固相萃取-毛细管区带电泳测定生物样本中吡咯并喹呤醌含量的方法:
(1)毛细管选择及预处理:
选用未涂层的41.5cm×50μm石英毛细管柱;新毛细管柱先依次用甲醇冲洗10min,蒸馏水冲洗5min,1mol/L NaOH溶液冲洗30min,蒸馏水冲洗5min,最后再用运行缓冲液冲洗10-15min;每次进样前,用蒸馏水及运行缓冲液冲洗2min;
运行缓冲液及样品溶液均用0.22μm微孔针头过滤器过滤;
(2)毛细管电泳分析条件:
检测波长为249nm,进样方式为0.5psi压力进样,进样时间10.0秒,分离电压为25kv,毛细管柱温25℃;
运行缓冲液为:pH=8.8、10mmol/L硼砂-10mmol/Lβ-环糊精-质量浓度0.1%三氟乙酸的混合液。
(3)生物样本中吡咯并喹呤醌PQQ的检测
选用牛奶作为生物样本的典型,
①Fe3O4磁性纳米粒子的制备:
100mL1.25mM FeSO4·7H2O60℃下搅拌,用6M NaOH调pH至10,1h后磁性沉淀物分离,用去离子水冲洗,60℃真空干燥6h,得Fe3O4磁性纳米粒子;
②改性的混合磁性功能纳米粒子Fe3O4-SiO2-Phenyl-C8的制备:
将制备得到的Fe3O4磁性纳米粒子加入到含1mM四甲氧基硅烷、1mM苯基三甲氧基硅烷和1mM辛基三甲氧基硅烷混合液中,四甲氧基硅烷:苯基三甲氧基硅烷:辛基三甲氧基硅烷体积比1:1:1,加50mL含w/v0.01%吐温-100、w/v0.02%十六烷基三甲基溴化铵(CTAB)的v/v12.5%甲醇和0.3mL w/v25%NH3作催化剂,120℃搅拌回流12~16h,用水、丙酮、正己烷依次清洗多次,60℃真空干燥6h,得磁性功能纳米粒子Fe3O4-SiO2-Phenyl-C8;
③牛奶样品去除蛋白
1mL牛奶加5mL甲醇,涡旋振荡2min,4000rpm离心10min,上清液用50mL McIlvaine buffer缓冲液稀释,以备磁性固相萃取;
McIlvaine buffer缓冲液为:pH7.0、0.1M柠檬酸调0.2M磷酸氢二钠溶液;
④磁性固相萃取
称取上述制备好的50mg磁性功能纳米粒子Fe3O4-SiO2-Phenyl-C8于安普瓶中,分别用1mL的甲醇和水活化;加入步骤③处理后的牛奶样品溶液10mL,涡旋萃取1min,甲醇解吸3min,解吸液经氮气吹干,用pH7.0、100μL磷酸缓冲液稀释,进行毛细管电泳分析。
本发明的有益效果:本发明采用SiO2与不同极性的吸附剂混合组成,这些吸附剂对疏水性能不同的化合物具有不同的选择性,从而能够有效的进行分离。本方法快速、简便,首次应用磁固相萃取技术结合毛细管电泳测定牛奶中PQQ的含量。
本方法采用的毛细管电泳法加入了修饰剂β-环糊精,首次在毛细管电泳缓冲体系中加入三氟乙酸,解决了毛细管电泳图中峰的拖尾问题。峰的对称性明显好于文献报道。与文献方法对比,分离效率提高了6倍。
附图说明
图1pH对PQQ保留时间的影响。
图2PQQ毛细管电泳图,运行缓冲液10mmol/L硼砂-10mmol/Lβ-环糊精,pH=8.8,分离电压25kV。
图3PQQ毛细管电泳图,运行缓冲液10mmol/L硼砂-10mmol/Lβ-环糊精,pH=8.8,0.1%三氟乙酸,分离电压25kV。
图4PQQ标准曲线。
图5a:牛奶磁固相萃取后的毛细管电泳图,b:含20μg/mL PQQ标准品的牛奶溶液经磁固相萃取后的毛细管电泳图。
具体实施方式
实施例1
(1)毛细管电泳分析条件:
未涂层石英毛细管柱(41.5cm×50μm,河北永年县锐沣色谱器件有限公司),新毛细管先用甲醇冲洗10min,蒸馏水冲洗5min,1mol/L NaOH溶液冲洗30min,蒸馏水冲洗5min,最后再用运行缓冲液冲洗10-15min。运行缓冲液及样品溶液均用0.22μm微孔针头过滤器过滤。每次进样前,用蒸馏水和运行缓冲液冲洗2min。检测波长是249nm,进样方式为压力进样(0.5psi,10.0秒),分离电压为25kV,毛细管柱温25℃。运行缓冲液为:10mmol/L硼砂-10mmol/Lβ-环糊精混合液,pH=8.8,含有质量浓度0.1%的三氟乙酸。
(2)缓冲体系的选择
缓冲体系及浓度直接影响离子的迁移和分离。实验考察了PQQ在甘氨酸缓冲液、磷酸缓冲液、硼砂缓冲体系中的分离情况。结果峰型很差,都达不到理想的分离状况。
可能PQQ分子中具有多羧基的缘故,具有较低的淌度,其淌度方向和电渗流方向相反,影响它的流出,不能得到较好的峰型。因此,本实验考虑在背景电解液中加入β-环糊精,β-环糊精上的14个仲羟基位于空腔的宽口,其疏水性空腔可以选择性地和分析物形成包合物。PQQ上的羧基与β-环糊精上的羟基能够形成稳定的包合物,从而影响样品的权均淌度,因此改善了分离。我们在不同缓冲体系(甘氨酸缓冲液、磷酸缓冲液、硼砂缓冲液)中加入β环糊精,结果显示,硼砂-β环糊精缓冲体系较好,与单纯的硼砂相比,峰型有了很大的改善,能得到较尖锐的峰。
(3)硼砂浓度的选择
缓冲液浓度是一个重要的指标,对选择性的影响非常突出。我们分别用硼砂浓度5,10,15,20mmol/L实验,当浓度大于10mmol/L时,峰形严重不对称,分离效果不佳。可能随着浓度的增加,导电的离子数增加,毛细管的电流值增大,焦耳热增加;而且随着缓冲液浓度的增加,离子强度增加,电渗流速降低,溶质在毛细管内的迁移速度下降,迁移时间会延长。当浓度小于10mmol/L时,前沿拖尾较为严重。因此,我们选择硼砂浓度为10mmol/L时最为合适。
(4)pH值对迁移时间的影响
缓冲液的pH值影响可解离分析物的有效电荷,决定其在电场中的迁移速度。同时它还影响Zeta电势,通过pH值的选择可有利调整电迁移和电渗的平衡,增加分离度。分别调pH3.0、5.0、7.0、8.0、9.0实验,发现pH7.0以下,峰很宽,pH大于8.0峰较好。分别测定样品在pH值为8.5、8.8、9.0、9.5、10.0的硼砂-β环糊精缓冲溶液中迁移时间,发现pH值对保留时间有明显的变化,以pH值为横坐标,保留时间为纵坐标,作图1。
如图1看出,pH值对其保留时间有一定的影响,当pH大于9.0时,迁移时间增加,且峰形严重不对称,故选择pH小于9.0较为合适,综合考虑,最终选择pH为8.8。
(5)β-环糊精浓度的影响
β-环糊精的浓度直接影响它对分析物的包合,因此,其浓度的选择非常重要。我们改变β-环糊精的浓度,分别取5,10,12,15,20mmol/L实验。当β-环糊精浓度高于20mmol/L时,分离效果欠佳,峰型不理想;当β-环糊精浓度为10mmol/L时,峰形对称性有很大的改善,但峰的前沿和拖尾现象始终存在,有待继续优化,如图2。
(6)有机溶剂的影响
为了进一步优化分离,我们考虑添加有机溶剂来改善分离。加入有机溶剂往往可以使包合常数K增大,在低浓度的β-环糊精下达到分离。我们分别采用乙腈、乙醇等多种有机溶剂实验,考察其对样品PQQ分离效果的影响。结果表明,各种有机溶剂的加入,对峰的拖尾并无多大的改善。
(7)三氟乙酸的影响
PQQ的结构式为弱酸性,我们考虑是否可以添加三氟乙酸来改善峰的拖尾现象。我们在硼砂-β环糊精体系中,加入少量的三氟乙酸,并考察三氟乙酸浓度的影响,在缓冲体系中分别加入0.01%,0.05%,0.1%的三氟乙酸实验。实验结果证明,加入少量的三氟乙酸可以很好的改善峰形的拖尾现象,按浓度来看,选择0.1%最为合适,能最有效的使峰形变得对称,如图3。
(8)电压的选择
溶质的出峰时间对电场强度非常敏感,电场强度会影响溶质在毛细管中的停留时间。被分析物与β-环糊精形成包合物后,若各组分平均迁移率相差较大,增加电场强度能提高分离度;反之,若平均迁移率相差较小,增加电场强度并不能有效改善分离。包合是一个快速可逆平衡过程,从动力学角度讲,高温不利于包合,在高电场强度下,由于焦耳热的产生,径向温度梯度增加,使包合常数K减小,分离度降低,因此,一味增加电场强度并不是一个良策,通常需要有一个平衡。在缓冲液为10mmol/L硼砂-10mmol/Lβ-环糊精混合液,pH=8.8,含有0.1%的三氟乙酸时,考查样品PQQ在10、15、20、22、25、27kV电压下的分离情况,当电压大于25kV时,分离时间缩短,分离度降低,且基线不稳定。电压低于20kv时,分离时间较长,实验中选择25kV最为理想。
(9)线性关系与检测限测定
精密称取PQQ1.0mg,加1mL磷酸缓冲液(pH7.0),用运行缓冲液稀释成浓度为0.025、0.05、0.1、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0μg/mL的标准溶液,每个样品分别重复进样3次,得峰面积取平均值,以平均峰面积为纵坐标,PQQ浓度C为横坐标作图。得标准曲线(图4)。所得回归方程为:
y=553571x+5686.8(R2=0.9996)。在0.025~1.0μg/mL浓度范围内呈良好的线性关系。最低检出浓度为0.05~0.1μM(S/N≥3)。
(10)生物样本中PQQ的检测
1)Fe3O4磁性纳米粒子的制备:
100mL1.25mM FeSO4·7H2O60℃下搅拌,用6M NaOH调pH至10,1h后磁性沉淀物分离,用去离子水冲洗。60℃真空干燥6h。
2)改性的混合极性功能纳米粒子Fe3O4-SiO2-Phenyl-C8的制备:
将制备得到的Fe3O4磁性纳米粒子加入到含1mM四甲氧基硅烷(98%,tetramethylorthosilicate TMOS),1mM苯基三甲氧基硅烷(97%,phenyltrimethoxysilane,PTMS)和1mM辛基三甲氧基硅烷(98%,octyltrimethoxysilane,C8)混合物中(1:1:1,v/v/v),加50mL含0.01%吐温-100(w/v),0.02%CTAB(w/v),12.5%甲醇(v/v)和0.3mL25%(w/v)NH3作催化剂,120℃搅拌回流16h。用水、丙酮和正己烷依次清洗多次,60℃真空干燥6h。
3)牛奶样品去除蛋白
1mL牛奶加5mL甲醇,涡旋振荡2min,离心4000rpm10min,上清液用50mL McIlvaine buffer缓冲液(0.1M柠檬酸调0.2M磷酸氢二钠pH7.0)稀释,以备磁性固相萃取。
4)磁性固相萃取
称取上述制备好的50mg磁性功能纳米材料于安普瓶中,分别用1mL的甲醇和水活化;加入上述牛奶处理后的溶液10mL,涡旋萃取1min,甲醇解吸3min。解吸液经氮气吹干,用100μL磷酸缓冲液(pH7.0)稀释,进行毛细管电泳分析。如图5。
5)提取回收率与精密度测定
称取一定量的PQQ标准品适量,使其在牛奶中的浓度为20、60、100μg/L,按上述方法进行处理、萃取,经毛细管电泳分析测定PQQ的浓度,测定值除以理论值得PQQ提取回收率。结果见表1。
表1提取回收率测定
精确称取一定量的PQQ标准品适量,用磷酸缓冲液(pH7.0)溶解,配制5、20、40μg/L的高、中、低3种浓度的PQQ质控溶液,在确定的毛细管电泳条件下于同一天内连续进样5次,连续3天重复测定,以计算日内和日间精密度,用相对标准偏差(RSD%)表示。结果见表2。
表2日内日间精密度测定结果
Figure BDA00003026036500062
Figure BDA00003026036500071
6)样本测定
牛奶样本按上述方案处理后用磷酸缓冲液(pH7.0)稀释,超声振荡,过滤,经毛细管电泳测试,测定结果牛奶中所含PQQ分别为60.8、73.2、68.5μg/L。
(11)与[文献方法1]对比,分离效率提高了6倍。首次在毛细管电泳缓冲体系中加入三氟乙酸,解决了毛细管电泳图中峰的拖尾问题。峰的对称性明显好于文献报道。
表3分离效率比较
Figure BDA00003026036500072

Claims (1)

1.一种磁性固相萃取-毛细管区带电泳测定生物样本中吡咯并喹呤醌含量的方法,其特征在于:
(1)毛细管选择及预处理:
选用未涂层的41.5cm×50μm石英毛细管柱;新毛细管柱先依次用甲醇冲洗10min,蒸馏水冲洗5min,1mol/L NaOH溶液冲洗30min,蒸馏水冲洗5min,最后再用运行缓冲液冲洗10-15min;每次进样前,用蒸馏水及运行缓冲液冲洗2min;
运行缓冲液及样品溶液均用0.22μm微孔针头过滤器过滤;
(2)毛细管电泳分析条件:
检测波长为249nm,进样方式为0.5psi压力进样,进样时间10.0秒,分离电压为25kV,毛细管柱温25℃;
运行缓冲液为:pH=8.8、10mmol/L硼砂-10mmol/Lβ-环糊精-质量浓度0.1%三氟乙酸的混合液;
(3)生物样本中吡咯并喹呤醌PQQ的检测
选用牛奶作为生物样本的典型
①Fe3O4磁性纳米粒子的制备
100mL1.25mM FeSO4·7H2O60℃下搅拌,用6M NaOH调pH至10,1h后磁性沉淀物分离,用去离子水冲洗,60℃真空干燥6h,得Fe3O4磁性纳米粒子;
②改性的混合磁性功能纳米粒子Fe3O4-SiO2-Phenyl-C8的制备
将制备得到的Fe3O4磁性纳米粒子加入到含1mM四甲氧基硅烷、1mM苯基三甲氧基硅烷和1mM辛基三甲氧基硅烷混合液中,四甲氧基硅烷:苯基三甲氧基硅烷:辛基三甲氧基硅烷体积比1:1:1,加50mL含w/v0.01%吐温-100、w/v0.02%十六烷基三甲基溴化铵的v/v12.5%甲醇和0.3mL w/v25%NH3作催化剂,120℃搅拌回流12~16h,用水、丙酮、正己烷依次清洗多次,60℃真空干燥6h,得磁性功能纳米粒子Fe3O4-SiO2-Phenyl-C8;
③牛奶样品去除蛋白
1mL牛奶加5mL甲醇,涡旋振荡2min,4000rpm离心10min,上清液用50mL McIlvaine buffer缓冲液稀释,以备磁性固相萃取;
McIlvaine buffer缓冲液为:pH7.0、0.1M柠檬酸调0.2M磷酸氢二钠溶液;
④磁性固相萃取
称取上述制备好的50mg磁性功能纳米粒子Fe3O4-SiO2-Phenyl-C8于安普瓶中,分别用1mL的甲醇及水活化;加入步骤③处理后的牛奶样品溶液10mL,涡旋萃取1min,甲醇解吸3min,解吸液经氮气吹干,用pH7.0、100μL磷酸缓冲液稀释,进行毛细管电泳分析。
CN201310121137.8A 2013-04-09 2013-04-09 磁性固相萃取-毛细管区带电泳测定生物样本中吡咯并喹呤醌含量的方法 Expired - Fee Related CN103196982B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201310121137.8A CN103196982B (zh) 2013-04-09 2013-04-09 磁性固相萃取-毛细管区带电泳测定生物样本中吡咯并喹呤醌含量的方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201310121137.8A CN103196982B (zh) 2013-04-09 2013-04-09 磁性固相萃取-毛细管区带电泳测定生物样本中吡咯并喹呤醌含量的方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN103196982A true CN103196982A (zh) 2013-07-10
CN103196982B CN103196982B (zh) 2014-08-13

Family

ID=48719674

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201310121137.8A Expired - Fee Related CN103196982B (zh) 2013-04-09 2013-04-09 磁性固相萃取-毛细管区带电泳测定生物样本中吡咯并喹呤醌含量的方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN103196982B (zh)

Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN106124600A (zh) * 2016-07-06 2016-11-16 黑龙江中医药大学 利用毛细管电泳技术对连翘中8种木脂素类成分进行定量测定的方法
CN106706746A (zh) * 2016-11-15 2017-05-24 江苏省原子医学研究所 毛细管电泳结合uplc‑ms分析pqq对儿茶酚胺神经递质调节作用的研究方法
CN107224969A (zh) * 2017-06-09 2017-10-03 江苏省原子医学研究所 一种pqq‑da印迹磁性纳米粒子的制备方法及其应用
CN107957455A (zh) * 2017-11-17 2018-04-24 江苏省原子医学研究所 一种改性修饰多壁碳纳米管分散固相萃取/uplc-ms测定egcg棕榈酸酯的方法
CN109709198A (zh) * 2018-12-29 2019-05-03 杭州师范大学 一种毛细管电泳的在线富集方法
CN113390942A (zh) * 2021-06-08 2021-09-14 浙江工业大学 一种基于mspd离线预浓缩联用eks-cze在线富集测定石蒜科生物碱含量的方法

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102072942A (zh) * 2010-11-24 2011-05-25 江苏省原子医学研究所 一种离子对色谱法测定吡咯并喹呤醌含量的分析方法

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102072942A (zh) * 2010-11-24 2011-05-25 江苏省原子医学研究所 一种离子对色谱法测定吡咯并喹呤醌含量的分析方法

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
IBARRA I S等: "Determination of quinolones in milk samples using a combination of magnetic solid‐phase extraction and capillary electrophoresis", 《ELECTROPHORESIS》, vol. 33, no. 13, 31 December 2012 (2012-12-31), pages 2041 - 2048 *
王志等: "磁性固相萃取技术研究的新进展", 《色谱》, vol. 30, no. 10, 30 October 2012 (2012-10-30), pages 977 - 979 *

Cited By (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN106124600A (zh) * 2016-07-06 2016-11-16 黑龙江中医药大学 利用毛细管电泳技术对连翘中8种木脂素类成分进行定量测定的方法
CN106124600B (zh) * 2016-07-06 2018-08-07 黑龙江中医药大学 利用毛细管电泳技术对连翘中8种木脂素类成分进行定量测定的方法
CN106706746A (zh) * 2016-11-15 2017-05-24 江苏省原子医学研究所 毛细管电泳结合uplc‑ms分析pqq对儿茶酚胺神经递质调节作用的研究方法
CN106706746B (zh) * 2016-11-15 2018-12-18 江苏省原子医学研究所 毛细管电泳结合uplc-ms分析pqq对儿茶酚胺神经递质调节作用的研究方法
CN107224969A (zh) * 2017-06-09 2017-10-03 江苏省原子医学研究所 一种pqq‑da印迹磁性纳米粒子的制备方法及其应用
CN107224969B (zh) * 2017-06-09 2019-09-27 江苏省原子医学研究所 一种pqq-da印迹磁性纳米粒子的制备方法及其应用
CN107957455A (zh) * 2017-11-17 2018-04-24 江苏省原子医学研究所 一种改性修饰多壁碳纳米管分散固相萃取/uplc-ms测定egcg棕榈酸酯的方法
CN107957455B (zh) * 2017-11-17 2020-03-31 江苏省原子医学研究所 一种改性修饰多壁碳纳米管分散固相萃取/uplc-ms测定egcg棕榈酸酯的方法
CN109709198A (zh) * 2018-12-29 2019-05-03 杭州师范大学 一种毛细管电泳的在线富集方法
CN109709198B (zh) * 2018-12-29 2021-07-20 杭州师范大学 一种毛细管电泳的在线富集方法
CN113390942A (zh) * 2021-06-08 2021-09-14 浙江工业大学 一种基于mspd离线预浓缩联用eks-cze在线富集测定石蒜科生物碱含量的方法
CN113390942B (zh) * 2021-06-08 2022-08-30 浙江工业大学 一种基于mspd联用eks-cze测定石蒜科生物碱含量的方法

Also Published As

Publication number Publication date
CN103196982B (zh) 2014-08-13

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN103196982B (zh) 磁性固相萃取-毛细管区带电泳测定生物样本中吡咯并喹呤醌含量的方法
Qi et al. Rapid and sensitive determination of anthraquinones in Chinese herb using 1-butyl-3-methylimidazolium-based ionic liquid with β-cyclodextrin as modifier in capillary zone electrophoresis
Yin et al. Electrochemical determination of theophylline in foodstuff, tea and soft drinks based on urchin-like CdSe microparticles modified glassy carbon electrode
Xue et al. Simultaneous determination of seven preservatives in cosmetics by dispersive liquid–liquid microextraction coupled with high performance capillary electrophoresis
CN105044171B (zh) 一种纳米铂掺杂/酶修饰碳糊电极的制备方法及应用
Zhang et al. Simultaneous determination of flavonoids in chrysanthemum by capillary zone electrophoresis with running buffer modifiers
CN102935390B (zh) 碳纳米管乳胶附聚型阴离子色谱填料的制备方法
CN102288669A (zh) 一种基于石墨烯修饰电极同时测定芦丁和槲皮素的电化学方法
Qian et al. Separation/determination of flavonoids and ascorbic acid in rat serum and excrement by capillary electrophoresis with electrochemical detection
Qi et al. Simultaneous determination of bioactive flavone derivatives in Chinese herb extraction by capillary electrophoresis used different electrolyte systems—Borate and ionic liquids
CN103760216B (zh) 介孔碳修饰电极检测三聚氰胺的方法
Gao et al. Sensitive determination of verticine and verticinone in Bulbus Fritillariae by ionic liquid assisted capillary electrophoresis–electrochemiluminescence system
Wang et al. Amperometric detection of three purine alkaloids following their separation by micellar electrokinetic capillary chromatography
CN104606919B (zh) 一种核酸适配体/纳米金修饰固相微萃取石英毛细管的制备方法
He et al. Determination of fumaric and maleic acids with stacking analytes by transient moving chemical reaction boundary method in capillary electrophoresis
Sheng et al. Graphene/poly (ethylene‐co‐vinyl acetate) composite electrode fabricated by melt compounding for capillary electrophoretic determination of flavones in Cacumen platycladi
Wang et al. Determination of major sialic acids in dairy products by electrophoretic stacking technology with contactless conductivity detection
Chu et al. Online preconcentration and determination of anthraquinones in Cassiae Semen tea by salting-out assisted liquid‒liquid extraction coupled with dynamic pH junction-sweeping-large volume sample stacking in capillary electrophoresis
Polo-Luque et al. Combination of carbon nanotubes modified filters with microextraction by packed sorbent for the NACE analysis of trace levels of ionic liquids in river water samples
Deng et al. Determination of selenomethionine in selenium-enriched yeast using capillary electrophoresis on-line coupled with electrochemiluminescence detection
CN102830147A (zh) 一种修饰电极及其在检测微/痕量硝基芳香化合物中的应用
CN104880526A (zh) 一种玛咖中苄基芥子油苷的含量测定方法
Li et al. Solid-phase microextraction of volatile organic compounds in headspace of PM-induced MRC-5 cell lines
Wang et al. Separation and analysis of cis-diol-containing compounds by boronate affinity-assisted micellar electrokinetic chromatography
Luo et al. A novel electrochemical sensor for the analysis of salbutamol in pork samples by using NiFe2O4 nanoparticles modified glassy carbon electrode

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
C14 Grant of patent or utility model
GR01 Patent grant
CF01 Termination of patent right due to non-payment of annual fee

Granted publication date: 20140813

Termination date: 20150409

EXPY Termination of patent right or utility model