CN103181896A - 一种含有小檗胺类药物的脂质体制剂及其制备方法 - Google Patents
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Abstract
本发明属于药物制剂领域,具体涉及一种含有小檗胺类药物的脂质体制剂及其制备方法。所述的脂质体中,含有小檗胺类药物、磷脂、胆固醇、亲水性脂质衍生物和建立梯度物质;其中药物和磷脂的质量比为1:5~1:100,胆固醇和磷脂的质量比为1:2~1:4,亲水性脂质衍生物与磷脂的质量比为1:2~1:6。本发明的制备方法切实可行、质量可控,便于工业化生产;所得小檗胺类药物脂质体的粒径小且分布均一、包封率高、稳定性良好;将小檗胺类药物制备为脂质体后可有效延长药物的血液循环时间,提高肿瘤组织的靶向效率,增强药物体内抗肿瘤效果,或在与其他化疗药物合用时发挥协同抗肿瘤效应及降毒并提高机体免疫力。
Description
技术领域:
本发明属于药物制剂领域,具体涉及一种含有小檗胺类药物的脂质体制剂及其制备方法。
背景技术:
小檗胺是从我国中草药小檗属植物中提取的一种双苄基异喹啉类生物碱,小檗胺及其衍生物具有免疫调节,对抗心肌、脑、肾缺血,抗高血压,抗肝、肺纤维化,降低门静脉高压,抗缺氧性肺动脉高压等多种生理活性。同时具有来源广泛、价格低廉、不良反应小且长期毒性低的特点。目前仅有小檗胺片剂上市,用于改善放、化疗后的白细胞减少症状,其临床升白有效率高达91.3%,相关作用机制可能在于提高造血干细胞集落因子的含量,促进骨髓造血干细胞和粒祖细胞的增殖并向粒系细胞分化(朱灿阳.小檗胺药理作用分析[J]中国热带医学,2005, 5(1):109-110)。
近年来的研究发现,小檗胺类药物对多种恶性肿瘤细胞在体外有明显的增殖抑制作用,例如白血病细胞、肝癌细胞、腹水癌细胞、宫颈癌细胞、乳腺癌细胞、胃癌细胞、骨髓瘤、前列腺癌、人鼻咽癌、黑色素瘤细胞和脑恶性胶质瘤,而且它们对正常细胞的毒性较小。这种高效低毒的潜在优势使其逐渐成为肿瘤治疗领域的研究热点。据文献报道,小檗胺类药物抑制多种肿瘤细胞生长,诱导其凋亡,预防恶性肿瘤的复发和转移的可能机制如下:(1)通过减小线粒体的跨膜电势、激活细胞凋亡蛋白酶、抑制分子伴侣热休克蛋白90、上调bax/bcl-2比值,下调bcr/abl基因、降低survivin基因和/或p210的的表达水平等调控介导方式;(2)抑制钙调蛋白的活性 ;(3)抑制端粒酶和端粒的结合等 (1、朱灿阳.小檗胺药理作用分析[J]中国热带医,2005, 5(1):109-110;2、吴东.小檗胺抗白血病作用及其机制的体外及体内实验研究[D]浙江大学博士学位论文,2003;3、WANG Guan-yu, HANG Jia-wei, LÜ Qing-hua et al. Berbamine
induces apoptosis in human hepatoma cell line SMMC7721 by loss in mitochondrial
transmembrane potential and caspase activation [J] Zhejiang Univ Sci B,2007
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9(2)159-160;6、韩艳秋,武淑兰.小檗胺下调MCF7及MCF7/ADR细胞Suivivin 表达[J].中国医师杂志,2005,
7(5):610-611;7、朱陵君.小檗胺与紫杉醇纳米微球的构建及其体外协同抑瘤效应评价[D].南京中医药大学博士学位论文,2009;8、梁赞.小檗胺和小檗胺衍生物抗骨髓瘤细胞增殖及其机制的研究[D].浙江大学博士学位论文,2010;9、张金红, 段江燕,耿朝晖等.小檗胺及其衍生物对恶性黑色素瘤细胞增殖的影响[J].《中草药》1997,
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多药耐药性(multidrug resistance,MDR)是肿瘤化学治疗面临的一大障碍,系指肿瘤细胞对一种化疗药物耐药的同时也对同此药物结构无关、作用机制不同的其它药物产生交叉耐药的现象。目前尝试的逆转耐药措施主要是开发针对P-糖蛋白等耐药相关因子的化疗增敏剂。体外研究发现某些化合物,如维拉帕米、环孢菌素A等,均可逆转MDR,但由于其严重的心血管不良反应、免疫抑制及肾毒性,以及作用靶点单一、选择性低、可能导致抗肿瘤药毒副作用加剧等问题,致使临床应用受到限制。因此,寻找更安全有效的多药抗药逆转剂具有重要的临床意义。近年的研究表明,小檗胺及其衍生物是一类高效低毒的多药耐药逆转剂,同时具有放疗增敏,减轻放、化疗毒性反应等作用。其逆转多药耐药性的机制可能是通过下调多药耐药基因致使p170蛋白合成减少或直接抑制p170蛋白,减少药物外排,增加细胞内有效药物浓度而产生作用。亦有文献报道,当小檗胺与抗肿瘤药物如阿霉素、表阿霉素、长春新碱、长春瑞滨、伊马替尼等联合应用时可逆转肿瘤细胞对它们的多药耐药性,发挥协同增效作用并降低药物剂量限制性毒性(1、韩艳秋,武淑兰.小檗胺下调MCF7及MCF7/ADR细胞Suivivin 表达[J].中国医师杂志,2005, 7(5):610-611;2、韩艳秋,袁家颖,石永进等. 小檗胺逆转 K562/A02 细胞耐药性及其机制[J].《中国实验血液学杂志》2003,11(6):604-608;3、韩艳秋,袁家颖,石永进等.小檗胺逆转 MCF7 /ADR细胞耐药性及其机制探讨[J].《解剖学报》2004,35(2):161-164;4、田晖,潘启超. 双苄基异喹啉类生物碱粉防己碱与小檗胺逆转多药抗药性的比较研究[J].《药学学报》1997,32 (4):245-250;5、董庆华,郑树,徐荣臻.小檗胺对多药耐药 K562/ Adr 细胞作用的研究[J].《中国中西医结合杂志》2004,24(9):820-822;6、张蕾.小檗胺对慢性粒细胞白血病K562格列卫耐药细胞株K562/G01细胞增殖抑制作用及其机制研究[M]浙江大学硕士学位论文,2008;7、魏艳淋.小檗胺对耐药的人慢性粒细胞白血病细胞的体内外作用及机制的实验研究[D]浙江大学博士学位论文,2009;8、齐淑玲,刘杰文,付津.钙调素拮抗剂EBB逆转K562/VCR细胞系多药耐药性的研究[J]《实验血液学杂志》1996,4(3):294-298;9、赵攀.小檗胺与STI571单独及联合作用诱导K562细胞凋亡的研究[M]郑州大学硕士学位论文,2006;10、朱陵君.小檗胺与紫杉醇纳米微球的构建及其体外协同抑瘤效应评价[D]京中医药大学博士学位论文,2009)。
综上可见,小檗胺类药物用于肿瘤的治疗前景广阔,其高效低毒、多作用靶向的优点赋予它跻身为化疗一线药物的潜力。但目前小檗胺仅用于化疗后的升白,其主要原因在于此类药物的体内抗肿瘤活性不理想,这种体内/外间药效的巨大差别可能源于它们较短的血液循环半衰期和在肝、肾、肺、脾等器官的集中分布,从而难以发挥抗肿瘤作用。因此,开发小檗胺类药物的缓控释制剂或靶向制剂对于提高其体内抗肿瘤效果、实现与其他靶向抗肿瘤药物的联合应用意义重大。脂质体,特别是聚乙二醇脂质衍生物修饰的长循环脂质体(又称为PEG化脂质体)尤为适合作为靶向药物载体,并已有Doxil®等极为成功的案例。若将小檗胺类药物也制备为PEG化脂质体,则其和同样装载于PEG化脂质体中的化疗药物均能借助EPR(enhanced
permeability and retention effect)效应蓄积于肿瘤组织,并发挥协同抗肿瘤作用。此外,脂质体作为药物载体还具有诸多优点:(1)脂质体的主要成分是磷脂和胆固醇,具有生物相容性,可生物降解、无毒性和低免疫原性;(2)脂质体的大小、磷脂成分、表面电荷等有很大的选择空间;(3)脂质体能包裹亲水性和亲脂性药物,将药物包封入脂质体中,可保护药物在体内不被降解,同时避免药物对受体识别配体的干扰;(4)易获得适宜的药物-载体比,制备简单;(5)脂质体可提高药物的疗效并降低其毒副作用;(6)与固体聚合物载体系统(如微粒、纳米粒)不同,脂质膜具有较好的柔性,允许表面结合的靶向分子有更大的自由度,因此靶向分子能以最优构型与靶部位受体结合;(7)脂质体可为所包裹药物的靶向性提供了新的可能,包括细胞外释放、细胞膜融合和内吞,提高了药物的靶向范围;(8)脂质体与药物间无共价键连接,利于药物在溶酶体内释放;(9)在载药脂质体表面结合不同的配基如抗体、糖酯等可将药物递送到特定靶组织和靶细胞;(10)脂质体适合多种途径给药。
除商业化可获得的片剂之外,目前关于小檗胺类药物的制剂专利中仅有壳聚糖-琼脂纳米粒(201010603372.5),但试验数据显示其仅能提升药物的体外药效。此外,未见此类药物的脂质体专利或文献。我们将小檗胺类药物制备成长循环脂质体,以期提高药物的体内抗肿瘤活性,或在与其他化疗药物合用时体现出协同增效,降低毒副作用的效用。
发明内容:
本发明的目的是提供一种载有小檗胺类药物的脂质体的处方,同时提供一种简单易行、质量可控,便于工业化生产的脂质体制备方法。
为实现上述目的,本发明提供一种载有小檗胺类药物的脂质体的处方组成:
一种小檗胺类药物脂质体,其含有小檗胺类药物、磷脂、胆固醇、亲水性脂质衍生物和建立梯度物质;其中药物和磷脂的质量比为1:5~1:100,优选为1:10~1:20,最优选为1:10;胆固醇和磷脂的质量比为1:2~1:4 ,优选为1:3;亲水性脂质衍生物与磷脂的质量比为1:2~1:6。
此处所述的小檗胺类药物为小檗胺、O-乙基-小檗胺、O-丁基-小檗胺、O-辛基-小檗胺、O-(4-乙氧基-丁基)小檗胺、O-苯基-小檗胺、O-乙酰基-小檗胺或O-丹磺酰基小檗胺的盐酸盐、硫酸盐、磷酸盐、醋酸盐、苹果酸盐、草酸盐、重酒石酸盐或柠檬酸盐中的一种或几种。作为优选,选择盐酸小檗胺、O-(4-乙氧基-丁基)小檗胺盐酸盐、O-丹磺酰基小檗胺的盐酸盐。
小檗胺类药物脂质体处方中的磷脂可以是天然磷脂、半合成磷脂、合成磷脂或它们的衍生物及上述物质氢化产物中的一种或多种,包括大豆卵磷脂(SPC)、蛋黄卵磷脂(EPC)、氢化大豆卵磷脂(HSPC)、氢化蛋黄卵磷脂(HEPC)、磷脂酰胆碱(PC)、磷脂酰乙醇胺(PE)、磷脂酰甘油(PG)及其钠盐或磷脂酰肌醇(PI)、心磷脂(双磷脂酰甘油,cardiolipin)、神经鞘磷脂(SM)、磷脂酰丝氨酸(PS)、磷脂酸(PA)等中的一种或多种的组合。
磷脂酰胆碱选自但不限于二硬脂酰磷脂酰胆碱(DSPC)、二棕榈酰磷脂酰胆碱(DPPC)、二油酰磷脂酰胆碱(DOPC)、硬脂酰油酰磷脂酰胆碱、硬脂酰亚油酰磷脂酰胆碱、棕榈酰油酰磷脂酰胆碱、棕榈酰亚油酰磷脂酰胆碱、二肉豆蔻酰磷脂酰胆碱(DMPC)、二月桂酰磷脂酰胆碱(DLPC)、二癸酰磷脂酰胆碱、二辛酰磷脂酰胆碱、二己酰磷脂酰胆碱或硬脂酰花生四烯酰磷脂酰胆碱等中的一种或多种。
磷脂酰乙醇胺选自但不限于二硬脂酰磷脂酰乙醇胺(DSPE)、二棕榈酰磷脂酰乙醇胺(DPPE)、二油酰磷脂酰乙醇胺(DOPE)、硬脂酰油酰磷脂酰乙醇胺、硬脂酰亚油酰磷脂酰乙醇胺、棕榈酰油酰磷脂酰乙醇胺、棕榈酰亚油酰磷脂酰乙醇胺、二肉豆蔻酰磷脂酰乙醇胺(DMPE)、二月桂酰磷脂酰乙醇胺(DLPE)、二癸酰磷脂酰乙醇胺、二辛酰磷脂酰乙醇胺或二己酰磷脂酰乙醇胺等中的一种或多种
磷脂酰甘油及其钠盐选自但不限于二硬脂酰磷脂酰甘油(DSPG)及其钠盐、二棕榈酰磷脂酰甘油(DPPG)及其钠盐、二油酰磷脂酰甘油(DOPG)及其钠盐、棕榈酰油酰磷脂酰甘油及其钠盐、二肉豆蔻酰磷脂酰甘油(DMPG)及其钠盐、二月桂酰磷脂酰甘油(DLPG)、二癸酰磷脂酰甘油、二辛酰磷脂酰甘油、二己酰磷脂酰甘油、双二硬脂酰磷脂酰甘油及其钠盐、双二棕榈酰磷脂酰甘油及其钠盐、双二肉豆蔻酰磷脂酰甘油及其钠盐或双二月桂酰磷脂酰甘油等中的一种或多种。
磷脂酰肌醇选自但不限于二硬脂酰磷脂酰肌醇(DSPI)、二棕榈酰磷脂酰肌醇(DPPI)、二油酰磷脂酰肌醇(DOPI)、二肉豆蔻酰磷脂酰肌醇(DMPI)或二月桂酰磷脂酰肌醇(DLPI)等中的一种或多种。
作为优选,本发明中的磷脂使用SPC、EPC、HEPC、HSPC、DSPC、DPPC、DSPE、DPPE或DSPG中的一种或多种。
本发明中所述的亲水性脂质衍生物选自聚乙二醇与磷脂或聚乙二醇与胆固醇连接所得的聚乙二醇脂质衍生物、吐温80、吐温20、聚乙二醇维生素E琥珀酸酯(TPGS)或神经节苷脂中的一种或多种。
聚乙二醇脂质衍生物选自但不限于聚乙二醇-甾醇类衍生物如聚乙二醇-胆固醇、聚乙二醇-胆固醇琥珀酸酯(PEG-CHEMS)、聚乙二醇-胆固醇碳酸甲酯等,聚乙二醇-磷脂类衍生物如聚乙二醇-二硬脂酰磷脂酰乙醇胺(PEG-DSPE)、聚乙二醇-二棕榈酰磷脂酰乙醇胺(PEG-DPPE)、聚乙二醇-二油酰磷脂酰乙醇胺、聚乙二醇-棕榈酰油酰磷脂酰乙醇胺、聚乙二醇-二肉豆蔻酰磷脂酰乙醇胺等,聚乙二醇-二酸甘油酯或单酯如聚乙二醇-二硬脂酰甘油、聚乙二醇-二棕榈酰甘油、聚乙二醇-二肉豆蔻酰甘油等,聚乙二醇-脂肪酸或脂肪酸酯衍生物等如聚乙二醇-硬脂酸、聚乙二醇-棕榈酸、苄泽、卖泽等中的一种或多种,其中聚乙二醇的分子量为100~10000,PEG与脂质部分的连接键为但不限于二硫键、酯键、醚键、酰胺键等,PEG端基为但不限于羟基、羧基、氨基或含氮基团、烷氧基等。
作为优选,亲水性脂质衍生物选自PEG-DSPE、PEG-CHEMS、TPGS、单唾液酸四己糖神经节苷脂(GM1)或吐温80中的一种或多种。
亲水性脂质衍生物,特别是聚乙二醇脂质衍生物修饰脂质体时,亲水链(以PEG链为代表)在膜表面形成的水化层可以阻止脂质体之间的相互融合聚集,降低脂质体粒径的同时使粒径分布趋向均一;而且PEG层的脱水作用使磷脂分子排列的更加紧密,增加药物在脂质体内水相的滞留稳定性,提高脂质体的物理化学稳定性;PEG层的空间位阻效应亦可减弱血浆成分对脂质体的破坏或识别与吸附作用,降低单核巨噬细胞系统的摄取量,延长载药脂质体的血液循环半衰期,提高肿瘤靶向效率,增强药物疗效并降低其毒副作用(A
Gabizon, D Goren, AT Horowitz. Long-circulating liposomes for drug delivery in
cancer therapy:a review of biodistribution studies in
tumor-bearing animals[J]. Advanced Drug elivery Review .1997,24(17) :337-344)。 但是当聚乙二醇-脂质衍生物的浓度较大时,脂质体内外膜表面致密的PEG层可能影响药物的包封速度和程度, 同时PEG分子间的相互作用可能在一定程度上限制了PEG分子的高柔顺性而影响其长循环特性,甚至有可能破坏磷脂双分子层的稳定性(DE. Owens,
N. Peppas. Opsonization, biodistribution, and pharmacokinetics of
polymeric nanoparticles [J]. Int J Pharm 2006, 307: 93-102)。所以亲水性脂质衍生物在脂质体表面的修饰比例对制剂的体内疗效和稳定性影响重大。
作为优选方案,所述亲水性脂质衍生物和磷脂的质量比为1:2~1:6,此时脂质体的粒径较小且粒度分布均匀,包封率高达90%以上,制剂稳定性良好。
本发明中所述建立梯度物质选自乙二胺四乙酸铵、硫酸铵、乙二胺四乙酸三乙胺、乙二胺四乙酸二乙胺、乙二胺四乙酸乙醇胺或枸橼酸铵;优选为乙二胺四乙酸铵或硫酸铵。
脂质体中的胆固醇具有双向调节磷脂双分子层流动性的作用,因此磷脂和胆固醇的比例会显著影响脂质体的膜稳定性和药物的装载速度与程度。Patel等发现增加脂质体中胆固醇的含量可显著降低肝脏的摄取,并提高骨髓的摄取(Harish
M. Patel, Nilden S. Tuz̈el,
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liposomes by liver and spleen.Biochim Biophys
Acta,1983,761:142-151.)。作为优选方案,小檗胺类药物的处方组成中胆固醇和磷脂的质量比为1:2~1:4,此时脂质体的粒径较小且粒度分布均匀,包封率高达90%以上,制剂稳定性良好。
本发明的小檗胺类药物脂质体中还可以含有生育酚及其衍生物、蔗糖、木糖醇、海藻糖、乳糖、葡萄糖、麦芽糖、甘露醇、山梨醇中的一种或多种。
本发明所述的小檗胺类药物脂质体的制备工艺,包括以下步骤:
(a)将建立梯度物质配制为0.10~0.30
mol/L的水溶液,即水化介质,将水化介质加热至50~65 ℃保温待用;作为优选,水化介质中建立梯度物质的浓度选择为0.15~0.25 mol/L;作为最优选,水化介质中建立梯度物质的浓度选择为0.20 mol/L;同时,水化介质的pH在5.5~7.5间均能获得良好的载药结果;
(b)以适量乙醇于50~65
℃下将磷脂、胆固醇、亲水性脂质衍生物以及可以选择性加入的生育酚及其衍生物溶解,之后挥除乙醇,加入步骤(a)的水化介质,搅拌分散,得到脂质体初品,其中磷脂浓度为10~100 g/L;
(c)将脂质体初品过微射流仪、过挤出仪或通过探头超声降低粒径,得空白脂质体;作为优选方案,特别是用于工业化生产时,选择过微射流仪或过挤出仪的方式降低脂质体的粒径,探头超声的方式适合于小批量的实验室研究;
(d)使用透析、切向流过滤、凝胶过滤或离子交换剂处理的方法处理空白脂质体,得到梯度脂质体;作为优选的方案,使用切向流过滤或离子交换剂处理空白脂质体,以获得梯度脂质体;这里所述的切向流设备如中空纤维透析器(膜孔径30KD,大连化学物理研究所),或是A/G Technology公司的中空纤维膜组件UFP-30-C-6A,30000NM,4800
cm2;而离子交换剂处理是指使用离子交换树脂、离子交换纤维、离子交换膜或电渗析装置(EDI)将脂质体外水相的离子或分子除去。
(e)将小檗胺类药物溶液与梯度脂质体混合,于50~65℃孵育10~30 min,得到含有小檗胺类药物的脂质体制剂。
由于工业化生产过程中各项参数出现±10%的波动是难以避免的,所以在本专利所述的处方组成和工艺参数的上限值或下限值的±10%范围内仍将认为是本专利的保护范围。
本发明的小檗胺类药物脂质体可以制成注射液、冻干粉针剂或其它剂型如但不限于口服液、胶囊剂、气雾剂、滴鼻剂、凝胶剂。
部分实施例中采用阴阳混合离子交换树脂或交换纤维微柱离心法建立离子梯度,具有设备简单、价格低廉、操作方便、脂质体体积变化小等优点。
所述阳离子交换树脂选自含强酸性反应基团如磺酸基-SO3H的强酸型树脂、含较弱反应基团如羧基-COOH或酚羟基-OH的弱酸型树脂或大孔树脂中的一种。所述阴离子交换树脂选自含较强反应基团如具有四面体铵盐官能基团之一-N+(CH3)3的强碱型树脂、含弱酸性基团如羧基-COOH的弱碱型树脂或大孔树脂中的一种,两者的体积比为0.1~2.5。
作为优选方案,选择强酸型的阳离子交换树脂如国产732型阳离子交换树脂与强碱型的阴离子交换树脂如国产717型阴离子交换树脂混合除盐建立脂质体内外水相的离子跨膜梯度,两者的体积比为0.2~2。
本发明带来的有益结果
制备方法切实可行、质量可控,便于工业化生产;
所得小檗胺类药物脂质体的粒径小且分布均一、包封率高、稳定性良好;
将小檗胺类药物制备为脂质体后可有效延长药物的血液循环时间,提高肿瘤组织的靶向效率,增强药物体内抗肿瘤效果,或在与其他化疗药物合用时发挥协同抗肿瘤效应及降毒并提高机体免疫力。
具体实施方式:
所用各成分的简称如下:
HSPC:氢化大豆卵磷脂
DSPC:二硬脂酰磷脂酰胆碱
EPC:蛋黄卵磷脂
SPC:大豆卵磷脂
CHOL:胆固醇
mPEG2000-CHEMS:聚乙二醇单甲醚(2000)-胆固醇琥珀酸酯
mPEG2000-DSPE:聚乙二醇单甲醚(2000)-二硬脂酰磷脂酰乙醇胺
(NH4)2SO4:硫酸铵
NH4EDTA:乙二胺四乙酸铵
盐酸小檗胺购买自成都龙泉高科天然药业有限公司,纯度约为96.2%。
O-(4-乙氧基-丁基)小檗胺盐酸盐和O-丹磺酰基小檗胺盐酸盐按照文献中的方法进行合成及表征(谢进文,浙江大学博士论文,2009,吲哚啉-2-酮和小檗胺衍生物的设计、合成及其生物活性研究),两者纯度均约为95%。
下面结合实施例对本发明作进一步详细的描述,但这些实施例不能被理解为限制了本发明的范围,本发明的保护范围由权利要求书所限定,任何在本发明权利要求基础上的改动都是本发明的保护范围。
本发明中的水化介质为乙二胺四乙酸铵溶液、乙二胺四乙酸三乙胺溶液、乙二胺四乙酸二乙胺溶液或乙二胺四乙酸乙醇胺溶液时,水化介质的浓度代表其中乙二胺四乙酸根的浓度,水化介质的pH值通过其中加入的氨水、三乙胺、二乙胺或乙醇胺的量进行控制。
本发明的部分实施例采用离子交换的方法建立脂质体的跨膜梯度,具体实施手段是采用阴阳混合离子交换树脂或交换纤维微柱离心法建立离子梯度,此方法具有设备简单、价格低廉、操作方便、脂质体体积变化小等优点。所用的阳离子交换树脂选自含强酸性反应基团如磺酸基-SO3H的强酸型树脂、含较弱反应基团如羧基-COOH或酚羟基-OH的弱酸型树脂或大孔树脂中的一种。所用的阴离子交换树脂选自含较强反应基团如具有四面体铵盐官能基团之一-N+(CH3)3的强碱型树脂、含弱酸性基团如羧基-COOH的弱碱型树脂或大孔树脂中的一种。在某些具体方案中,选择强酸型的阳离子交换树脂如国产732型阳离子交换树脂与强碱型的阴离子交换树脂如国产717型阴离子交换树脂混合除盐建立脂质体内外水相的离子跨膜梯度。
本发明中小檗胺类药物脂质体包封率的测定方法如下:
取已制备好的小檗胺类药物脂质体 100 μL各两份。一份加入1.0 mL 体积分数为10%的Tween-80或Triton X-100溶液破乳(检测波长为212 nm),用流动相稀释至10 mL,或直接用甲醇破乳并稀释定容至10 mL(检测波长282
nm),摇匀,以HPLC法测定峰面积,计算总药量(Ctot)。另一份上样于阳离子交换树脂柱(使用732型阳离子交换树脂或ZB-1阳离子交换纤维,柱高均约为1.5 cm),2000
r·min-1离心4 min;继续加400 μL重蒸水于柱的顶端, 2000 r·min-1离心4 min洗脱,连续操作4次,合并洗脱液,加入1.0 mL体积分数为10%的Tween-80 或Triton X-100溶液破乳(检测波长为212 nm),用流动相稀释至10 mL,或直接用甲醇破乳并稀释定容至10 mL(检测波长282
nm),摇匀,以HPLC法测定峰面积,计算脂质体内药量(Clip)。包封率根据公式EE%=Clip/Ctot×100%计算。
实施例 1 被动载药法制备盐酸小檗胺类药物脂质体
HSPC:
200 mg
CHOL:
66.7 mg
mPEG2000-CHEMS:
66.7 mg
将上述脂质体膜材以适量无水乙醇在65 ℃水浴中加热溶解,挥除乙醇,加入预热至相同温度的5 mg·mL-1的盐酸小檗胺溶液4 mL(药脂比为1:10,w/w)水化20~30 min,得脂质体初品。将初品探头超声,超声功率和时间为200 w×2 min +400 w×6 min,然后依次通过0.8、0.45、0.22 µm微孔滤膜各3~5遍,即得。脂质体粒径约100 nm,包封率小于20%。
同时进行了下列处方的被动载药试验:
处方1
SPC:
200 mg
CHOL:
30 mg
mPEG2000-CHEMS:
50 mg
处方2
DSPC:
200 mg
CHOL:
66.7 mg
mPEG2000-DSPE:
66.7 mg
处方3
DPPC:
200 mg
CHOL:
100 mg
mPEG2000-DSPE:
66.7 mg
处方4
HEPC:
200 mg
CHOL:
20 mg
mPEG2000-CHEMS:
65 mg
处方5
DSPG:
200 mg
CHOL:
66.7 mg
mPEG2000-DSPE:
66.7 mg
脂质体膜材组成见处方1至处方5,并按照本实施例的前述方法制备盐酸小檗胺脂质体(药脂比为1:10,w/w),所得载药粒径均在95~110 nm之间,但包封率均未超过30%。使用O-(4-乙氧基-丁基)小檗胺盐酸盐进行相同的实验,包封率也未超过30%。
可见采用被动载药法难以制得高包封率的小檗胺类药物脂质体。
实施例 2 pH梯度法制备盐酸小檗胺类药物脂质体
处方:
HSPC:
200 mg
CHOL:
66.7 mg
mPEG2000-DSPE:
66.7 mg
按处方将脂质体膜材以适量无水乙醇在65 ℃水浴中加热溶解,挥除乙醇,加入4 mL预热至相同温度的枸橼酸-枸橼酸钠缓冲液(300 mmol·L-1,pH4.0)水化20~30 min,得到空白脂质体初品。将初品探头超声,超声功率和时间为200 w×2 min
+400 w×6 min,然后依次通过0.8、0.45、0.22 µm微孔滤膜各3~5遍,得空白脂质体混悬液。
取空白脂质体混悬液1.0 mL,加入500 mmol·L-1的磷酸钠溶液调节外水相pH为6.5,按药脂比为1:10(w/w)加入盐酸小檗胺溶液,50 ~60 ℃恒温孵育10~20
min,冰水浴终止载药,所得包封率为94.20%±1.13%、平均粒径为142.0 nm。
将药物更换为O-丹磺酰基小檗胺盐酸盐,使用相同膜材和制备工艺,包封率为83.10%,粒径155.0 nm。
可见使用pH梯度法装载小檗胺类药物可以取得较好的包封率,但脂质体粒径较大。而且采用枸橼酸梯度法制备的的脂质体粒径较大且放置稳定性不好(脂质体在4±2 ℃下充氮密封放置30 d后出现混浊、絮凝沉淀和长菌等现象)。
实施例 3 枸橼酸铵梯度法制备盐酸小檗胺类药物脂质体
处方1:
HSPC:
200 mg
CHOL:
66.7 mg
mPEG2000-DSPE:
66.7 mg
按处方将脂质体膜材以适量无水乙醇在50 ℃水浴中加热溶解,挥除乙醇,加入4 mL预热至相同温度的枸橼酸铵溶液(300
mmol·L-1,pH 6.5)水化20 ~30 min,得空白脂质体初品。将初品探头超声,超声功率和时间为200 w×2 min
+400 w×6 min,然后依次通过0.8、0.45、0.22 µm微孔滤膜各3~5遍,得空白脂质体混悬液。
精密移取0.2 mL空白脂质体于3 mL的阴阳混合离子交换树脂柱上(阴:阳=2:1,v/v),同时加入0.2 mL重蒸水,停留10~30 min后, 2000 rpm离心4 min,再于柱顶端加入0.1 mL重蒸水2000 rpm离心4 min,合并洗脱液,混匀,得最终磷脂浓度约为20 mg·mL-1的梯度脂质体。
精密移取一定量的枸橼酸铵梯度脂质体,按药脂比为1:10(w/w)加入BBM溶液,50 ℃恒温孵育20 min,冰水浴终止载药,所得脂质体的包封率为91.63%±1.17%、平均粒径为149.2 nm。
当使用相同方法装载O-(4-乙氧基-丁基)小檗胺盐酸盐时,包封率为86.97%,脂质体粒径为134 nm。
实施例 4 硫酸铵梯度法制备盐酸小檗胺类药物脂质体
处方1:
SPC:
200 mg
CHOL:
20 mg
mPEG2000- CHEMS:
100 mg
处方2:
HSPC:
200 mg
CHOL:
100 mg
mPEG2000- DSPE:
70 mg
处方3:
HSPC:
200 mg
CHOL:
66.7 mg
mPEG2000-DSPE:
66.7 mg
处方4:
HSPC:
200 mg
CHOL:
50 mg
mPEG2000-CHEMS:
20 mg
处方5:
HSPC:
200 mg
CHOL:
66.7 mg
mPEG2000-DSPE:
30 mg
处方6:
DSPC:
200 mg
CHOL:
66.7 mg
mPEG2000-DSPE:
66.7 mg
处方7:
HSPE:
200 mg
CHOL:
66.7 mg
mPEG2000-DSPE:
66.7 mg
处方8:
DPPC:
200 mg
CHOL:
66.7 mg
mPEG2000-DSPE:
66.7 mg
处方9:
DSPG:
200 mg
CHOL:
66.7 mg
mPEG2000-DSPE:
66.7 mg
处方10:
DSPC:
100
mg
DPPC
100 mg
CHOL:
66.7 mg
TPGS:
30 mg
处方11:
HSPC:
180 mg
DSPG
20 mg
CHOL:
66.7 mg
吐温80:
30
mg
按上述各处方将脂质体膜材以适量无水乙醇在65 ℃水浴中加热溶解,挥除乙醇,加入4 mL预热至相同温度的硫酸铵溶液(200
mmol·L-1,pH5.5)水化25 min,得到空白脂质体初品。将初品探头超声,超声功率和时间为200 w×2
min+400 w×6 min,然后依次通过0.8、0.45、0.22 µm 微孔滤膜各3~5遍,得空白脂质体混悬液。
精密移取0.2 mL空白脂质体于3 mL的阴阳混合离子交换树脂柱上(阴:阳=2:1,v/v),同时加入0.2 mL重蒸水,停留10~30 min后, 2000 rpm离心4 min,再于柱顶端加入0.1 mL重蒸水2000 rpm离心4 min,合并洗脱液,混匀,得最终磷脂浓度约为20 mg·mL-1的梯度脂质体。
精密移取一定量的硫酸铵梯度脂质体,按药脂比为1:10(w/w)加入盐酸小檗胺溶液,65 ℃恒温孵育10 min,冰水浴终止载药,所得脂质体包封率及粒径测定结果如表1。
表1 使用硫酸铵梯度法制备盐酸小檗胺脂质体
处方 | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 | 9 | 10 | 11 |
包封率(%) | 72.1 | 92.3 | 98.4 | 89.2 | 97.6 | 96.9 | 83.5 | 87.4 | 84.3 | 91.1 | 80.8 |
粒径(nm) | 122 | 109 | 110 | 123 | 115 | 118 | 120 | 112 | 109 | 99 | 126 |
将本实施例中的药物变为O-(4-乙氧基-丁基)小檗胺盐酸盐或O-丹磺酰基小檗胺盐酸盐时,取得相近的试验结果,包封率均大于70%。
实施例 5 乙二胺四乙酸铵梯度法制备盐酸小檗胺类药物脂质体
处方1:
SPC:
200 mg
mPEG2000- CHEMS:
100 mg
处方2:
HSPC:
200 mg
CHOL:
100 mg
mPEG2000- DSPE:
70 mg
处方3:
HSPC:
200 mg
CHOL:
66.7 mg
mPEG2000-DSPE:
66.7 mg
处方4:
HSPC:
200 mg
CHOL:
50 mg
mPEG2000-CHEMS:
20 mg
处方5:
HSPC:
200 mg
CHOL:
66.7 mg
mPEG2000-DSPE:
30 mg
处方6:
DSPC:
200 mg
CHOL:
66.7 mg
mPEG2000-DSPE:
66.7 mg
处方7:
HSPE:
200 mg
CHOL:
66.7 mg
mPEG2000-DSPE:
66.7 mg
处方8:
DPPC:
200 mg
CHOL:
66.7 mg
mPEG2000-DSPE:
66.7 mg
处方9:
DSPG:
200 mg
CHOL:
66.7 mg
mPEG2000-DSPE:
66.7 mg
处方10:
DSPC:
100 mg
DPPC
100 mg
CHOL:
66.7 mg
TPGS:
30 mg
处方11:
HSPC:
180 mg
DSPG
20 mg
CHOL:
66.7 mg
吐温80:
30 mg
按上述各处方将脂质体膜材以适量无水乙醇在65 ℃水浴中加热溶解,挥除乙醇,加入4 mL预热至相同温度的乙二胺四乙酸铵溶液(200
mmol·L-1,pH 6.5)水化20min,得空白脂质体初品。将初品探头超声,超声功率和时间为200 w×2 min
+400 w×6 min,然后依次通过0.8、0.45、0.22 µm微孔滤膜各3~5遍,得空白脂质体混悬液。
精密移取0.2 mL空白脂质体于3 mL的阴阳混合离子交换树脂柱上(阴:阳=2:1,v/v)同时加入0.2 mL重蒸水,停留10~30 min后,2000 rpm离心4 min,再于柱顶端加入0.1 mL重蒸水2000 rpm离心4 min,合并洗脱液,混匀,得最终磷脂浓度约为20 mg·mL-1的梯度脂质体。
精密移取一定量的乙二胺四乙酸铵梯度脂质体,按药脂比为1:10(w/w)加入盐酸小檗胺溶液,55℃恒温孵育15 min,冰水浴终止载药, 所得脂质体包封率及粒径测定结果如表2。
表2 使用乙二胺四乙酸铵梯度法制备盐酸小檗胺脂质体
处方 | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 | 9 | 10 | 11 |
包封率(%) | 55.9 | 93.2 | 98.2 | 90.7 | 99.2 | 96.9 | 87.5 | 89.1 | 87.3 | 96.1 | 82.1 |
粒径(nm) | 98 | 121 | 110 | 122 | 108 | 123 | 120 | 105 | 119 | 109 | 116 |
将本实施例中的药物变为O-(4-乙氧基-丁基)小檗胺盐酸盐或O-丹磺酰基小檗胺盐酸盐时,取得相近的试验结果,包封率均大于70%。可见使用乙二胺四乙酸胺梯度制备小檗胺类药物脂质体可以获得较好的包封率。
实施例 6 磷脂浓度对盐酸小檗胺类药物脂质体包封率的影响
处方1:
HSPC:
320 mg
CHOL:
106.7 mg
mPEG2000-DSPE:
106.7 mg
处方2:
HSPC:
240 mg
CHOL:
80.0 mg
mPEG2000-DSPE:
80.0 mg
处方3:
HSPC:
200 mg
CHOL:
66.7 mg
mPEG2000-DSPE:
66.7 mg
处方4:
HSPC:
160 mg
CHOL:
53.3 mg
mPEG2000-DSPE:
53.3 mg
处方5:
HSPC:
80.0 mg
CHOL:
26.7 mg
mPEG2000-DSPE:
26.7 mg
制备不同磷脂浓度的空白脂质体,建立硫酸铵梯度后装载盐酸小檗胺(药脂比为1:10,w/w),方法和操作同“实施例4”。包封率测定结果:处方1包封率为94.2%、处方2包封率为93.9%、处方3包封率为95.2%、处方4包封率为94.8%、处方5包封率为95.0%。当使用乙二胺四乙酸铵梯度时,装载盐酸小檗胺获得相同的实验结果。可见,当空白脂质体磷脂浓度在20
g/L ~80g/L的范围内,小檗胺类药物脂质体的包封率几乎不受影响。
实施例 7 胆固醇含量对盐酸小檗胺类药物脂质体包封率的影响
处方1:
HSPC:
200 mg
CHOL:
0 mg
mPEG2000-DSPE:
66.7 mg
处方2:
HSPC:
200 mg
CHOL:
40 mg
mPEG2000-DSPE:
66.7 mg
处方3:
HSPC:
200 mg
CHOL:
50 mg
mPEG2000-DSPE:
66.7 mg
处方4:
HSPC:
200 mg
CHOL:
66.7mg
mPEG2000-DSPE:
66.7 mg
处方5:
HSPC:
200 mg
CHOL:
100 mg
mPEG2000-DSPE:
66.7 mg
按“实施例4”的制备方法制备不同胆固醇含量的盐酸小檗胺脂质体(药脂比为1:10,w/w),包封率测定结果:处方1包封率为5.1%、处方2包封率为25.1%、处方3包封率为91.2%、处方4包封率为96.8%、处方5包封率为97.6%。当使用乙二胺四乙酸铵梯度时,装载盐酸小檗胺获得相同的实验结果。可见,当胆固醇与磷脂的质量比在1:2~1:4间时,盐酸小檗胺脂质体的包封率均在90%以上。
胆固醇与磷脂的质量比在1:2、1:3和1:4时,使用本实施例的硫酸铵梯度脂质体装载O-(4-乙氧基-丁基)小檗胺盐酸盐,包封率分别为88.1%、85.3%和83.7%。
实施例 8 mPEG2000-DSPE含量对盐酸小檗胺类药物脂质体包封率的影响
处方1:
HSPC:
200 mg
CHOL:
66.7 mg
mPEG2000-DSPE:
0 mg
处方2:
HSPC:
200 mg
CHOL:
66.7 mg
mPEG2000-DSPE:
33.3 mg
处方3:
HSPC:
200 mg
CHOL:
66.7 mg
mPEG2000-DSPE:
66.7 mg
处方4:
HSPC:
200 mg
CHOL:
66.7mg
mPEG2000-DSPE:
100 mg
处方5:
HSPC:
200 mg
CHOL:
66.7 mg
mPEG2000-DSPE:
133.3 mg
按“实施例4”的制备方法制备不同mPEG2000-DSPE含量的盐酸小檗胺脂质体(药脂比为1:10,w/w)。包封率测定结果如下:处方1为87.0%、处方2为88.5%、处方3为96.1%、处方4为90.0%、处方5为51.2%;当使用mPEG2000-CHEMS代替处方中的mPEG2000-DSPE时,获得相近的实验结果。
实施例 9 mPEG2000-DSPE含量对O-(4-乙氧基-丁基)小檗胺盐酸盐脂质体包封率的影响
处方1:
HSPC:
200 mg
CHOL:
66.7 mg
mPEG2000-DSPE:
0 mg
处方2:
HSPC:
200 mg
CHOL:
66.7 mg
mPEG2000-DSPE:
33.3 mg
处方3:
HSPC:
200 mg
CHOL:
66.7 mg
mPEG2000-DSPE:
66.7 mg
处方4:
HSPC:
200 mg
CHOL:
66.7mg
mPEG2000-DSPE:
100 mg
处方5:
HSPC:
200 mg
CHOL:
66.7 mg
mPEG2000-DSPE:
133.3 mg
按“实施例4”的制备方法制备不同mPEG2000-DSPE含量的对O-(4-乙氧基-丁基)小檗胺盐酸盐脂质体(药脂比为1:10,w/w)。包封率测定结果如下:处方1为82.1%、处方2为81.5%、处方3为87.1%、处方4为83.1%、处方5为53.3%;当使用mPEG2000-CHEMS代替处方中的mPEG2000-DSPE时,获得相近的实验结果。
实施例 10 水化介质浓度对盐酸小檗胺类药物脂质体包封率的影响
处方:
HSPC:
200 mg
CHOL:
66.7 mg
mPEG2000-DSPE:
66.7 mg
采用不同浓度的硫酸铵或乙二胺四乙酸铵制备盐酸小檗胺脂质体(药脂比为1:10,w/w),包封率测定结果如表3和表4所示。
表3不同浓度水化介质(硫酸铵)制备盐酸小檗胺脂质体的包封率
硫酸铵浓度( mmol/L ) | 100 | 150 | 200 | 250 | 300 |
包封率(%) | 90 | 93 | 97 | 94 | 94 |
表4不同浓度水化介质(乙二胺四乙酸铵)制备盐酸小檗胺脂质体的包封率
乙二胺四乙酸铵浓度( mmol/L ) | 100 | 150 | 200 | 250 | 300 |
包封率(%) | 92 | 95 | 98 | 97 | 97 |
实施例 11 乙二胺四乙酸三乙胺梯度制备盐酸小檗胺脂质体
处方:
HSPC:
200 mg
CHOL:
66.7 mg
mPEG2000-DSPE:
66.7 mg
按“实施例 5 ”的方法制备盐酸小檗胺脂质体(药物与磷脂质量比为1:10),水化介质为0.2 mol/L的乙二胺四乙酸三乙胺(pH 6.5),当药脂比为1:10,(w/w)时包封率为92.6%。将水化介质更换为0.2 mol/L乙二胺四乙酸乙醇胺(pH 6.5)时,包封率为87.7%,将水化介质更换为0.2 mol/L乙二胺四乙酸三羟甲基氨基甲烷(Tris)或乙二胺四乙酸葡甲胺(meglumine)(pH
6.5)时,包封率分别为33.1%和5.3%。
实施例 12 盐酸小檗胺类药物脂质体的体内抗肿瘤效果
将18只右前腋下接种S180肿瘤的小鼠随机分为3组,即生理盐水对照组(NS组)、盐酸小檗胺溶液组(BBM-S)、盐酸小檗胺脂质体组(BBM-L)(脂质体具体制备方法如“实施例4处方3”所述),每组6只动物,给药剂量为15 mg·kg-1。分别于接种后第3 d开始尾静脉注射给药,连续给药10 d。给药后动物正常饲养,每日称量小鼠体重,同时观察小鼠生存状态。接种后第13 d取小鼠血液、检验白细胞计数,之后将小鼠拉断颈锥处死,完整剥离皮下肿瘤、脾脏和胸腺,称重。按下述公式计算脾脏指数和胸腺指数,脾脏指数=实验组小鼠脾脏重量/实验组小鼠体重(mg·g-1);胸腺指数=实验组小鼠胸腺重量/实验组小鼠体重(mg·g-1)。
表5各组S180荷瘤小鼠的平均瘤重及抑瘤率
Group | Tumor weight/g | Inhibition ratio/% | P1 | P2 |
NS | 4.9010 | / | / | / |
BBM-S | 4.1161 | 16.01 | - | / |
BBM-L | 2.9968 | 38.85 | ** | ** |
P1 : compared to
NS; P2 : compared to BBM-S. P<0.05:无显著性差异,记为-;P<0.05:显著性差异;记为 *;P<0.01:极显著性差异,记为 * *。
由表5可知, 盐酸小檗胺溶液组的体内抑瘤效果较差,肿瘤生长情况与生理盐水组无显著性差异。但是将盐酸小檗胺制备成脂质体后可明显抑制肿瘤细胞的生长。
将本实施例中的药物变为O-(4-乙氧基-丁基)小檗胺盐酸盐或O-丹磺酰基小檗胺盐酸盐时,抑瘤率分别为65.77%与58.19%。可见将盐酸小檗胺类药物制备成脂质体后,可显著提高药物的体内抗肿瘤效果。
表6 各组S180荷瘤小鼠的血中白细胞数
Sample | NS | BBM-S | BBM-L |
WBC/×109·L-1 | 10.1±1.7 | 9.2±1.3 | 11.0±1.0 |
compared with NS | / | - | - |
compared with BBM-S | / | / | * |
P>0.05:无显著性差异,记为-;P<0.05:显著性差异;记为 * ;P<0.01:极显著性差异,记为 * *。
由表6可知,与生理盐水组相比,溶液组或脂质体组的血中白细胞计数均无显著性差异; 但是,将盐酸小檗胺装载入脂质体内,利用较小粒径的PEG化脂质体的骨髓被动靶向性,可显著提高S180荷瘤小鼠的血中白细胞数。
表7 各组S180荷瘤小鼠的脾脏指数
Sample | NS | BBM-S | BBM-L |
Spleen Index/ mg·g-1 | 9.30±1.09 | 8.20±0.98 | 10.04±1.61 |
compared with NS | / | - | - |
Compared with BBM-S | / | / | * |
P>0.05:无显著性差异,记为-;P<0.05:显著性差异;记为 *;P<0.01:极显著性差异,记为 * *。
表8 各组S180荷瘤小鼠的胸腺指数
Sample | NS | BBM-S | BBM-L |
thymus Index/ mg·g-1 | 1.75±0.45 | 1.87±0.38 | 2.30±0.33 |
compared with NS | / | - | * |
Compared with BBM-S | / | / | - |
P >0.05:无显著性差异,记为-;P<0.05:显著性差异;记为 *;P<0.01:极显著性差异,记为 * *。
由表7可知,溶液组和脂质体组对S180荷瘤小鼠的脾脏无明显损害。而且与溶液组相比,脂质体组S180荷瘤小鼠的脾脏指数显著增大。此外,与生理盐水组相比,脂质体组使S180荷瘤小鼠的脾脏指数有所增加。由表8可知,与对照组相比,各组胸腺指数均有所增加,但溶液组增加不明显,无显著性差异,而脂质体组增加较为明显,存在显著性差异。可见,将盐酸小檗胺制备成脂质体可能有利于提高S180荷瘤小鼠的自身免疫力。
实施例 13 盐酸小檗胺脂质体与盐酸阿霉素脂质体联合用药药效学评价
将42只右前腋下接种S180肿瘤的小鼠随机分为7组,即生理盐水对照组(NS)、盐酸阿霉素脂质体低剂量组(DOX-L-L)、盐酸阿霉素脂质体中剂量组(DOX-L-M)、盐酸阿霉素脂质体高剂量组(DOX-L-H)、盐酸小檗胺脂质体和盐酸阿霉素脂质体低剂量联合用药组(BBM-L+DOX-L-L),盐酸小檗胺脂质体和盐酸阿霉素脂质体中剂量联合用药组(BBM-L+DOX-L-M),盐酸小檗胺脂质体和盐酸阿霉素脂质体高剂量联合用药组(BBM-L+DOX-L-H),每组6只动物。盐酸阿霉素脂质体的低、中、高剂量分别为2.5
mg·kg-1、5 mg·kg-1、10 mg·kg-1,盐酸小檗胺及其制剂的给药剂量为15 mg·kg-1;前者于接种后第3、6、9、12 d尾静脉注射给药,后者于接种后第3 d给药,连续给药10 d。给药后动物正常饲养,每日称量小鼠体重,同时观察小鼠生存状态。接种后第13 d取小鼠血液、检验白细胞计数,之后将小鼠拉断颈锥处死,完整剥离皮下肿瘤、脾脏和胸腺,称重,计算抑瘤率、脾脏指数及胸腺指数。
表9各组S180荷瘤小鼠的平均瘤重及抑瘤率
Group | Tumor weight/g | Inhibition ratio/% | P1 | P2 | P3 |
NS | 3.7864 | / | * * | ** | ** |
DOX-L-L | 1.9057 | 49.67 | / | - | - |
DOX-L-M | 1.5857 | 58.12 | - | / | - |
DOX-L-H | 1.1174 | 70.49 | - | - | / |
BBM-L+DOX-L-L | 1.5218 | 59.81 | * | - | - |
BBM-L+DOX-L-M | 1.3896 | 63.30 | * | - | - |
BBM-L+DOX-L-H | 1.1745 | 68.98 | * | - | - |
P1 : compared to
DOX-L-L; P2 : compared to DOX-L-M; P3 :
compared to DOX-L-H. P<0.05:无显著性差异,记为-;P<0.05:显著性差异;记为 *;P<0.01:极显著性差异,记为 * *。
由表9可知,脂质体联合用药组可显著提高盐酸阿霉素脂质体低剂量组对S180肿瘤细胞的生长抑制作用,而且其抑瘤效果与盐酸阿霉素脂质体中、高剂量组相近。这也就是说,盐酸小檗胺脂质体和低剂量的盐酸阿霉素脂质体联合应用后可发挥协同抗肿瘤作用,使降低阿霉素剂量但不影响其抗肿瘤效果成为可能。
表10各组S180荷瘤小鼠的血中白细胞数
Group | WBC/×109·L-1 | P1 | P2 | P3 | P4 |
NS | 9.2±1.5 | / | / | / | / |
DOX-L-L | 6.5±1.3 | * | / | / | / |
DOX-L-M | 5.1±0.8 | * | - | / | / |
DOX-L-H | 3.9±1.1 | ** | * | - | / |
BBM-L+DOX-L-L | 7.3±1.7 | - | - | * | ** |
BBM-L+DOX-L-M | 6.2±1.0 | * | - | - | * |
BBM-L+DOX-L-H | 5.7±1.6 | * | - | - | * |
P1 : compared to
NS; P2 : compared to DOX-L-L; P3 : compared
to DOX-L-M; P4 : compared to DOX-L-H. P<0.05:无显著性差异,记为-;P<0.05:显著性差异;记为 *;P<0.01:极显著性差异,记为 * *。
由表10可知,与生理盐水组相比,各剂量的阿霉素脂质体组的S180荷瘤小鼠的血中白细胞均显著降低,且具有一定的剂量依赖性。与单药组相比,相应的联合用药组S180荷瘤小鼠的血中白细胞数均有所提升。此外,将高剂量的盐酸阿霉素脂质体与盐酸小檗胺脂质体联合用药时,可显著降低高剂量的阿霉素对S180荷瘤小鼠的骨髓抑制作用,而且其S180荷瘤小鼠的白细胞水平与盐酸阿霉素脂质体的低、中剂量时相近。
表11各组S180荷瘤小鼠的脾脏指数
Group | Spleen Index/ mg·g-1 | P1 | P2 | P3 | P4 |
NS | 8.70±1.25 | / | / | / | / |
DOX-L-L | 6.32±1.38 | * | / | / | / |
DOX-L-M | 3.85±0.86 | ** | * | / | / |
DOX-L-H | 2.77±0.73 | ** | * | - | / |
BBM-L+DOX-L-L | 7.03±1.28 | - | - | ** | ** |
BBM-L+DOX-L-M | 5.23±0.97 | * | - | * | ** |
BBM-L+DOX-L-H | 4.85±1.16 | ** | - | - | * |
P1 : compared to
NS; P2 : compared to DOX-L-L; P3 : compared
to DOX-L-M; P4 : compared to DOX-L-H. P<0.05:无显著性差异,记为-;P<0.05:显著性差异;记为 *;P<0.01:极显著性差异,记为 * *。
表12各组S180荷瘤小鼠的胸腺指数
Group | thymus Index/ mg·g-1 | P1 | P2 | P3 | P4 |
NS | 2.05±0.72 | / | / | / | / |
DOX-L-L | 1.55±0.58 | - | / | / | / |
DOX-L-M | 1.07±0.38 | * | - | / | / |
DOX-L-H | 0.62±0.20 | ** | * | - | / |
BBM-L+DOX-L-L | 1.79±1.07 | - | - | * | * |
BBM-L+DOX-L-M | 1.51±0.42 | - | - | - | * |
BBM-L+DOX-L-H | 1.37±0.51 | * | - | - | * |
P1 : compared to
NS; P2 : compared to DOX-L-L; P3 : compared
to DOX-L-M; P4 : compared to DOX-L-H. P<0.05:无显著性差异,记为-;P<0.05:显著性差异;记为 *;P<0.01:极显著性差异,记为 * *。
由表11及表12可知,与生理盐水组相比,各剂量的阿霉素脂质体组的S180荷瘤小鼠的脾脏指数或胸腺指数均有所降低,且具有一定的剂量依赖性。与单药组相比,相应的联合用药组S180荷瘤小鼠的脾脏指数或胸腺指数均有所提升。此外,将较高剂量的盐酸阿霉素脂质体与盐酸小檗胺脂质体联合用药时,可显著降低较高剂量的阿霉素对S180荷瘤小鼠的免疫器官的损害程度。因此我们认为盐酸小檗胺脂质体和较高剂量的盐酸阿霉素脂质体联合应用后可降低阿霉素剂量的限制性毒性,从而使增大阿霉素脂质体的给药剂量,提高药物的抗肿瘤效果甚至完全抑制肿瘤成为可能。
上述实验结果表明:盐酸小檗胺脂质体和盐酸阿霉素脂质体联合应用后,在阿霉素剂量较低时可以发挥协同抗肿瘤作用,在阿霉素剂量较高时可起到降毒并增强机体免疫力的效应。
Claims (8)
1.一种含有小檗胺类药物的脂质体制剂,其特征是含有小檗胺类药物、磷脂、胆固醇、亲水性脂质衍生物和建立梯度物质;其中药物和磷脂的质量比为1:5~1:100,胆固醇和磷脂的质量比为1:2~1:4,亲水性脂质衍生物与磷脂的质量比为1:2~1:6。
2.根据权利要求1所述的含有小檗胺类药物的脂质体制剂,其特征在于,所述的小檗胺类药物为小檗胺、O-乙基-小檗胺、O-丁基-小檗胺、O-辛基-小檗胺、O-(4-乙氧基-丁基)小檗胺、O-苯基-小檗胺、O-乙酰基-小檗胺或O-丹磺酰基小檗胺的盐酸盐、硫酸盐、磷酸盐、醋酸盐、苹果酸盐、草酸盐、重酒石酸盐或柠檬酸盐中的一种或几种。
3.根据权利要求1所述的含有小檗胺类药物的脂质体制剂,其特征在于,所述的磷脂选自大豆卵磷脂、蛋黄卵磷脂、氢化大豆卵磷脂、氢化蛋黄卵磷脂、磷脂酰胆碱、磷脂酰乙醇胺、磷脂酰甘油及其钠盐、磷脂酰肌醇、鞘磷脂、磷脂酰丝氨酸或磷脂酸中的一种或多种。
4.根据权利要求1所述的含有小檗胺类药物的脂质体制剂,其特征在于,所述的亲水性脂质衍生物选自聚乙二醇与磷脂或聚乙二醇与胆固醇连接所得的聚乙二醇脂质衍生物、吐温80、吐温20、聚乙二醇维生素E琥珀酸酯或神经节苷脂中的一种或多种。
5.根据权利要求1所述的含有小檗胺类药物的脂质体制剂,其特征在于,所述建立梯度物质选自乙二胺四乙酸铵、硫酸铵、乙二胺四乙酸三乙胺、乙二胺四乙酸乙醇胺、乙二胺四乙酸二乙胺或枸橼酸铵。
6.根据权利要求1所述的含有小檗胺类药物的脂质体制剂,其特征在于,其中还含有生育酚及其衍生物、蔗糖、木糖醇、海藻糖、乳糖、葡萄糖、麦芽糖、甘露醇、山梨醇中的一种或多种。
7.制备权利要求1所述的含有小檗胺类药物的脂质体制剂的方法,其特征在于,包括以下步骤:
(a)将建立梯度物质配制为0.10~0.30 mol/L的水溶液,即水化介质,将水化介质加热至50~65 ℃保温待用;
(b)以适量乙醇于50~65 ℃下将磷脂、胆固醇、亲水性脂质衍生物以及可以选择性加入的生育酚及其衍生物溶解,之后挥除乙醇,加入步骤(a)的水化介质,搅拌分散,得到脂质体初品,其中磷脂浓度为10~100 g/L;
(c)将脂质体初品过微射流仪、过挤出仪或通过探头超声降低粒径,得空白脂质体;
(d)使用透析、切向流过滤、凝胶过滤或离子交换剂处理的方法处理空白脂质体,得到梯度脂质体;
(e)将小檗胺类药物溶液与梯度脂质体混合,于50~65℃孵育10~30 min,得到含有小檗胺类药物的脂质体制剂。
8.根据权利要求1-7任何一项所述的含有小檗胺类药物的脂质体制剂,其特征在于:所述的脂质体与药学上接受的赋形剂制成注射液、冻干粉针剂、口服液、胶囊剂、气雾剂、滴鼻剂、凝胶剂。
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