CN103173552A - Foxp3基因 TSDR位点甲基化检测方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种检测Foxp3基因TSDR位点甲基化水平的方法。该方法依次包括下述步骤:(1)从全血中提取基因组DNA;(2)DNA的亚硫酸氢盐处理;(3)MS-HRMPCR;(4)经HRM-PCR检测,读取样本Tm值,根据样本Tm值判断Foxp3基因TSDR甲基化水平。该方法相对于现有的MS-HRM方法,更加简单易行,有望成为评估Foxp3基因TSDR位点甲基化的精确、廉价、快速的工具,并为临床指导评价SLE活动性、疗效和预后提供帮助。
Description
技术领域
本发明涉及生物技术领域,具体涉及一种基因位点甲基化检测方法。
背景技术
SLE是一种由于自身免疫反应引起的慢性炎性疾病,以多个器官、组织受累和血清中有多种自身抗体为特征,但其发病机制尚未明了,大量资料证明是在遗传、环境、感染和性激素等因素的影响下出现的细胞免疫功能失调所致。SLE患者临床异质性大,病情迁延,反复波动。因此,在诊断SLE 时,应进行包括其活动性与严重程度的病情判断,以利于选择治疗方案。但是对于SLE活动度的判定并非易事,活动性与重症度并非是平行关系,且SLE是多脏器受害的疾病,受侵犯脏器损害不同,对疾病活动性的评价也会发生变化。包括对感染性疾病在内的其他疾病进行鉴别,进一步加大了活动性判定的难度。
现行的SLE活动性判定依据主要有:SLE病情活动指数(systemic lupus erythematosus
disease activity index,SLEDAI)、狼疮活动测量标准(systemic lupus activity measure,SLAM)、欧洲统一狼疮损伤指数(European consensus
lupus damage index,ECLAM)和大不列颠群岛狼疮评估组指数(British Isles lupus assessment group,BILAG),其中SLEDAI和BILAG是目前狼疮随机临床试验最常用的两个评估工具。但上述各种评分方法仍不完美,各有优缺点。单独使用,有时并不能对活动性给出准确的评判。因此,需要一种更为有效、更为精准判定方法。
CD4+
CD25+ 调节性T细胞(Treg)首次由日本学者Sakaguchi等于1995年所报道,这类T细胞介导的免疫调节作用是维持自身免疫耐受的关键,此发现引起了免疫学界的广泛关注。Treg的免疫抑制性是指经TCR介导的信号刺激活化以后能够抑制CD4+ CD25- T细胞的活化和增殖。大量研究表明,Treg不仅在自身耐受的获得和维持及自身免疫的防御中起重要作用,在肿瘤、移植耐受甚至是病原体感染等免疫反应调节中也扮演重要角色。虽然其机制至今还不是十分明确,但大量研究表明Treg细胞的发育、功能的发挥与一个蛋白质分子——Foxp3有着密切的联系。Foxp3是一种转录因子,它能通过调控特定基因的表达,从而控制Treg细胞的分化成熟。
有研究发现与非活动性SLE患者和健康对照组相比,活动性SLE患者外周血CD4+ T细胞表面CD69 表达增多,而CD25 的表达明显减少,这一现象提示,活动性SLE患者中T 细胞被大量激活,却没有诱导出免疫调节性Treg细胞。进一步研究显示SLE患者外周血Foxp3的表达也明显低于对照组,它的表达水平与CD4+
CD25+ 调节性T细胞数量存在依赖关系。Treg细胞在发挥抑制作用机制中起着重要作用。因此,活动性SLE患者体内缺乏CD4+CD25+ T细胞可能会导致机体抑制自身免疫反应的功能减弱,并与SLE 的发生发展密切相关。
目前,甲基化敏感性高分辨率熔解曲线分析(MS-High Resolution Melting Curve Analyse,简称MS-HRM)是一种不需要 PCR 产物后续操作的,简单且灵敏的检测基因甲基化水平的方法。该方法在甲基化修饰位点附近设计实时定量PCR引物,对来自经重亚硫酸盐修饰的DNA的相关区进行特异性PCR扩增。重亚硫酸盐修饰DNA,让非甲基化的胞嘧啶转换为尿嘧啶,而5-甲基胞嘧啶保持不变,随后使用含饱和DNA结合染料的PCR体系扩增,扩增后通过比较曲线的熔解温度和峰形进行分析。MS-HRM因其高敏感性,可以区分扩增产物中少至1个碱基变化的序列差异,从而通过尿嘧啶/胞嘧啶的差异判断扩增子来源的初始模板的甲基化修饰差异。但MS-HRM的数据一直没有一种公认的分析方法,目前结果分析大多采用标准曲线法,将甲基化和非甲基化对照DNA(经过重亚硫酸盐修饰)以不同比例混合,创建一系列甲基化梯度标准品。结合标准品的特征熔解曲线和温度,用专门软件进行计算分析,从而得出样本中的DNA甲基化比率。这种方法使得实验更加繁琐,增加了实验环节,在标准品在配置的过程中极易因操作原因,导致标准品配比不准确,使得实验准确性和重复性大打折扣。且加大了实验成本,延长了实验时间。因此限制了MS-HRM技术在临床诊断的推广应用。
发明内容
,本发明的目的在于基于并改进现有MS-HRM方法,提供一种更为简单的检测Foxp3基因TSDR位点甲基化水平的方法。
本发明提供的检测Foxp3基因TSDR位点甲基化水平的方法依次包括下述步骤:(1)从样本全血中提取基因组DNA;(2)DNA的亚硫酸氢盐处理;(3)MS-HRM PCR:MS-HRM PCR反应中,Foxp3
基因 TSDR位点的特异性扩增引物序列为:
F:5′-TTGGGGGTAGAGGAGGATTTAGAGGGTC-3′,
R:5′-CAACACCCATATCACCCCACCTAAA-3′ ;
(4)经HRM-PCR检测,读取样本Tm值,根据样本Tm值判断Foxp3基因TSDR甲基化水平。
本发明改进了传统用于检测基因甲基化水平的MS-HRM方法,基于MS-HRM的高灵敏性,直接使用MS-HRM检测系统性红斑狼疮外周血基因组DNA中Foxp3基因TSDR的Tm值,以此为指标,反应活动性SLE患者Foxp3基因TSDR甲基化水平。因为直接使用Tm值进行统计学分析,不用标准曲线进行后续的甲基化百分比计算。这样我们省去了标准品制备和软件分析环节,大大节省了时间和成本,简化了实验步骤,使得实验操作更简单且减少了实验误差。特别是无需甲基化计算软件分析,使得很多没有配备甲基化分析软件的HRM实时定量PCR仪均能开展此实验。该方法相对于现有的MS-HRM方法,更加简单易行,有望成为评估Foxp3基因TSDR甲基化的精确、廉价、快速的工具,并为临床指导评价SLE活动性、疗效和预后提供帮助。
TSDR(Treg-specific demethylated region)是Foxp3基因中的一个高度保守的位点,其在自然Treg细胞中完全去甲基化,但在效应T细胞中是甲基化的。Foxp3 基因 TSDR的甲基化使得相关转录因子不能结合至其启动子区,导致Foxp3低表达。本发明研究得到:以慢性感染性疾病作为疾病对照,与非活动性SLE患者,慢性感染性疾病患者以及正常人群相比,活动性SLE患者。Foxp3的TSDR区甲基化水平明显升高,且与SLE活动性呈高度正相关。因此,通过检测Foxp3
基因 TSDR的甲基化水平,对评价SLE病人的活动性提供帮助。
附图说明
图1:各组样本MS-HRM PCR检测Tm值示意图,其中HC:健康对照;CMI:慢性感染性疾病;In SLE::非活动性SLE;Ac SLE:活动性SLE;
图2:
SLEDAI分值与Tm值间相关性图;
图3:MS-HRM
PCR反应条件;
图4:HRM-PCR原理和特点。
具体实施方式
实施例
1
:
Foxp3
基因
TSDR
位点甲基化检测
1、从300ul全血中提取基因组DNA
(1) 裂解1:取300ul全血放入到1.5ml的离心管中,加入900ul裂解液1。上下颠倒混匀,涡旋混匀15秒后放入离心机中离心,离心速率为8000rpm,1min。倒掉上层液,可见离心管底部有血色沉淀。重复上述裂解步骤一次,最后去除上清, 使离心管底部沉淀无残留裂解液1;
(2) 裂解2:在上步所得沉淀中加入1ml裂解液2。上下颠倒混匀,彻底重悬沉淀。涡旋混匀15秒后8000rpm,离心1min。去上清,可见离心管底部有微量淡红色沉淀。重复此裂解步骤一次,最后彻底去除上清,离心管底部的灰白色沉淀无残留裂解液2;
(3) 消化:吸取蛋白酶K 10ul ( = 0.2mg )加入到上面的离心管中,使蛋白酶K与沉淀物均匀接触后,加入320ul消化液,上下颠倒混匀,使沉淀充分重悬。58℃水浴消化15分钟,最后可见澄明的消化液体;
(4) 纯化:在上面的消化液体中加入110ul纯化液,上下颠倒混匀,15000rpm, 离心1min。吸取上清液放入到装有1000ul无水乙醇的1.5ml离心管中,轻柔上下翻转10次,可见絮状DNA析出。用带钩的玻璃棒挑起絮状DNA放入到100ul 70%乙醇中来回漂洗20次,钩出DNA,在空气中凉干后放入到100ul溶解液中。4℃溶解过夜,提取完成。提取的DNA可于-20℃长期保存。
如要立即用此DNA做PCR实验,把DNA溶解液放在58℃水浴中,保温30分钟, 手指轻弹混匀离心管,使DNA充分溶解即可。
2、 DNA的亚硫酸氢盐处理
采用Qiagen公司的EpiTect® Bisulfite试剂盒处理全血基因组,DNA标本来自第一部分实验提取所得,操作步骤按试剂盒说明书进行:
(1) 缓冲液BW中加入30ml无水乙醇
(2) 缓冲液BD中加入30ml无水乙醇
(3) 将310ul无酶水加入310ug
carrier RNA中,得到1ug/ul的carrier
RNA溶液
(4) 按1:100体积往缓冲液BL中加入1ug/ul的carrier RNA溶液,使缓冲液BL中carrier RNA的浓度为10ug/ml
(5) 根据需要处理的样本多少溶解Bisulfite Mix,每管Bisulfite Mix中加入800ul的无酶水,剧烈震荡5分钟至完全溶解
(6) 在200ul的PCR管中依次加入表2-1中的各成分,充分震荡混匀;反应体系见表1。
表1:DNA亚硫酸氢盐处理步骤(6)的反应体系
(7) 在PCR仪中按表2的条件进行亚硫酸氢钠转换;
表2: DNA亚硫酸氢盐处理反应条件
(8) 反应结束后将PCR管简短离心,将所有的反应液体转至干净的1.5ml EP管中;
(9) 加入560ul缓冲液BL(含10ug/mlcarrier RNA,见第4步),震荡混匀,简短离心;
(10) 将上一步所得的所有液体全部转入带有收集管的EpiTect spin吸附柱中,13000rpm离心1分钟,倒掉废液,将吸附柱放回收集管中;
(11) 往离心柱中加入500ul缓冲液BW,13000rpm离心1分钟,倒掉废液,将吸附柱放回收集管中;
(12) 往离心柱中加入500ul缓冲液BD,室温孵育15分钟,13000rpm离心1分钟,倒掉废液,将吸附柱放回收集管中;
(13) 13000rpm离心1分钟,将吸附柱转入一个新的1.5ml的EP管中,加20ul缓冲液EB, 12000rpm离心1分钟洗脱DNA,所得的液体即为纯化了的亚硫酸氢钠处理后的DNA。
3.
MS-HRM检测样本Foxp3基因TSDR甲基化水平
使用Rotor-Gene 6000 cycler
(Corbett) 实时定量PCR仪进行MS-HRM
PCR,根据EpiTect
HRM-PCR kit (Qiagen)试剂盒说明书步骤进行。
(1) 反应体系的建立 在200ul的PCR管中依次加入以下各组分,所有PCR均采用10µl反应体系,具体见表3。
表3:MS-HRM PCR反应体系
Foxp3 基因 TSDR特异性扩增引物序列如下:
Forward primer5′-TTGGGGGTAGAGGAGGATTTAGAGGGTC-3′
Reverse primer 5′-CAACACCCATATCACCCCACCTAAA-3′
(2) 上机检测 按EpiTect
HRM-PCR kit说明书推荐进行反应条件设置,条件如图3所示。
HRM-PCR原理和特点如图4所示。
4. 结果及统计学分析
不同疾病和正常对照组样本经HRM-PCR检测,读取各样本的Tm值。
用方差分析法(ANOVA方法)对实施例1最后获得的各样本的Tm进行组间比较,所有分析均使用SPSS 18.0 软件进行。以Tm各组均值±标准差(摄氏度)的形式绘图,结果见附图1。
附图1显示: 正常人与非活动性SLE病人间的Tm值无显著性差异(78.44±0.25 vs. 78.49±0.29, p=0.464);正常人与活动性SLE病人间Tm值有显著性差异 (78.44±0.25 vs. 79.00±0.28,
p<0.001);非活动性SLE与活动性SLE间病人间Tm值也具有显著性差异(78.49±0.29 vs. 79.00±0.28,
p<0.001) 。
慢性皮肤微生物感染的病人和正常人相比,Tm值有统计学差异 (78.28±0.21 vs. 78.44±0.25, p<0.05),但仍不及活动性SLE病人与非活动性SLE病人和正常人之间差异显著。在所有的研究组中,活动性SLE病人的熔点最高,慢性皮肤微生物感染病人的熔点最低。所有Tm值检测结果和差异显著性见表4。
表4:检测结果和统计学差异显著性
注:表中↑表示升高; ↓表示降低; N表示正常
将活动性病人的SLEDAI 分值与其对应的HRM-PCR检测Tm值做相关性分析,如附图 2 所示。我们发现SLEDAI 分值与Tm值间具有高度相关性(p<0.001) (r=0.830)。SLEDAI值高时,Tm值往往也高,反之亦然。
因此,通过本发明的方法取得待测样本的HRM-PCR检测Tm值,能够很好地反映待测样本的Foxp3基因TSDR位点甲基化水平,从而结合临床提示SLE患者SLE的活动性。
SEQUENCE
LISTING
<110>
中南大学
<120>
Foxp3基因 TSDR位点甲基化检测方法
<130>
CSU20131-3005
<140>
201310091606.6
<141>
2013-03-21
<160>
2
<170>
PatentIn version 3.3
<210>
1
<211>
28
<212>
DNA
<213>
Homo sapiens
<400>
1
ttgggggtag
aggaggattt
agagggtc
28
<210>
2
<211>
25
<212>
DNA
<213>
Homo sapiens
<400>
2
caacacccat
atcaccccac
ctaaa
25
Claims (3)
1.Foxp3
基因TSDR位点甲基化检测方法,其特征在于依次包括下述步骤:
(1)从样本全血中提取基因组DNA;
(2)DNA亚硫酸氢盐处理;
(3)MS-HRM PCR;
(4)经HRM-PCR检测,读取样本Tm值,根据样本Tm值判断Foxp3基因TSDR甲基化水平。
2.根据权利要求1所述的检测方法,其特征在于:步骤(3)MS-HRM PCR反应时,Foxp3 基因 TSDR位点的PCR特异性扩增引物序列为:
F:5′-TTGGGGGTAGAGGAGGATTTAGAGGGTC-3′,
R:5′-CAACACCCATATCACCCCACCTAAA-3′ 。
3. 根据权利要求1或2所述的化检测方法,其特征在于:在步骤(4)中,样本Tm均值达到或超过79.00时,判断Foxp3基因TSDR位点甲基化水平高。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN2013100916066A CN103173552A (zh) | 2013-03-21 | 2013-03-21 | Foxp3基因 TSDR位点甲基化检测方法 |
Applications Claiming Priority (1)
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CN2013100916066A CN103173552A (zh) | 2013-03-21 | 2013-03-21 | Foxp3基因 TSDR位点甲基化检测方法 |
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Publication Number | Publication Date |
---|---|
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Family
ID=48633739
Family Applications (1)
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---|---|---|---|
CN2013100916066A Pending CN103173552A (zh) | 2013-03-21 | 2013-03-21 | Foxp3基因 TSDR位点甲基化检测方法 |
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---|---|
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---|---|---|---|---|
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CN111455045A (zh) * | 2020-06-18 | 2020-07-28 | 中南大学湘雅二医院 | 系统性红斑狼疮的诊断试剂及其平台和应用 |
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-
2013
- 2013-03-21 CN CN2013100916066A patent/CN103173552A/zh active Pending
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Title |
---|
关明: "DNA甲基化定量检测的新方法:甲基化敏感性高分辨率熔解分析", 《中华检验医学杂志》 * |
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Legal Events
Date | Code | Title | Description |
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C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C02 | Deemed withdrawal of patent application after publication (patent law 2001) | ||
WD01 | Invention patent application deemed withdrawn after publication |
Application publication date: 20130626 |