CN103063783A - 质粒dna定量检测用标准品的制备方法 - Google Patents
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Abstract
本发明首次建立了一种质粒DNA定量检测用标准品的制备方法,将质粒DNA经超声波处理成为长度为200bp以下的片段后,进行酶解,然后以核苷酸标准品和同位素标记的核苷酸作为内标,用高效液相色谱-质谱分离单核苷酸并准确定量。本发明提供了超声波处理质粒DNA的优选条件和高效液相色谱法分离四种核苷酸的条件。本方法精密度好,准确度高:采用核苷酸标准品,不依赖于DNA标准品,因此测量结果可溯源至核苷酸有证标准物质,从而保证测量结果的可靠和可溯源。由于用本方法可对质粒DNA进行绝对定量,可用于质粒DNA定量检测用标准品的制备。
Description
技术领域:
本发明属于生化分析领域,涉及一种可溯源的质粒DNA定量方法,具体涉及质粒DNA定量检测用标准品的制备方法。
背景技术
质粒DNA是游离于染色体外的小型(1-200kb)的共价、闭合、环状的双链DNA分子,能自主复制并能稳定遗传的遗传因子。
质粒DNA定量在分子生物学领域有广泛的需求,如进行克隆文库构建时的酶切和连接操作,以及对质粒DNA进行测序时,为了得到良好的后续实验结果,都需要对质粒DNA的浓度进行准确测定。
现有的测定DNA的技术虽然有些可以用于测定质粒DNA,但都有不足。有的需要的DNA样品量非常大,比如ICP-OES方法;有的成本较高,如digital PCR方法耗材太贵;有的准确度达不到要求,例如PicoGreen荧光染料法对核酸进行定量时具有以下两个缺点:一是目前市售的试剂盒中DNA标准品的含量值均为厂家提供的一个参考值,一般是通过紫外吸收(OD260)确定的,不同厂家不同批次数值都不同,也没有相关的不确定度信息和溯源性。第二,由于PicoGreen对不同分子大小的DNA结合效率会有差异,如果依据定量的DNA标准和所测定的DNA样本分子大小差异很大时,会导致对样本定量结果的偏差很大,而目前商业化的试剂盒中均只有一个分子大小的DNA标准,即Lambda噬菌体DNA标准(48.5K)。有报道称:以Lambda为标准,如果对分子量<23kb的DNA进行定量,测定结果会比真实结果偏低。因此,如果对质粒DNA采用PicoGreen法定量,由于质粒DNA标准品的缺乏,现有的商业化的试剂盒还无法满足要求。
因为目前没有含有准确量值的质粒DNA标准可用作PicoGreen法定量质粒的标准。由于该量值直接关系到试剂盒定量方法的准确度高低,因此需要要研制质粒DNA标准品。
而得到质粒DNA标准品必须选择准确度高,溯源途径清晰的DNA绝对定量方法。
利用液相色谱-同位素稀释质谱法(LC-IDMS)测定寡核苷酸的文献已有报道,是通过酶解寡核苷酸,测定水解后的单核苷酸浓度来测算核酸的浓度。然而,与寡核苷酸不同的是,单纯利用酶对基因组或质粒DNA进行完全水解非常困难。
本发明人曾经通过将超声波处理结合酶解实现对基因组DNA(Lambda DNA)的定量(参见Analytical bioanalytical chemistry,2012,402,2079-2088.)。采用超声波+酶解+LC/MS方法;超声波强度为7,使用了两种酶,实现了对大片段的基因组DNA定量测定。
但是,该文章公开的方法测定的对象是分子量较大的基因组DNA,并不是质粒DNA。因为基因组DNA分子量更大,而且结构有差异,不象质粒DNA那样的环状,所以此方法的超声波条件、酶解条件等并不适用于质粒DNA定量。
发明内容:
本发明的目的是提供一种质粒DNA定量检测用标准品的制备方法,该方法应准确度高,精密度好,相对扩展不确定度2.3%。
本发明首次建立了质粒DNA超声波-同位素稀释质谱定量方法,达到了上述发明目的。
本发明的技术方案是:
将质粒DNA进行前处理,然后以核苷酸标准品和同位素标记的核苷酸作为内标,用高效液相色谱-质谱分离单核苷酸并准确定量;
其特征为,所述前处理是将质粒DNA经超声波处理成为长度为200bp以下的片段后,进行酶解,条件为:
1)所述超声波处理条件如下:强度:5,时间:25min,上样量为100μL,DNA浓度:10-50ng/μL,工作循环:10%,爆破/循环:200,温度:4°C;
2)所述酶是磷酸二酯酶(SVP);
3)磷酸二酯酶的活性浓度为0.02-0.025U/μL,最佳活性浓度为0.022U/μL;
4)磷酸二酯酶水解质粒DNA时间为100min以上,最佳时间是120min。
酶解时用磷酸二酯酶工作缓冲液将质粒样品制成溶液,所述缓冲液的组成为:
Tris-HCl(pH=8.8)100mM,
NH4Ac 10mM,
Mg(Ac)2 2300mM
酶解质粒DNA样品体系见表1:
表1酶解质粒DNA样品体系组成
成分 | μL/每次反应 |
SVP | 5.0 |
SVP工作缓冲液 | 5.0 |
超声处理的质粒DNA | 50 |
同位素标记核苷酸LdNMP混合液 | 5 |
表中,同位素标记核苷酸(LdNMP)混合液的制备方法是,加一定量的13-C、15-N同位素标记的核苷酸标记物,使溶液中LdNMP含量与质粒分子样品中dNMP含量的比值接近1:1。
高效液相色谱分析中,色谱条件为:流动相A:20mM醋酸铵,pH=3.5;流动相B:乙腈。
具体的,本发明人进行了如下研究工作:
1.对超声波处理质粒DNA的条件进行了优化
采用声波聚焦样本处理仪,对处理强度(intensity)、上样量、处理时间等进行了优化。优化结果见图1,其中2和3泳道为处理时间15min,处理强度5,4和5泳道为处理时间15min,处理强度为4;6和7泳道为处理时间25min,处理强度为5。由图可知,处理时间25min,处理强度为5时,所得到的质粒DNA片段比较均匀,且小于200bp。因此最终确定的处理条件为强度:5;时间25min;上样量100μL;Duty Cycle:10%,Cycle per Burst:200,温度:4℃。DNA浓度范围:10-50ng/μl。
2.对磷酸二酯酶酶解质粒样品的条件及体系进行了优化
1)对磷酸二酯酶的浓度进行优化
将磷酸二酯酶稀释成活性单位分别为0.010unit/μL、0.014unit/μL、0.018unit/μL、0.022unit/μL、0.026unit/μL以及0.030unit/μL共6个水平,每个水平3次平行的SVP稀释液。向50μL破碎后的质粒DNA中分别加入5μL SVP溶液及5μL SVP缓冲液。37℃进行酶解3h,然后85℃变性20min。4℃保存。利用4种dNMP标准物质做外标的高效液相色谱(HPLC)对酶解样品进行分析(色谱条件见下面第四点),确定单核苷酸的质量浓度,最大单核苷酸量对应的酶浓度即为酶解反应的最佳活性浓度,如图2所示,图中横坐标为SVP酶的活性浓度,即平均每微升的SVP溶液具有的酶活性单位数;纵坐标为4种单核苷酸相对于最大测定含量(设其值为1)时的相对百分含量。可见,在SVP酶的活性单位浓度在0.02-0.025U/μL之间时,4种单核苷酸的浓度分别达到最高。而达到0.025U/μL时4种单核苷酸的浓度反而降低,表明SVP酶过量对水解反应产生了抑制。因此,实验过程中最佳的解酶SVP酶的活性浓度确定为0.022U/μL。
2)磷酸二酯酶水解质粒DNA时间优化
酶解时间分别为30、60、120、240及360min时,酶解反应依照最大化单核苷酸浓度进行优化的结果见图3。图中横坐标为SVP酶的酶解时间;纵坐标为4种单核苷酸相对于最大测定含量(设其值为1)时的相对百分含量。当酶解时间从30min到60min时,4种单核苷酸的浓度呈上升趋势。当酶解时间为120min时,4中单核苷酸的浓度达到最高,此后的360min之内变化很小,因此可以认为在120min时达到了完全水解,所以最佳的酶解时间确定为120min。
3.高效液相色谱(HPLC)分离4种单核苷酸条件优化
通过调整缓冲液的pH和盐浓度,对四种单核苷酸得到最大程度的分离。色谱条件为:流动相A:20mM醋酸铵,pH=3.5;流动相B:乙腈。进样量10μL,流速0.2mL/min。检测器:DAD,检测波长254nm。洗脱梯度见表2,分离结果见图2,其中横坐标为时间,纵坐标为DAD检测器的响应信号强度(毫吸光度mAu)。由图可知,4种单核苷酸标准物质的保留时间(按出峰先后顺序)分别为dCMP3.2min、dTMP4.7min、dGMP5.3min、dAMP6.8min。将酶解后的样品于12000g离心2min,取上清液转入液相小瓶,上样进行HPLC分析。
表2HPLC洗脱梯度
4.超声波处理结合酶处理对质粒DNA进行完全水解
超声波处理后的质粒DNA进行磷酸二酯酶处理,酶解条件按照上述优化的条件进行,同时将不经超声波处理的质粒DNA直接进行酶解。采用高效液相色谱对水解后的产物进行分离分析,见图3和4。图3为超声波处理后的质粒DNA样品进行酶解的产物分析,图3与图2相比,除了有和图2中单核苷酸标准物质对应的核苷酸,并没有其他杂峰,说明经过超声破碎以及SVP酶解处理后,质粒DNA完全消化成了4种单核苷酸,酶解完全。
图4为未经超声波处理的质粒DNA直接进行酶解的产物分析,没有经过超声处理而直接使用SVP酶解的DNA中,只发现有dCMP的峰,且强度较弱,说明不经过超声处理,仅有部分DNA被水解。因此可见,经过超声处理的酶解质粒DNA能够完全消化成为4种单核苷酸;未经超声处理的酶解质粒DNA没有得到有效的分解,不能用于后续定量。超声处理有助于SVP酶对质粒分子DNA进行完全酶解。
5.三重串联四级杆质谱定量4种单核苷酸条件
为获得最佳的质谱条件以获得更准确地结果,进行了以下实验:
分别使用4种单核苷酸的标准物质(中国计量科学研究院)及其对应的C、N标记同位素(Sigma Aldrich.Inc.)对三重串联四级杆质谱(QqQ)条件进行优化。根据HPLC的酸性环境,采用正离子模式,电喷雾离子源(ESI)条件见表3。
表3QqQ质谱ESI源参数
对于4种单核苷酸及其对应同位素的定量检测,QqQ需要优化的主要参数为碎裂电压(Fragmentor)以及碰撞能量(Collision Energy,CE),确定各种单核苷酸及其同位素的母离子与子离子的质荷比(m/z),进而利用多重反应监测(MRM)模式下对每种单核苷酸及其同位素在碰撞前母离子、以及碰撞碎裂后特定大小的碎裂子离子的精确捕捉,确定不同单核苷酸及其同位素的精确含量,进而实现对目标质粒分子DNA的定量。
需要确定在最优条件下的母离子m/z及子离子的m/z,优化碎裂电压(Fragmentor)及碰撞能量(CE)。全扫描下的总离子流色谱图见图5,说明4种单核苷酸得到了有效的分离。
1)母离子的确定
分别使用dCMP、dTMP、dGMP、dAMP4种单核苷酸的纯品标准物质及其纯品同位素,在MS Scan模式下对全部m/z进行扫描,并依照文献,从中选定各种核苷酸的母离子。结果见表4,图7为选定的各单核苷酸及其同位素经优化的选择离子流色谱图。
2)Fragmentor值的优化
Fragmentor为施加到毛细管出口端的输入电压,作用是使母离子有效的传输到碰撞池。因此为了使dCMP、dTMP、dGMP、dAMP4种单核苷酸的传输效率最大,对Fragmentor进行优化,在SIM模式下,选定各单核苷酸的m/z,通过不断改变Fragmentor值,以求响应最大,优化结果见图9和表4。图中Y轴以每种单核苷酸最大强度响应信号为1,其他响应信号为相对于最大响应信号的百分比;X轴为主要优化的Fragmentor参数值。
3)子离子的选择
在子离子扫描模式下,输入确定好的母离子、Fragmentor值,通过施加碰撞能量CE,将单核苷酸打碎,观察破碎离子,不断改变CE值,判断破碎离子的稳定程度与相应强度,选择相应好、稳定高的碎片离子为子离子,过程见图10、11、12、13。结果见表5。
dAMP在改变CE打碎母离子的过程发现,主要存在两种较为稳定的碎片离子。如图10,m/z为81碎片离子峰较低,响应较弱;m/z为136的碎片离子峰较高,响应强,故选择后者为子离子。
dCMP在改变CE打碎母离子的过程发现,仅存在一种较为稳定的碎片离子。如图11,m/z为112的碎片离子峰较高,响应强,即为选定子离子。
dGMP在改变CE打碎母离子的过程发现,主要存在两种较为稳定的碎片离子。如图12,m/z为81碎片离子峰较低,响应较弱;m/z为152的碎片离子峰较高,响应强,故选择后者为子离子。
dTMP在改变CE打碎母离子的过程发现,碎片离子强度较弱,不易明显捕获,依照文献[39],选定m/z为81的碎片离子,得到较为稳定的碎片,如图13,故选为子离子。
同位素的优化方法同单核苷酸,结果见表4。
4)CE值的优化
CE为碰撞能量,能量过小则不能形成足够的碎片离子,子离子响应差,难以满足定量要求;能量过大则碎片离子进一步发生破碎,破坏了对应子离子的完整,也不能准确定量。因此,在MRM模式下输入选定的母离子、子离子、F绕过,Fragmentor值,通过不断改变CE值,以求得到最佳响应,见图14。图中Y轴以每种单核苷酸最大强度响应信号为1,其他响应信号为相对于最大响应信号的百分比;X轴为主要优化的CE参数值。最终质谱条件见表4:
表44种单核苷酸及其同位素的质谱MRM定量反应条件
6.IDMS方法线性及灵敏度
根据质粒DNA浓度,选择dNMP工作标准溶液浓度在1-100μg/g的范围内考察测定峰面积比与含量比的线性关系。同时,按照仪器响应的信噪比(S/N)=3计算检出限,S/N=10计算定量限,结果见表5。
表5IDMS方法的线性及灵敏度
可见,在1-100μg/g的工作区间内,4种单核苷酸与其标记物的质量比与峰面积比呈良好的线性关系,其量值范围能够满足定量需求。
7.IDMS方法回收率测定
利用测得加标样品的dNMP浓度减去对照组的dNMP浓度,即为实际测量标准溶液的浓度,与理论溶液浓度相比较,即可得到方法回收率,结果见表6。
表64种单核苷酸的加标回收率
实验表明,采用不同的单核苷酸测定时有不同的回收率,采用dCMP测定的回收率为97.52%-101.75%,采用dTMP测定的回收率为89.54%-95.23%,采用dGMP测定的回收率为95.25%-100.23%,采用dAMP测定的回收率为97.75%-100.0%。
8.同位素稀释法测定质粒DNA样品的质量浓度
1)质粒DNA中4种核苷酸的质量浓度计算
将经前处理的待测质粒样品分为3组,每组3个平行待测样,进行IDMS测定。采用公式(1)计算样品中4种核苷酸的浓度:
其中,wX:质粒样品中选定的dNMP的含量(μg/g);
wz:标准溶液中dNMP的质量分数;
RB:样品中的dNMP与相应标记的LdNMP峰面积比;
RBC’:标准溶液中的dNMP与相应标记的LdNMP峰面积比;
mY:样品中加入的LdNMP的量;
mYc:标准溶液中加入LdNMP的质量(g);
mx:样品的质量(g);
mz:标准溶液中加入dNMP的质量(g);
P:dNMP标准物质的纯度;
D:水解效率。
2)质粒分子的DNA浓度计算
根据(1)计算得到了样品中的4种单核苷酸的质量浓度信息,根据质粒序列信息及已得到的dNMP质量浓度,可以换算为质粒DNA的质量浓度,计算公式如下:
其中,wx:质粒分子DNA的质量浓度(μg/g);
Mplasmid:质粒分子的相对分子质量;
MdNMP:选取的dNMP的相对分子质量;
A:对应dNMP在质粒分子中的个数;
d:酶解等实验操作引起的稀释因子。
本方法的创新点和优点是:
1、本方法首次对质粒DNA进行精确定量;
2、开创了超声波-酶解-同位素稀释质谱法进行质粒DNA定量的方法,找到了合适的超声波和酶解处理的条件;
3、方法精密度好:相对标准偏差为低于2%;
4、方法准确度高:采用核苷酸标准品对DNA进行定量,不依赖于DNA标准品,因此测量结果可溯源至核苷酸有证标准物质,从而保证测量结果的可靠和可溯源。
5、由于用本方法可对质粒DNA进行绝对定量,从而可用于质粒DNA定量检测用标准品的制备;
6、比现有技术方法需要样品量较少、成本较低。
附图说明:
图1超声波处理后的质粒DNA条件优化图;
图2磷酸二酯酶水解浓度优化图;
图3磷酸二酯酶水解时间优化图;
图44种核苷酸标准品高效液相色谱分离图;
图5经超声波处理的质粒DNA经磷酸二酯酶水解产物色谱分离图
图6未经超声波处理的质粒DNA经磷酸二酯酶水解产物色谱分离图
图7质粒DNA超声水解后质谱总离子流色谱图
图8四种核苷酸和相应的同位素标记物选择离子流色谱图,其中(I)dCMP,(II)LdCMP,(III)dTMP,(IV)LdTMP,(V)dGMP,(VI)LdGMP,(VII)dAMP,(VIII)LdAMP;
图9三重四级杆质谱Fragmentor优化图
图10dAMP选定不同碎片离子为子离子时的响应
图11dCMP选定不同碎片离子为子离子时的响应
图12dGMP选定不同碎片离子为子离子时的响应
图13dTMP选定不同碎片离子为子离子时的响应
图14三重四级杆质谱CE优化图
图15超声波处理质粒pNK603结果图
图16超声波同位素稀释质谱法与数字PCR测定pNK603结果比较
图17超声波处理质粒pBAZS结果图
图18超声波同位素稀释质谱法与数字PCR pBAZS结果比较
具体实施方式
实施例1超声波-同位素稀释质谱对转基因质粒pNK603的定量
一材料与方法:
1.转基因质粒pNK603,大小3307bp,由中国计量科学研究院研制,通过在载体pEASY-T3上连接2个外源基因片断(zSSIIb和NK603)得到,具体的定性扩展引物序列见表7。
表7引物序列
2.超声波处理
采用声波聚焦超声波破碎仪(Covaris S2),处理条件为强度:5;时间25min;上样量100μL;Duty Cycle:10%,Cycle per Burst:200,温度:4℃。DNA浓度范围:30-40ng/μl。
3.dNMP标准溶液的配制
配制的具体过程同上所述,所不同的是需要根据质粒pNK603样品完全水解dNMP的大致浓度(由紫外分光光度法及序列分子量信息得到)进行标准品溶液的配制。取dNMP标准物质储备液及LdNMP标记物储备液,分别稀释至所需浓度,将2种溶液按照浓度比约1:1均匀混合,配制工作标准溶液,且该加标工作标准溶液的浓度应尽量与待测质粒中dNMP的浓度相近。
4.酶解质粒样品溶液的配制
将经过超声及酶解处理的质粒DNA样品,待其平衡0.5h,称取50μL样品,向样品中添加与标准溶液中加入的等量的C、N同位素的LdAMP标记物,使质粒分子样品中dNMP含量与溶液中LdAMP标记物含量的比值接近1:1。
5.HPLC分离4种单核苷酸
色谱条件如上所述,具体的洗脱梯度见表2。将酶解后的样品于12000g离心2min,取上清液转入液相小瓶,上样进行HPLC分析。
6.HPLC-MS定量
质谱条件扫描的参数见表3和4。将质谱测得的峰面积和标准品以及加入同位素的量根据公式(1)进行计算,得到的四种核苷酸的浓度,然后在根据质粒DNA的序列信息和公式(2)计算得到质粒DNA的浓度。质粒分子信息见表8。
表8pNK603质粒分子单链DNA信息
7.dPCR定量质粒pNK603
1)DNA模板的制备
将质粒DNA由紫外法测定的浓度根据公式从ng/μl换算成copy/μl,然后将DNA通过天平称量用TE0.1稀释至1200copies/μl备用。
2)dPCR体系及扩增条件
dPCR扩增所用引物和探针见表7,扩增体系和扩增条件见表9和表10。
表9NK603转化体特异性及玉米内标准基因的荧光定量PCR扩增体系
表10dPCR扩增条件
3)数据处理
通过空压机压至芯片将配制好的反应体系压到芯片内,然后运行PCR反应程序,最后通过软件分析得到最终结果。根据得到的阳性分子个数,利用公式(3)计算质粒DNA浓度。
二、实验结果
1.超声波处理质粒DNA的结果
pNK603质粒DNA经过超声波处理(9个重复)后的结果见图15。由图可见,经过超声波处理后,所有的质粒DNA都破碎成了200bp以下的小片段,有利于下一步的酶解。
2.酶解和HPLC分离
标准品的HPLC分离图见图4,经过超声波处理后酶解的样品色谱图见图5,除了四种核苷酸的色谱峰外,没有其它峰出现,所以可证明质粒DNA完全水解。
3.核苷酸浓度测定
根据公式(1)和测定吸收峰的峰面积,计算得到的核苷酸浓度见表11。由表中数据可知,该方法对4种核苷酸的测定的相对标准偏差<2%.
表11四种核苷酸的浓度及不确定度
结果表明dCMP、dTMP、dGMP和dAMP四种核苷酸的浓度分别为9.20、9.16、10.50和9.58μg/g,相对标准偏差(RSD)为1.54%、1.74%、1.04%、0.94%。其中最低相对标准偏差为dAMP。
4.质粒DNA浓度计算
根据质粒DNA分子量和上面计算的核苷酸浓度计算DNA的含量,见公式(2),结果见表12。由四种核苷酸的浓度根据公司(2)分别计算得到的质粒DNA浓度分别为36.80μg/g、39.73μg/g、37.18μg/g和40.429μg/g。四种核苷酸计算的平均值及扩展不确定度为(38.53±0.89)μg/g,与将四种核苷酸加和计算的结果((38.44±0.88)μg/g)一致性很好。因此表明该方法测定的DNA浓度既可以根据分子量信息和核酸序列信息通过公式(2)计算得出,也可根据四种核苷酸浓度进行加和得出。
表12.根据核苷酸浓度计算的质粒DNA浓度
5.dPCR测定质粒DNA浓度
对样品同时进行三个平行梯度稀释,每个梯度进行4个重复,测定结果如下表。三个重复结果在不确定度范围内一致性较好。
表13dPCR测定结果及不确定度
6.两种方法测定结果比较
为了验证同位素稀释质谱法测定的DNA结果是否准确,对同一样品进行了数字PCR方法测定。测定结果比较见图16,其中圆点表示超声波-同位素稀释质谱法结果,三角形表示数字PCR结果。两种方法测定结果一致性在其不确定度范围内很好,但测量同位素稀释质谱法的精密度要优于数字PCR方法,表明建立的超声波同位素稀释质谱法可用于基因组DNA等大片段的核酸的定量测定。
实施例2超声波-同位素稀释质谱对质粒pBAZS的定量
一材料与方法:
1.质粒pBAZS,大小5206bp,由中国计量科学研究院研制,通过在载体pEASY-T3上连接4个外源基因片断(扩增所用引物见下表)得到;具体扩增引物序列见表14。
表14引物序列
2.超声波处理
采用声波聚焦超声波破碎仪,处理条件为强度:5;Duty cycle:20%;cycle/burst:200;时间25min;上样量0.1mL;DNA浓度范围:30ng/μl左右。
3.dNMP标准溶液的配制
将dNMP标准物质按照使用说明置于烘箱烘干,dAMP、dCMP、dGMP于80℃烘4h,dTMP于40℃烘4h。精确称量一定质量的dAMP、dTMP、dCMP、dGMP标准物质纯品,溶于一定体积的超纯水,配制成浓度为1mg/g的dNMP标准储备溶液(浓度计算时应考虑到标准物质的纯度)。同时精确称量一定质量的C、N标记的LdAMP、LdTMP、LdCMP、LdGMP同位素纯品,溶于一定体积的超纯水,配制成1mg/g的LdNMP标记物储备溶液(浓度计算时应考虑到同位素的纯度)。
根据质粒pBAZS样品完全水解dNMP的大致浓度(由紫外分光光度法及序列分子量信息得到),取dNMP标准物质储备液及LdNMP标记物储备液,分别稀释至所需浓度,将2种溶液按照浓度比约1:1均匀混合,配制工作标准溶液,且该加标工作标准溶液的浓度应尽量与待测质粒中dNMP的浓度相近。
4.酶解质粒样品溶液的配制
将经过超声及酶解处理的质粒DNA样品,待其平衡0.5h,秤取50μL样品,向样品中添加与标准溶液中加入的等量的C、N同位素的LdAMP标记物,使质粒分子样品中dNMP含量与溶液中LdAMP标记物含量的比值接近1:1。具体的酶解体系的配置见表1。
5.高效液相色谱(HPLC)分离水解产物4种单核苷酸
色谱条件如上所述,具体的洗脱梯度见表2。将酶解后的样品于12000g离心2min,取上清液转入液相小瓶,上样进行HPLC分析。
6.HPLC-MS定量
质谱条件扫描的参数见表3和4。将质谱测得的峰面积和标准品以及加入同位素的量根据公式(1)进行计算,得到的四种核苷酸的浓度,然后在根据质粒DNA的序列信息和公式(2)计算得到质粒DNA的浓度。质粒分子信息见表15。
表15pBAZS质粒分子单链DNA信息
7.数字PCR定量pBAZS质粒DNA
1)DNA模板的制备
将质粒DNA由紫外法测定的浓度根据公式从ng/μl换算成copy/μl,然后将DNA通过天平称量用TE0.1稀释至1200copies/μl备用。
2)dPCR体系及扩增条件
dPCR扩增体系见表16,扩增条件同上述pNK603的条件(见表10)。
表16dPCR扩增体系
3)数据分析
通过空压机压至芯片将配制好的反应体系压到芯片内,然后运行PCR反应程序,最后通过软件分析得到最终结果。根据得到的阳性分子个数,利用公式(3)计算质粒DNA浓度。
二、实验结果
1.超声波处理质粒DNA的结果
pBAZS质粒DNA经过超声波处理(3个重复)后的结果见图17。由图可见,经过超声波处理后,所有的质粒DNA都破碎成了200bp以下的小片段,有利于下一步的酶解。
2.酶解和HPLC分离
样品的水解产物与标准品的色谱峰相比,除了四种核苷酸的色谱峰外,没有其它峰出现,所以可证明质粒DNA完全水解(图略)。
3.核苷酸浓度测定
根据公式(1)和测定吸收峰的峰面积,计算得到的核苷酸浓度见表17。由表中数据可知,该方法对4种核苷酸的测定的相对标准偏差<2%.
表17.四种核苷酸的浓度及不确定度
结果表明dCMP、dTMP、dGMP和dAMP四种核苷酸的浓度分别为7.58、7.05、8.32和7.33μg/g,相对标准偏差(RSD)为0.59%、1.13%、1.59%、1.47%。其中最低相对标准偏差为dCMP。这与其在质谱上的信号响应正相关。
4.质粒DNA浓度计算
根据质粒DNA分子量和上面计算的核苷酸浓度计算DNA的含量,见公式(2),结果见表18。由四种核苷酸的浓度根据公司(2)分别计算得到的质粒DNA浓度分别为30.30μg/g、30.59μg/g、29.43μg/g和30.93μg/g。四种核苷酸计算的平均值为30.31μg/g,与将四种核苷酸加和计算的结果(30.27μg/g)一致性很好。因此表明该方法测定的DNA浓度既可以根据分子量信息和核酸序列信息通过公式(2)计算得出,也可根据四种核苷酸浓度进行加和得出。可见采用同位素稀释质谱法测定核酸浓度时,序列信息不一定要知道,这也是该方法的优点之一。
表18.根据核苷酸浓度计算的质粒DNA浓度
5.dPCR测定质粒DNA浓度
对样品同时进行三个平行梯度稀释,每个梯度进行4个重复,测定结果如下表。三个重复结果在不确定度范围内一致性较好。
表19dPCR测定结果及不确定度
6.两种方法测定结果比较
为了验证同位素稀释质谱法测定的DNA结果是否准确,对同一样品进行了数字PCR方法测定。测定结果比较见图18,其中圆点表示超声波-同位素稀释质谱法结果,三角形表示数字PCR结果。两种方法测定结果一致性在其不确定度范围内很好,但测量同位素稀释质谱法的精密度要优于数字PCR方法,表明建立的超声波同位素稀释质谱法可用于基因组DNA等大片段的核酸的定量测定。
Claims (8)
1.一种质粒DNA定量检测用标准品的制备方法,将质粒DNA进行前处理,然后以核苷酸标准品和同位素标记的核苷酸作为内标,用高效液相色谱-质谱法分离单核苷酸并准确定量;其特征为,所述前处理是将质粒DNA经超声波处理成为长度为200bp以下的片段,然后进行酶解。
2.权利要求1所述的方法,所述前处理条件为:
1)超声波处理:采用声波聚焦超声波破碎仪处理,强度:5,时间:25min,上样量为100μL,DNA浓度:10-50ng/μL,工作循环:10%,爆破/循环:200,温度:4°C;
2)所述酶是磷酸二酯酶;活性浓度为0.02-0.025U/μL;
3)磷酸二酯酶水解质粒DNA时间为100min以上。
3.权利要求1所述的方法,酶解时使用磷酸二酯酶工作缓冲液,所述缓冲液的组成为:Tris-HCl100mM,NH4Ac10mM,Mg(Ac)2300mM,其中Tris-HCl的pH为8.8。
4.权利要求1所述的方法,所述酶解质粒DNA样品体系组成为:磷酸二酯酶5.0μL,磷酸二酯酶工作缓冲液,超声处理的质粒DNA50μL,同位素标记核苷酸LdNMP混合液5.0μL。
5.权利要求4所述的方法,所述同位素标记核苷酸混合液的制备方法是,加入13-C、15-N同位素的核苷酸,使溶液中同位素标记核苷酸含量与使质粒分子样品中dNMP含量的比值接近1:1。
6.权利要求1所述的方法,所述高效液相色谱分析中,色谱条件为:流动相A:20mM醋酸铵,pH=3.5;流动相B:乙腈。
7.权利要求1~6中任一所述的方法,磷酸二酯酶活性浓度为0.022U/μL。
8.权利要求1~6中任一所述的方法,磷酸二酯酶水解质粒DNA时间为120min。
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