CN103060471A - 南美白对虾桃拉病毒和白斑病毒多重pcr检测方法 - Google Patents

南美白对虾桃拉病毒和白斑病毒多重pcr检测方法 Download PDF

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余招锋
倪坚
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Abstract

本发明公开了一种南美白对虾桃拉病毒和白斑病毒多重PCR检测方法,属于微生物检测方法技术领域。包括如下步骤:(1)样品采集;(2)TSV的DNA和WSSV的RNA的提取,以及WSSV的逆转录cRNA的合成;(3)TSV引物和WSSV引物的设计与合成;(4)将步骤(2)的核酸和步骤(3)的引物加入PCR反应体系,建立PCR反应体系,并进行多重PCR试验;(5)将步骤(4)的扩增产物进行特异性和敏感性测试。本发明南美白对虾桃拉病毒和白斑病毒多重PCR检测方法可用于病毒携带的无临床症状的对虾检测,具有特异性高、灵敏度高等优点。

Description

南美白对虾桃拉病毒和白斑病毒多重PCR检测方法
技术领域
本发明涉及一种南美白对虾桃拉病毒和白斑病毒多重PCR检测方法,属于微生物检测方法技术领域。
背景技术
我国沿海地区是南美白对虾养殖的主要产业区,在人工养殖环境中,对虾可同时感染几个病原体或病毒。优质的南美白对虾亲虾及虾苗主要从国外引进,但也有可能将潜在的病毒带入境内。桃拉综合症病毒(Taura syndrome virus, TSV)和白斑症(White spot syndrome virus, WSSV)一直是对虾养殖中的主要病毒原。近年来,随着对虾虾苗和水产品国际贸易增加,这两种病毒的混合交叉感染较为普遍,因此对该病毒的进行检测与监控具有十分重要的意义。
对虾病病毒检测的方法包括组织学,原位杂交法,以及生物活性法,这些方法较为费时费工;而且往往只能适用于发生急性感染的虾只,而病毒携带的对虾往往不出现应有的临床症状和病理反应,因此使用上述方法存在一定的局限性,加大了检测的难度。RT-PCR技术是一种简易有效的检测方法,但是传统的PCR方法一次只能检测一个样本。多重PCR是一种特殊的PCR方法,能在一个反应体系中加入多对引物,同时扩增多个目的片段。但是多重PCR检测方法受多种因素影响,如引物的特异性、模板的质量以及不同病毒样本PCR的扩增条件均能影响检测的灵敏度和准确性。
有基于此,做出本发明。
发明内容
本发明的目的是提供一种特异性高、灵敏度高的高效南美白对虾TSV和WSSV多重PCR检测方法。
本发明采取的技术方案如下:
南美白对虾TSV和WSSV多重PCR检测方法,包括如下步骤:
(1)样品采集;
(2)TSV的DNA和WSSV的RNA的提取,以及WSSV的逆转录cRNA的合成;
(3)TSV引物和WSSV引物的设计与合成;
(4)将步骤(2)的核酸和步骤(3)的引物加入PCR反应体系,建立PCR反应体系,并进行多重PCR试验;
(5)将步骤(4)的扩增产物进行特异性和敏感性测试。
本发明的进一步设置如下:
步骤(1)中样品要在-80℃下进行预处理。
步骤(2)中,TSV的RNA的提取:取疑似TSV发病对虾内脏组织约0.1g,加入1ml Trizol, 在4℃下12000g离心10min,得上清液;将上清液在15~30℃孵育5min; 加入0.2mL氯仿,振荡、孵育; 在4℃下12000g离心15min;将离心后的上层无色水相加入0.5mL异丙醇,震荡,孵育10min; 在4℃下12000g离心10min,去上清,加入至少1mL75%乙醇,涡旋振荡; 在4℃下7500g离心5min,室温晾干RNA,加入无RNase的水溶解RNA,55一60’C孵育10min, 溶解,备用。
步骤(2)中,TSV的cDNA的合成:在PCR反应管中加入5μL的上述桃拉病毒RNA模板,加入随机引物10~20ng, 70℃孵育5min后,依次加入4μL 5×M-MLV Buffer,RNA酶抑制剂和dNTP各1μL,M-MLV酶1μL,最后双蒸水补足20μL;42℃反应1h,然后70℃灭活M-MLV酶10min,立即冰浴10min,得到cDNA,保存于-80℃备用。
步骤(2)中,WSSV的DNA的提取:取疑似WSSV发病对虾内脏组织共约0.1g,加入200μL裂解液(0.4M NaCl,10mM Tris-HCl, 2mM EDTA, PH 8.0) 研磨均匀后补加100μL裂解液,6000g 离心去杂质及细胞碎片,取上清液;在上清液中加入30μL 20%SDS和3μL 20mg/mL蛋白酶K混合均匀,在55℃温度下培育1~2h后,加入苯酚/氯仿/异戊醇(质量比为25:24:1)混合液,去除残余蛋白,离心后取上清;加入与苯酚/氯仿/异戊醇混合液等体积的异丙醇,并混匀,-20℃下沉淀30min,10000g在4℃离心10min,加75%乙醇沉淀;得到的DNA溶于20μL双蒸水中,并于-20℃备用。
步骤(3)中,TSV RT-PCR检测用的引物:5'-GCTTGCGTGGTGGGACTTA-3',5'-TCAATGAGAGCTTGGTCCTGG-3';WSSV PCR检测用的引物:5’-TCACAGGCGTATTGTCTCTCCT -3’,5’ - CACGAG TCTACCGTCACAACATC -3’。
步骤(4)中,1μL的TSV的RNA和WSSV的DNA分别加入PCR反应体系12.5μl(2×Taq PCR MasterMix,北京艾德莱生物科技有限公司),再分别加入TSV和WSSV引物正向及反向各0.5μl,加重蒸馏水至终体积25μL;扩增条件为:94℃1 min,1个循环;51℃min,72℃1min,94℃ 30S,35个循环;51℃:  1 min ,72℃ 5 min,1个循环。
步骤(4)中,桃拉病毒1μL逆转录cDNA模板和白斑病毒1μLDNA模板,加入PCR反应体系25μl(2×Taq PCR MasterMix,北京艾德莱生物科技有限公司),加入桃拉病毒和白斑病毒引物正向及反向各0.5μL,加重蒸馏水至终体积50μL。另外设立阳性对照和的阴性对照。将反应管置于PCR仪上,根据1.4研究结果,按反应体系⑵进行扩增,具体如下94℃1 min,1个循环;51℃min,72℃1min,94℃ 30S,35个循环;51℃:1 min ,72℃ 5 min,1个循环。
步骤(5)中,特异性和敏感性检测:TSV和WSSV核酸模板的样品与对虾其他病原核酸样品,分别加入到PCR反应体系中进行扩增,测其特异性;将抽提的WSSV的DNA和TSV的RNA作为模板分别测其含量后,将核酸作l0倍系列稀释,并对上述模板进行多重PCR扩增以检测其敏感性;将PCR扩增产物经1.5%琼脂糖凝胶电泳富集,回收目的片段,将纯化后的PCR产物进行测序。序列分析用DNASTAR 4.2(DNASTAR Inc.)和 Clustal X 1.83软件,分析结果经GeneDoc 2.6.000编辑。
本发明技术方案依据多重PCR设计原则,采用GenBank公布的WSSV和TSV全基因组序列,设计了两对特异引物分别扩增TSV和WSSV病毒。该两对引物扩增片段较小,PCR扩增片段分别为210bp(TSV)和300bp(WSSV),且大小差异不大,同时又能在凝胶电泳中区分出来。事实上实验结果也符合引物设计的原则,在合适的反应条件下获得了较为理想的多重PCR扩增结果。即同时扩增出两个特异的WSSV和TSV条带,且能明显的区分。
除引物设计外,筛选出适宜的PCR条件以满足两个片段的同时扩增也是多重PCR成功的关键因素。其中以94℃1 min,1个循环;51℃1min,72℃1min,94℃ 30S,35个循环;51℃: 1 min ,72℃ 5 min,1个循环扩增条件最好,在该体系下各条带清晰,条带密集,且所用时间较短。
TSV和WSSV核酸模板与对虾其他病原核酸样品进行扩增反应,结果含有WSSV和TSV核酸的样品能扩增出的相应特异条带,而非WSSV和TSV核酸的样品组未见任何条带。条带测序结果显示与TSV和WSSV的同源性为100%。这些研究结果表明该多重PCR具有良好的特异性。敏感性实验表明,该多重PCR最低能同时检测到5 pg的WSSV DNA和0.5pg的TSV RNA模板,检测出如此微量的病原DNA/RNA,说明该方法可用于病毒携带的无临床症状的对虾检测。
附图说明
图1为本发明实施例中RT-PCR扩增TSV条带;
图2为本发明实施例中PCR扩增WSSV条带;
图3为本发明实施例中TSV PCR产物的测序结果;
图4为本发明实施例中WSSV PCR产物的测序结果;
图5为本发明实施例中TSV和WSSV的多重PCR检测。
具体实施方式
A. 多重PCR检测过程:
(1)样品采集
疑似TSV和WSSV感染对虾在绍兴地区沿海岸线共5个对虾养殖基地进行对虾样品收集,对虾采集时在一个地点的不同池塘里捕捞对虾,然后随机抽取一定数量的样品,运至绍兴文理学院冻于-80℃冰箱中。
(2)核酸提取
① 白斑病毒DNA提取 取疑似WSSV发病对虾内脏组织共约0.1g,加入200μL裂解液(0.4M NaCl,10mM Tris-HCl, 2Mm EDTA, PH 8.0) 研磨均匀后补加100μL,6000g 离心去杂质及细胞碎片,取上清液;在上清液中加入30μL 20%SDS和3μL 20mg/mL蛋白酶K混合均匀,在55℃温育1~2h;在反应液中加入苯酚:氯仿:异戊醇(25:24:1)去除残余蛋白,离心后取上清;加入等体积异丙醇混匀,-20℃沉淀30min,10000g在4℃离心10min,加75%乙醇沉淀;得到的DNA溶于20μL双蒸水中于,-20℃备用。
② 桃拉病毒cDNA的合成:按Promega公司试剂盒操作方法,在PCR反应管中加入5μL的桃拉病毒RNA模板,加入随机引物10~20ng, 70℃孵育5min后依次加入4μL 5×M-MLV Buffer, RNA酶抑制剂和dNTP各1μL,M-MLV酶1μL,最后双蒸水补足20μL。42℃反应1h,然后70℃10min灭活M-MLV酶,立即冰浴10min。得到cDNA保存于-80℃。
③ 桃拉病毒RNA提取:按Invitrogen公司Trizon试剂盒操作方法,取疑似TSV发病对虾内脏组织约0.1g,加入1ml Trizol, 4℃12000g离心10min分;将上清液转移至离心管中,15~30℃孵育5min; 加入0.2mL氯仿,振荡、孵育; 4℃12000g离心15min。将上层无色的水相转移到离心管中;加入0.5mL异丙醇,震荡,孵育10min; 4℃12000g离心10min;去上清,加入至少1mL75%乙醇,涡旋振荡; 4℃7500g离心5min; 室温晾干RNA,加入无RNase的水溶解RNA,55一60’C孵育10min, 溶解。
(3)引物的设计和合成
根据GenBank公布的WSSV和TSV全基因组序列,分别设计TSV和WSSV的2个特异性引物,引物由上海生工合成。WSSV PCR检测用的引物:5’-TCACAGGCGTATTGTCTCTCCT -3’,5’ - CACGAG TCTACCGTCACAACATC -3’;TSV RT-PCR检测用的引物:5'-GCTTGCGTGGTGGGACTTA-3' ,5'-TCAATGAGAGCTTGGTCCTGG-3'。
(4)PCR反应体系的建立和优化
1μLTSV和WSSV模板分别加入PCR反应体系12.5μl(2×Taq PCR MasterMix,北京艾德莱生物科技有限公司),再分别加入TSV和WSSV引物正向及反向各0.5μl,加重蒸馏水至终体积25μL。为筛选扩增条件,设计四种不同的反应体系:
1:95℃2min,94℃30S,68℃ 1 min,35个循环;68℃ 2 min,1个循环;
2:94℃1 min,1个循环;51℃1min,72℃1min,94℃ 30S,35个循环;51℃:  1 min ,72℃ 5 min,1个循环;
3:94℃4min,50℃1min,72℃ 1 min,35个循环;72℃ 5 min,1个循环;
4:94℃5 min,1个循环;94℃45S,55℃45S,72℃ 1 min,35个循环;72℃10min,1个循环。
(5)TSV和WSSV多重PCR实验
桃拉病毒1μL逆转录cDNA模板和白斑病毒1μLDNA模板,加入PCR反应体系25μl(2×Taq PCR MasterMix,北京艾德莱生物科技有限公司),加入桃拉病毒和白斑病毒引物正向及反向各0.5μL,加重蒸馏水至终体积50μL。另外设立阳性对照和的阴性对照。将反应管置于PCR仪上,根据1.4研究结果,按反应体系⑵进行扩增,具体如下94℃1 min,1个循环;51℃1min,72℃1min,94℃ 30S,35个循环;51℃:1 min ,72℃ 5 min,1个循环。
(6)多重PCR 的特异性及敏感性试验 
TSV和WSSV核酸模板的样品与对虾其他病原核酸样品,分别加入到多重PCR反应体系中进行扩增,以检测其特异性。将抽提的WSSV DNA和TSV RNA作为模板分别测其含量后,将核酸作l0倍系列稀释,并对上述模板进行多重PCR扩增以检测其敏感性。
(7)测序与序列分析
PCR扩增产物经1.5%琼脂糖凝胶电泳富集,按照试剂盒操作手册进行用胶回收试剂盒回收目的片段。将纯化后的PCR产物直接送至上海英俊公司(Invitrogen)测序。序列分析用DNASTAR 4.2(DNASTAR Inc.)和 Clustal X 1.83软件,分析结果经GeneDoc 2.6.000编辑。
B. 结果
TSV和WSSV核酸提取后,PCR反应体系中加入相应引物。本技术方案通过对变性和退火温度时间和循环次数的控制,设计四种(1,2,3,4)不同的PCR反应体系。结果显示所有含有反应体系均能扩增出与实验设计大小相符的210bp(TSV)(图1)和300bp(WSSV)(图2)的两条特异条带。图中阿拉伯数字0,1,2,3,4,5分别代表DNA marker, 反应条件1,2,3,4以及阴性对照。图1,2结果显示TSV和WSSV PCR在反应体系2和4的条带最为清晰,但反应体系2用时较短。因此,TSV和WSSV最佳PCR反应条件为94℃变性1 min,1个循环;51℃ 退火1min,72℃延伸1min,94℃ 变性30S,35个循环;51℃: 退火1 min ,72℃延伸 5 min,1个循环。
(1)特异性分析
TSV和WSSV核酸模板的样品与对虾其他病原核酸样品,结果含有WSSV和TSV核酸的样品能扩增出的相应特异条带,而非WSSV和TSV核酸的样品组未见任何条带(结果未显示)。将WSSV和TSV样品组扩增送检测序后,PCR产物的序列如图3(TSV PCR序列)和图4(WSSV PCR序列)所示,将该序列输入NCBI的BLAST搜索软件,结果证明序列长度分别为217bp和301bp,与TSV和WSSV的同源性为100%。
(2)敏感性分析
将抽提的WSSV DNA和TSV RNA作为模板分别测其含量后,将核酸作不同倍数稀释,并对上述模板在反应体系2中进行PCR扩增,该体系最低能同时检测到约为5pg的WSSV和0.5 pg的TSV核酸模板。
(3)多重PCR检测结果
采用WSSV的引物和TSV引物,经过多重PCR扩增,扩增产物电泳后分别得到300bp大小(WSSV) (图5中的3和6) 的和210bp(TSV) (图5中的4和7)大小的电泳条带,与预期的结果一致;并且300bp的WSSV和210bp的TSV能在同一凝胶电泳中明显区分出来(图5中的5和8);而阴性对照1和9则没有条带出现,2为DNA marker。
本实施例依据片段的长短及引物碱基的分布,设计出四种不同的PCR扩增条件。实验结果显示,虽然四个体系中均可扩增出目的片段,但是扩增效率及条带的分布存在差异,其中以94℃1 min,1个循环;51℃1min,72℃1min,94℃ 30S,35个循环;51℃: 1 min ,72℃ 5 min,1个循环的扩增效果最好,用时短,特异性和敏感性最高,因而可快速、准确,可用于病毒携带的无临床症状的对虾检测。

Claims (4)

1.南美白对虾桃拉病毒和白斑病毒多重PCR检测方法,其特征在于,包括如下步骤:
(1)样品采集;
(2)TSV的DNA和WSSV的RNA的提取,以及WSSV的逆转录cRNA的合成;
(3)TSV引物和WSSV引物的设计与合成;
(4)将步骤(2)的核酸和步骤(3)的引物加入PCR反应体系,建立PCR反应体系,并进行多重PCR试验;
(5)将步骤(4)的扩增产物进行特异性和敏感性测试。
2.根据权利要求1所述的南美白对虾桃拉病毒和白斑病毒多重PCR检测方法,其特征在于,包括如下步骤:
(1)样品采集:随机抽取疑似TSV和WSSV感染的南美白对虾,在-80℃下冷冻处理;
(2)核酸的提取:
① TSV的RNA的提取:取疑似TSV发病对虾内脏组织约0.1g,加入1ml Trizol, 在4℃下12000g离心10min,得上清液;将上清液在15~30℃孵育5min; 加入0.2mL氯仿,振荡、孵育; 在4℃下12000g离心15min;将离心后的上层无色水相加入0.5mL异丙醇,震荡,孵育10min; 在4℃下12000g离心10min,去上清,加入至少1mL75%乙醇,涡旋振荡; 在4℃下7500g离心5min,室温晾干RNA,加入无RNase的水溶解RNA,55-60℃孵育10min, 溶解,备用;
② TSV的cDNA的合成:在PCR反应管中加入5μL的上述桃拉病毒RNA模板,加入随机引物10~20ng, 70℃孵育5min后,依次加入4μL 5×M-MLV Buffer,RNA酶抑制剂和dNTP各1μL,M-MLV酶1μL,最后双蒸水补足20μL;42℃反应1h,然后70℃灭活M-MLV酶10min,立即冰浴10min,得到cDNA,保存于-80℃备用;
③ WSSV的DNA的提取:取疑似WSSV发病对虾内脏组织共约0.1g,加入200μL裂解液(0.4M NaCl,10mM Tris-HCl, 2mM EDTA, PH 8.0) 研磨均匀后补加100μL裂解液,6000g 离心去杂质及细胞碎片,取上清液;在上清液中加入30μL 20%SDS和3μL 20mg/mL蛋白酶K混合均匀,在55℃温度下培育1~2h后,加入苯酚/氯仿/异戊醇(质量比为25:24:1)混合液,去除残余蛋白,离心后取上清;加入苯酚/氯仿/异戊醇混合液等体积异丙醇混匀,-20℃下沉淀30min,10000g在4℃离心10min,加75%乙醇沉淀;得到的DNA溶于20μL双蒸水中,并于-20℃备用;
(3)TSV的RT-PCR检测引物:5'-GCTTGCGTGGTGGGACTTA-3',5'-TCAATGAGAGCTTGGTCCTGG-3';WSSV的PCR检测引物:
5’-TCACAGGCGTATTGTCTCTCCT-3’,5’-CACGAG TCTACCGTCACAACATC -3’;
(4) PCR反应体系建立和多重PCR试验:
①1μL的TSV的RNA和WSSV的DNA分别加入PCR反应体系12.5μl(2×Taq PCR MasterMix,北京艾德莱生物科技有限公司),再分别加入TSV和WSSV引物正向及反向各0.5μl,加重蒸馏水至终体积25μL,进行扩增;
②桃拉病毒1μL逆转录cDNA模板和白斑病毒1μLDNA模板,加入PCR反应体系25μl,加入桃拉病毒和白斑病毒引物正向及反向各0.5μL,加重蒸馏水至终体积50μL,另外设立阳性对照和的阴性对照,将反应管置于PCR仪上进行扩增;
(5)特异性和敏感性测试:TSV和WSSV核酸模板的样品与对虾其他病原核酸样品,分别加入到PCR反应体系中进行扩增,测其特异性;将抽提的WSSV的DNA和TSV的RNA作为模板分别测其含量后,将核酸作l0倍系列稀释,并对上述模板进行多重PCR扩增以检测其敏感性;将PCR扩增产物经1.5%琼脂糖凝胶电泳富集,回收目的片段,将纯化后的PCR产物进行测序。
3.根据权利要求2所述的南美白对虾桃拉病毒和白斑病毒多重PCR检测方法,其特征在于,步骤(4)中,扩增条件为:94℃5 min,1个循环;94℃45S,55℃45S,72℃ 1 min,35个循环;72℃10min,1个循环。
4.根据权利要求2所述的南美白对虾桃拉病毒和白斑病毒多重PCR检测方法,其特征在于,步骤(4)中,扩增条件为:94℃1 min,1个循环;51℃1min,72℃1min,94℃ 30S,35个循环;51℃:  1 min ,72℃ 5 min,1个循环。
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