CN102830227A - 一种检测水样双酚a的酶联免疫试剂盒及检测方法 - Google Patents
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Abstract
发明提供了一种检测水样双酚A的酶联免疫试剂盒,它含有:包被有包被原的酶标板,酶标二抗溶液,双酚A抗体溶液,双酚A标准品溶液,底物显色液,终止液和浓缩洗涤液;利用上述酶联免疫试剂盒检测对于悬浮物含量较高的水样双酚A的方法,先进行样品前处理,然后用试剂盒进行检测,最后分析检测结果。本发明提供的酶联免疫试剂盒用于水样双酚A的检测,具有操作简便和灵敏度高的优点,并且制作费用低廉,能够进行现场监控且适合大量样本筛查。
Description
技术领域
本发明涉及检验检疫,特别涉及一种用于检测水样中双酚A的酶联免疫试剂盒。
背景技术
双酚A,中文名称2,2-双(4-羟基苯基)丙烷,英文名称2,2-bis(4-hydroxyphenyl)propane或Bisphenol A (简称为BPA),易溶于醇、丙酮、乙醚、二氯甲烷、苯及稀碱液等,微溶于四氯化碳,几乎不溶于水。BPA是重要的有机化工原料,苯酚和丙酮的重要衍生物,主要用于生产聚碳酸酯、环氧树脂、聚砜树脂、聚苯醚树脂、不饱和聚酯树脂等多种高分子材料。也可用于生产增塑剂、阻燃剂、抗氧剂、热稳定剂、橡胶防老剂、农药、涂料等精细化工产品。
BPA在生产生活中几乎无处不在,从矿泉水瓶、医疗器械到及食品包装的内里,都有它的身影。每年全世界生产2700万吨含有BPA的塑料。但BPA也能导致内分泌失调,威胁着胎儿和儿童的健康。BPA是制造包括婴儿奶瓶、水瓶、其他食品和饮料容器等坚硬和透明聚碳酸酯塑料的关键物质。癌症和新陈代谢紊乱导致的肥胖也被认为与BPA有关。国内外市售婴儿用聚碳酸酯塑料奶瓶在沸水下检出双酚A析出,可能会危害婴儿的健康;桶装水因为其便利而在人们日常生活普及,已有文献报道在桶装水中检出的双酚A,长期摄入含有双酚A的饮用水会影响健康;而事实上研究表明长期暴露在食品包装物上的双酚A剂量水平要比实验室里双酚A致动物癌变的剂量水平高的多。由于欧盟认为含双酚A奶瓶会诱发性早熟,从2011年3月2日起,禁止含生产化学物质双酚A(BPA)的婴儿奶瓶。
随着人们对食品安全意识的提高,由于双酚A在环境中的广泛存在及其危害性。为保障食品安全,开发出快速、有效并能够适应现场检测需要的双酚A残留的检测手段显得尤为重要。
目前现有技术中对双酚A的测定多采用色谱法,但该方法中所用的仪器造价昂贵且耗时较长,样品前处理复杂,而且不能用于现场检测,使其应用范围受到一定的限制。与之相比,ELISA技术在大量样品的现场快速筛选方面有着无可比拟的独特优势。但是目前国内实际应用的检测双酚A的ELISA试剂盒很少,主要依赖进口。因此,本课题致力于研究制备效价高,亲和性好,特异性强的抗体,用于建立BPA免疫分析检测的产品和使用方法。
发明内容
本发明的目的是克服上述现有技术存在的不足,提供一种操作简便、费用低廉、灵敏度高、能够适合大量样本筛查的试剂盒,以及利用其检测水样中双酚A含量的检测方法。本发明提供的酶联免疫试剂盒用于水样双酚A的检测,要能够做到操作简便、费用低廉、灵敏度高并且能够进行现场监控,还适合大量样本筛查。
为了达到上述发明目的,本发明提供的技术的原理和技术方案如下:
一、本发明的检测原理为:
先在酶标板上固定一定量的双酚A偶联抗原,加入样本溶液或双酚A标准品溶液后,接着加入一定量的双酚A特异性抗体,使待测抗原和固定抗原竞争性地与溶液中游离的双酚A特异性抗体结合,充分洗涤未反应的抗体和抗原,再加入一定量的酶标二抗(抗抗体) 进行放大作用,充分洗涤后,加底物显色液显色。结果如待测抗原含量越多,与固相抗体结合的抗体越少,酶标二抗的量就越少,显色越浅,两者呈负相关。此实验的条件是:固定抗原限量,抗体定量,酶标二抗限量。固定抗原与待测抗原和抗体结合的位点相同,竞争性地与抗体结合。
二、本发明的技术方案为:
本发明一方面提供了一种用于检测水样中双酚A的酶联免疫试剂盒,它含有:
(1) 包被有双酚A-BSA包被抗原的96孔酶标板;
(2) 双酚A标准品溶液;
(3) 双酚A特异性抗体;
(4) 底物显色液;
(5) 终止液;
(6) 浓缩洗涤液;
(7) 酶标二抗溶液 。
在本发明检测水样中双酚A的酶联免疫试剂盒中,所述包被抗原为双酚A半抗原与牛血清蛋白的偶联物。通过Friedel-Crafts烷基化反应在双酚A上引入羧基,制得能够与蛋白质偶联的双酚A半抗原,再将其与N-羟基丁二酰亚胺和N,N’-二环己基碳二亚胺混合后反应,与蛋白质偶联制备双酚A完全抗原,
在本发明检测水样中双酚A的酶联免疫试剂盒中,双酚A特异性抗体为兔抗双酚A的多克隆抗体,用双酚A半抗原与牛血清蛋白的偶联物作为免疫原通过免疫兔制得。
在本发明检测水样中双酚A的酶联免疫试剂盒中,所述的洗涤液为0.05%的吐温-20(TWEEN-20)磷酸盐缓冲液。所述的显色剂由显色剂A液和显色剂B液组成(例如,体积比为1:1),显色剂A液为过氧化氢,显色剂B液为四甲基联苯胺溶液。
在本发明检测水样中双酚A的酶联免疫试剂盒中,所述的酶标二抗的标记酶为辣根过氧化物酶。
为方便现场检测和大量样本筛查,所述试剂盒还可以进一步包括双酚A-BSA包被的96孔酶标板、双酚A标准溶液、底物显色液、浓缩洗涤液、终止液。
另一方面,本发明还提供了一种检测样品中双酚A含量的方法,包括步骤:
(1)样品前处理;
(2)用上述的试剂盒进行检测,向包被有双酚A抗原的酶标板孔中加入标准品或样品溶液,再加入抗双酚A多克隆抗体,孵育后洗涤拍干,加入酶标记二抗,孵育后洗涤拍干,显色、终上,用酶标仪测定吸光度值;
(3)分析检测结果。
基于上述技术方案,本发明的试剂盒和检测方法与现有技术相比具有如下技术优点:
1.本发明检测双酚A的试剂盒主要采有间接竞争酶联免疫测定法定性或定量样品中双酚A含量;对样品的前处理要求低,样品前处理过程简单,能同时快速检测大批样品。
2.本发明该试剂盒采用高特异性的双酚A多克隆抗体,主要试剂以工作液形式提供,可以减少试剂盒的操作步骤,为使用者节省时间并降低因操作步骤冗繁造成的误差。
3.本发明具有灵敏度高、特异性强、高精确度、高准确度、对仪器设备要求低、试剂保存时间长、自动化程度高、无放射性同位素污染的等优点。
附图说明
图1 是本发明专利检测水样双酚A的酶联免疫试剂盒中的双酚A的检测标准曲线图。
具体实施方式
下面我们结合附图和具体的实施例来对本发明的检测水样双酚A的酶联免疫试剂盒及其检测方法做进一步的详细阐述,以求更为清楚明了地理解本发明的成分组成和工作流程,但不能以此来限制本发明的保护范围。
一、先进行双酚A完全抗原合成。
(1)半抗原的合成。
组织反应装置,将250mL三口反应烧瓶放入带有冰浴的1L玻璃容器中,玻璃容器盛有冰-盐水混合液,带有数字温度计可随时读数,然后将玻璃容器置于磁力搅拌器中;向三口烧瓶中加入磁力搅拌子,插入回流冷凝管(上装无水CaCl2干燥管和尾气吸收装置)、插入滴液漏斗。再向三口烧瓶中加入50mL N,N’-二甲基甲酰胺、1.335g (0.01 mol)无水AlCl3 和2.280g (0.01mol) BPA,搅拌,冰浴冷却至0℃以下,缓慢滴加0.945g (0.01 mol)氯乙酸,滴加过程中保持温度在0~5℃,滴加完毕,在0℃反应3 h,再补加1.335g无水AlCl3,升温至60~70℃反应,使溶液沸腾,回流3h。反应结束后,冷却至室温,然后经离心、过滤、干燥得到白色固体,即为羧基化双酚A (半抗原)。
(2)双酚A完全抗原的合成及纯化。
采用DCC+NHS法合成双酚A完全抗原,具体步骤如下:
1、将22mg半抗原(MW=228)溶于1mL N,N-二甲基甲酰胺,通过磁力搅拌的方式使其完全溶解成溶液。
2、称取13.3mg NHS和17.4mg DCC加入上述溶液中,室温下磁力搅拌过夜,反应现象为:搅拌过程中逐渐出现白色沉淀。
3、将该溶液以2000r/min离心10min,弃沉淀,收集上清即为溶液A。
4、称取50mg BSA(Roche,200g)溶于5mL 0.01M (pH7.4) PBS中,为溶液B。
5、将溶液B预冷至约4℃。
6、将溶液A利用200μL的移液枪逐滴加入到溶液B中,控制速度使其在30~45min加完,加完后低温下继续搅拌3h生成反应混合液。反应现象为:随着溶液A的滴入,溶液B逐渐出现浑浊。
7、将反应混合液装入透析袋透析。
8、在4℃下用0.01M (pH7.4) PBS透析两天,每天换液3次。
9、收集透析后的浑浊溶液,2000r/min离心10min,弃沉淀,收集上清溶液。
二、双酚A多克隆抗体的制备。
在免疫前一周取家兔耳缘静脉血,分离血清作为阴性对照。采用合成的完全抗原双酚A-BSA对两只家兔进行免疫。
为了获得针对半抗原双酚A质量良好的抗体,采用小剂量长程免疫方案:
(1) 免疫途径选用背部6点皮下注射,这6点分别为靠近淋巴结的腋下、背部、腹股沟各两侧。
(2) 初次免疫剂量为1.2mg免疫原/只左右,约含半抗原90μg。取1.5mL完全抗原(浓度为2mg/mL)与等体积弗氏完全佐剂充分乳化后进行免疫。考虑到乳化过程中的损失以及免疫前因排除针头内空气的损失,所以完全抗原稍过量。
(3) 加强免疫采用弗氏不完全佐剂,剂量与首次免疫相同。初次免疫3周后进行第一次加强免疫,以后再次加强免疫,时间间隔同样为3周。第二次加强免疫后第10天左右采血,测定血清抗体效价。采用饱和硫酸铵盐析沉淀法纯化抗血清。
获得的检测水样双酚A的酶联免疫试剂盒包括有如下组分:
(1) 包被有双酚A-BSA包被抗原的96孔酶标板;
(2) 双酚A标准品溶液;
(3) 双酚A特异性抗体;
(4) 底物显色液;
(5) 终止液;
(6) 浓缩洗涤液;
(7) 酶标二抗溶液 。
三、建立双酚A的ELISA检测方法。
(1)包被抗原和抗体最佳浓度的确定。
取包被抗原羧基化双酚A-OVA(5.65mg/mL),用包被缓冲液稀释1000倍,按照酶标板上A→G的方向进行纵向稀释,每行浓度相同,包被体积为100μL /孔,4℃过夜后洗涤,封闭液封闭。
双酚A抗体从1:2000开始,再作2倍梯度稀释,按照酶标板上1->6的方向进行横向稀释,每一列的稀释度相同,共6个梯度,抗体体积为50μL /孔,接着加入羊抗兔二抗(推荐浓度1:5000),37℃温育30min,洗涤3次,TMB显色10min,1M H2SO4终止反应,酶标仪测定其OD450nm。
表1是双酚A方阵试验结果的试验结果,该实验结果表明:包被抗原稀释2000,抗体稀释8000时,对应点正好位于线性区间的中间位置,变化梯度最大,而且吸光值1.315>1.0,适合用于竞争实验。
(2)酶标二抗最佳稀释度的确定。
取羊抗兔二抗(推荐浓度1:5000)。为确定中合适的酶标二抗的稀释度,进行如下实验:用最佳工作浓度的包被抗原包被,封闭后加入最佳稀释度的单抗,反应过程同间接竞争ELISA基本程序。羊抗兔二抗做6个稀释度:1:1000、1:2000、1:4000、1:6000、1:8000、1:10000,每行的稀释度相同,体积均为100μL /孔,后续显色和测定步骤同上。
酶标二抗工作稀释度为1:1000~2000时,实验结果表现为加底物后显色很快不易控制,虽有梯度但本底值明显偏高许多。原因应该是与抗体结合的酶过多,导致催化反应加快,不易控制;同时由于酶浓度过高,非特意性吸附增强,致使本底值明显偏高。
酶标二抗工作稀释度为1: 5000~10000时,实验结果为显色较慢,颜色较浅,阴性孔颜色不高;若放置时间过长,则半抗原浓度较低的孔梯度不明显。主要原因应该是一抗能结合到的酶标二抗不多,使显色过程变长,显色不深。
酶标二抗工作稀释度为1:4000时,实验结果较为理想,本底值较低,同时所得到的最大吸光度能达到1.0以上,故本研究采用酶标二抗的工作稀释度为1:4000。
四、利用制成的试剂在实践中对水样双酚A进行检测。
(1)样品预处理。
对于较干净的水样(如饮用水)可直接测定;对于悬浮物含量较高的水样或其它液态样品,预处理如下:取5 mL样品,使用0.45μm超滤膜过滤,或者10000rpm离心20min;对于悬浮物含量很高的样品,建议先采用较粗的纤维素膜过滤,再使用0.45μm膜过滤。若样品中双酚A含量较高(>20.0μg/L),可用超纯水对样品进行适当稀释后再测定;若样品中双酚A含量较低(<0.2μg/L),必要时可以采用固相萃取对样品进行适当浓缩再测定。
(2)试剂盒检测。该过程是先向包被有双酚A抗原的酶标板孔中加入标准品或样品溶液,再加入抗双酚A多克隆抗体,孵育后洗涤拍干,加入酶标记二抗,孵育后洗涤拍干,显色、终上,用酶标仪测定吸光度值。具体包括如下步骤:
a. 将试剂盒从冰箱取出,放置室温下,平衡10min。
b. 将浓缩洗涤液用蒸馏水稀释20倍,试剂盒上每孔加入约350μL洗涤液即可注满,请按此计算使用量。
c. 阴性孔和标准品孔分别加入50μL双酚A标准品:0μg/L, 0.1μg/L, 0.5μg/L, 1.0μg/L, 3.0μg/L, 10.0μg/L;样品孔各加入50μL待测样品。
d. 每孔同时各加入50μL抗双酚A抗体和50μL酶标二抗溶液。
e. 在反应环节,轻轻振摇混匀,室温下反应30分钟。
f. 在洗涤环节,甩掉板中液体,每孔加满洗涤液,放置30s后用力甩掉洗涤液,共洗涤4~5次。
g. 在显色环节,每孔加入50μL底物A后,再同时加入50μL底物B溶液,轻轻振摇混匀,室温下显色5~10分钟。
h. 在终止环节,在每个微孔中加入50μL终止液,终止显色反应,此时蓝色将迅速变为黄色。
i. 轻轻摇动微孔板,30分钟内在450nm处测定各孔的吸光度(A450nm)。
(3)分析检测结果。以测定的双酚A标准品的吸光度(A)平均值为纵坐标,以各标准品浓度为横坐标,绘制标准曲线;将横坐标设置成对数坐标,应用Excel可对标准曲线进行对数拟合,得出方程A = a×lnC + b,得出R2值,计算出各样品孔平均吸光度(A)对应的样品浓度。
在计算过程中,A-吸光度,a-斜率,C-双酚A浓度,b-截距,R2-决定系数,Cs-待测样品双酚A浓度。
在实验中,我们分别测试了双酚A抗体与其它7种类固醇物质的交叉反应性。并对可进行Logistic模型拟合的曲线进行拟合,计算出半抑制浓度,再计算交叉反应率,结果列于表2。表2是 双酚A抗体交叉反应。
类固醇物质 | CAS No. | CR (%) |
双酚A | 80-05-7 | 100% |
双酚B | 77-40-7 | 10% |
己烯雌酚 | 6898-97-1 | 5% |
双烯雌酚 | 13029-44-2 | 0% |
雌二醇 | 50-28-2 | 0% |
孕酮 | 57-83-0 | 0% |
皮质醇 | 50-23-7 | 0% |
壬基酚 | 25154-52-3 | 0% |
结果表明,本发明获得的针对双酚A的多克隆抗体,对双酚B有一定的交叉反应性(10%),对己烯雌酚有较小的交叉反应性,而对于其它5种类固醇物质没有表现出交叉反应性。从而证明了抗体整体特异性良好,具有检测双酚A的实践应用价值。
Claims (8)
1.一种检测水样双酚A的酶联免疫试剂盒,其特征在于,酶联免疫试剂盒中含有:
(1) 包被有双酚A-BSA包被抗原的96孔酶标板;
(2) 双酚A标准品溶液;
(3) 双酚A特异性抗体;
(4) 底物显色液;
(5) 终止液;
(6) 浓缩洗涤液;
(7) 酶标二抗溶液 。
2.如权利要求1所述的检测水样双酚A的酶联免疫试剂盒,其特征在于,所述酶标板中包被的包被抗原为双酚A半抗原与载体蛋白的偶联物,所述载体蛋白为牛血清白蛋;通过Friedel-Crafts烷基化反应在双酚A上引入羧基,制得能够与载体蛋白偶联的双酚A半抗原,再将其与N-羟基丁二酰亚胺和N,N’-二环己基碳二亚胺混合后反应,与载体蛋白偶联制备双酚A完全抗原。
3.如权利要求1所述的检测水样双酚A的酶联免疫试剂盒,其特征在于,所述的双酚A标准品溶液的浓度分别为0μg/L, 0.1μg/L, 0.5μg/L, 1.0μg/L, 3.0μg/L和 10μg/L。
4.如权利要求1所述的检测水样双酚A的酶联免疫试剂盒,其特征在于,所述双酚A特异性抗体为兔抗双酚A的多克隆抗体,用双酚A半抗原与牛血清蛋白的偶联物作为免疫原通过免疫兔制得。
5.如权利要求l所述的检测水样双酚A的酶联免疫试剂盒,其特征在于,所述的浓缩洗涤液为pH 7.4,含有1%吐温20和0.5%叠氮化钠防腐剂的磷酸盐缓冲液。
6.如权利要求1所述的检测水样双酚A的酶联免疫试剂盒,其特征在于,所述的酶标二抗为羊抗兔IgG。
7.如权利要求1所述的检测水样双酚A的酶联免疫试剂盒,其特征在于,所述酶标二抗的酶为辣根过氧化物酶,底物显色液A液为过氧化氢,底物显色液B液为四甲基联苯胺溶液,终止液为2mol/L的硫酸。
8.一种样品中双酚A含量的检测方法,其特征在于,该方法包括如下步骤:
第一步,样品前处理:对于较干净的水样可直接测定;对于悬浮物含量较高的包括水样在内的液态样品,取样品使用超滤膜过滤,或者离心处理;对于悬浮物含量很高的样品,先采用粗纤维素膜过滤,再使用细纤维素膜膜过滤;若样品中双酚A含量>20.0μg/L,可用超纯水对样品进行适当稀释后再测定;若样品中双酚A含量<0.2μg/L,采用固相萃取对样品进行适当浓缩再测定;
第二步,用上述的酶联免疫试剂盒进行检测:
a. 将试剂盒从冰箱取出,放置室温下平衡;
b. 将浓缩洗涤液用蒸馏水稀释,试剂盒上每孔加入洗涤液即可注满;
c. 阴性孔和标准品孔分别加入双酚A标准品:0μg/L, 0.1μg/L, 0.5μg/L, 1.0μg/L, 3.0μg/L, 10.0μg/L;样品孔各加入待测样品;
d. 每孔同时各加入抗双酚A抗体和酶标二抗溶液;
e. 在反应环节,轻轻振摇混匀,室温下反应;
f. 在洗涤环节,甩掉板中液体,每孔加满洗涤液,放置后用力甩掉洗涤液,共洗涤4~5次;
g. 在显色环节,每孔加入底物A溶液后,再同时加入底物B溶液,轻轻振摇混匀,室温下显色;
h. 在终止环节,在每个微孔中加入终止液,终止显色反应,此时蓝色将迅速变为黄色;
i. 轻轻摇动微孔板测定各孔的吸光度;
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