CN102643888B - 一种鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法 - Google Patents
一种鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN102643888B CN102643888B CN201210131732.5A CN201210131732A CN102643888B CN 102643888 B CN102643888 B CN 102643888B CN 201210131732 A CN201210131732 A CN 201210131732A CN 102643888 B CN102643888 B CN 102643888B
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- interferon
- high density
- prokaryotic expression
- fermentation
- chicken alpha
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Active
Links
- 238000000855 fermentation Methods 0.000 title claims abstract description 82
- 230000004151 fermentation Effects 0.000 title claims abstract description 82
- 241000287828 Gallus gallus Species 0.000 title claims abstract description 70
- 230000009465 prokaryotic expression Effects 0.000 title claims abstract description 42
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 16
- 102000006992 Interferon-alpha Human genes 0.000 title abstract description 57
- 108010047761 Interferon-alpha Proteins 0.000 title abstract description 57
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 claims abstract description 26
- 230000004913 activation Effects 0.000 claims abstract description 23
- 230000006698 induction Effects 0.000 claims abstract description 3
- 239000002609 medium Substances 0.000 claims description 70
- 239000001888 Peptone Substances 0.000 claims description 48
- 240000004808 Saccharomyces cerevisiae Species 0.000 claims description 48
- 239000000843 powder Substances 0.000 claims description 48
- 239000006052 feed supplement Substances 0.000 claims description 44
- 230000001133 acceleration Effects 0.000 claims description 38
- 239000007788 liquid Substances 0.000 claims description 33
- 108010080698 Peptones Proteins 0.000 claims description 32
- 239000008103 glucose Substances 0.000 claims description 32
- 235000019319 peptone Nutrition 0.000 claims description 32
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims description 28
- GZCGUPFRVQAUEE-SLPGGIOYSA-N aldehydo-D-glucose Chemical compound OC[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)C=O GZCGUPFRVQAUEE-SLPGGIOYSA-N 0.000 claims description 28
- QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N atomic oxygen Chemical compound [O] QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 24
- 239000001301 oxygen Substances 0.000 claims description 24
- 229910052760 oxygen Inorganic materials 0.000 claims description 24
- 239000002054 inoculum Substances 0.000 claims description 22
- 239000013530 defoamer Substances 0.000 claims description 17
- DPDMMXDBJGCCQC-UHFFFAOYSA-N [Na].[Cl] Chemical compound [Na].[Cl] DPDMMXDBJGCCQC-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 16
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 claims description 14
- 238000013019 agitation Methods 0.000 claims description 13
- BPHPUYQFMNQIOC-NXRLNHOXSA-N isopropyl beta-D-thiogalactopyranoside Chemical compound CC(C)S[C@@H]1O[C@H](CO)[C@H](O)[C@H](O)[C@H]1O BPHPUYQFMNQIOC-NXRLNHOXSA-N 0.000 claims description 12
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 claims description 12
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 claims description 12
- 239000006137 Luria-Bertani broth Substances 0.000 claims description 11
- 239000007789 gas Substances 0.000 claims description 11
- 230000014509 gene expression Effects 0.000 claims description 11
- 230000000968 intestinal effect Effects 0.000 claims description 11
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 claims description 11
- 238000001742 protein purification Methods 0.000 claims description 11
- 239000007787 solid Substances 0.000 claims description 11
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 claims description 4
- 238000011534 incubation Methods 0.000 claims description 2
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 abstract description 5
- 241000588724 Escherichia coli Species 0.000 abstract description 2
- 235000016709 nutrition Nutrition 0.000 abstract description 2
- 230000035764 nutrition Effects 0.000 abstract description 2
- 238000009776 industrial production Methods 0.000 abstract 1
- 238000011081 inoculation Methods 0.000 abstract 1
- FRXSZNDVFUDTIR-UHFFFAOYSA-N 6-methoxy-1,2,3,4-tetrahydroquinoline Chemical compound N1CCCC2=CC(OC)=CC=C21 FRXSZNDVFUDTIR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 6
- QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-N Ammonia Chemical compound N QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 description 3
- 239000012467 final product Substances 0.000 description 3
- 230000006872 improvement Effects 0.000 description 3
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 3
- 230000001954 sterilising effect Effects 0.000 description 3
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Chemical compound O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 2
- 208000027954 Poultry disease Diseases 0.000 description 2
- 229910021529 ammonia Inorganic materials 0.000 description 2
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 2
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 2
- 241000124008 Mammalia Species 0.000 description 1
- 206010028980 Neoplasm Diseases 0.000 description 1
- 208000036142 Viral infection Diseases 0.000 description 1
- 239000000654 additive Substances 0.000 description 1
- 239000003242 anti bacterial agent Substances 0.000 description 1
- 229940088710 antibiotic agent Drugs 0.000 description 1
- 230000009286 beneficial effect Effects 0.000 description 1
- 230000008859 change Effects 0.000 description 1
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 1
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 1
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 1
- 230000006806 disease prevention Effects 0.000 description 1
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 1
- 239000003640 drug residue Substances 0.000 description 1
- 239000013613 expression plasmid Substances 0.000 description 1
- 238000009472 formulation Methods 0.000 description 1
- 230000036541 health Effects 0.000 description 1
- 230000006303 immediate early viral mRNA transcription Effects 0.000 description 1
- 230000028993 immune response Effects 0.000 description 1
- 230000036039 immunity Effects 0.000 description 1
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 description 1
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 1
- 244000052769 pathogen Species 0.000 description 1
- 230000001717 pathogenic effect Effects 0.000 description 1
- 244000144977 poultry Species 0.000 description 1
- 230000008569 process Effects 0.000 description 1
- 230000006798 recombination Effects 0.000 description 1
- 238000005215 recombination Methods 0.000 description 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 1
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 1
- 230000009385 viral infection Effects 0.000 description 1
Abstract
本发明提供了一种鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法,包括(1)种子活化、(2)接种、(3)发酵和(4)诱导四步骤组成;所述鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法,通过有效控制发酵过程中的关键参数实现了重组大肠杆菌高密度生长,尤其在配合使用改良后的发酵培养基与补料培养基的情况下,在充分满足工程菌发酵过程中营养要求的同时,使鸡α干扰素的单位产量提高为改良前的3~4倍,有效降低了生产成本,对大规模工业生产具有非常重要的指导意义。
Description
技术领域
本发明涉及生物发酵领域,尤其是一种鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法。
背景技术
家禽肿瘤和病毒感染性疾病的有效治疗一直是困扰禽病防治的重大难题之一。鸡的免疫系统以及在病原感染或注射疫苗时所产生的免疫反应与哺乳动物相似,所以可以应用细胞因子来控制与治疗禽类疾病。目前,动物滥用抗生素作为饲料添加剂的现象日益严重,动物性食品(尤其是鸡肉)的药物残留超标,导致各种耐药菌株在人类身上不断出现,例如“超级细菌”,给人类健康带来严重威胁。鸡干扰素α蛋白制剂作为一种新型的绿色生物制品可以有效带动禽类的绿色高效养殖,具有广阔市场发展前景。
然而目前采用原核表达系统来生产鸡α干扰素存在着表达质粒容易丢失、蛋白产量低、生产成本高等问题,严重制约了其工业化应用。因此从控制发酵参数入手,通过改良发酵培养基来解决上述难题,具有非常重要的生产实践意义。
发明内容
本发明所要解决的技术问题在于提供一种鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法。
本发明所要解决的另一技术问题在于提供上述鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法的制备方法。
为解决上述技术问题,本发明的技术方案是:
一种鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法,包括以下步骤:
(1)种子活化:将表达鸡α干扰素的工程菌株大肠杆菌在固体LB培养基上活化,然后挑取一单菌落至50mL LB液体培养基中,在30~37℃,180~220rpm,培养12~24小时;再将得到的种子液按体积比1%~5%的接种量接种至LB培养基中,在30~37℃,180~220rpm,培养6~12小时,得到发酵种子液;
(2)接种:向发酵罐中填充发酵培养基,然后按体积比5%~10%的接种量将上述活化好的种子液接种至液体发酵培养基中;
(3)发酵:向发酵罐中通入空气或者空气/氧气的混合气体,通气量为2~4m3/h,发酵温度30~37℃,搅拌转数300~900rpm,溶氧控制在20%~40%,pH控制在6.8~7.4,发酵时间11~24小时,当OD600nm=2~4时开始补料,补料的流加速度是100~1000mL/h;
(4)诱导:当OD600nm=4~6时开始添加IPTG诱导鸡α干扰素的表达,最后进行蛋白纯化,得到目的蛋白。
优选的,上述鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法,所述发酵罐为50L发酵罐。
优选的,上述鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法,所述培养基组成为:
LB培养基:每升H2O中蛋白胨10g,酵母粉5g,氯化钠10g;
发酵培养基:每升H2O中含有葡萄糖5~10g、蛋白胨5~10g、酵母粉5~10g、KH2PO4 2~4g、K2HPO4 1~4g、Na2HPO4·12H2O 2~7g、(NH4)2SO4 0.6~1.2g、NH4Cl 0.1~0.3g、MnSO4·5H2O 0.001~0.01g、CoCl2·6H2O 0.004~0.01g、Na2MoO4·2H2O 0.001~0.005g、ZnCl20.001~0.01g、CuSO4·5H2O 0.001~0.01g、H3BO4 0.002~0.012g、FeSO4·7H2O 0.01~0.02g、CaCl2·2H2O 0.01~0.04g、MgSO4·7H2O 0.1~0.6g、消泡剂0.1~0.3g;
补料培养基:每升H2O中葡萄糖120~260g、蛋白胨30~60g、酵母粉15~35g、MgSO4·7H2O 2~6g、NaCl 3~7g。
优选的,上述鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法,所述培养基组成为:
LB培养基:每升H2O中蛋白胨10g,酵母粉5g,氯化钠10g;
发酵培养基:每升H2O中葡萄糖7~10g、蛋白胨5~7g、酵母粉5~7g、KH2PO4 2~3g、K2HPO4 1~3g、Na2HPO4·12H2O 2~4g、(NH4)2SO4 0.6~1.0g、NH4Cl 0.1~0.2g、MnSO4·5H2O 0.001~0.006g、CoCl2·6H2O 0.004~0.01g、Na2MoO4·2H2O 0.001~0.004g、ZnCl2 0.001~0.005g、CuSO4·5H2O 0.001~0.007g、H3BO4 0.002~0.006g、FeSO4·7H2O 0.01~0.02g、CaCl2·2H2O 0.01~0.02g、MgSO4·7H2O 0.3~0.6g、消泡剂0.1~0.2g;
补料培养基:每升H2O中葡萄糖130~220g、蛋白胨45~60g、酵母粉20~35g、MgSO4·7H2O 3~6g、NaCl3~5g。
优选的,上述鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法,所述培养基组成为:
LB培养基:每升H2O中蛋白胨10g,酵母粉5g,氯化钠10g;
发酵培养基:每升H2O中葡萄糖10g、蛋白胨5g、酵母粉5g、KH2PO42g、K2HPO44g、Na2HPO4·12H2O7g、(NH4)2SO41.2g、NH4Cl 0.2g、MnSO4·5H2O 0.001g、CoCl2·6H2O 0.004g、Na2MoO4·2H2O 0.002g、ZnCl2 0.002g、CuSO4·5H2O 0.001g、H3BO4 0.005g、FeSO4·7H2O 0.02g、CaCl·2H2O 0.02g、MgSO4·7H2O 0.3g、消泡剂0.2g;
补料培养基:每升H2O中葡萄糖150g,蛋白胨45g,酵母粉25g,MgSO4.7H2O4g,NaCl 5g。
优选的,上述鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法,所述培养基组成为:
LB培养基:每升H2O中蛋白胨10g,酵母粉5g,氯化钠10g;
发酵培养基:每升H2O中葡萄糖10g、蛋白胨6g、酵母粉6g、KH2PO4 2g、K2HPO4 1g、Na2HPO4·12H2O 2g、(NH4)2SO4 0.6g、NH4Cl 0.1g、MnSO4·5H2O 0.001g、CoCl2·6H2O 0.004g、Na2MoO4·2H2O 0.001g、ZnCl2 0.001、CuSO4·5H2O 0.001g、H3BO40.002g、FeSO4·7H2O 0.01g、CaCl2·2H2O 0.01、MgSO4·7H2O 0.4g、消泡剂0.1g;
补料培养基:每升H2O中葡萄糖200g、蛋白胨60g、酵母粉35g、MgSO4·7H2O6g、NaCl 3g。
优选的,上述鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法,所述培养基组成为:
LB培养基:每升H2O中蛋白胨10g,酵母粉5g,氯化钠10g;
发酵培养基:每升H2O中葡萄糖8g、蛋白胨5g、酵母粉5g、KH2PO4 3g、K2HPO4 2g、Na2HPO4·12H2O 3g、(NH4)2SO4 0.8g、NH4Cl 0.2g、MnSO4·5H2O 0.005g、CoCl2·6H2O 0.01g、Na2MoO4·2H2O 0.003g、ZnCl2 0.005、CuSO4·5H2O 0.005g、H3BO4 0.004g、FeSO4·7H2O 0.01g、CaCl2·2H2O 0.01、MgSO4·7H2O 0.6g、消泡剂0.2g;
补料培养基:每升H2O中葡萄糖220g、蛋白胨60g、酵母粉20g、MgSO4·7H2O 3g、NaCl 4g。
优选的,上述鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法,所述培养基组成为:
LB培养基:每升H2O中蛋白胨10g,酵母粉5g,氯化钠10g;
发酵培养基:每升H2O中葡萄糖5g、蛋白胨5g、酵母粉10g、KH2PO4 2g、K2HPO4 1g、Na2HPO4·12H2O 7g、(NH4)2SO40.6g、NH4Cl 0.1g、MnSO4·5H2O 0.001g、CoCl2·6H2O 0.01g、Na2MoO4·2H2O 0.001g、ZnCl20.001g、CuSO4·5H2O 0.001g、H3BO40.012g、FeSO4·7H2O 0.02g、CaCl2·2H2O 0.01g、MgSO4·7H2O 0.1g、消泡剂0.3g;
补料培养基:每升H2O中葡萄糖260g、蛋白胨30g、酵母粉15g、MgSO4·7H2O 6g、NaCl 7g。
优选的,上述鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法,所述步骤(1)中单菌落培养时间为16~20小时。
优选的,上述鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法,所述步骤(3)中搅拌转数为400~600rpm,pH控制在7.0。
优选的,上述鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法,所述步骤(3)中溶氧控制在25%~35%。
优选的,上述鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法,所述步骤(3)中补料时间为OD600nm=3小时。
优选的,上述鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法,所述步骤(3)中补料的流加速度控制方法为:补料开始后的第一个小时控制流加速度为100~200mL/h,之后每2~4小时流加速度增加50~100mL/h。
优选的,上述鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法,所述步骤(4)中诱导时间为OD600nm=5小时。
优选的,上述鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法,所述步骤(4)中诱导剂IPTG浓度为0.5~1.0mM。
本发明的有益效果是:
上述鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法,通过有效控制发酵过程中的关键参数实现了重组大肠杆菌高密度生长,尤其在配合使用改良后的发酵培养基与补料培养基的情况下,在充分满足工程菌发酵过程中营养要求的同时,使鸡α干扰素的单位产量提高为改良前的3~4倍,有效降低了生产成本,对大规模工业生产具有非常重要的指导意义。
具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明所述技术方案作进一步的说明。
下述实施例中采用的发酵罐是镇江科润海生物工程设备有限公司生产的50L发酵罐,补料瓶是四川蜀牛公司生产的;所采用的试剂均为普通化学试剂公司购买,所用消泡剂购自江苏斯德瑞克化工有限公司,YJG-1。
实施例1
一种鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法,包括以下步骤:
(1)种子活化:将表达鸡α干扰素的工程菌株大肠杆菌在固体LB培养基上活化,然后挑取一单菌落至50mL LB液体培养基中,在35℃,200rpm,培养17小时;再将得到的种子液按体积比4%的接种量接种至LB培养基中,在35℃,200rpm,培养10小时,得到发酵种子液;
(2)接种:向发酵罐中填充发酵培养基,然后按体积比7%的接种量将上述活化好的种子液接种至液体发酵培养基中;
(3)发酵:向发酵罐中通入空气或者空气/氧气的混合气体,通气量为3m3/h,发酵温度35℃,搅拌转数500rpm,溶氧控制在30%,pH控制在7.0,发酵时间18小时,当OD600nm=3时开始补料,补料的流加速度是600mL/h,所述补料的流加速度控制方法为:补料开始后的第一个小时控制流加速度为150mL/h,之后每3小时流加速度增加80mL/h;
(4)诱导:当OD600nm=5时开始添加0.8mM IPTG诱导鸡α干扰素的表达,最后进行蛋白纯化,得到目的蛋白。
上述各培养基组成如下:
LB培养基:每升H2O中蛋白胨10g,酵母粉5g,氯化钠10g;
发酵培养基:每升H2O中葡萄糖10g、蛋白胨5g、酵母粉5g、KH2PO4 2g、K2HPO4 4g、Na2HPO4·12H2O 7g、(NH4)2SO41.2g、NH4Cl 0.2g、MnSO4·5H2O 0.001g、CoCl2·6H2O 0.004g、Na2MoO4·2H2O 0.002g、ZnCl2 0.002g、CuSO4·5H2O 0.001g、H3BO4 0.005g、FeSO4·7H2O 0.02g、CaCl·2H2O 0.02g、MgSO4·7H2O 0.3g、消泡剂0.2g;
补料培养基:每升H2O中葡萄糖150g,蛋白胨45g,酵母粉25g,MgSO4.7H2O4g,NaCl 5g。
实施例2
一种鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法,包括以下步骤:
(1)种子活化:将表达鸡α干扰素的工程菌株大肠杆菌在固体LB培养基上活化,然后挑取一单菌落至50mL LB液体培养基中,在37℃,180rpm,培养24小时;再将得到的种子液按体积比5%的接种量接种至LB培养基中,在30℃,220rpm,培养12小时,得到发酵种子液;
(2)接种:向发酵罐中填充发酵培养基,然后按体积比5%的接种量将上述活化好的种子液接种至液体发酵培养基中;
(3)发酵:向发酵罐中通入空气或者空气/氧气的混合气体,通气量为2m3/h,发酵温度37℃,搅拌转数900rpm,溶氧控制在25%,pH控制在7.4,发酵时间24小时,当OD600nm=2时开始补料,补料的流加速度是100mL/h;
(4)诱导:当OD600nm=6时开始添加0.7mM IPTG诱导鸡α干扰素的表达,最后进行蛋白纯化,得到目的蛋白。
上述各培养基组成如下:
LB培养基:每升H2O中蛋白胨10g,酵母粉5g,氯化钠10g;
发酵培养基:每升H2O中葡萄糖10g、蛋白胨6g、酵母粉6g、KH2PO4 2g、K2HPO4 1g、Na2HPO4·12H2O 2g、(NH4)2SO40.6g、NH4Cl 0.1g、MnSO4·5H2O 0.001g、CoCl2·6H2O 0.004g、Na2MoO4·2H2O 0.001g、ZnCl20.001、CuSO4·5H2O 0.001g、H3BO40.002g、FeSO4·7H2O 0.01g、CaCl2·2H2O 0.01、MgSO4·7H2O 0.4g、消泡剂0.1g;
补料培养基:每升H2O中葡萄糖200g、蛋白胨60g、酵母粉35g、MgSO4·7H2O 6g、NaCl 3g。
实施例3
一种鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法,包括以下步骤:
(1)种子活化:将表达鸡α干扰素的工程菌株大肠杆菌在固体LB培养基上活化,然后挑取一单菌落至50mL LB液体培养基中,在30℃,220rpm,培养12小时;再将得到的种子液按体积比1%的接种量接种至LB培养基中,在37℃,180rpm,培养6小时,得到发酵种子液;
(2)接种:向发酵罐中填充发酵培养基,然后按体积比10%的接种量将上述活化好的种子液接种至液体发酵培养基中;
(3)发酵:向发酵罐中通入空气或者空气/氧气的混合气体,通气量为4m3/h,发酵温度30℃,搅拌转数300rpm,溶氧控制在约20%,pH控制在6.8,发酵时间11小时,当OD600nm=4时开始补料,补料的流加速度是1000mL/h,所述补料的流加速度控制方法为:补料开始后的第一个小时控制流加速度为200mL/h,之后每2小时流加速度增加100mL/h;
(4)诱导:当OD600nm=4时开始添加1.0mM IPTG诱导鸡α干扰素的表达,最后进行蛋白纯化,得到目的蛋白。
上述各培养基组成如下:
LB培养基:每升H2O中蛋白胨10g,酵母粉5g,氯化钠10g;
发酵培养基:每升H2O中葡萄糖8g、蛋白胨5g、酵母粉5g、KH2PO43g、K2HPO4 2g、Na2HPO4·12H2O 3g、(NH4)2SO40.8g、NH4Cl 0.2g、MnSO4·5H2O 0.005g、CoCl2·6H2O 0.01g、Na2MoO4·2H2O 0.003g、ZnCl20.005、CuSO4·5H2O 0.005g、H3BO4 0.004g、FeSO4·7H2O 0.01g、CaCl2·2H2O 0.01、MgSO4·7H2O 0.6g、消泡剂0.2g;
补料培养基:每升H2O中葡萄糖220g、蛋白胨60g、酵母粉20g、MgSO4·7H2O 3g、NaCl 4g。
实施例4
一种鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法,包括以下步骤:
(1)种子活化:将表达鸡α干扰素的工程菌株大肠杆菌在固体LB培养基上活化,然后挑取一单菌落至50mL LB液体培养基中,在33℃,190rpm,培养16小时;再将得到的种子液按体积比4%的接种量接种至LB培养基中,在36℃,190rpm,培养10小时,得到发酵种子液;
(2)接种:向发酵罐中填充发酵培养基,然后按体积比9%的接种量将上述活化好的种子液接种至液体发酵培养基中;
(3)发酵:向发酵罐中通入空气或者空气/氧气的混合气体,通气量为3m3/h,发酵温度34℃,搅拌转数600rpm,溶氧控制在35%,pH控制在7.2,发酵时间21小时,当OD600nm=4时开始补料,补料的流加速度是300mL/h,所述补料的流加速度控制方法为:补料开始后的第一个小时控制流加速度为100mL/h,之后每4小时流加速度增加50mL/h;
(4)诱导:当OD600nm=4时开始添加0.5mM IPTG诱导鸡α干扰素的表达,最后进行蛋白纯化,得到目的蛋白。
上述各培养基组成如下:
LB培养基:每升H2O中蛋白胨10g,酵母粉5g,氯化钠10g;
发酵培养基:每升H2O中葡萄糖5g、蛋白胨5g、酵母粉10g、KH2PO4 2g、K2HPO4 1g、Na2HPO4·12H2O 7g、(NH4)2SO40.6g、NH4Cl 0.1g、MnSO4·5H2O 0.001g、CoCl2·6H2O 0.01g、Na2MoO4·2H2O 0.001g、ZnCl20.001g、CuSO4·5H2O 0.001g、H3BO4 0.012g、FeSO4·7H2O 0.02g、CaCl2·2H2O 0.01g、MgSO4·7H2O 0.1g、消泡剂0.3g;
补料培养基:每升H2O中葡萄糖260g、蛋白胨30g、酵母粉15g、MgSO4·7H2O 6g、NaCl 7g。
实施例5
一种鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法,包括以下步骤:
(1)种子活化:将表达鸡α干扰素的工程菌株大肠杆菌在固体LB培养基上活化,然后挑取一单菌落至50mL LB液体培养基中,在36℃,210rpm,培养20小时;再将得到的种子液按体积比3%的接种量接种至LB培养基中,在36℃,210rpm,培养9小时,得到发酵种子液;
(2)接种:向发酵罐中填充发酵培养基,然后按体积比7%的接种量将上述活化好的种子液接种至液体发酵培养基中;
(3)发酵:向发酵罐中通入空气或者空气/氧气的混合气体,通气量为4m3/h,发酵温度32℃,搅拌转数400rpm,溶氧控制在28%,pH控制在7.0,发酵时间20小时,当OD600nm=2时开始补料,补料的流加速度是800mL/h,所述补料的流加速度控制方法为:补料开始后的第一个小时控制流加速度为200mL/h,之后每3小时流加速度增加90mL/h;
(4)诱导:当OD600nm=6时开始添加0.6mM IPTG诱导鸡α干扰素的表达,最后进行蛋白纯化,得到目的蛋白。
上述各培养基组成如下:
LB培养基:每升H2O中蛋白胨10g,酵母粉5g,氯化钠10g;
发酵培养基:每升H2O中含有葡萄糖10g、蛋白胨5g、酵母粉5g、KH2PO43g、K2HPO4 3g、Na2HPO4·12H2O 4g、(NH4)2SO40.6g、NH4Cl 0.1g、MnSO4·5H2O0.006g、CoCl2·6H2O 0.01g、Na2MoO4·2H2O 0.001g、ZnCl20.001g、CuSO4·5H2O0.007g、H3BO4 0.006g、FeSO4·7H2O 0.01g、CaCl2·2H2O 0.02g、MgSO4·7H2O0.6g、消泡剂0.1g;
补料培养基:每升H2O中葡萄糖260g、蛋白胨30g、酵母粉15g、MgSO4·7H2O6g、NaCl 7g。
实施例6
一种鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法,包括以下步骤:
(1)种子活化:将表达鸡α干扰素的工程菌株大肠杆菌在固体LB培养基上活化,然后挑取一单菌落至50mL LB液体培养基中,在32℃,185rpm,培养21小时;再将得到的种子液按体积比5%的接种量接种至LB培养基中,在35℃,220rpm,培养11小时,得到发酵种子液;
(2)接种:向发酵罐中填充发酵培养基,然后按体积比7%的接种量将上述活化好的种子液接种至液体发酵培养基中;
(3)发酵:向发酵罐中通入空气或者空气/氧气的混合气体,通气量为3m3/h,发酵温度34℃,搅拌转数600rpm,溶氧控制在32%,pH控制在6.9,发酵时间19小时,当OD600nm=4时开始补料,补料的流加速度是500mL/h,所述补料的流加速度控制方法为:补料开始后的第一个小时控制流加速度为100mL/h,之后每3小时流加速度增加70mL/h;
(4)诱导:当OD600nm=5时开始添加0.8mM I PTG诱导鸡α干扰素的表达,最后进行蛋白纯化,得到目的蛋白。
上述各培养基组成如下:
LB培养基:每升H2O中蛋白胨10g,酵母粉5g,氯化钠10g;
发酵培养基:每升H2O中含有葡萄糖7g、蛋白胨7g、酵母粉7g、KH2PO42g、K2HPO41g、Na2HPO4·12H2O 2g、(NH4)2SO41.0g、NH4Cl 0.2g、MnSO4·5H2O0.001g、CoCl2·6H2O 0.004g、Na2MoO4·2H2O 0.004g、ZnCl20.005g、CuSO4·5H2O0.001g、H3BO4 0.002g、FeSO4·7H2O 0.02g、CaCl2·2H2O 0.01g、MgSO4·7H2O0.3g、消泡剂0.2g;
补料培养基:每升H2O中葡萄糖120g、蛋白胨60g、酵母粉35g、MgSO4·7H2O 2g、NaCl 3g。
实施例7
一种鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法,包括以下步骤:
(1)种子活化:将表达鸡α干扰素的工程菌株大肠杆菌在固体LB培养基上活化,然后挑取一单菌落至50mL LB液体培养基中,在37℃,190rpm,培养22小时;再将得到的种子液按体积比2%的接种量接种至LB培养基中,在35℃,190rpm,培养9小时,得到发酵种子液;
(2)接种:向发酵罐中填充发酵培养基,然后按体积比7%的接种量将上述活化好的种子液接种至液体发酵培养基中;
(3)发酵:向发酵罐中通入空气或者空气/氧气的混合气体,通气量为2m3/h,发酵温度34℃,搅拌转数500rpm,溶氧控制在34%,pH控制在6.8,发酵时间18小时,当OD600nm=2时开始补料,补料的流加速度是100mL/h。
(4)诱导:当OD600nm=4时开始添加1.0mM IPTG诱导鸡α干扰素的表达,最后进行蛋白纯化,得到目的蛋白。
上述各培养基组成如下:
LB培养基:每升H2O中蛋白胨10g,酵母粉5g,氯化钠10g;
发酵培养基:每升H2O中葡萄糖10g、蛋白胨10g、酵母粉5g、KH2PO4 4g、K2HPO4 4g、Na2HPO4·12H2O 2g、(NH4)2SO4 1.2g、NH4Cl 0.3g、MnSO4·5H2O 0.01g、CoCl2·6H2O 0.004g、Na2MoO4·2H2O 0.005g、ZnCl2 0.01g、CuSO4·5H2O 0.01g、H3BO40.002g、FeSO4·7H2O 0.01g、CaCl2·2H2O 0.04g、MgSO4·7H2O 0.6g、消泡剂0.1g;
补料培养基:每升H2O中葡萄糖130g、蛋白胨45g、酵母粉35g、MgSO4·7H2O 6g、NaCl5g。
实施例8
一种鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法,包括以下步骤:
(1)种子活化:将表达鸡α干扰素的工程菌株大肠杆菌在固体LB培养基上活化,然后挑取一单菌落至50mL LB液体培养基中,在31℃,180rpm,培养14小时;再将得到的种子液按体积比2%的接种量接种至LB培养基中,在31℃,200rpm,培养7小时,得到发酵种子液;
(2)接种:向发酵罐中填充发酵培养基,然后按体积比9%的接种量将上述活化好的种子液接种至液体发酵培养基中;
(3)发酵:向发酵罐中通入空气或者空气/氧气的混合气体,通气量为4m3/h,发酵温度37℃,搅拌转数800rpm,溶氧控制在40%,pH控制在6.8,发酵时间18小时,当OD600nm=3时开始补料,补料的流加速度是700mL/h,所述补料的流加速度控制方法为:补料开始后的第一个小时控制流加速度为200mL/h,之后每3小时流加速度增加70mL/h;
(4)诱导:当OD600nm=5时开始添加0.9mM IPTG诱导鸡α干扰素的表达,最后进行蛋白纯化,得到目的蛋白。
上述各培养基组成如下:
LB培养基:每升H2O中蛋白胨10g,酵母粉5g,氯化钠10g;
发酵培养基:每升H2O中葡萄糖5g、蛋白胨5g、酵母粉10g、KH2PO4 2g、K2HPO4 1g、Na2HPO4·12H2O 7g、(NH4)2SO4 0.6g、NH4Cl 0.1g、MnSO4·5H2O 0.001g、CoCl2·6H2O 0.01g、Na2MoO4·2H2O 0.001g、ZnCl20.001g、CuSO4·5H2O 0.001g、H3BO4 0.012g、FeSO4·7H2O 0.02g、CaCl2·2H2O 0.01g、MgSO4·7H2O 0.1g、消泡剂0.3g;
补料培养基:每升H2O中葡萄糖220g、蛋白胨60g、酵母粉20g、MgSO4·7H2O 3g、NaCl 4g。
实施例9
一种鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法,包括以下步骤:
(1)种子活化:将表达鸡α干扰素的工程菌株大肠杆菌在固体LB培养基上活化,然后挑取一单菌落至50mL LB液体培养基中,在35℃,200rpm,培养17小时;再将得到的种子液按体积比4%的接种量接种至LB培养基中,在35℃,200rpm,培养10小时,得到发酵种子液;
(2)接种:向发酵罐中填充发酵培养基,然后按体积比7%的接种量将上述活化好的种子液接种至液体发酵培养基中;
(3)发酵:向发酵罐中通入空气或者空气/氧气的混合气体,通气量为3m3/h,发酵温度35℃,搅拌转数500rpm,溶氧控制在38%,pH控制在7.0,发酵时间18小时,当OD600nm=3时开始补料,补料的流加速度是600mL/h,所述补料的流加速度控制方法为:补料开始后的第一个小时控制流加速度为150mL/h,之后每3小时流加速度增加80mL/h;
(4)诱导:当OD600nm=5时开始添加0.8mM IPTG诱导鸡α干扰素的表达,最后进行蛋白纯化,得到目的蛋白。
上述各培养基组成如下:
LB培养基:每升H2O中蛋白胨10g,酵母粉5g,氯化钠10g;
发酵培养基:每升H2O中葡萄糖20g、蛋白胨10g、酵母粉10g、KH2PO43g、K2HPO4 2g、Na2HPO4·12H2O 3g、NaCl 5g、消泡剂0.2g;
补料培养基:每升H2O中葡萄糖600g、酵母粉50g、蛋白胨25g、MgSO4·7H2O10g。
将实施例1-8之一所述各组分用量按照相同比例增加或减少,所得各组分的用量配比关系均属于本发明的保护范围。
上述实施例1-9之一所述各培养基的制备方法如下:
(一)LB培养基的制备方法:
(1)按上述各组分的配比精确称取规定重量的组分;
(2)在蒸馏水溶液中溶解;
(3)121℃,20分钟条件下灭菌,即得。
(二)发酵培养基的制备方法:
(1)按上述各组分的配比精确称取规定重量的组分;
(2)在蒸馏水溶液中溶解;
(3)用50%氨水溶液调节pH值至7.0;
(4)在发酵罐内,121℃,20分钟条件下灭菌,即得。
(三)补料培养基的制备方法:
(1)按上述各组分的配比精确称取规定重量的组分;
(2)在蒸馏水溶液中溶解;
(3)用50%氨水溶液调节pH值至7.0;
(4)装入补料瓶中在115℃,20分钟条件下灭菌,即得。
上述实施例1-9的发酵结果见表1。其中,
最终菌体OD600nm的测定方法为:菌体经过适当稀释后测定其600nm处吸光度;
最终菌体湿重的测定方法为:4500rpm,离心15min,弃上清,收集菌体,称重。
表1
试验例 | 最终菌体OD600nm | 最终菌体湿重 |
实施例1 | 68.4 | 89.4g/L |
实施例2 | 47.8 | 64.1g/L |
实施例3 | 61.8 | 83.3g/L |
实施例4 | 56.7 | 74.6g/L |
实施例5 | 66.2 | 85.5g/L |
实施例6 | 60.3 | 81.2g/L |
实施例7 | 42.4 | 61.5g/L |
实施例8 | 48.6 | 65.0g/L |
实施例9 | 38.5 | 57.3g/L |
上述参照实施例对该一种鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法及其制备方法进行的详细描述,是说明性的而不是限定性的,可按照所限定范围列举出若干个实施例,因此在不脱离本发明总体构思下的变化和修改,应属本发明的保护范围之内。
Claims (9)
1.一种鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法,其特征在于:
包括以下步骤:
(1)种子活化:将表达鸡α干扰素的工程菌株大肠杆菌在固体LB培养基上活化,然后挑取一单菌落至50mL LB液体培养基中,在30~37℃,180~220rpm,培养12~24小时;再将得到的种子液按体积比1%~5%的接种量接种至LB培养基中,在30~37℃,180~220rpm,培养6~12小时,得到发酵种子液,其中,所述LB培养基:每升H2O中蛋白胨10g,酵母粉5g,氯化钠10g;
(2)接种:向发酵罐中填充发酵培养基,然后按体积比5%~10%的接种量将上述活化好的种子液接种至液体发酵培养基中,其中,所述发酵培养基:每升H2O中含有葡萄糖5~10g、蛋白胨5~10g、酵母粉5~10g、KH2PO4 2~4g、K2HPO4 1~4g、Na2HPO4·12H2O 2~7g、(NH4)2SO4 0.6~1.2g、NH4Cl 0.1~0.3g、MnSO4·5H2O 0.001~0.01g、CoCl2·6H2O 0.004~0.01g、Na2MoO4·2H2O 0.001~0.005g、ZnCl20.001~0.01g、CuSO4·5H2O 0.001~0.01g、H3BO40.002~0.012g、FeSO4·7H2O 0.01~0.02g、CaCl2·2H2O 0.01~0.04g、MgSO4·7H2O 0.1~0.6g、消泡剂0.1~0.3g;
(3)发酵:向发酵罐中通入空气或者空气/氧气的混合气体,通气量为2~4m3/h,发酵温度30~37℃,搅拌转数300~900rpm,溶氧控制在20%~40%,pH控制在6.8~7.4,发酵时间11~24小时,当OD600nm=2~4时开始补料,补料的流加速度是100~1000mL/h,该补料培养基:每升H2O中葡萄糖120~260g、蛋白胨30~60g、酵母粉15~35g、MgSO4·7H2O 2~6g、NaCl 3~7g;
(4)诱导:当OD600nm=4~6时开始添加IPTG诱导鸡α干扰素的表达,最后进行蛋白纯化,得到目的蛋白。
2.根据权利要求1所述的鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法,其特征在于:所述发酵罐为50L发酵罐。
3.根据权利要求1所述的鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法,其特征在于:所述步骤(1)中单菌落培养时间为16~20小时。
4.根据权利要求1所述的鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法,其特征在于:所述步骤(3)中搅拌转数为400~600rpm,pH控制在7.0。
5.根据权利要求1所述的鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法,其特征在于:所述步骤(3)中溶氧控制在25%~35%。
6.根据权利要求1所述的鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法,其特征在于:所述步骤(3)中补料时间为OD600nm=3时。
7.根据权利要求1所述的鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法,其特征在于:所述步骤(3)中补料的流加速度控制方法为:补料开始后的第一个小时控制流加速度为100~200mL/h,之后每2~4小时流加速度增加50~100mL/h。
8.根据权利要求1所述的鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法,其特征在于:所述步骤(4)中诱导时间为OD600nm=5时。
9.根据权利要求1所述的鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法,其特征在于:所述步骤(4)中诱导剂IPTG浓度为0.5~1.0mM。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201210131732.5A CN102643888B (zh) | 2012-04-27 | 2012-04-27 | 一种鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201210131732.5A CN102643888B (zh) | 2012-04-27 | 2012-04-27 | 一种鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN102643888A CN102643888A (zh) | 2012-08-22 |
CN102643888B true CN102643888B (zh) | 2015-07-01 |
Family
ID=46656963
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201210131732.5A Active CN102643888B (zh) | 2012-04-27 | 2012-04-27 | 一种鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN102643888B (zh) |
Families Citing this family (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102851340A (zh) * | 2012-08-30 | 2013-01-02 | 郑州后羿制药有限公司 | 一种高效鸡基因工程鸡干扰素α的制备方法 |
CN107190033A (zh) * | 2017-07-11 | 2017-09-22 | 北京宝易生物技术有限公司 | 一种重组干扰素的基因工程菌的高密度发酵方法 |
CN107760644A (zh) * | 2017-12-06 | 2018-03-06 | 慎东 | 一种饲用大肠杆菌高密度发酵的培养基及其应用 |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101139570A (zh) * | 2007-04-16 | 2008-03-12 | 马润林 | 一种hpv l1蛋白原核表达的高密度发酵方法 |
CN101157724A (zh) * | 2007-11-06 | 2008-04-09 | 中国科学院微生物研究所 | 一种改良重组猪α干扰素蛋白及其编码基因与应用 |
CN102660613A (zh) * | 2012-04-27 | 2012-09-12 | 天津生机集团股份有限公司 | 用于重组鸡干扰素α的高密度发酵培养基及其制备方法 |
-
2012
- 2012-04-27 CN CN201210131732.5A patent/CN102643888B/zh active Active
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101139570A (zh) * | 2007-04-16 | 2008-03-12 | 马润林 | 一种hpv l1蛋白原核表达的高密度发酵方法 |
CN101157724A (zh) * | 2007-11-06 | 2008-04-09 | 中国科学院微生物研究所 | 一种改良重组猪α干扰素蛋白及其编码基因与应用 |
CN102660613A (zh) * | 2012-04-27 | 2012-09-12 | 天津生机集团股份有限公司 | 用于重组鸡干扰素α的高密度发酵培养基及其制备方法 |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
鸡α干扰素基因的克隆与表达;焦道忠等;《生物学杂志》;20081031;第25卷(第05期);第58-61页 * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN102643888A (zh) | 2012-08-22 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Elisashvili et al. | Recent advances in the physiology of spore formation for Bacillus probiotic production | |
CN102318737B (zh) | 一种无毒棉粕动物饲料的制备方法 | |
CN105062947B (zh) | 一种高芽孢率地衣芽孢杆菌的生产方法 | |
CN102392002B (zh) | 一种改进的大肠杆菌植酸酶htp6m及其基因和应用 | |
CN102643888B (zh) | 一种鸡α干扰素原核表达的高密度发酵方法 | |
CN103966297B (zh) | 一种枯草芽孢杆菌生产抗菌肽的发酵工艺 | |
CN102653725A (zh) | 一种凝结芽孢杆菌及其在混合发酵产l-乳酸中的应用 | |
CN102653724A (zh) | 一株干酪乳杆菌及其在发酵产l-乳酸中的应用 | |
CN105316306A (zh) | 一种利用重组大肠杆菌高效生产角蛋白酶的发酵方法 | |
CN108641996A (zh) | 一种地衣芽孢杆菌的发酵培养基及其生产方法 | |
CN103695512B (zh) | 一种发酵生产多粘菌素e的方法 | |
CN103509748B (zh) | 一种产磷脂酶c的重组大肠杆菌及制备磷脂酶c的方法和应用 | |
CN112831437B (zh) | 枯草芽孢杆菌及高产吲哚乙酸、高芽孢形成率的发酵方法 | |
CN106222122A (zh) | 大肠杆菌工程菌及其催化马来酸合成富马酸的方法 | |
CN103805660B (zh) | 一种利用廉价原料生产乳酸链球菌素的方法 | |
CN101139570A (zh) | 一种hpv l1蛋白原核表达的高密度发酵方法 | |
CN104974946A (zh) | 耐高渗透压的重组大肠杆菌及其应用 | |
CN103937717A (zh) | 一种高效提高枯草芽孢杆菌出芽率的方法 | |
CN103992966A (zh) | 一种甲基营养芽孢杆菌及其制备生物型肥料增效剂的方法 | |
CN101153297A (zh) | 米根霉菌球体单罐半连续高强度发酵高光学纯度l-乳酸新工艺方法 | |
CN102242092A (zh) | 一种家蚕肠道益生菌的分离鉴定及其酶基因的克隆与表达 | |
CN106701867B (zh) | 一种提高尼可霉素产量的方法 | |
CN103960483B (zh) | 一种主产纤维素酶饲用益生菌制剂的液态发酵生产方法 | |
CN103993057B (zh) | 重组人血管内皮抑素的诱导表达方法 | |
CN105368728B (zh) | 一株高产葡萄糖氧化酶的解脂耶氏酵母 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C14 | Grant of patent or utility model | ||
GR01 | Patent grant | ||
PE01 | Entry into force of the registration of the contract for pledge of patent right | ||
PE01 | Entry into force of the registration of the contract for pledge of patent right |
Denomination of invention: A type of chicken a High-density fermentation method for prokaryotic expression of interferon Effective date of registration: 20231030 Granted publication date: 20150701 Pledgee: Agricultural Bank of China Limited Tianjin New Technology Industrial Park Branch Pledgor: TIANJIN SHENGJI GROUP Co.,Ltd. Registration number: Y2023120000084 |