发明内容
本发明的目的是针对现有技术的上述缺陷,提供一种类受体蛋白激酶基因TaLRR-RLK2。
本发明的另一目的是提供该基因的表达载体。
本发明的又一目的是提供该基因和表达载体的应用。
本发明的目的可通过如下技术方案实现:
类受体蛋白激酶基因TaLRR-RLK2,来自普通小麦Prins-提莫菲维渐渗系IGVI465,其核苷酸序列为SEQ ID NO.1。
该类受体蛋白激酶基因编码的蛋白质TaLRR-RLK2,其氨基酸序列为SEQ ID NO.2。
含有所述的类受体蛋白激酶基因TaLRR-RLK2的表达载体。
所述的含有权利要求1所述的类受体蛋白激酶基因TaLRR-RLK2的表达载体优选以pBI220为出发载体,将权利要求1所述的TaLRR-RLK2基因插入pBI220的BamHI和KpnI酶切位点间所得。
所述的类受体蛋白激酶基因TaLRR-RLK2在构建抗白粉病小麦品种中的应用。
所述的含类受体蛋白激酶基因TaLRR-RLK2的表达载体在构建抗白粉病小麦品种中的应用。
有益效果:
本发明首次从小麦种克隆得到了一个类受体蛋白激酶基因TaLRR-RLK2及其所编码的蛋白质TaLRR-RLK2,为小麦中首次报道。将其插入表达载体pBI220,得到的该基因的过量表达载体导入感病小麦品种中,可以提高感白粉病小麦品种对白粉病的抗性。TaLRR-RLK2用于基因工程育种,将其导入易感白粉病小麦品种中,能够获得具备白粉病抗性的小麦种质。
具体实施方式
实施例1含有Pm6的小麦IGVI465中一个受白粉菌诱导的类受体蛋白激酶基因的克隆
本研究的前期已完成了对Pm6的精细定位。在精细定位的基础上,对Pm6所在区域与短柄草和水稻进行了比较基因组学研究,结果发现在Pm6所在区域小麦和水稻、短柄草具有很好的共线性(Bi Qin,Aizhong Cao et al.Collinearity-based marker mimng forthe fine mapping ofPm6,a powderymildew resistance gene in wheat.Theor Appl Genet.2011,123:201-218)。本研究在与Pm6所在区域具共线性的短柄草和水稻基因组序列中预测了一个富含亮氨酸的类受体蛋白激酶基因(LRR-RLK),预测在小麦IGVI465的Pm6所在区域也存在一个与模式物种中的类受体蛋白激酶基因同源的基因,这个基因可能是Pm6基因的候选基因。
根据水稻、短柄草的LRR-RLK基因,在外显子区域上设计引物RLK-F:TTCACGCCAATTTGAAAACA(SEQ ID NO.3)和RLK-R:CGATATTGCAGGCCCATAGT(SEQID NO.4)。因IGVI465在四叶期开始对白粉菌具有抗病性,推测其抗病基因的表达在四叶期才开始表达,所以为了从IGVI465中分离到抗病基因,对四叶期的IGVI465进行了白粉菌诱导,即将感病材料上繁殖的白粉菌孢子直接从叶片上抖落到IGVI465的叶片上,并于白粉菌接种后24小时取叶片供RNA提取。以IGVI465在四叶期受白粉菌诱导的叶片所提取的RNA反转录的cDNA为模板,以RLK-F和RLK-R为引物,进行RT-PCR,获得了一个3000bp左右的基因片段。该基因片段与水稻和短柄草的LRR-RLK同源,预测为小麦IGVI465中的LRR-RLK基因,命名为TaLRR-RLK2。
进一步根据TaLRR-RLK2的基因片段为模板,分别设计5’RACE和3’RACE引物,利用快速扩增cDNA末端技术(RACE),从IGVI465中克隆TaLRR-RLK2的5’端和3’端序列,进而获得TaLRR-RLK的全长序列。
5’RACE程序如下:5’RACE outer primer序列为“CCAGAAGAGATGAATCTCAAGAAAG”(SEQ ID NO.5),5’RACE inner primer序列为“CCTTTCTTATGTCAAAGTTCTGCTC”(SEQ IDNO.6)。以四叶期受白粉菌诱导的IGVI465的cDNA为模板,用5’RACE outerprimer和接头外引物(CCAGAAGAGATGAATCTCAAGAAAG,SEQ ID NO.13)进行第一轮PCR反应,取1μl第一轮PCR产物作为第二轮PCR模板,用5’RACE inner primer和接头内引物(CCTTTCTTATGTCAAAGTTCTGCTC,SEQ ID NO.14)进行第二轮PCR,第二轮PCR产物经琼脂糖凝胶电泳后,回收产物并克隆测序,分离到5’端片段。
3’RACE程序如下:3’RACE primer序列为“ATATATATGTCCAGGGTGAGCGTAA”(SEQID NO.7),通用引物AP序列为“GGCCACGCGTCGACTAGTACTTTTTTTTTTTTTTT”(SEQ IDNO.8)。以IGVI465的cDNA为模板,以3’RACE primer和AP为引物进行PCR扩增,PCR产物经琼脂糖凝胶电泳后,回收产物并克隆测序,分离到了3’端片段。
分别根据上述5’和3’端片段设计全长扩增引物TaLRR-RLK2-F(TAGAGCACCAGGCAGATAGCCA,SEQ ID NO.9)及TaLRR-RLK2-R(ACTGCAAATCGTACGCGCGTCCAA,SEQ ID NO.10),以四叶期IGVI465受白粉菌诱导后的cDNA为模板进行PCR扩增,将扩增产物回收并克隆,获得大小为3310bp的序列。序列分析显示该序列包含一个ORF,其中5’-UTR(非翻译区)44bp、3′-UTR 221bp、ORF(开放阅读框)3045bp(SEQ ID NO.1),编码1014个氨基酸(SEQ ID NO.2)。经SMART软件(http://smart.embl-heidelberg.de/)分析,该基因编码一个跨膜蛋白,在N端具有24个氨基酸组成的信号肽,一个由23个氨基酸组成的疏水跨膜域,胞内含有一个由268个氨基酸组成的丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶结构域(S/TPK)。水稻基因注释数据库GAAS(http://ricegaas.dna.affrc.go.jp/)分析发现该基因在胞外有11个富含亮氨酸重复(LRR),具有这种蛋白结构的基因为富亮氨酸重复的类受体蛋白激酶(Leucine Rich-RepeatReceptor-Like Kinases,LRR-RLKs),将该基因命名为TaLRR-RLK2。
实施例2TaLRR-RLK2基因瞬间表达载体的构建
以经白粉菌诱导的IGVI465中克隆的TaLRR-RLK2基因cDNA为模板,使用引物对RLK-ATG-BamHI-F(CGGGATCCATGGGGCGGAGGAGGCA,SEQ ID NO.11)和RLK-TGA-KpnI-R(GGGGTACCTCAACGGCCTTCGTCCA,SEQ ID NO.12)进行PCR扩增,回收扩增片段。用BamHI和KpnI对扩增产物进行双酶切,将酶切产物插入到BamHI和KpnI双酶切后的载体pBI220((Jefferson RA,Kavanagh TA,Bevan MW.GUS fusions:beta-glucuronidase as a sensitive and versatile gene fusion marker in higher plants.EMBO J.1987,6:3901-3907.)),将TaLRR-RLK2置于35S启动子后面的多克隆位点处。由此将目标基因TaLRR-RLK2克隆到强启动子35S的下游,获得表达载体pBI220:Ta-LRR-RLK2(图1)。经测序验证,表明载体构建成功。
实施例3利用瞬间表达方法将TaLRR-RLK2基因转入小麦叶片
瞬间表达方法是一种可靠且快速鉴定基因功能的方法(Schweizer,Pokorny et al.ATransient Assay System for the Functional Assessment of Defense-Related Genes in WheatMolecular Plant-Microbe Interactions.1999,12:647-654.)。本研究利用瞬间表达方法,将质粒DNA包裹到金属微粒外层,借助基因枪将金属微粒和基因轰击到小麦叶片的表皮细胞,然后统计轰击TaLRR-RLK2细胞的白粉菌吸器指数与未轰击TaLRR-RLK2细胞的白粉菌吸器指数,明确目标基因是否具有白粉病抗病功能。
载体DNA与金属微粒包裹的程序如下:
制备钨粉:称取30mg的钨粉于1.5ml eppendorf管中,加入1ml 70%酒精,涡旋3-5min后静置15min,使钨粉完全沉淀。12000rpm离心1min后弃上清。加入1ml ddH2O水,涡旋混匀后,离心弃上清(重复三次)。最后加入500μl 50%甘油涡旋混匀,以备用。
包裹子弹:吸取5μl涡旋均匀的钨粉于1.5ml的eppendorf管中,加入5μl质粒DNA(总量应为1μg)。边涡旋边向eppendorf管内滴加50μl 2.5M CaCl2,然后加入20μl 0.1M亚精氨(现配先用),涡旋3min。静置1min后离心2s,弃上清。加入140μl 70%酒精,充分涡旋,离心2s,弃上清。然后加入140μl 100%酒精,充分涡旋,离心2s,弃上清。最后加入15μl 100%酒精,充分涡旋,以备使用。
实施GUS基因单转化时,将含有GUS基因表达载体pAHC25(Christensen A H,Quail P H.Ubiquitin promoter-based vectors for high-level expression of selectable and/or screenable marker genes inmonocotyledonous plants.Transgenic Research,1996,5:213-218.)的质粒DNA与钨粉包裹;当实施TaLRR-RLK2与GUS基因共转化时,将含有TaLRR-RLK2基因表达载体pBI220:TaLRR-RLK2的质粒DNA与含有GUS基因表达载体pAHC25的质粒DNA按摩尔浓度1∶1的比例混合,包裹钨粉。当GUS基因与TaLRR-RLK2基因进行共转化时,Marker基因GUS转入的细胞也是TaLRR-RLK2转入的细胞。因GUS基因表达的细胞经染色整个细胞呈现蓝色,所以本研究以蓝色细胞作为TaLRR-RLK2的表达细胞。
基因枪轰击程序如下:剪下长约6cm的小麦幼苗叶片端部,平行贴在载玻片上,每张玻片贴6片叶片左右。基因枪使用PDS1000/He系统,采用1350psi的可裂膜片,真空度为28inHg。轰击后将叶片置于垫有润湿滤纸的瓷盘内,罩以打有小孔的保鲜膜,保湿并透气,18-20℃恢复培养4h后,高密度接种白粉菌分生孢子。接种48h后用GUS染液(配方为:0.1mol/LNa2HPO4z/NaH2zPO4缓冲液(pH7.0),含10mmol/L EDTA,5mmol/L铁氰化钾和亚铁氰化钾,0.1mg/ml X-Gluc,0.1%Triton X-100,20%甲醇,)真空渗透10min,37℃染色12h,然后用70%酒精脱色2天直至叶片变成白色为止,最后利用浓度为0.6%的考马斯亮蓝对白粉菌孢子染色。
实施例4TaLRR-RLK2抗病功能的分析
白粉菌侵入小麦叶片表皮细胞后,在表皮细胞中产生的指状物称为吸器。吸器不能正常产生是叶片细胞对白粉菌具有抗性的重要指标。在GUS表达的细胞中,吸器会被GUS染色液染成蓝色,在显微镜下容易辨认(图2)。在GUS基因转化细胞后,通过统计与白粉菌互作的GUS表达细胞中,吸器形成的细胞所占的比例(%),即为“吸器指数”(Schweizer,Pokorny et al.A Transient Assay System for the Functional Assessment of Defense-Related Genes in Wheat MolecularPlant-Microbe Interactions.1999,12:647-654.)。吸器指数越小,表明抗病性越强。本研究利用“吸器指数”作为抗病强弱的衡量指标。
当单转化GUS基因时,不含有Pm6的小麦Prins中的吸器指数为63.28%(统计了897个细胞),而含有Pm6的小麦IGVI465中的吸器指数为32%(统计了343个细胞),从这个数据可看出抗白粉病材料的吸器指数要显著低于感白粉病材料中的吸器指数。
当GUS基因与TaLRR-RLK2共转化感病小麦Prins后,统计了GUS基因表达(即TaLRR-RLK2表达)且有白粉菌互作的细胞的吸器指数,结果表明当TaLRR-RLK2转入后,Prins的吸器指数从63.28%降到37.55%(统计了1055个细胞),接近抗病小麦IGVI465的吸器指数32%(图3)。该结果说明,TaLRR-RLK2能显著的降低吸器指数,对白粉菌具有抗病作用,是Pm6的候选基因。