CN102526512B - 一种治疗帕金森病运动并发症的中药组合物及其应用 - Google Patents

Abstract

本发明涉及一种治疗帕金森病运动并发症的药物，它是由下列重量份的原料药制成：天麻10-22份、黄芪10-23份、熟地黄10-25份、白芍药10-32份、当归10-28份、钩藤10-20份。本发明还涉及上述药物在治疗帕金森病运动并发症中的用途。本发明的优点在于：本发明的药物其配伍符合中药“君臣佐使”原则，采用补肾固表法从病原根本入手，对症下药，辅助治疗帕金森病运动并发症疗效确切；本发明的药物由纯中药制成，具有无毒副作用、价格低等优点，易于被患者接受；本发明的药物药味数目少，原材料丰富，制备工艺简单，对环境友好，在治疗帕金森病运动并发症中有良好的应用前景。

Description

一种治疗帕金森病运动并发症的中药组合物及其应用

技术领域

本发明涉及一种治疗帕金森病运动并发症的中药组合物及其应用，具体地说，是以中草药为原料制备的中成药。 

背景技术

帕金森病（Parkinson’s disease，PD）是中老年人常见的神经系统退行性疾患，主要与黑质致密区多巴胺能神经元变性缺失及由此造成的黑质纹状体通路多巴胺递质减少有关。经过多年的临床实践，一般认为，左旋多巴仍是最有效的治疗帕金森病药物。但左旋多巴长期应用后大部分患者会出现症状波动、异动症（1evodopa-induced dyskinesia，LID）和精神症状，即PD运动并发症，加之实验室发现高浓度多巴胺（dopamine，DA）和左旋多巴会由于自身氧化产生自由基，可导致神经细胞变性坏死，因此，联合其他药物共同预防和治疗PD运动并发症十分迫切。 

近年研究表明，PD发生与表达D1受体的直接通路及其下游cAMP依赖性蛋白激酶（PKA）、ERK等信号转导通路被激活关系密切，其下游信号转导蛋白多巴胺和环磷腺苷调节的磷酸化蛋白-32（dopamine and cAMP-regulated phosphoprotein of Mr 32000，DARPP-32）的蛋白Thr75位点磷酸化表达的改变可能参与了异动症的发病。 

目前在PD运动并发症的治疗方面，主要采用COMT抑制剂、金刚烷胺、DR激动剂、L-dopa甲酯或乙酯等。如中国专利文献CN 200880108979.7，公布日2010年8月18日，公开了一种“用于改善帕金森病的运动并发症或精神症状的药剂”，所述的药剂具有5-羟色胺1A受体部分激动剂作用，同时对多巴胺D3受体具有激动剂作用，对于在反复给药左旋多巴时伴随产生的运动并发症具有改善和延迟发病的效果。但是西药治疗副作用较大，不如中药治疗安全可靠。我国在中医药治疗PD方面积累了丰富经验，总结其治疗原则有益气活血法，育阴潜阳法，平肝熄风法，揉筋熄风法，活血化瘀法和通络熄风等法则，用于治疗PD的中药组合物也有多种，但是关于缓解PD运动并发症的中药组合物却很少，如中国期刊《中华中医药杂志》，2011年6月第26卷第6期，刊出的“补肾活血颗粒治疗帕金森病运动并发症临床研究”，公开了补肾活血颗粒可以改善PD患者运动并发症症状，但是并未充分公开所述的补肾活血颗粒的药物组成和配比。因此，必须积极探索能有效治疗帕金森病运动并发症、安全可靠的药物，但是目前关于这类药物还未见报道。 

发明内容

本发明的目的是针对现有技术中的不足，提供一种治疗帕金森病运动并发症的药物。 

本发明的再一的目的是，提供一种上述药物的用途。 

为实现上述目的，本发明采取的技术方案是： 

一种治疗帕金森病运动并发症的药物，它是由下列重量份的原料药制成：天麻10-22份、黄芪10-23份、熟地黄10-25份、白芍药10-32份、当归10-28份、钩藤10-20份。

所述的药物是由下列重量份的原料药制成：天麻12-18份、黄芪13-18份、熟地黄13-18份、白芍药16-26份、当归12-18份、钩藤12-20份。 

所述的药物是由下列重量份的原料药制成：天麻18份、黄芪18份、熟地黄18份、白芍药22份、当归16份、钩藤16份。 

所述的药物的药剂是片剂、胶囊剂、颗粒、口服液、合剂或糖浆剂。 

为实现上述第二个目的，本发明采取的技术方案是： 

所述的药物在制备治疗帕金森病运动并发症药物中的应用。

本发明优点在于： 

1、本发明的药物其配伍符合中药“君臣佐使”原则，采用补肾固表法从病原根本入手，对症下药，辅助治疗帕金森病运动并发症疗效确切；

2、本发明的药物由纯中药制成，具有无毒副作用、价格低等优点，易于被患者接受；

3、本发明的药物药味数少，原材料丰富，制备工艺简单，对环境友好，在治疗帕金森病运动并发症中有良好的应用前景。

附图说明

附图1是不同剂量药物对LID大鼠模型AIM评分的影响。 

附图2是不同剂量药物对LID大鼠模型剂峰旋转次数的影响。 

附图3是LID大鼠模型纹状体区磷酸化ERK1/2表达的免疫组化图。 

附图4是LID大鼠模型纹状体区磷酸化ERK1/2表达的Western图谱。 

附图5是LID大鼠模型纹状体区磷酸化DARPP-32（THr75）表达的免疫组化图。 

附图6是LID大鼠模型纹状体区磷酸化DARPP-32（THr75）表达的Western图谱。 

附图7是LID大鼠模型纹状体区GRK6表达的免疫组化图。 

附图8是LID大鼠模型纹状体区GRK6表达的Western图谱。 

附图9是LID大鼠模型纹状体区β-arrestin1表达的免疫组化图。 

附图10是LID大鼠模型纹状体区β-arrestin1表达的Western图谱。 

具体实施方式

下面结合附图对本发明提供的具体实施方式作详细说明。 

实施例1  治疗帕金森病运动并发症的药物的制备（一）

天麻10份、黄芪23份、熟地黄10份、白芍药32份、当归10份、钩藤20份，常规方法煎煮。

实施例2  治疗帕金森病运动并发症的药物的制备（二）

天麻22份、黄芪10份、熟地黄25份、白芍药10份、当归28份、钩藤10份，常规方法煎煮。

实施例3  治疗帕金森病运动并发症的药物的制备（三）

天麻10份、黄芪10份、熟地黄25份、白芍药32份、当归10份、钩藤10份，常规方法煎煮。

实施例4  治疗帕金森病运动并发症的药物的制备（四）

天麻22份、黄芪23份、熟地黄25份、白芍药10份、当归28份、钩藤10份，常规方法煎煮。

实施例5  治疗帕金森病运动并发症的药物的制备（五）

天麻10份、黄芪23份、熟地黄10份、白芍药10份、当归10份、钩藤20份，常规方法煎煮。

实施例6  治疗帕金森病运动并发症的药物的制备（六）

天麻22份、黄芪10份、熟地黄10份、白芍药32份、当归28份、钩藤20份，常规方法煎煮。

实施例7  治疗帕金森病运动并发症的药物的制备（七）

天麻12份、黄芪18份、熟地黄13份、白芍药26份、当归12份、钩藤20份，常规方法煎煮。

实施例8  治疗帕金森病运动并发症的药物的制备（八）

天麻18份、黄芪13份、熟地黄18份、白芍药16份、当归18份、钩藤12份，常规方法煎煮。

实施例9  治疗帕金森病运动并发症的药物的制备（九）

天麻12份、黄芪13份、熟地黄18份、白芍药26份、当归12份、钩藤12份，常规方法煎煮。

实施例10  治疗帕金森病运动并发症的药物的制备（十）

天麻18份、黄芪18份、熟地黄18份、白芍药22份、当归16份、钩藤16份，常规方法煎煮。

需要说明的是，实施例1-10所述的常规方法煎煮是中药汤剂常规的制作方法，即将所述的原料药加水煎煮成汤剂。 

实施例11  治疗帕金森病运动并发症药物片剂/胶囊的制备

取实施例1-10任一所述的药物，加6-10倍量水，煎煮1-3小时，滤出药汁；再加6-10倍量水，煎煮0.5-2小时，滤出药汁；合并二次煎液，静置，滤取上清液，浓缩，放冷，加浓缩液2-3倍量酒精，搅拌沉淀过夜；取上清液，浓缩至稠浸膏；加入药用辅料（按照常规的方法选用药用辅料），真空干燥，粉碎制粒，压制成片剂或填充装胶囊。

实施例12  治疗帕金森病运动并发症药物颗粒的制备

取实施例1-10任一所述的药物，加6-10倍量水，煎煮1-3小时，滤出药汁；再加6-10倍量水，煎煮0.5-2小时，滤出药汁；合并二次煎液，静置，滤取上清液，浓缩，放冷，加浓缩液2-3倍量酒精，搅拌沉淀过夜；取上清液，浓缩至稠浸膏；加入药用辅料（按照常规的方法选用药用辅料），真空干燥，粉碎制粒，干燥，整粒，得20g颗粒，分装10g/袋。

实施例13  治疗帕金森病运动并发症药物合剂/口服液/糖浆剂的制备

取实施例1-10任一所述的药物，加6-10倍量水，煎煮1-3小时，滤出药汁；再加6-10倍量水，煎煮0.5-2小时，滤出药汁；合并二次煎液，静置，滤取上清液，浓缩，放冷，加浓缩液2-3倍量酒精，搅拌沉淀过夜；取上清液，浓缩至稠浸膏；加适当制药辅料（按照常规的方法选用药用辅料），制成合剂、口服液或糖浆剂。

实施例14  治疗帕金森病运动并发症药物疗效的动物实验

一、实验方法

1. 异动症（levodopa-induced dyskinesia，LID）模型制备和分组

腹腔注射3%戊巴比妥钠麻醉大鼠，严格平头颅位固定大鼠于脑立体定向仪，参照包新民所著大鼠脑立体定向图谱（DeWire SM, Lefkowitz RJ, Shenoy SK, et al. Beta arrestins and cell signaling. Annu Rev Physiol. 2007, 69: 483-510.），确定右侧前脑内侧束坐标：①前囟后3.7 mm，矢状缝右侧1.7 mm，颅骨骨膜下7.8 mm，门齿线2.4 mm；②前囟后4.4 mm，矢状缝右侧1.2 mm，颅骨骨膜下7.8 mm，门齿线2.4 mm。按上述确定的注射位点钻孔，用10μl的微量注射器抽取6-OHDA 6μl（含0.2％维生素C的生理盐水配置，浓度4 μg/μl），每点注射3μl，留针10 min后退针，缝合创面。3周后，大鼠腹腔注射阿朴吗啡（0.5 mg／kg），平均旋转频率>7次/min为成功PD大鼠模型。利用6-OHDA制备PD模型大鼠后，腹腔注射左旋多巴甲酯/苄丝肼（50 mg/kg左旋多巴甲酯和 25 mg/kg苄丝肼溶于含0.2%维生素 C的消毒生理盐水中）4周，制备LID大鼠模型，随机将LID大鼠模型分为：LID组、西药组、药物小剂量组、药物中剂量组、药物大剂量组。LID组为LID模型大鼠腹腔注射0.2%维生素C液29天。西药组为腹腔注射左旋多巴甲酯/苄丝肼（注射剂量为：50 mg/kg左旋多巴甲酯和 25 mg/kg苄丝肼，二者溶于含0.2%维生素 C的消毒生理盐水中），2次/d（上午9点和下午5点），持续29d；药物小剂量组、药物中剂量组、药物大剂量组在给予左旋多巴甲酯/苄丝肼的基础上分别加用实施例10制备的药物，按照50g原料药浓缩至100ml的比例煎煮，药物小剂量组7.2 ml/kg，药物中剂量组9 ml/kg，药物大剂量组10.8 ml/kg，每日1次灌胃，连续4周。在治疗过程中于第8、15、22、29天上午用药后进行异常不自主运动（AIM）评分及剂峰旋转次数测定。另设有以下对照组：sham组：正常大鼠，不作处理；假手术组：每日一次灌胃无菌水；生理盐水组：LID大鼠，腹腔注射含0.2%维生素 C的消毒生理盐水；PD组：PD模型大鼠。

2. AIM评定 

AIM分成4个组分（上肢AIM、口面部AIM、轴性AIM和旋转AIM）进行评定，每部分又根据其有无和严重程度分为5个等级（0-4）：0 无；1 持续时间小于30s；2 持续时间大于30s，小于60s；3 持续时间大于60s，外界刺激可使之停止；4 持续时间大于60s，外界刺激不能使之停止。用药后每20min评估一次，每次观察1min。AIM总分按观察时间内总积分的平均值进行统计，理论上1只大鼠一次用药后各组分AIM最大评分为4分，总AIM评分为16分。剂峰旋转次数：注射左旋多巴后，每5min记录旋转次数，最多的旋转次数为剂峰旋转次数。

3. 免疫组化染色 

结束注射后12h，3%戊巴比妥钠麻醉，于左心室灌注4%多聚甲醛固定，断头取脑后相同固定液中后固定8h，经修块、梯度酒精脱水、二甲苯透明、浸蜡后用石蜡包埋。行石蜡切片，切片厚度为5μm。取纹状体冠状层面采用链霉菌抗生物素蛋白-过氧化物酶连结（SP）法行免疫组化染色，步骤如下：石蜡切片脱蜡至水；3%双氧水室温避光孵育5min，以消除内源性过氧化氢酶活性；pH7.7的1nmol/l乙二胺四乙酸-三羟甲基氨基甲烷-氯化氢（EDTA-Tris-HCl）微波加热修复；1%牛血清白蛋白室温封20min；GRK6多克隆抗体（1∶200）、β-arrestin1多克隆抗体（1∶500）、兔抗鼠DARPP-32抗体（1∶500）、抗磷酸化DARPP-32（Thr75）抗体（1∶500）、兔抗大鼠总ERKl/2单克隆抗体（1∶500）和兔抗大鼠磷酸化ERKl/2单克隆抗体（1∶500）4℃湿盒内孵育过夜；滴加稀释的生物素标记二抗，37℃孵育20min；滴加稀释的辣根过氧化物酶标记链霉卵白素，37℃孵育20min；联苯二胺（3，3’-diaminobenzidine tetrahydrochloride，DAB）显色剂显色，自来水冲洗，之后脱水、透明、封片。各步骤之间均用0.01mol/l TBS充分漂洗，TBS代替一抗作为阴性对照。在显微镜下观察免疫组化切片，各观察区随机取5个不重叠视野，于高倍镜（10×40）下观察，采用OLYMPUS-IX50成相系统拍摄，Image-Pro Plus 5.1图象处理软件进行半定量分析，计算GRK6蛋白阳性细胞指数（IOD）=阳性细胞面积×校正光密度值（测量区光密度－背景光密度）。

4. Western blot蛋白免疫印迹 

结束注射后3h，快速冰上分离双侧纹状体，每10mg组织加入100μl蛋白裂解液RIPA和1μl蛋白酶抑制剂PMSF，超声裂解，提取总蛋白。测定蛋白浓度后于－80℃保存。40μg样本经10% SDS -聚丙烯酰胺凝胶电泳后，电转移至二氟化树（polyvinylidene fluoride，PVDF）膜，用5%脱脂奶粉洗脱缓冲液后室温封闭 1 h；加入抗GRK6抗体（1∶500）、抗β-arrestin1抗体（1∶500）、抗总DARPP-32抗体（1∶1000）或抗磷酸化DARPP-32（Thr75）抗体（1∶1000）、抗总ERKl/2抗体（1∶1000）或抗磷酸化ERKl/2抗体（1∶500）或抗β-actin（l∶1000），4℃孵育过夜；TBST冲洗，加HRP标记的山羊抗兔二抗 （1∶1000）或山羊抗小鼠二抗（1∶3000），37 ℃孵育1h；TBST冲洗，滴加ECL显色液，Bio-Rad凝胶成像仪曝光、显像。Western blot图像采用SmartView2000图像分析软件计算各样本目的蛋白条带OD值与面积值的乘积，从而进行蛋白条带密度定量。

4. 统计学方法 

采用 SPSS 13.0软件进行统计学处理。数据以均数±标准误表示，用单因素方差分析及独立T建议进行检验，P<0.05表示差异有统计学意义。

二、结果 

1. 不同剂量药物对LID大鼠模型行为学的影响

1.1 不同剂量药物对LID大鼠模型各组分AIM评分的影响

就口面部AIM评分而言，第8天各组间均值无显著差异（F=2.18，P >0.05），第15、22、29天各组间均值差异显著（F=10.43、F=11.70、F=15.62，P<0.01）。药物小剂量组与西药组比较，各天差异均不明显。第15、22、29天药物中剂量组比药物小剂量组明显降低，差异有统计学意义（t=5.06、t=5.48、t=5.46，均P<0.01）。药物中剂量组与药物大剂量组比较，无统计学差异。

就上肢AIM评分而言，第8、22、29天各组间均值差异有统计学意义（F=9.64、F=13.70、F=30.30，P<0.01），第15天各组间无明显差异。药物小剂量组与西药组比较，仅于第22天差异显著（t=5.69，P<0.01）。药物中剂量组于第8、15、22天与药物小剂量组比较差异不显著，仅于第29天差异有统计学意义（t=6.20，P<0.01），与西药组比较，第22、29天差异有统计学意义（t=3.11、t=7.30，均P<0.05）。药物大剂量组与药物中剂量组之间比较，第8、22天时差异有统计学差异（t=5.06、t=2.53，均P<0.05）；与西药组比较，第8、15、22、29天差异均有统计学意义（t=3.10、t=2.72、t=6.06、t=7.31，均P<0.05）。 

就轴向AIM评分而言，第8、15、22、29天各组间比较，均无统计学意义。 

就旋转AIM评分而言，第15、22、29天各组间均值差异显著（F=17.12、F=27.26、F=26.18，P<0.01）。第8、15、22、29天药物小剂量组与西药组比较均无统计学意义。第15、22、29天药物中剂量组与西药组比较，旋转AIM值均明显降低，差异有统计学意义（t=5.67、t=6.80、t=6.40，均P<0.01）。药物大剂量组比药物中剂量组第15、22天旋转AIM评分降低（t=2.43、t=2.32，均P<0.05）。（见表1） 

表1 药物小、中、大剂量组与西药组AIM评分的比较（ 

±S，分）

时间

组别

鼠数（只）

口面部

上肢

轴向

旋转

8d

西药组

5

2.49±0.31

2.75±0.15

3.14±0.64

3.58±0.26

药物小剂量组

5

2.38±0.33

2.8±0.09

3.01±0.58

3.6±0.19

药物中剂量组

5

2.36±0.30

2.83±0.10

3.04±0.59

3.40±0.19

药物大剂量组

5

1.98±0.37

2.47±0.12

2.84±0.49

3.29±0.24

15d

西药组

5

2.58±0.27

2.84±0.17

3.18±0.66

3.6±0.23

药物小剂量组

5

2.66±0.24

2.73±0.15

3.22±0.69

3.64±0.18

药物中剂量组

5

1.93±0.20

2.64±0.27

2.84±0.51

2.93±0.13

药物大剂量组

5

1.87±0.40

2.51±0.22

2.73±0.42

3.18±0.19

22d

西药组

5

2.69±0.29

2.91±0.12

3.18±0.66

3.62±0.22

药物小剂量组

5

2.53±0.27

2.51±0.10

2.96±0.56

3.38±0.10

药物中剂量组

5

1.78±0.16

2.62±0.17

2.78±0.47

2.82±0.15

药物大剂量组

5

1.92±0.41

2.36±0.16

2.60±0.34

3.02±0.12

29d

西药组

5

2.71±0.28

2.96±0.13

3.18±0.66

3.58±0.16

药物小剂量组

5

2.64±0.31

2.88±0.14

3.18±0.66

3.47±0.14

药物中剂量组

5

1.69±0.24

2.18±0.20

2.79±0.40

2.89±0.18

药物大剂量组

5

1.80±0.38

2.27±0.17

2.53±0.30

2.89±0.16

1.2 不同剂量药物对LID大鼠模型AIM评分的影响

用药第8、15、22、29天进行评分，结果显示西药组总AIM评分为（11.91±0.55）、（12.2±0.65）、（12.4±0.65）、（12.42±0.70）分，药物小剂量组总AIM评分为（11.80±0.42）、（12.24±0.78）、（11.38±0.37）、（12.16±0.64）分，二组比较，仅第22天差异明显（t=3.06，p<0.05）。而药物中剂量组与药物小剂量组比较，第15、22、29天药物中剂量组总AIM评分分别为（10.36±0.41）分、（10.00±0.29）分、（9.44±0.16）分，均低于药物小剂量组，差异有统计学意义（t=4.77、t=6.51、t=9.22，p<0.01）；药物大剂量组总AIM评分分别为（10.58±0.32）分、（10.29±0.41）分、（9.89±0.42）分、（9.49±0.49）分，仅于第8天较药物中剂量组的（11.62±0.45）分低（t=4.24，p<0.01），其余时间点药物大剂量组与药物中剂量组比较，差异无统计学意义（见图1，图1中#表示药物大剂量组与西药组比较，P<0.05；*表示药物大剂量组与药物小剂量组比较，均P<0.05；+表示药物大剂量组与药物中剂量组比较，P<0.01）。

1.3 不同剂量药物对LID大鼠模型剂峰旋转次数的影响 

于第8、15、22、29天分别进行剂峰旋转次数检测，药物小剂量组第22、29天该值为（139.8±8.76）次、（136.8±13.31）次，明显低于西药组（170.0±12.63）次、（169.2±8.79）次，差异有统计学意义（t=4.39、t=4.54，均p<0.01）。而第15、22、29天药物中剂量组剂峰旋转次数分别为（142.8±10.43）次、（139.4±19.78）次、（125.2±13.16）次，与西药组比较有明显差异（t=2.71、t=2.90、t=6.22, 均p<0.05）。药物大剂量组分别为（141.6±16.74）次、（128.0±12.14）、（120.0±13.66）次、（115.0±14.09）次，与药物中剂量组比较无明显差异，与药物小剂量组比较，第15、22、23天有显著差异（t=2.52、t=2.73、 t=2.52，均p<0.05）（见图2，#表示药物小剂量组与西药组比较，均P<0.01；*药物中剂量组与西药组比较，均P<0.01）。

2. 不同剂量药物对LID大鼠模型纹状体区信号蛋白的影响 

2.1 不同剂量药物对LID大鼠模型纹状体区磷酸化ERK1/2表达的影响

免疫组化显示各组总ERK1/2表达量无显著差异，对于磷酸化ERK1/2，损伤侧均值差异显著（F=108.79，P<0.01）。LID大鼠磷酸化ERK1/2阳性细胞指数为（8.09±0.37）×10⁴，明显高于sham组大鼠的（5.25±0.34）×10⁴，差异有统计学意义（t=39.84，P<0.01）。左旋多巴长期治疗后，磷酸化ERK1/2表达进一步升高至（8.87±0.23）×10⁴，差异有统计学意义（t=11.54，P<0.01）。加用本发明的药物治疗后，药物大、中、小剂量组磷酸化ERK1/2阳性细胞指数分别为（5.48±0.30）×10⁴、（5.03±0.55）×10⁴、（5.57±0.25）×10⁴，明显逆转了磷酸化ERK1/2表达的升高，与LID组比较，差异均有统计学差异（t=12.23、t=12.38、t=46.36，P<0.01）。而药物大、中、小剂量组之间比较，差异无统计学意义（见图3，A：sham组，B：LID组，C：西药组，D：药物小剂量组，E：药物中剂量组，F：药物大剂量组）。

Western结果与免疫组化基本一致，LID大鼠磷酸化ERK1/2的灰度值为（5.39±0.09）×10⁶，比sham组大鼠的（3.54±0.12）×10⁶明显增多（t=24.19，P<0.01）；左旋多巴长期治疗后即西药组，磷酸化ERK1/2的灰度值进一步升高至（5.56±0.16）×10⁶，但与LID组比较，差异无统计学意义。用药物大、中、小剂量组的大鼠纹状体磷酸化ERK1/2表达量分别为（3.58±0.14）×10⁶、（3.45±0.17）×10⁶、（3.65±0.15）×10⁶，与LID大鼠比较均有明显降低，差异有统计学意义（t=20.12、t=19.83、t=26.61，P<0.01）（见图4，1：sham组，2：LID组，3：西药组，4：药物小剂量组，5：药物中剂量组，6：药物大剂量组）。 

2.2 不同剂量药物对LID大鼠模型纹状体区磷酸化DARPP-32（THr75）表达的影响 

免疫组化显示各组损伤侧均值差异显著（F=132.42，P<0.01）。sham组大鼠磷酸化DARPP-32（THr75）表达量为（7.06±0.57）×10⁴，LID组为（3.85±0.30）×10⁴，明显降低，差异有统计学意义（t=16.30，P<0.01）。左旋多巴长期治疗后即西药组，磷酸化DARPP-32（THr75）表达进一步降低至（3.53±0.20）×10⁴，差异有统计学意义（t=6.49，P<0.01）。加用本发明的药物治疗后，药物大、中、小剂量组磷酸化DARPP-32（THr75）表达量分别为（8.54±0.17）×10⁴、（8.10±0.31）×10⁴、（7.06±0.69）×10⁴，明显逆转了磷酸化ERK1/2表达的降低，与LID组比较，差异有统计学意义（t=8.49、t=18.24、t=22.73，均P<0.01）。药物大、中、小剂量组之间比较，药物中剂量组比药物小剂量组磷酸化DARPP-32（THr75）表达有所增多，差异有统计学意义（t=3.48，P<0.05），药物大剂量组比药物中剂量组表达增多（t=3.13，P<0.05）。（见图5，A：sham组，B：LID组，C：西药组，D：药物小剂量组，E：药物中剂量组，F：药物大剂量组）。

Western结果与免疫组化结果基本一致，sham组大鼠磷酸化DARPP-32（THr75）的灰度值为（2.08±0.22）×10⁶，LID组为（1.08±0.12）×10⁶，明显降低，差异有统计学意义（t=16.53，P<0.01）；左旋多巴长期治疗后即西药组，磷酸化DARPP-32（THr75）灰度值进一步降低至（0.97±0.24）×10⁶，但与LID组比较，差异无统计学意义。用大、中、小剂量本发明的药物治疗后，大鼠纹状体磷酸化DARPP-32（THr75）灰度值分别为（2.40±0.09）×10⁶、（2.37±0.16）×10⁶、（1.44±0.14）×10⁶，与LID组大鼠比较，差异均有统计学意义（t=52.74、t=30.75、t=10.81，P<0.01）。但药物中剂量组、药物大剂量组逆转磷酸化DARPP-32（THr75）的程度大于药物小剂量组，几乎恢复到正常大鼠的水平。药物中剂量组与药物大剂量组之间比较，无明显差异（见图6，1：sham组，2：LID组，3：西药组，4：药物小剂量组，5：药物中剂量组，6：药物大剂量组）。 

2.3 不同剂量药物对LID大鼠模型纹状体区GRK6的影响 

免疫组化结果显示GRK6表达于细胞膜上。各组未损伤侧均值比较，差异无统计学意义（F=0.46，P>0.05），各组损伤侧均值差异有统计学意义（F=12.47, P<0.05）。LID大鼠损伤侧GRK6表达为（3.53±0.71）×10³，与正常大鼠的（6.20±0.59）×10³相比，明显降低（t=12.63，P<0.01）。随着左旋多巴治疗时间的延长，GRK6表达进一步减少至（2.45±0.58）×10³，但与LID组大鼠比较，无统计学差异（P>0.05）。而加用大、中、小剂量本发明的药物治疗的大鼠，各组纹状体损伤侧GRK6表达分别升高至（3.57±0.81）×10³、（3.80±0.84）×10³、（3.34±0.98）×10³，均比西药组大鼠有所升高，差异有统计学意义（t=3.23、t=3.23、t=4.17, 均P<0.05）。药物大、中、小剂量组之间比较，差异不显著（见图7，1：sham组，2：LID组，3：西药组，4：药物小剂量组，5：药物中剂量组，6：药物大剂量组；U：未损伤侧，L：损伤侧）。

Western结果与免疫组化基本一致。就每只大鼠而言，检测结果以损伤侧/未损伤侧的比值表示，β-actin作为内参。PD大鼠GRK6表达量为（81.42±5.94）%，较假手术组的（100.88±5.57）%降低（t=7.37，P<0.01）；左旋多巴长期治疗发展为异动症时，GRK6表达量进一步降低至（73.66±3.43）%，差异有统计学意义（t=3.11，P<0.05）；LID大鼠继续使用西药治疗后即西药组，GRK6表达量为（56.32±4.45）%，比生理盐水组大鼠的GRK6表达量减少，差异有统计学意义（t=6.56，P<0.01）。而加用本发明的药物治疗后，药物小剂量组大鼠纹状体GRK6表达量为（79.12±3.15）%，与西药组的大鼠比较无统计学差异，药物中剂量组（83.98±4.50）%较西药组GRK6表达量明显增多，差异有统计学意义（t=3.06，P<0.05），药物大剂量组表达量为（80.56±4.74）%，药物大、中剂量组之间比较，GRK6表达量差异无统计学意义（见图8，1’、2’：sham组，3’、4’：PD组，5’、6’：LID组，1、2：西药组，3、4：药物小剂量组，5、6：药物中剂量组，7、8：药物大剂量组； 1’、3’、5’、1、3、5、7：未损伤侧，2’、4’、6’、2、4、6、8：损伤侧）。 

2.4 不同剂量药物对LID大鼠模型纹状体区β-arrestin1的影响 

免疫组化显示β-arrestin1表达于细胞膜，各组损伤侧均值差异显著（F=12.34，P<0.05）。LID组大鼠β-arrestin1蛋白IOD值为（2.54±0.49）×10⁴，低于sham组大鼠的（4.54±0.63）×10⁴，差异有统计学意义（t=5.95，P<0.01）。左旋多巴长期治疗后即西药组，β-arrestin1表达进一步降低至（1.90±0.33）×10⁴，但差异无统计学意义。加用本发明的药物治疗后，药物大、中、小剂量组β-arrestin1蛋白IOD值分别为（2.34±0.45）×10⁴、（2.28±0.58）×10⁴、（3.4±1.01）×10⁴，逆转了大鼠纹状体损伤侧β-arrestin1表达的下降，特别是药物大剂量组大鼠β-arrestin1表达比西药组大鼠明显增多，差异有统计学意义（t=2.91，P<0.05）（见图9，1：sham组，2：LID组，3：西药组，4：药物小剂量组，5：药物中剂量组，6：药物大剂量组；U：未损伤侧，L：损伤侧）。

Western结果与免疫组化基本一致，PD大鼠β-arrestin1表达量为（76.66±5.12）%，比sham组大鼠的（101.86±6.79）%明显减少（t=11.48，P<0.01）；左旋多巴长期治疗后即西药组进一步降低至（65.44±6.68）%，差异有统计学意义（t=8.31, P<0.01）；LID大鼠继续使用左旋多巴治疗的西药组β-arrestin1表达量为（48.7±4.08）%，较LID对照组明显降低（t=5.56，P<0.01）。加用本发明的药物治疗后，仅药物大剂量组LID大鼠纹状体β-arrestin1表达量（56.54±3.52）%与LID组大鼠比较差异无统计学意义，药物中、小剂量组的β-arrestin1表达量分别是（53.74±2.81）%和（51.62±3.26）%，较LID组有进一步下降的趋势，但较西药组的LID大鼠下降幅度小（见图10，1’、2’：sham组，3’、4’：PD组，5’、6’：LID组，1、2：西药组，3、4：药物小剂量组，5、6：药物中剂量组，7、8：药物大剂量组； 1’、3’、5’、1、3、5、7：未损伤侧，2’、4’、6’、2、4、6、8：损伤侧）。 

综上所述，本发明的药物可以降低LID大鼠的异常不自主运动评分及大鼠剂峰旋转次数，降低了LID大鼠纹状体磷酸化ERK1/2表达水平，逆转磷酸化DARPP-32（THr75）表达的进一步下降，逆转了GRK6和β-arrestin1表达量的降低，起到了治疗异动症的作用，可以作为PD运动并发症治疗的有效辅助药物。 

以上所述仅是本发明的优选实施方式，应当指出，对于本技术领域的普通技术人员，在不脱离本发明方法的前提下，还可以做出若干改进和补充，这些改进和补充也应视为本发明的保护范围。 

Claims (5)

1.一种治疗帕金森病运动并发症的药物，其特征在于，它是由下列重量份的原料药制成：天麻10-22份、黄芪10-23份、熟地黄10-25份、白芍药10-32份、当归10-28份、钩藤10-20份。

2.根据权利要求1所述的药物，其特征在于，它是由下列重量份的原料药制成：天麻12-18份、黄芪13-18份、熟地黄13-18份、白芍药16-26份、当归12-18份、钩藤12-20份。

3.根据权利要求1所述的药物，其特征在于，它是由下列重量份的原料药制成：天麻18份、黄芪18份、熟地黄18份、白芍药22份、当归16份、钩藤16份。

4.根据权利要求1-3任一所述的药物，其特征在于，所述的药物的药剂是片剂、胶囊剂、颗粒、合剂或糖浆剂。

5.根据权利要求1-3任一所述的药物，其特征在于，所述的药物在制备治疗帕金森病运动并发症药物中的应用。

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