CN102405228A

CN102405228A - 纯化血浆蛋白的手段和其实现方法

Info

Publication number: CN102405228A
Application number: CN2010800170445A
Authority: CN
Inventors: G·佩雷; M·诺里
Original assignee: Universite de Montpellier I
Current assignee: LFB SA
Priority date: 2009-02-19
Filing date: 2010-02-19
Publication date: 2012-04-04
Anticipated expiration: 2030-02-19
Also published as: EP2398818B1; US9534012B2; IL214567A0; AU2010215304B2; JP2012518033A; BRPI1008044A8; FR2942233B1; WO2010094901A1; KR20110139199A; BRPI1008044A2; AU2010215304A1; PL2398818T3; ES2700225T3; JP2016028027A; EP2398818A1; IL214567A; US20120122179A1; CN102405228B; DK2398818T3; FR2942233A1

Abstract

本发明涉及用于选择性结合血浆蛋白的亲和基质，其包括固体基质材料，该固体基质材料上固定了与所述血浆蛋白特异性结合的脱氧核糖核酸适体。

Description

纯化血浆蛋白的手段和其实现方法

发明领域

本发明涉及可用作药物活性成分的血浆蛋白的纯化领域。

现有技术

血浆蛋白已经在很长时间内构成药物的活性成分。在用作药物活性成分的血浆蛋白中，特别应提及因子VII、因子VIII、凝血酶或von Willebrand因子。

迄今为止，血浆蛋白只是通过从人血浆中纯化获得。在过去数年间，一些血浆蛋白以在转基因哺乳动物的体液中(例如在转基因哺乳动物的乳中)生产的重组蛋白的形式获得。

在所有的情况下，含有待纯化的血浆蛋白的起始材料都由复杂构成的物质组成，其中目标蛋白与非常大量的物质组合存在，包括蛋白质、脂类、碳水化合物、氨基酸、矿物盐、细胞碎片和代谢废物如尿素、尿酸或胆红素。

因此，考虑到销售用于人类用途的药物所需的健康和规范特征，开发纯化血浆蛋白的方法是一项复杂的任务。

可以理解，在用于人类或兽医用途的药物中，用作活性成分的血浆蛋白应该以高度纯化的形式存在，且不与可能对生物体有害的不想要的物质相关，所述物质包括其他的血浆蛋白或者上述蛋白质的降解产物。

纯化各种血浆蛋白的方法是已知的，包括用于纯化因子VII、抗凝血酶III、纤溶酶原、因子VII或von Willebrand因子的方法。

所有已知的方法都包括一系列基于蛋白沉淀步骤、穿过层析基质然后顺序洗脱步骤、深层过滤步骤、超滤步骤或浓缩步骤的选择性步骤。

需要说明的是，不论所述方法是新颖的，还是这些方法是已知方法的适应性调整，或者甚至只是极小的适应性调整，开发凝血蛋白的纯化方法都需要长期的研究和连续的中间产物一致性的大量对照，以便保证所获得的终产物具有高纯度、未修饰的形式、基本不含不需要的物质，并且是无菌且无致热源的。特别是，对于具有酶活性的血浆蛋白，例如因子VII、VIII和XI，纯化的最终蛋白质必须是未激活的。然而，在任一种纯化步骤的过程中，包括在层析步骤的过程中，如果不能一直维持预先设定的条件，例如所使用的滤器或层析基质的质量、盐浓度或温度，凝血蛋白的激活都是易于诱导的。

上述内容至少部分解释了为何已知的方法不包含亲和层析步骤，所述步骤基于如下原理：将目标血浆蛋白的特异性的固定在植入层析基质上的配体上，然后在层析洗脱液中回收所述纯化的蛋白。

该技术的缺陷也解释了在纯化治疗目的蛋白质的方法中缺少亲和层析纯化步骤的原因，在所述技术中观察到了一部分植入亲和底物上的配体分子的脱离，所述配体分子被发现与洗脱液体积中的纯化的治疗性蛋白质相关联。可以理解，在包含纯化的血浆蛋白的药物中，存在可能对生物体有害的层析基质的组成物质将使患者的健康处于危险之中，并被药物管理条例所禁止。

虽然已知的纯化血浆蛋白的方法是令人满意的，但现有技术仍然需要替代的方法或者相比现有方法而言改善的方法。

发明概述

本发明涉及选择性结合血浆蛋白的亲和基质，包括其上固定了脱氧核糖核酸适体的固体基质材料，所述适体特异性的结合所述血浆蛋白。

本发明的目标还有将血浆蛋白固定在基质上的方法，包括这样的步骤，在所述步骤中，使含有所述血浆蛋白的样品与亲和基质接触。

本发明还涉及纯化血浆蛋白的方法，包括下列步骤：

a)使含有血浆蛋白的样品与上文定义的亲和基质接触，以便形成在(i)固定在所述亲和基质上的核酸适体和(ii)所述血浆蛋白之间的复合物，和

b)从步骤a)形成的复合物中释放蛋白质，和

c)以纯化的形式回收所述血浆蛋白。

还涉及重组人血浆蛋白的纯化的组合物，包含按重量计至少99.9％的所述重组人蛋白，并且基本不含非人蛋白。

附图说明

图1示例了在执行纯化兔奶中生产的重组人因子VII的方法中获得的层析图谱，使用的亲和基质中固定了抗人FV II核酸适体。

X轴：时间；y轴：254纳米处的吸光度值(OD)。

图2代表了在280nm处吸光度的测量值作为时间的函数的曲线。

图3是考马斯蓝染色的SDS PAGE电泳凝胶图，其能够相对定量条带。图3中的凝胶从左到右的泳道代表了下列起始产物的迁移结果：

-泳道“MD”：起始组合物

-泳道“NR”：对应图2的层析图谱的1号峰的非滞留级分，

-泳道“E1”：对应图2的层析图谱的2号峰的洗脱级分。

图4代表了在280nm处吸光度的测量值作为时间的函数的曲线。

图5是SDS PAGE电泳凝胶的图。图5中的凝胶从左到右的泳道代表了下列起始产物的迁移结果：

-泳道“E5”：含有通过MEP HyperCel层析步骤预先纯化的转基因人因子IX的转基因母猪奶的起始组分，

-泳道“E6”：对应图4的层析图谱的1号峰的非滞留级分，

-泳道“E7”：对应图4的层析图谱的2号峰的洗脱级分，

-泳道“E8”：对应图4的层析图谱的3号峰的再生级分，

-泳道“T FIX”：纯化的人血浆因子IX对照。

图6代表了在280nm处吸光度的测量值作为时间的函数的曲线。在图6中，1号峰对应于没有滞留在柱上的起始产物的级分。2号峰对应于洗脱级分。

图7代表了为了显示杂质的消除，通过硝酸银染色的SDS PAGE分析的起始产物以及洗脱产物的图像：泳道1对应于起始产物级分，泳道2对应于洗脱级分。尽管起始产物的纯度可观，但应注意到洗脱级分不再含有任何污染物或降解形式。

图8代表了Mapt2固定化适体与在转基因兔子的奶中生产的重组人因子VII的结合曲线。箭头对应于各次注射的时间，图8从左至右分别是：1：注射重组因子VII；2：注射含有1M NaCl的缓冲液；3：注射含有2M NaCl的缓冲液；4：注射含有3M NaCl的缓冲液；5：注射含有10mM EDTA的50mM Tris缓冲液。沿x轴：按秒表示的时间；沿y轴：反应信号的值，以任意单位(RU)表示。

图9代表了Mapt2固定化适体与在转基因兔子的奶中生产的重组人因子VII的结合曲线。箭头对应于各次注射的时间，图9从左至右分别是：1：50％丙二醇；2：10mM的EDTA。

发明详述

经过长期的研究，申请人开发了包括层析步骤的用于纯化血浆蛋白的方法，在所述步骤中，将特异性结合目标蛋白的配体预先固定在层析基质上，然后释放保留着所述基质上的目标蛋白，并回收洗脱体积中的纯化蛋白质。

更特别的是，根据本发明，提供了纯化血浆蛋白的方法，包括将目标血浆蛋白与基质特异性结合的步骤，所述基质上固定了特异性结合所述目标蛋白的脱氧核糖核酸适体，接着回收所述纯化的目标蛋白的步骤。

令人惊奇的是，根据本发明显示，固定了特异性针对目标血浆蛋白的脱氧核糖核酸适体的亲和层析基质，即，包括包含此类脱氧核糖核酸适体的固定化合物的形式，可成功的用于获得血浆蛋白的方法，其中所述血浆蛋白可用作药物的活性成分。

令人惊奇的是，根据本发明显示，通过使用脱氧核糖核酸(DNA)适体可以制备本说明书定义的亲和基质，然而现有技术中认为所述适体为不易使用的配体核酸，并且其与目标蛋白的特异性低于相应序列的RNA分子的特异性。特别的是，现有技术领域中认为配体DNA具有比相应的RNA更小的柔性，因此，配体RNA不太能进行构象改变。据回忆，核酸适体结合靶蛋白时发生构象改变。还描述了核酸适体的构象改变越快，所述核酸适体与靶蛋白的亲和力越高(Michaud等，2003，Anal Chem，第76卷：1015-1020；Brumbt等，2005，Anal Chem，第77卷：1993-1998)。

本发明的亲和基质还表现出能够从复杂成分的起始基质中纯化凝血蛋白，例如富含人因子IX的血浆组合物和人因子IX转基因的动物的奶，具有与所述目标凝血蛋白极大的结合特异性。

本发明的亲和基质还表现出能够从同时包含了非人的直向同源蛋白的起始基质中选择性纯化人凝血蛋白，例如从人因子IX转基因的动物的奶中，所述奶还包含由所述转基因动物天然生产的因子IX，由所述转基因动物天然生产的所述因子IX(或内源性FIX)可以是例如猪FIX。

本发明的亲和基质还表现出能够从也包含了非人的直向同源蛋白的起始基质中选择性纯化人凝血蛋白，例如从人因子VII转基因的动物的奶中，所述奶还包含由所述转基因动物天然生产的因子VII，由所述转基因动物天然生产的所述因子VII(或内源性VII)可以是例如兔FVII。

本发明涉及选择性结合血浆蛋白的亲和基质，包含其上固定了脱氧核糖核酸适体的固体基质材料，所述适体特异性的结合所述血浆蛋白，包括以包含此类脱氧核糖核酸适体的化合物的形式。

特异性结合目标血浆蛋白的脱氧核糖核酸适体的分子，以及包含此类脱氧核糖核酸适体的化合物，构成了由所述固体基质材料携带的、供所述靶蛋白特异性结合的位点。

术语“脱氧核糖核酸适体”包括具有长度为5至120个核苷酸且特异性结合血浆蛋白的单链脱氧核糖核苷酸。表述“包含脱氧核糖核酸适体的化合物”也包括在结构中包含上文定义的所述脱氧核糖核酸的化合物。因而，包含特异性结合人或哺乳动物血浆蛋白的脱氧核糖核酸的化合物包括在包含生物素分子的结构中包括所述脱氧核糖核酸的化合物。

本发明显示，如上定义的亲和基质允许有效的固定目标血浆蛋白，其在本说明书中也被称为“靶蛋白”。

上文定义的亲和基质具有吸附靶蛋白的高容量，因为使固体基质与含有待纯化的血浆蛋白的液体溶液接触使其能够饱和由固体基质携带的至少50％的靶位点。

本发明还显示，特异性结合脱氧核糖核酸适体分子的血浆蛋白分子之后可以以至少75％的高产量从亲和基质上洗脱。

此外，还显示本发明的亲和基质具有对目标血浆蛋白的高特异性，因为发现相对于洗脱液中含有的蛋白总重量，所述血浆蛋白具有按重量计高达99.95％的纯度。

如实施例所示，使用本发明的亲和基质可以进一步获得目标凝血蛋白的纯度增加2个数量级，使用包含高纯度的靶凝血蛋白的组合物作为起始产物，例如相对于所述起始产物中含有的总蛋白重量，按重量计大于98％。应说明的是，包括当起始产物中存在的杂质具有与需要纯化的靶凝血蛋白非常接近的结构或物理化学特征时，也可获得此类纯度的增加。

重要的是，显示特别对于从复杂组成的起始基质中纯化目标血浆蛋白，可获得本发明的亲和基质的上述高吸附容量、良好产量和高特异性的特征，所述复杂组成的起始基质为例如所述目标血浆蛋白转基因的哺乳动物的血浆或生物学液体。

还显示，核酸适体在固体基质材料上的固定是不可逆的和长期的，因为在洗脱溶液中检测不到存在从基质上脱离的脱氧核糖核酸适体。

特别的是，还显示通过消除洗脱后仍然结合在基质上的蛋白质，可以非常多次的“再生”本发明的亲和基质，而不显著的破坏(i)它的吸附靶血浆蛋白的容量，(ii)它对于所述靶蛋白的特异性，或者(iii)不存在释放固定在固体基质材料上的脱氧核糖核酸适体。此外，可以根据已知的技术和使用已知的再生试剂，例如尿素，进行本发明的亲和基质的再生。

用作目标血浆蛋白的配体的脱氧核糖核酸具有许多优点。由于其寡核苷酸的性质，适体具有弱免疫原性和对严格的物理化学条件(存在尿素、DMSO、非常酸或非常碱性的pH、使用有机溶剂或高温)的高抗性，在用作亲和配体的背景下允许以多种策略控制健康安全性，特别是对于病毒或非常规致病体的安全性。此外，它们是高度选择性的。最后，如已经提及的，脱氧核糖核酸适体的生产涉及相对有限的花费。

因而，本发明的亲和基质的上述特征的组合使所述亲和基质能够被用作纯化血浆蛋白的手段，因为

-所述亲和基质使其能够进行非常高纯度的血浆蛋白的纯化方法，

-所述亲和基质没有可检测地释放不希望的物质，特别是脱氧核糖核酸适体，到含有纯化的血浆蛋白的洗脱溶液中，

-脱氧核糖核酸适体分子可能的脱离没有导致对人健康的妨碍，

-当血浆蛋白具有酶活性时，亲和基质上的血浆蛋白的结合和之后的洗脱不导致形成可检测量的激活形式的所述血浆蛋白，

-所述亲和基质的生产是相对便宜的，特别是由于生产脱氧核糖核酸适体的低成本，和

-所述亲和基质用于纯化血浆蛋白的用途本身是相对便宜的，由于所述基质的长效性，特别是由于它在长时间段内可以多次再生。

此外，如已经提及的，在从复杂组成的基质(特别是从常规上在工业规模使用的基质中，例如人血浆或培养基或含有所述目标蛋白的生物学液体)中纯化的方法中，本发明的亲和基质能够以可逆的方式选择性的结合靶血浆蛋白，具有良好的产量和良好的特异性。

进一步的，如本说明书的后文中将详细描述的，本发明的亲和基质适合处理含有目标血浆蛋白的大量体积的溶液。因而，本发明的亲和基质构成了用于纯化血浆蛋白的工具，其完美的适用于工业规模。

本说明书随后将相对于对亲和基质本身的说明，或者相对于用于纯化血浆蛋白的方法(所述方法中可使用所述亲和基质)，来说明根据本发明的亲和基质的其他优点。

根据申请人掌握的知识，本发明首次描述了包含固定化的脱氧核糖核酸适体的亲和基质，用于在工业规模使用的条件下纯化血浆蛋白。多种特异性针对凝血酶、因子VII和因子IX的核酸适体更是现有技术中已知的(参见PCT申请号WO 02/26932)。然而，根据申请人掌握的知识，现有技术中从未描述过脱氧核糖核酸适体用于生产亲和基质的用途，所述亲和基质可在工业规模用于纯化血浆蛋白的方法中。

出于本说明书的目的，术语“选择性结合”意在表示目标血浆蛋白与亲和基质的成分固定化脱氧核糖核酸的特异性非共价结合，所述结合是可逆的(通过使亲和基质与合适组成的溶液相接触实现)，其中所述亲和基质上形成了在所述脱氧核糖核酸和所述目标蛋白之间的非共价复合物，所述溶液也可称为洗脱溶液。

根据本发明，术语“血浆蛋白”意在表示包含在血浆中的任何蛋白质，尤其是任何工业或治疗性目的的蛋白质。血浆蛋白包括白蛋白、α/巨球蛋白、抗胰凝乳蛋白酶、抗凝血酶、抗胰蛋白酶、Apo A、Apo B、Apo C、Apo D、Apo E、Apo F、Apo G、βXIIa、C1-抑制剂、C-反应蛋白、C7、C1r、C1s、C2、C3、C4、C4bP、C5、C6、C1q、C8、C9、羧肽酶N、血浆铜蓝蛋白、因子B、因子D、因子H、因子I、因子IX、因子V、因子VII、因子VIIa、因子VIII、因子X、因子XI、因子XII、因子XIII、纤维蛋白原、纤连蛋白、触珠蛋白、血液结合素、肝素辅因子II、富含组氨酸的GP、IgA、IgD、IgE、IgG、ITl、IgM、激肽酶II、激肽原HPM、溶菌酶、PAI 2、PAI 1、PCI、纤溶酶、纤溶酶抑制剂、纤溶酶原、前白蛋白、激肽释放酶原、备解素、蛋白酶连接蛋白INH、C蛋白、S蛋白、Z蛋白、凝血酶原、TFPI、巯基蛋白酶、血栓调节蛋白、组织因子(TF)、TPA、钴胺传递蛋白II、皮质激素运载蛋白、转铁蛋白、玻连蛋白和vonWillebrand因子。

特别的是，血浆蛋白包括凝血蛋白，换言之，参与导致血凝块形成的级联反应链中的所述血浆蛋白。凝血蛋白包括因子I(纤维蛋白原)、因子II(凝血酶原)、因子V(前加速素)、因子VII(前转变素)、因子VIII(抗血友病因子A)、因子IX(抗血友病因子B)、因子X(司徒因子)、因子XI(Rosenthal因子或PTA)、因子XII(Hageman因子)、因子XIII(纤维蛋白-稳定因子或FSF)、PK(前激肽释放酶)、HMWK(高分子量激肽原)、组织促凝血酶原激酶、肝素辅因子II(HCII)、C蛋白(PC)、血栓调节蛋白(TM)、S蛋白(PS)、von Willebrand因子(vWF)和组织因子途径抑制剂(TFPI)或其他组织因子。

在一些实施方案中，血浆蛋白由具有酶活性的凝血蛋白组成。

具有酶活性的凝血蛋白包括因子II(凝血酶原)、因子VII(前转变素)、因子IX(抗血友病因子B)、因子X(司徒因子)、因子XI(Rosenthal因子或PTA)、因子XII(Hageman因子)、因子XIII(纤维蛋白-稳定因子或FSF)和PK(前激肽释放酶)。

在一些优选实施方案中，血浆蛋白由天然的或重组的人血浆蛋白组成。

在优选的实施方案中，血浆蛋白是天然的或重组的人因子VII。

一般而言，可以固定本发明的适体的固体基质包括任何类型的基质，其具有常见于过滤基质、膜等的结构和组成。固体基质特别包括树脂、亲和层析柱树脂、聚合物珠、磁珠、顺磁珠、滤膜的基质材料等。固体基质还特别包括基于玻璃或金属的材料，例如不锈钢、金、银、铝、铜、硅、玻璃或陶瓷。固体基质还特别包括聚合物材料，例如聚乙烯、聚丙烯、聚酰胺、聚偏1，1-二氟乙烯及其组合。

在一些实施方案中，可以用材料包被固体基质，所述材料促进附着、结合、复合物形成、固定、或与适体的相互作用，或与包含所述适体的化合物的相互作用。

在一些实施方案中，固体基质是表面包被了一层金、一层经历了羧甲基化处理、一层葡聚糖、胶原、抗生物素蛋白、链霉抗生物素蛋白等的载玻片。

以这种方式，可以通过例如上述的附着包被(attachment coating)的手段，将根据本发明的适体或者包含根据本发明的适体的化合物固定在固体基质上，所述附着包被是通过产生共价键的化学反应，或者通过非共价键的结合，例如氢键、静电力、范德华力等。

实施例描述了固定了脱氧核糖核酸适体的根据本发明的亲和基质的实施方案，所述固定是通过结构中包括的化合物，通过与固体基质材料的非共价键实现的。

在实例中，特别描述了包含固体基质材料的亲和基质，所述材料的表面被移植了链霉抗生物素蛋白分子，脱氧核糖核酸适体包括在化合物的结构内，所述适体的一端与生物素分子偶联，并且所述适体通过在基质材料的链霉抗生物素蛋白分子和包含所述脱氧核糖核酸适体的化合物的生物素分子之间的非共价固定作用固定在所述固体基质材料上。

在实例中，描述了这样的亲和基质的实施方案，所述亲和基质包含移植了链霉抗生物素蛋白分子的基质材料。此类固体基质材料是易于商购的。

表述“特异性结合血浆蛋白的脱氧核糖核酸”或“适体”或“核酸适体”意指具有结合给定的目标血浆蛋白的能力的DNA(脱氧核糖核酸)分子，所述能力大于它结合任何其他的蛋白质的能力。

在一些实施方案中，根据本发明的亲和基质的构件核酸适体具有结合给定的人血浆蛋白的能力，所述能力大于它结合任何其他的人蛋白质的能力。

在一些实施方案中，根据本发明的核酸适体特别具有结合给定的人血浆蛋白的能力，所述能力大于它结合由非人哺乳动物的基因组编码的任何其他同源血浆蛋白的能力。作为示例，可用于本发明的亲和基质中的特异性针对人因子VII的核酸适体，具有结合人因子VII的能力，所述能力大于它结合源自非人哺乳动物的因子VII(包括兔因子VII)的能力。

出于本说明书的目的，第一脱氧核糖核酸适体具有结合人因子VII/VIIa的能力，所述能力大于相等质量的第二脱氧核糖核酸适体的所述能力，当使用任一种上述结合检测技术并在相同的测试条件下时，相比用第二脱氧核糖核酸适体所获得的信号，用第一脱氧核糖核酸适体获得了统计学显著更高的结合信号值。作为示例，当使用的结合检测技术是

技术时，不论所表达的共振测量单位，当第一脱氧核糖核酸适体的共振信号值统计学上高于所测量的第二脱氧核糖核酸适体的共振信号值时，第一脱氧核糖核酸适体具有结合人因子VII/VIIa的能力，所述能力大于相等质量的第二脱氧核糖核酸适体的所述能力。两个“统计学上”不同的测量值包括这样的两个值，所述的两个值之间的差异大于所使用的结合检测技术的测量误差。

优选的，本发明的亲和基质的脱氧核糖核酸适体具有与靶血浆蛋白的强亲和力。优选的，所述脱氧核糖核酸适体相对于所述靶血浆蛋白，具有小于500nM的K_d值。可以根据

技术测量K_d值。

作为示例，显示包含序列SEQ ID NO：86的核酸适体具有结合人因子VII/VIIa的能力，所述能力显著大于它结合源自非人哺乳动物的任何因子VII/VIIa的能力。特别的是，虽然包含序列SEQ ID NO：86的核酸的适体具有强的结合任何类型的人因子VII/VIIa的能力，包括天然的因子VII/VIIa或重组的因子VII/VIIa，但它与非人哺乳动物的基因组编码的因子VII/VIIa(包括兔因子VII/VIIa)结合的能力微弱或为零。

更特别的是，对于包含序列SEQ ID NO：86的核酸的适体，根据

技术确定，其结合人因子VII/VIIa的能力按解离常数Kd表示，是约100nM。此外，所述核酸适体相对于人血浆因子VII/VIIa以及重组的人血浆因子VII/VIIa(例如在转基因兔中生产的)，都具有相同的结合能力。

还显示在包含序列SEQ ID NO：86的核酸的适体和人因子VII/VIIa之间的复合物是化学计量的，即，序列SEQ ID NO：86的核酸的分子数与所复合的人因子VII/VIIa的分子数的比例是约1∶1，特别可以是1∶1。

如上文已提及的，本发明的亲和基质可用于纯化由非人转基因动物生产的重组人血浆蛋白的方法的步骤中。在纯化血浆蛋白的方法的此类实施方案中，复杂的起始基质包含重组的人蛋白作为与所述转基因哺乳动物天然生产的多种蛋白质的混合物，恰当时，包括与重组的人蛋白同源的血浆蛋白。可以理解，在此类实施方案中，本发明的亲和基质的构件核酸适体有利的选择性结合目标人蛋白，而在相同的操作条件下，不结合由非人哺乳动物天然生产的同源蛋白质。

在本发明的亲和基质的构件核酸适体的这些特定的实施方案中，所述适体“特异性”结合目标人血浆蛋白的能力还可以表示为分别针对人蛋白和非人哺乳动物同源蛋白的解离常数K_d的比例。

根据本发明的亲和基质的构件核酸适体的另一个特征，所述核酸适体特异性结合人血浆蛋白的能力还可以由下列条件(A)表示：

人K_d/非人K_d＜0.01(A)，其中：

-“人K_d”是核酸适体与所述人蛋白的解离常数，以摩尔单位表示，和

-“非人K_d”是所述核酸适体与非人同源蛋白的解离常数，以相同的摩尔单位表示。

优选的，对于本发明的亲和基质在纯化重组人血浆蛋白的方法中的优化使用，还可以通过人K_d/非人K_d的比例小于0.005来定义与所述重组人蛋白特异结合的核酸适体。

可以根据称为SELEX的技术来制备本发明的亲和基质的构件核酸适体。所使用的术语“适体”包括能够特异性结合蛋白质的单链脱氧核糖核酸(DNA)分子。适体一般包含5至120个核苷酸，并可根据称为SELEX(通过指数富集的配体系统进化)的方法在体外选择，所述方法最初特别描述在PCT申请号WO 1991/019813中。关于获得根据本发明使用的DNA适体，用于选择适体的SELEX方法在于使蛋白质与脱氧核糖核酸的组合文库(一般10¹⁵个分子)相接触；消除不结合靶的脱氧核糖核酸，分离并扩增结合靶的脱氧核糖核酸。重复所述方法直到溶液充分的富集了与目标蛋白具有良好亲和力的脱氧核糖核酸(Tuerk和Gold，“Systematicevolution of ligands by exponential enrichment：RNA ligands tobacteriophage T4 DNA polymerase”(1990)Science，249(4968)：505-10，和Ellington和Szostak，“In vitro selection of RNA molecules that bindspecific ligands”(1990)Nature Aug 30；346(6287)：818-22)。文件EP 0 786 469、EP 668 931、EP 1 695 978和EP 1 493 825中给出了SELEX方法的其他实例，在执行选择根据本发明使用的脱氧核糖核酸适体的方法中可以重复上述文件的教导。

对于它在纯化人因子VII/VIIa的手段中的用途，特异性结合目标血浆蛋白的脱氧核糖核酸优选的包括在化学结构中，在本说明书中也称为“化合物”，所述化学结构还包括间隔基和恰当时，包括固定在固体基质上的手段。

在一些实施方案中，脱氧核糖核酸适体包括在下列通式(I)的化合物的结构内：

[FIX]_x-[SPAC]_y-[APT](I)，其中：

-[FIX]表示固定在基质上的化合物，

-[SPAC]表示间隔基链，

-[APT]表示特异性结合血浆蛋白的脱氧核糖核酸，也称为脱氧核糖核酸适体，

-x是等于0或1的整数，和

-y是等于0或1的整数。

在通式(I)的化合物中，[SPAC]表示的间隔基链可以是任何已知的类型。所述间隔基链具有物理性分隔脱氧核糖核酸与固定了所述化合物的固体基质表面的功能，以及允许核酸相对于可固定的固体基质表面的相对运动性的功能。间隔基链限制或阻止了由于固体基质和核酸彼此过于靠近的空间位阻，从而阻碍所述核酸和可能与所述核酸相接触的血浆蛋白分子之间的结合事件。

在通式(I)的化合物中，间隔基链优选结合在脱氧核糖核酸适体的5’端或3’端。

有利的，间隔基链既结合在适体的一端也结合在固体基质上。该含有间隔基的构造具有不直接将适体固定在固体基质上的优点。优选的，间隔基链是非特异性的寡核苷酸或聚乙二醇(PEG)。当间隔基链由非特异性的寡核苷酸组成时，所述寡核苷酸长度上有利的包含至少5个核苷酸，优选长度在5和15个核苷酸之间。

在间隔基链由聚乙二醇组成的通式(I)的化合物的实施方案中，所述间隔基链包括PEG(C18)型的聚乙二醇，由例如Sigma Aldrich公司出售。

为了将适体固定在间隔基链上，可以用多种化学基团化学修饰脱氧核糖核酸，例如使其能够共价固定所述核酸的基团，例如巯基、胺或任何其他能够与存在于固体基质上的化学基团反应的基团。

在通式(I)的化合物中，化合物[FIX]由选自(i)能够与固体基质材料形成一个或多个共价键的化合物，和(ii)能够通过弱共价键特异性结合固体基质的化合物，所述弱共价键包括氢键、静电力或范德华力。

第一种类型的化合物[FIX]包括双功能偶联试剂，例如戊二醛、SIAB或者SMCC。

Hermanson G.T.(1996，Bioconjugate techniques，San Diego：Academic Press，第239-242页)描述的化合物SIAB是下列通式(I)的化合物：

化合物SIAB包括两个反应基，分别是碘乙酸基和硫代NHS酯基，这些基团分别与氨基和巯基反应。

由Samoszuk M.K.等(1989，Antibody，ImmunoconjugatesRadiopharm.，2(1)：37-46)描述的化合物SMCC是下列通式(II)的化合物：

化合物SMCC包括两个反应基，分别是硫代NHS酯基和马来酰亚胺基，这些基团分别与氨基和巯基反应。

第二种类型的化合物[FIX]包括生物素，其能够以非共价方式特异性的结合存在于移动基质上的抗生物素蛋白或链霉抗生物素蛋白分子。

现有技术中已知能够结合涉及凝血途径中的多种蛋白质的核酸适体，包括结合von Willebrand因子的适体(PCT申请号WO 2008/150495)、结合α-凝血酶(欧洲专利申请号EP 1 972 693)或凝血酶(Zhao等，2008，Anal Chem，Vol.80(19)：7586-7593)的适体、结合因子IX/IXa的适体(Subash等，2006，Thromb Haemost，第95卷：767-771；Howard等，2007，Atherioscl Thromb Vasc Biol，第27卷：722-727；PCT申请号WO2002/096926；美国专利号US 7,312,325)，和结合因子X/Xa的适体(PCT申请号WO 2002/096926；美国专利号US 7,312,325)。

现有技术中还描述了结合人因子VII/VIIa的核酸适体(Rusconi等，2000，Thromb Haemost，第84卷(5)：841-848；Layzer等，2007，Spring，第17卷：1-11)。

应说明的是，上述适体无一被描述了用于纯化其结合的靶蛋白的用途，其中所述适体即使不是唯一也主要由核糖核苷酸适体组成。

如已提及的，相比合成RNA适体的困难，脱氧核糖核酸适体的特定的优点是可以方便的生产，并且它们成本价也显著低于RNA适体的成本价。

本发明的目标还是用于纯化血浆蛋白的亲和层析装置，包括其中储存了合适量的如本说明书定义的亲和基质的容器。

用于层析基质的各种类型的容器是现有技术已知的，并包括在上述术语“容器”的含义内。此类容器的重要特征包括存在用起始样品填装亲和层析装置的手段，和在使其与亲和基质接触后输出液体的手段。

本发明的主题还是将血浆蛋白固定在支持体上的方法，包括将含有所述目标血浆蛋白的样品与上文定义的亲和基质相接触的步骤。

表述“含有血浆蛋白的样品”意在表示一般而言任何类型的液体溶液，其中所述血浆蛋白是悬浮的或是溶解的。本说明书随后将定义此类样品的特定实施方案，特别是关于后文描述的纯化方法的特定实施方案。

本发明还涉及纯化血浆蛋白的方法，包括下列步骤：

a)使含有血浆蛋白的样品与本说明书定义的亲和基质接触，从而形成在(i)固定在所述亲和基质上的脱氧核糖核酸适体和(ii)所述血浆蛋白之间的复合物，和

b)从步骤a)形成的复合物中释放蛋白质，和

c)以纯化的形式回收所述血浆蛋白。

在一些优选的实施方案中，所述样品含有人血浆蛋白。有利的，在这些实施方案中，含有目标血浆蛋白的样品由含有所述目标蛋白的液体样品组成，包括包含所述目标蛋白并且还能够含有非人哺乳动物的同源血浆蛋白的分子的液体样品。在上述纯化方法的一些实施方案中，所述样品由生物学溶液组成，例如体液、细胞、研磨的细胞材料、组织、研磨的组织材料、器官或完整的生物体。

在上述纯化方法的一些实施方案中，所述样品由来自动物的液体生物学溶液组成，例如血液、血液衍生物、哺乳动物的乳或哺乳动物的乳的衍生物。所述样品可以由血浆、血浆冷沉物、净化奶(clarified milk)或其衍生物。

在上述纯化方法的特别优选的实施方案中，所述样品源自目标人蛋白转基因的动物。有利的，所述溶液是来自哺乳动物的乳，或者来自用所述目标人蛋白转基因的哺乳动物的乳衍生物。出于本发明的目的，所述转基因动物包括(i)非人哺乳动物，例如奶牛、山羊、兔、猪、猴子、大鼠或小鼠，(ii)鸟类或者(iii)昆虫，例如蚊子、苍蝇或蚕。在一些优选的实施方案中，用目标人蛋白转基因的动物是非人转基因哺乳动物，完全优选的是用所述目标人蛋白转基因的母兔。有利的，转基因哺乳动物在其乳腺中生产所述重组的目标人蛋白，由于它的基因组中插入了包含编码所述目标蛋白的核酸的表达盒，所述核酸置于允许转基因蛋白在所述转基因哺乳动物的乳中表达的特定启动子的控制之下。

用于在转基因动物的乳中生产所述人血浆蛋白的方法可以包括下列步骤：将包含编码目标蛋白的基因的DNA分子整合到非人哺乳动物的胚胎中，所述基因置于在乳中天然分泌的蛋白质的启动子的控制之下(例如酪蛋白启动子、β酪蛋白启动子、乳清蛋白启动子、β乳球蛋白启动子或WAP启动子)。然后，将胚胎置于相同物种的哺乳动物雌性中。一旦由所述胚胎获得的哺乳动物发育充分，则诱导所述哺乳动物泌乳，然后收集所述乳。然后，所述乳含有重组的目标人蛋白。

在除人以外的哺乳动物雌性的乳中制备蛋白质的方法的实例见于文献EP 0 527 063，可以重复其教导来生产本发明的蛋白质。通过导入包含WAP基因启动子的序列，来生产含有WAP(乳清酸性蛋白)启动子的质粒，如此制备该质粒使得其能够接受置于WAP启动子的控制之下的外源基因。含有启动子和编码本发明蛋白的基因的质粒被用于通过显微注射到母兔胚胎的雄原核中获得转基因母兔。然后，将胚胎移入激素制备的雌性的输卵管中。使用从获得的年轻转基因兔中提取的DNA，通过Southern技术揭示转基因的存在。通过特定的放射性免疫测定，来评估动物乳中的浓度。

其他文献描述了在除人类以外的哺乳动物雌性的乳中制备蛋白质的方法。可提及但不限于文献US 7,045,676(转基因小鼠)和EP 1 739 170(在转基因哺乳动物中生产von Willebrand因子)。

本发明的纯化方法还优选的适合从人血浆中，或从人血浆的级分中，例如人血浆的冷沉级分中获得纯化的血浆蛋白。

在上述纯化方法的一些实施方案中，靶血浆蛋白是人的。

在上述纯化方法的一些实施方案中，样品包含至少一种非人的血浆蛋白。

在上述纯化方法的一些实施方案中，所述人血浆蛋白与所述非人的血浆蛋白是同源的。

在上述纯化方法的一些实施方案中，所述人血浆蛋白是所述非人的血浆蛋白的同源物。

在上述纯化方法的一些实施方案中，起始材料可以由粗制材料组成，是人血浆的样品或其级分，或者是对目标蛋白转基因的非人哺乳动物的体液，并含有待纯化的所述目标蛋白。转基因非人哺乳动物的体液包括乳或乳的级分，例如乳的脱脂级分，或者备选地耗尽了酪蛋白微团(casein-micelle-depleted)的级分。

然而，上述实施方案并非本发明的纯化方法的优选实施方案，特别是由于粗制起始样品中存在的多种蛋白质堵塞亲和基质的风险。

在优选的实施方案中，所述起始样品由在所述溶液中含有悬浮的目标血浆蛋白的液体溶液组成，所述液体溶液由在纯化血浆蛋白的多步骤方法中产生的中间产物组成。

为了阐明，对于从所述蛋白质转基因的非人哺乳动物的体液中纯化血浆蛋白的方法，起始样品可由使用所述非人转基因哺乳动物的乳的滤液进行的离子交换层析的洗脱液组成。实施例中阐明了本发明纯化方法的该特定的实施方案。

以相同的方式，对于从人血浆中纯化目标血浆蛋白的方法，起始材料可由对人血浆样品的冷沉级分进行深层过滤步骤的滤液组成。

一般而言，为进行本发明的纯化方法而使用亲和基质的条件与使用常规层析基质的常用条件非常相似，例如固定了配体抗体的免疫亲和基质类型。本领域技术人员可参考例如Bailon等的书籍(Pascal Bailon，George K.Ehrlich，Wen-Jian Fung和Wolfgang Berthold，An Overview of AffinityChromatography，Humana Press，2000)。

然而，如随后说明书中将详细说明的，本发明方法的洗脱步骤c)的条件是非常有利于纯化血浆蛋白的。

在步骤a)中，将合适体积的待纯化样品与亲和基质接触。在(i)固定在所述亲和基质上的核酸适体和(ii)包含在待纯化样品中的目标血浆蛋白之间形成复合物。

实施例中显示，当步骤a)中使用含有低浓度的MgCl₂的缓冲液，或者甚至不含MgCl₂的缓冲液时，改善了捕获因子VII的条件。

根据本发明，表达“含有低浓度的MgCl₂的缓冲液”意在表示最终的MgCl₂浓度小于1mM的缓冲液。

MgCl₂浓度小于1mM的缓冲液包括其中MgCl₂浓度小于0.5mM、0.1mM、0.05mM和0.01mM，有利的等于0mM的缓冲液。

在一个特定的实施方案中，方法包括步骤a’)用洗涤缓冲液洗涤亲和基质。有利的，方法包括步骤a’)洗涤亲和基质同时增加离子强度，即，使用这样的洗涤缓冲液，所述缓冲液的离子强度相比步骤a)的离子强度是增加的。有利的，相比步骤a)的离子强度，洗涤缓冲液的离子强度增加了2至500倍。有利的，相比步骤a)的离子强度，洗涤缓冲液的离子强度增加了100至500倍。

实施例中显示，步骤a’)中使用具有高离子强度、特别是高的NaCl浓度的洗涤缓冲液，使其能够有效去除与亲和基质非特异性结合的物质，同时不会以可检测的方式影响因子VII与亲和基质的结合。

在步骤a’)中，因而优选的使用具有至少1M的最终NaCl浓度的洗涤缓冲液。

根据本发明，具有至少1M的最终NaCl浓度的洗涤缓冲液包括具有至少1.5M、2M、2.5M或至少3M的最终NaCl浓度的洗涤缓冲液。

优选的，方法的步骤a’)中使用的洗涤缓冲液具有最多3.5M的最终NaCl浓度。有利的，方法的步骤a’)中使用的洗涤缓冲液具有在1.5和3.5之间的，优选在2和3.5之间的，优选在2.5和3.5之间的，优选在3和3.5之间的最终NaCl浓度。

实施例中还显示在步骤a’)中使用的洗涤缓冲液具有高疏水性，特别是高的丙二醇浓度，使它能够有效去除与亲和基质非特异性结合的物质，同时不会以可检测的方式影响因子VII与亲和基质的结合。

因而在步骤a’)中，优选的使用具有至少20％(v/v)的最终丙二醇含量的洗涤缓冲液。

根据本发明，具有至少20％的最终丙二醇含量的洗涤缓冲液包括相对于洗涤缓冲液的总体积，具有按体积计至少25％、30％、35％、40％、45％、50％、55％或至少60％的最终聚乙二醇含量的洗涤缓冲液。

优选的，在方法的步骤a’)中使用的洗涤缓冲液具有最多50％的最终丙二醇含量。有利的，在方法的步骤a’)中使用的洗涤缓冲液具有在20％和50％之间，优选在30％和50％之间的最终丙二醇含量。

根据一个特定的实施方案，步骤a’)中使用的洗涤缓冲液同时含有如上所述的NaCl和丙二醇。

步骤b)由洗脱已在步骤a)的过程中与核酸适体形成复合物的目标血浆蛋白分子的步骤组成。

如实施例中阐明的，上述纯化方法的特定的优点是能够通过使复合物与二价离子螯合剂如EDTA接触来进行洗脱步骤，所述复合物是在(i)固定在所述亲和基质上的核酸适体与(ii)所述血浆蛋白之间形成的。

由于本发明的亲和基质的特征产生的该技术优点允许在不需要依赖使用任何激烈的洗脱条件的条件下洗脱血浆蛋白，所述激烈的洗脱条件能够使目标血浆蛋白至少部分变性。所述被避免的激烈条件包括将酸性pH用于洗脱步骤，这是已知常用于纯化亲和基质上的蛋白质的方法，特别是用于包含固定化抗体的亲和基质。

因而，在上述纯化方法的一些实施方案中，通过使亲和基质与含有二价离子螯合剂(优选EDTA)的洗脱缓冲液接触而进行步骤b)。

作为说明，洗脱缓冲液可含有至少1mM和最多30mM的最终EDTA浓度。

表达“至少1mM”包括至少2、3、4、5、6、7、8、9或10mM。

表达“最多30mM”包括最多29、28、27、26、25、24、23、22、21、20、19、18、17、16、15、14、13、12或11mM。

在步骤c)中，通过收集在步骤b)结束时获得的洗脱液，回收纯化的目标血浆蛋白。

在步骤c)结束时，获得目标血浆蛋白的纯化的液体组合物。然后，可以根据任何已知的调节和储藏蛋白质的技术，恰当的处理所述纯化的液体组合物，包括直接装瓶或用合适的溶液稀释后装瓶，或者冻干，优选在无菌和无致热源的条件下，然后储藏在恰当的条件下，根据所选择的调节类型为室温、-4℃或低温。

如本说明书之前已提及的，随着用于纯化目标血浆蛋白的连续循环，本发明的亲和基质可以经历吸附能力的降低，例如由于这样的事实，即洗脱步骤c)不能够系统地释放所有的血浆蛋白分子，从而减少了用于随后纯化循环的自由适体位点数。

因此，对于所有的已知层析基质，为了从所述基质上释放所有的血浆蛋白分子，必须以恰当的次数进行再生亲和基质的步骤，并去除可能与亲和基质的固体材料结合(一般是通过非特异性结合)的任何物质。

因而，在一些实施方案中，本发明的纯化方法包括额外的步骤d)：通过使所述亲和基质与再生溶液接触而再生所述亲和基质。

用于再生层析基质，特别是亲和层析基质的各种缓冲液是本领域技术人员已知的，并可用于本方法的步骤d)中。本领域技术人员可以参考例如Mohr等的书籍(Affinity Chromatography：Practical and TheoreticalAspects，Peter Mohr，Klaus Pommerening，Edition：illustrated，CRC Press，1985)。

作为说明，可以通过如实施例所示例的使所述基质与50mM Tris、50％乙二醇缓冲溶液接触，进行步骤d)的再生亲和基质。

如实施例中示例的，上述纯化方法使其能够获得非常高纯度的血浆蛋白，任选相对于包含在纯化的终产物中的蛋白质总重量，按重量计大于99.5％的纯度。

上述纯化方法的另一个优点(特别是在起始样品由这样的样品组成的实施方案中，所述起始样品由包含重组形式的目标人血浆蛋白与非人转基因哺乳动物天然生产的蛋白质的混合物组成)是包含高纯度的重组目标人蛋白的最终组合物基本不含源自所述转基因哺乳动物的蛋白质，并且特别是基本不含所述哺乳动物的蛋白质，其是所述重组人蛋白的同源物。

作为说明，实施例中已显示在转基因兔的乳中生产，然后用本说明书定义的纯化方法进行纯化的重组人因子VII，包括相对于初始包含在起始样品中的所述蛋白质的重量，按所述转基因哺乳动物的蛋白质的重量计少于1.5％。在根据本发明的纯化方法的相同实现中，存在于起始样品中的按重量计85％的重组人因子VII关于重组人因子VII以大于所存在的蛋白质重量的99.95％的高纯度包含在最终产物中。

本发明的主题还是包含按所述重组人蛋白的重量计至少99.9％的重组人血浆蛋白的纯化组合物，并且其基本不含非人蛋白质。

本发明还涉及重组人血浆蛋白的纯化组合物，所述组合物包含按重量计至少99.9％的所述重组人蛋白和按重量计最多0.01％的非人蛋白质，重量百分比是相对于所述纯化组合物的蛋白质总重量表示的。

在上述纯化组合物中，“至少99.9％”包括至少99.91％、99.92％、99.93％、99.94％、99.95％、99.96％、99.97％、99.98％和99.99％。

在上述纯化组合物中，“最多0.01％”包括最多0.09％、0.08％、0.07％、0.06％、0.05％、0.04％、0.03％、0.02％和0.01％。

本发明还涉及可用作药物的如上文定义的纯化组合物。

本发明还涉及这样的药物组合物，其包含如上文定义的重组人血浆蛋白的纯化组合物，以及一种或多种可药用赋形剂的组合。

本发明还涉及如上文定义的纯化组合物，用于治疗凝血功能障碍。

本发明还涉及如上文定义的纯化组合物的用途，用于生产治疗凝血功能障碍的药物。

可以根据本发明有利使用的特异性结合凝血蛋白的适体的特定实施方案如下所述。

可以根据本发明有利使用的适体的特定实施方案

申请人构建了一类特异性结合血浆蛋白的核酸适体，特别是结合人因子VII/VIIa的核酸适体，其能够表现出在(i)共同结构特征和(ii)共同功能特征之间存在关系。

从结构的观点出发，可以根据本发明有利使用特异性结合人因子VII/VIIa的核酸或核酸适体的家族包括至少15个连续核苷酸的多核苷酸，其与下列通式(I)的核酸具有至少40％的核苷酸同一性：

5′-[SEQ ID No.1]x-[]-[SEQ ID No.2]y-3′(I)，

其中：

-“SEQ ID No.X”由选自核酸序列SEQ ID NO：3至SEQ ID No.85，和SEQ ID No.87至SEQ ID No.100的核酸组成，

-“x”是等于0或1的整数，和

-“y”是等于0或1的整数。

在一些实施方案中，核酸序列SEQ ID No.X具有15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49或50个核苷酸的长度。

在其他实施方案中，核酸序列SEQ ID No.X具有43、44、45、46、47、48或49个核苷酸的长度。

在其他一些优选的实施方案中，核酸序列SEQ ID No.X具有43、44或45个核苷酸的长度。

如之前已提及的，通式(I)的核酸长度为至少15个核苷酸。

在一些实施方案中，通式(I)的核酸长度为至少15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63、64、65、66、67、68、69、70、71、72、73、74、75、76、77、78、79、80或81个核苷酸，包括刚好具有每种所述长度的核酸。

在用于获得通式(I)的适体的方法的一些实施方案中，为了构建特异性结合血浆蛋白的目标核酸家族而进行的连续选择循环导致在每一个连续选择步骤中，分离和表征了核酸适体的集合和子集，其5’和3’端分别包含序列SEQ ID No.1和SEQ ID No.2，结构上设计了可变序列SEQ ID No.X。在本发明的核酸适体的主要家族中，所有的可变序列SEQ ID No.X之间具有至少40％的核苷酸序列同一性。这意味着对于SEQ ID No.X，为了保留结合血浆蛋白的性质，结构限制远小于分别位于这些核酸适体的5’和3’端的序列的结构限制。

当整数“x”等于0和整数“y”等于1时，本发明的核酸适体包括核酸，其包含与下列通式(l-1)的核酸具有至少40％核苷酸同一性的多核苷酸的至少15个连续核苷酸：

5′-[SEQ ID No.X]-[SEQ ID No.2]-3′ (I-1)。

当整数“x”等于1和整数“y”等于0时，本发明的核酸适体包括这样的核酸，其包含与下列通式(l-2)的核酸具有至少40％核苷酸同一性的多核苷酸的至少15个连续核苷酸：

5′-[SEQ ID No.1]-[SEQ ID No.X]-3’ (I-2)。

当整数“x”等于0和整数“y”等于0时，本发明的核酸适体包括这样的核酸，其包含与下列通式(l-3)的核酸具有至少40％核苷酸同一性的多核苷酸的至少15个连续核苷酸：

5’-[SEQ ID No.X]-3’ (I-3)。

因此，上述核酸适体包括包含这样的多核苷酸的至少15个连续核苷酸的核酸，所述多核苷酸与选自核酸序列SEQ ID No.3至SEQ ID No.85和SEQ ID No.87至SEQ ID No.100的核酸的核酸具有至少40％核苷酸同一性。

一般而言，与第二多核苷酸或核酸具有至少40％核苷酸同一性的第一多核苷酸与所述第二多核苷酸或核酸具有至少41％、42％、43％、44％、45％、46％、47％、48％、49％、50％、51％、52％、53％、54％、55％、56％、57％、58％、59％、60％、61％、62％、63％、64％、65％、66％、67％、68％、69％、70％、71％、72％、73％、74％、75％、76％、77％、78％、79％、80％、81％、82％、83％、84％、85％、86％、87％、88％、89％、90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、98％或100％核苷酸同一性。

在包含SEQ ID No.X的本发明核酸的一些实施方案中，所述序列SEQID No.X选自具有这样的序列的至少15个连续核苷酸的核酸，所述序列与SEQ ID No.3至SEQ ID No.85和SEQ ID No.87至SEQ ID No.100的至少一个序列具有至少40％的核苷酸同一性。

在包含序列SEQ ID No.X的本发明核酸的一些实施方案中，所述序列SEQ ID No.X选自与SEQ ID No.3至SEQ ID No.85和SEQ ID No.87至SEQ ID No.100的至少一条序列具有至少41％、42％、43％、44％、45％、46％、47％、48％、49％、50％、51％、52％、53％、54％、55％、56％、57％、58％、59％、60％、61％、62％、63％、64％、65％、66％、67％、68％、69％、70％、71％、72％、73％、74％、75％、76％、77％、78％、79％、80％、81％、82％、83％、84％、85％、86％、87％、88％、89％、90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、98％或100％核苷酸同一性的核酸。

由上述内容可得知，本发明包括一类具有上文定义的通式(I)系列的至少15个连续核苷酸的单链核酸。

出于本发明的目的，通过对比较窗口优选比对的两条序列进行比较，确定两条核酸序列之间的“百分比同一性”。

因而，在比较窗口中的核苷酸序列部分可以包括相比参照序列(不包括这些添加或这些缺失的序列)的添加或缺失(例如“空位”)，使得获得两条序列之间的最佳比对。

如下计算百分比同一性，通过确定在两条比较序列中观察到的相同核酸碱基的位置数，然后用两个核碱基之间相同的位置数除以比较窗口中的位置总数，然后将所述结果乘以100以便获得两条序列彼此的百分比核苷酸同一性。

可以使用已知的算法，通过计算机进行用于比较的序列的最佳比对。

完全优选的，通过CLUSTAL W软件(版本1.82)，确定百分比序列同一性，固定的参数如下：(1)CPU MODE＝ClustalW mp；(2)ALIGNMENT＝“full”；(3)OUTPUT FORMAT＝“aln w/numbers”；(4)OUTPUT ORDER＝“aligned”；(5)COLOR ALIGNMENT＝“no”；(6)KTUP(字大小)＝“默认值”；(7)WINDOW LENGTH＝“默认值”；(8)SCORE TYPE＝“百分比”；(9)TOPDIAG＝“默认值”；(10)PAIRGAP＝“默认值”；(11)PHYLOGENETIC TREE/TREETYPE＝“none”；(12)MATRIX＝“默认值”；(13)GAP OPEN＝“默认值”；(14)END GAPS＝“默认值”；(15)GAP EXTENSION＝“默认值”；(16)GAP DISTANCES＝“默认值”；(17)TREE TYPE＝“cladogram”和(18)TREE GRAP DISTANCES＝“隐藏”。

通过下列实施例阐明本发明。

实施例

实施例1：制备亲和基质

从由移植了链霉抗生物素蛋白的基质(链霉抗生物素蛋白-琼脂糖

)组成的固体基质材料制备亲和基质。

将体积1ml的凝胶置入由柱(内径11mm)组成的容器中。为了去除储存的溶剂，用纯化水洗涤凝胶。

凝胶的特征是：

-生物素吸附容量：≥85纳摩尔/ml凝胶

-功能测试：在AT下，30分钟的过程中捕获＞99％的生物素化凝血酶

-其他测试：不含蛋白酶、不含核酸内/外切酶、不含RNA酶

-防腐剂：100mM磷酸钠pH7.5+NaN₃ 0.02

将装填好的柱(凝胶床高度＝1cm)的出口与装备了254nm的UV滤光片的吸光度检测仪和记录装置连接。

将序列SEQ ID No.86的生物素化的抗人FVII核酸适体溶解在纯化水中，终浓度为0.5mg/0.187ml，即0.1mM的终摩尔浓度。根据标准循环，在95℃激活核酸适体溶液，用于将适体固定在固体基质材料上。

用4.8ml纯化水和之后1.5ml Me⁺⁺缓冲液(5x浓缩的)预稀释核酸适体溶液。

将吸光度检测仪调节至1AUFS(满刻度吸光度单位)，并在0.575 AU₂₅₄记录该溶液的254nm的OD。

将生物素化核酸适体的溶液注射到预装填的链霉抗生物素蛋白-琼脂糖凝胶上，用蠕动泵以2.5ml/分的流速循环，即，24秒凝胶上的接触时间(入口/出口I/O)。在这些条件下，254nm的OD在0.575 AU₂₅₄下快速的稳定，即，91％的理论偶联值，即0.455mg的核酸适体/毫升凝胶。

为了去除没有特异性结合移植到固体基质材料上的链霉抗生物素蛋白分子的核酸适体，用10mM CaCl₂+4mM MgCl₂缓冲液洗涤，然后在2MNaCl中进行。

实施例2：纯化重组人因子VII的方法

使用根据PCT申请号WO2008/099077所述技术制备的FVII/FVIIa的纯化制品，测试适体亲和基质。

制备待纯化的样品

起始生物学材料是含有重组人FVII的转基因兔奶。表达盒包括置于β-酪蛋白基因启动子控制下的人FVII转基因。

简而言之，在分娩后第4天和第12天之间的第一次泌乳时，从2只兔子中收集140毫升乳。

在收集的乳中，酰胺分解性FVII(可生物学激活的FVII)的平均滴度是928IU/ml。乳储藏在-80℃的温度下。

为了测试，将兔奶在37℃温度的水浴中解冻，然后用柠檬酸钠溶液稀释，产生在pH7.5下62g/l的最终柠檬酸盐浓度。

柠檬酸钠的处理使得能够将磷酸钙酪蛋白微团(phosphocalcic caseinmicelle)去稳定化。

然后，通过一系列滤器将乳的富含脂类的蛋白质溶液澄清，所述滤器分别是15至0.5μm孔隙度阈值的深层滤器，和之后(ii)0.2μm的滤膜。

在体积为16ml的MEP-

层析凝胶(Pall BioSepra)上预纯化体积为360ml的过滤溶液，其具有198IU/ml的FVII滴度，即36mg的转基因FVII。该捕获凝胶使得能够去除95％的奶蛋白，包括大部分的酪蛋白，同时保留FVII初始量的60％。

使用体积20ml的Q-

XL凝胶(GE Healthcare)，通过离子交换层析纯化在上述步骤结束时获得的17.5mg量的低纯度FVII(～5％)，用体积为78ml的、含有5mM氯化钙的缓冲液洗脱人FVII。酰胺分解性FVII的浓度是337IU/ml，即0.17mg的FVII/ml，而通过280nm的OD测量，估计总蛋白质浓度为0.18mg/ml，^1％＝13，即FVII纯度为94％。

在该阶段，源自兔奶的残留蛋白质是难以与FVII分离的，因为存在结构的同源性，如GLA结构域或EGF结构域蛋白，或者因为物理化学的同源性(相似的离子电荷和/或分子大小)。通过正交技术(在羟基磷灰石凝胶上的分离与尺寸排阻层析的组合)，常规的技术允许提高纯度达到99.95％。然而，为了在人体中重复注射，遗传重组蛋白可接受的外源蛋白的负荷必须不超过50ppm，即纯度＞99.995％。此类纯度似乎只能在亲和基质上纯化后才可获得。

在本发明的亲和基质上纯化重组人FVII的步骤

在上述步骤结束时获得的体积6ml的纯化人FVII(1.1mg的FVII)溶液被用于用本发明的亲和基质以高纯度水平纯化重组人FVII的步骤。

将预调节至4mM MgCl₂和10mM CaCl₂和pH 7.5的前述步骤中获得的FVII溶液注射到适体-琼脂糖凝胶(亲和基质)上，蠕动泵流速为0.1ml/分，即10分钟的与亲和基质的接触时间(I/O)。

在注射后，在pH7.5的50mM tris+NaCl 50mM+4mM MgCl₂+10mM CaCl₂中洗涤凝胶。

收集10ml非吸附体积的溶液。

用pH7.5的50mM tris+EDTA 10mM缓冲液洗脱FVII。根据OD图谱进行洗脱峰的收集。

根据摩尔计算，固定在亲和基质上的核酸适体的量是17纳摩，对于与FVII分子摩尔比摩尔的相互作用，对应于0.9mg FVII的亲和基质绝对容量。

图1阐明了在兔奶中生产的重组人FVII的层析图谱，在254纳米连续监测吸光度值(OD)。

在图1中，在注射(1)时候后的吸附曲线的拐点(2)表示重组人FVII对亲和基质开始饱和。在时间(3)，停止注射重组人FVII。为了阐明图1的时间的线性刻度，指出了在注射起始时间(1)和注射结束时间(3)之间的持续时间为10分钟。用目标凝血蛋白持续的饱和亲和基质：已经在(i)亲和基质的抗FVII核酸适体和(ii)待纯化的组合物中初始含有的重组人FVII分子之间形成了复合物。在待纯化的组合物已通过柱后，进行用上文说明的洗涤缓冲液洗涤柱的洗涤步骤(6)。然后，通过在时间(4)注射包含10mM的最终EDTA浓度的缓冲液，进行洗脱步骤。吸收峰表示重组人FVII从核酸适体/重组FVII复合物中的释放。应注意，重组人FVII分子是快速释放的，因此以小体积释放。因而，通过本发明的亲和基质，获得具有高浓度的重组人FVII蛋白的洗脱溶液。在时间(5)，用50mM tris缓冲液进行亲和基质的再生步骤。在(7)可见的吸收峰对应于由于再生步骤而从亲和基质中释放的物质。

亲和基质的动态结合容量

下表1给出了测试的结果，其显示亲和基质的0.45至0.49mg/ml的动态结合容量，即50至55％的可生物利用的配体。

在EDTA中，计算的动态洗脱是约75％。

表1：适体-琼脂糖基质测试的重组人FVII和总蛋白质结果：

开始：起始样品

最终：级分组合物

DBC：动态结合容量

DE：动态洗脱；其代表在洗脱的重组FVII和吸附的重组FVII之间的比例，按百分比表示。

亲和基质的特定的分离容量

通过特异性针对兔奶蛋白质的ELISA测定法，按照特异性评估亲和基质。

下表2中显示了结果。

表2：亲和基质的特异性结果：

上表2中的结果显示获得了适体-琼脂糖去除的2 log₁₀的平均值，使转基因人FVII的纯度从98.3％到99.95％。这显示适体对人FVII的良好的特异性，和与剩余的兔奶蛋白质非常少的相互作用。

在洗脱前，通过用溶液(例如2M NaCl和/或50％的丙二醇或乙二醇)进行中间洗涤，能够进行改善(如果在这些条件下FVII是不被洗脱的话)。

实施例2的结果阐明了适体-琼脂糖凝胶(Apta-2)上的亲和基质的优秀特征，具有至少1mg的FVII/mg配体的动态结合容量和至少75％的洗脱产量。还用纯度的明确改善(～99.95％)良好建立了特异性，具有剩余兔奶蛋白质RMP的2 log₁₀去除。在这2个非优化测试中，最终水平都达到了约500ppm。

实施例3：纯化人血浆因子IX的方法

A.材料和方法

A1.亲和层析基质

Mapt-1亲和凝胶材料，没有间隔基，理论的配体密度0.46mg/ml∶体积1ml。

通过化学偶联反应，将适体直接结合在层析基质材料上。

使用的适体是序列SEQ ID No.101的适体。

A2.起始产物

起始产物由富含源自人血浆的因子IX的组合物组成，由LFB以商标名

出售。

注射的起始材料：Betafact MPVP(60％纯度的血浆FIX)，负荷200IU(即，800μg)的因子IX/ml凝胶，接触时间10分钟。

A3.纯化程序

凝胶平衡：0.050M Tris-HCl，0.010M CaCl₂，pH 7.5，

洗脱： 0.020M Tris-HCl，0.010M EDTA， pH 7.5，

再生： 0.020M Tris-HCl，1M NaCl，50％丙二醇，pH7.5。

通过测量在波长280纳米处的吸光值，检测蛋白质峰。

A4.SDS PAGE凝胶上电泳分析程序

10孔NOVEX凝胶(Invitrogen)，4-12％，Bis-Tris；MES运行缓冲液，在200V迁移50min，CBB(G250)或AgNO₃(GE试剂盒)染色。

B.结果

图2和3中阐明了结果。

图2代表在280nm处吸收的测量值作为时间函数的曲线。在图2中，1号峰对应于不滞留在柱中的起始产物级分。2号峰对应于洗脱级分。3号峰对应于通过进行再生步骤从基质解吸附的级分。

图3是SDS PAGE电泳凝胶的图像。在图3的凝胶中从左至右，泳道代表下列起始产物的迁移结果：

-泳道“MD”：

起始组合物，

-泳道“NR”：对应图2的层析图谱的1号峰的非滞留级分，

-泳道“E1”：对应图2的层析图谱的2号峰的洗脱级分。

表3

阶段	％FIX
		起始产物	51％
非滞留	44％
		洗脱液	100％

表3概括了通过积分各种级分中的电泳图谱所获得的FIX的纯度百分比。根据本领域技术人员普遍已知的程序计算％FIX，通过定量积分用CBB染色的凝胶电泳条带的密度(数值数据对应于图3)。可以通过用合适的扫描仪扫描，来获得电泳条带密度的定量积分。

图3和表3呈现的结果证实了图2的结果。这些结果阐明了固定适体的层析基质允许从复杂的基质例如富含因子IX的血浆级分中特异性纯化人因子IX。

可以总结，洗脱液表现出良好的电泳纯度，并且以维持了FIX的功能性这一事实来表征。该实验显示了序列SEQ ID No.101的适体直接偶联层析基质，因此在缺少间隔基链时结合和纯化含血浆杂质的复杂基质中的FIX的能力。

实施例4：纯化包含在转基因母猪奶提取物中的重组因子IX的方法

A.材料和方法

A1.亲和层析基质

在没有间隔基链的条件下，通过直接偶联而其上固定Mapt-1适体的亲和凝胶材料。理论的配体密度0.46mg/ml∶体积1ml。

通过化学偶联反应，将适体直接结合在层析基质材料上。

使用的适体是序列SEQ ID No.101的Mapt1适体。

A2.起始产物

起始产物由澄清并在MEP HyperCel上预纯化的转基因母猪乳组成：1.8％纯度。为了去除柠檬酸钠，样品对用于吸附/平衡树脂的缓冲液透析。负荷为302 IU(即1200μg)因子IX/ml。

A3.纯化方案

凝胶平衡：0.050M Tris-HCl，0.010M CaCl₂，pH 7.5，

洗脱： 0.020M Tris-HCl，0.010M EDTA， pH 7.5，

再生： 0.020M Tris-HCl，1M NaCl，50％丙二醇，pH7.5。

用0.1ml/min的流速注射样品10min，然后以0.5ml/min洗涤凝胶5min。通过0.5ml/min的流速注射2ml各种缓冲液，进行洗脱和再生。

通过测量在波长280纳米处的吸光值，检测蛋白质峰。

A4.通过SDS PAGE凝胶电泳的分析方案

A5.测量针对因子IX的比活的方案

根据供应商的推荐，用Serachrom 0943FIX Ag试剂盒(Stago)测量FIX(抗原测量)的量。

根据供应商的推荐，通过使用Biophen FIX试剂盒ref.221802(HyphenBioMed)，测量FIX的酶活性。

根据下列比例计算比活：

FIX的酶活性/FIX的量。

B.结果

图4和5中阐明了结果。

图4代表在280nm处吸光度的测量值作为时间函数的曲线。在图4中，1号峰对应于不滞留在柱中的起始产物级分。2号峰对应于洗脱级分。3号峰对应于通过进行再生步骤从基质解吸附的级分。

图4的结果显示洗脱峰非常狭窄，表明其上固定了适体的层析基质对人因子IX的非常高的特异性。

图5是SDS PAGE电泳凝胶的图像。在图5的凝胶中从左至右，泳道代表了下列起始产物的迁移结果：

-泳道“E5”：含有通过MEP HyperCel层析步骤预先纯化的转基因人因子IX的转基因母猪乳的起始组合物，

-泳道“E6”：对应图4的层析图谱的1号峰的非滞留级分，

-泳道“E7”：对应图4的层析图谱的2号峰的洗脱级分，

-泳道“E8”：在图4的层析图谱的2号峰的下游和3号峰的上游收集的洗脱级分，

-泳道“T FIX”：纯化的因子IX对照。

图5代表的结果验证了图4的结果。这些结果阐明固定适体的层析基质允许从复杂的基质(例如富含因子IX的血浆级分)中特异性纯化人因子IX。

此外，实施例的结果阐明了在将复杂组成的起始产物通过固定了序列SEQ ID No.86的Mapt 2适体的亲和层析基质后，获得的高度富集的人因子IX。

可以总结，洗脱液表现出良好的电泳纯度，相比起始产物其纯度具有显著的增加(＞26倍)。在洗脱液中鉴别的第二条带明确的对应于另一种形式的FIX。

实施例5：纯化人血浆因子VII的方法

A.材料和方法

A1.亲和层析基质

将固定了“Mapt-2核心”适体的亲和凝胶材料与生物素直接偶联，在适体和生物素之间没有间隔基链。适体通过5’-末端生物素固定在链霉抗生物素蛋白凝胶(供应商Novagen)上，理论的配体密度为0.4mg/ml∶体积1ml。

使用的适体是序列SEQ ID No.20的Mapt-2核心适体。

A2.起始产物

起始产物由纯化至98％的人血浆因子VII的组合物组成。

A3.纯化方案

凝胶平衡：0.050M Tris-HCl，0.010M CaCl₂，0.05mM MgCl₂，pH7.5，

洗脱：0.020M Tris-HCl，0.010M EDTA，pH 7.5。

用0.5ml/min的流速注射在平衡缓冲液中纯化至98％的240μg人血浆因子VII。

在检测到非滞留材料的峰之后，注射2倍体积的洗脱缓冲液。

通过测量在波长280纳米处的吸光度值，检测蛋白质峰。

B.结果

图6和7中阐明了结果。

图6代表在280nm处吸收度的测量值作为时间函数的曲线。在图6中，1号峰对应于不滞留在柱中的起始产物级分。2号峰对应于洗脱级分。

为了显示杂质的去除，通过用SDS PAGE与硝酸银染色分析起始产物以及洗脱产物。图7代表该凝胶：1号泳道对应于起始产物的级分，2号泳道对应于洗脱级分。尽管起始产物具有高纯度，注意到洗脱级分不再含有污染物或降解的形式。

图6和图7的结果显示序列SEQ ID NO.20的适体能够结合人FVII，并且在EDTA的存在条件将其特异性洗脱。

实施例6：适体与兔FVII的结合的缺失

A.材料和方法

A.1.亲和层析基质

将固定了序列SEQ ID NO.86的适体的亲和凝胶(供应商Novagen)通过间隔基链经5’末端生物素与链霉抗生物素蛋白偶联，理论的配体密度0.35mg/ml∶体积1ml。

使用的适体是序列SEQ ID NO.86的适体。

A2.起始产物

通过从兔血浆中纯化，获得富含兔FVII的羟基磷灰石洗脱液，接触时间10分钟，流速0.5ml/min。

A3.纯化方案

凝胶平衡：0.050M Tris-HCl，0.010M CaCl₂，0.05mM MgSO₃，pH7.5，

洗脱：0.050M Tris-HCl，0.010M EDTA，pH 7.5，

将36μg注射在凝胶中，接触时间为10分钟。通过注射2ml洗脱缓冲液进行洗脱。

通过测量在波长280纳米处的吸光度值，检测蛋白质峰。

A4.根据蛋白质和根据因子VII分析级分的方案

根据供应商的推荐(因子VIIa StatClot试剂盒)，使用Stago试剂盒，通过生色测定法分析级分的酰胺分解活性。然后，将酰胺分解活性转化为包含在所述级分中的FVII的μg数。

B.结果

下表4中阐明了结果。

表4：

表4中的结果显示，兔因子VII不滞留在固定了Mapt-2适体的亲和凝胶上。

实施例7：人因子VII与Biacore上的适体相互作用的方案的特定实施方案(对NaCl的抗性)

A.材料和方法

产生这样的固体基质，所述基质上固定了本发明的序列SEQ ID No.86的核酸适体(也称为“Mapt2”)的分子。在与固体基质结合前，Mapt2适体的5’端与由4分子的PEG(C18)组成的间隔基链化学偶联。然后，将间隔基链的游离端(与偶联适体的一端相对)与生物素分子偶联。

提供了含有固定化的链霉抗生物素蛋白分子的固体基质(系列S传感器芯片SA，GE)。

然后，为了固定序列SEQ ID No.86的核酸，通过基质上的链霉抗生物素蛋白分子与适体化合物的生物素分子之间的非共价结合，使上述固体基质与上述适体化合物接触。

因而，用3772RU的固定化程度来固定Mapt2适体(1RU对应于约1pg的固定化产物/mm²)。

在运行缓冲液(50mM Tris，50mM NaCl，10mM CaCl₂，4mMMgCl₂，pH 7.4)中稀释从转基因兔奶中获得的纯化的转基因人FVII(FVIIHPTG，纯度：98％)，从而获得具有浓度为200mM的FVII的样品。

将样品注射到含有Mapt2适体的芯片(固体基质)上，所述适体通过生物素-链霉抗生物素蛋白相互作用来固定。之后，将含有递增浓度的NaCl的缓冲液注射到固体基质上(范围从1M NaCl至3M NaCl的3个系列注射)。所有的注射都在注射后以30μl/min的流速进行60sec。在用3种含有NaCl的缓冲液进行3次系列注射后，为了从适体上解离FVII HPTG，以30μl/min的流速注射洗脱缓冲液(10mM EDTA)75sec。

用RPS Biacore T100装置(GE)进行这些分析。通过Biaevaluation软件(GE)进行所记录的相互作用的建模。

用控制软件1.2版的专用模块计算Mapt2固定化适体与转基因人FVII的结合曲线。

Mapt2适体与人FVII的结合结果使得能够确定注射含有NaCl的缓冲液不会有害的改变Mapt2适体与人FVII的结合。

B.结果

图8中阐明了结果。

实施例8：人因子VII与Biacore上的适体的相互作用方案的特定实施方案(对丙二醇的抗性)

A.材料和方法

产生这样的固体基质，所述基质上固定了本发明的序列SEQ ID No.86的核酸适体(也称为“Mapt2”)的分子。在与固体基质结合前，Mapt2适体的5’端与由4分子的PEG(C18)组成的间隔基链化学偶联。然后，将间隔基链的游离端(其与与偶联适体的一端相对)与生物素分子偶联。

因而，用5319RU的固定化程度来固定Mapt2适体(1RU对应于约1pg的固定化产物/mm²)。

在运行缓冲液(50mM Tris，10mM CaCl₂，4mM MgCl₂，pH 7.4)中稀释从转基因兔奶中获得的纯化转基因人FVII(FVII HPTG，纯度：98％)，使得获得具有浓度为200mM的FVII的样品。

将样品注射到含有Mapt2适体的芯片(固体基质)上，所述适体通过生物素-链霉抗生物素蛋白相互作用固定。之后，将含有50％丙二醇的缓冲液注射到固体基质上。所有的注射都在注射后以30μl/min的流速进行60sec。在用含有50％丙二醇的缓冲液注射后，为了从适体上解离FVIIHPTG，以30μl/min的流速注射洗脱缓冲液(10mM EDTA)75sec。

用

控制软件1.2版的专用模块计算Mapt2固定化适体与转基因人FVII的结合曲线。

Mapt2适体与人FVII的结合结果使其能够确定注射含有丙二醇的缓冲液不会有害的改变Mapt2适体与人FVII的结合。

B.结果

图9中阐明了结果。

Claims

1.选择性结合血浆蛋白的亲和基质，其包含固体基质材料，该固体基质材料上固定了特异结合所述血浆蛋白的脱氧核糖核酸适体。

2.权利要求1或2要求保护的亲和基质，其特征是所述脱氧核糖核酸适体包括在下面通式(I)的化合物的结构内：

[FIX]_x-[SPAC]_y-[APT](I)，其中：

-[FIX]表示固定在基质上的化合物，

-[SPAC]表示间隔基链，

-[APT]表示特异性结合血浆蛋白的脱氧核糖核酸，

-x是等于0或1的整数，和

-y是等于0或1的整数。

3.权利要求2要求保护的亲和基质，其特征是在通式(I)的化合物中，[APT]由序列SEQ ID NO：1的脱氧核糖核酸组成。

4.权利要求1或3任一项要求保护的亲和基质，其特征是血浆蛋白选自白蛋白、α/巨球蛋白、抗胰凝乳蛋白酶、抗凝血酶、抗胰蛋白酶、Apo A、Apo B、Apo C、Apo D、Apo E、Apo F、Apo G、βXIIa、C1-抑制剂、C-反应蛋白、C7、C1r、C1s、C2、C3、C4、C4bP、C5、C6、C1q、C8、C9、羧肽酶N、血浆铜蓝蛋白、因子B、因子D、因子H、因子I、因子IX、因子V、因子VII、因子VIIa、因子VIII、因子X、因子XI、因子XII、因子XIII、纤维蛋白原、纤连蛋白、触珠蛋白、血液结合素、肝素辅因子II、富含组氨酸的GP、IgA、IgD、IgE、IgG、ITl、IgM、激肽酶II、激肽原HPM、溶菌酶、PAI 2、PAI 1、PCI、纤溶酶、纤溶酶抑制剂、纤溶酶原、前白蛋白、激肽释放酶原、备解素、蛋白酶连接蛋白INH、C蛋白、S蛋白、Z蛋白、凝血酶原、TFPI、巯基蛋白酶、血栓调节蛋白、组织因子(TF)、TPA、钴胺传递蛋白II、皮质激素运载蛋白、转铁蛋白、玻连蛋白和von Willebrand因子。

5.权利要求1至4的任一项要求保护的亲和基质，其特征是血浆蛋白由选自因子I(纤维蛋白原)、因子II(凝血酶原)、因子V(前加速素)、因子VII(前转变素)、因子VIII(抗血友病因子A)、因子IX(抗血友病因子B)、因子X(司徒因子)、因子XI(Rosenthal因子或PTA)、因子XII(Hageman因子)、因子XIII(纤维蛋白-稳定因子或FSF)、PK(前激肽释放酶)、HMWK(高分子量激肽原)、组织促凝血酶原激酶、肝素辅因子II(HCII)、C蛋白(PC)、血栓调节蛋白(TM)、S蛋白(PS)、von Willebrand因子(vWF)和组织因子途径抑制剂(TFPI)或其他组织因子的凝血蛋白组成。

6.权利要求1至5的任一项要求保护的亲和基质，其特征是固体基质材料选自树脂、聚合物珠、磁珠、偏磁珠、滤膜的基质材料和聚合物材料。

7.将血浆蛋白固定在基质上的方法，其包括这样的步骤，在所述步骤中，将含有所述血浆蛋白的样品与权利要求1至6的任一项要求保护的亲和基质接触。

8.纯化血浆蛋白的方法，包括下列步骤：

a)将含有血浆蛋白的样品与权利要求1至6的任一项要求保护的亲和基质接触，以便形成在(i)固定在所述亲和基质上的核酸适体和(ii)所述血浆蛋白之间的复合物，和

b)从步骤a)形成的复合物中释放蛋白质，和

c)以纯化的形式回收所述血浆蛋白。

9.权利要求8要求保护的方法，其特征是所述样品选自人血浆，或其级分，或对所述血浆蛋白转基因的哺乳动物的乳，或其级分。

10.权利要求8或9要求保护的方法，其特征是所述血浆蛋白是人的。

11.权利要求10要求保护的方法，其特征是所述样品包含至少一种非人血浆蛋白。

12.权利要求11要求保护的方法，其特征是所述人血浆蛋白与所述非人血浆蛋白是同源的。

13.权利要求12要求保护的方法，其特征是所述人血浆蛋白是所述非人血浆蛋白的同源物。

14.权利要求8至13的任一项要求保护的方法，其特征是所述步骤b)是通过使亲和基质与含有二价离子螯合剂，优选EDTA的洗脱缓冲液接触而进行的。

15.重组人血浆蛋白的纯化的组合物，其包含按重量计至少99.9％的所述重组人蛋白，并且基本不含非人蛋白。

16.药物组合物，其包含权利要求15要求保护的重组人血浆蛋白的纯化组合物。