CN102344919A - 一种无需提取动物组织dna的直接pcr方法 - Google Patents

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李红伟
徐海岳
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Abstract

本发明涉及一种无需提取动物组织DNA的直接PCR的方法,该方法通过将动物组织用组织裂解液进行消化,以消化液为模板直接进行PCR扩增。所用组织裂解液由Tris-Cl、EDTA、蛋白酶K和NaCl组成。与目前常用的方法相比,该方法可以同时处理大量动物组织样品,实现高通量的以PCR扩增为基础的分子操作,快速简化操作步骤,节省成本。

Description

一种无需提取动物组织DNA的直接PCR方法
技术领域
本发明涉及动物分子生物学领域,具体涉及利用特定的组织裂解液对动物组织包括耳组织、血液或毛发进行快速消化,然后直接用少量的该消化液作为模板,实现PCR扩增。
背景技术
基因组DNA的制备对完成PCR扩增是必不可少的,在动物遗传育种中,PCR扩增是进行基因多态性分析、微卫星分析、基因克隆和测序等研究工作的基础。目前,经常用于DNA提取的动物组织包括耳组织、血液及毛。通常,动物组织样品DNA的提取采用的是传统的酚-氯仿抽提法,但该方法存在步骤繁琐、耗时、耗试剂及安全性差等缺点。如果用该方法大量提取动物组织样品时,上述的缺点将更加突出。一些在此基础改进的方法已有报道,同时也有很多商业化的DNA提取试剂盒,但这些改进的方法及商业试剂盒存在一个共性:提取过程仍需要组织样品的裂解、DNA的乙醇或异丙醇沉淀和70%乙醇清洗DNA这三步,因此在提取大量动物组织样品的DNA时,也同样表现出耗时及费用高的缺点。此外,有报道用整个果蝇的胚胎、幼虫及成虫直接作为模板进行PCR扩增。但用整个动物组织如耳组织、毛囊直接作为模板进行PCR扩增是行不通的。
发明内容
本发明的目的是提供一种无需提取动物组织DNA的直接PCR方法,此方法可以同时处理大量动物组织样品,实现高通量的以PCR扩增为基础的分子操作,快速简化操作步骤,节省成本。
本发明提供一种无需提取动物组织DNA的直接PCR方法,其中PCR扩增所用的模板为动物组织经组织裂解液消化后的消化液。
所述PCR反应按如下步骤进行:
将动物组织与组织裂解液混合,37~55℃温育25~30min,优选为55℃温育30min,95℃变性5min,取2μl作模板;
PCR反应体系:终浓度为250μM的dNTP,10mMTris-Cl,pH8.3,50mM KCl,1.5mM MgCl2,2pM上游引物,2pM下游引物,2μl组织消化液,1U Taq DNA聚合酶,用ddH2O补足至20μl;
PCR反应条件:94℃预变性4min,94℃变性30s,61℃复性30s,72℃延伸20~40s,40个循环,然后72℃延伸7min,最后16℃保温。
所述的动物组织选自耳组织、血液或毛发,所述的毛发带有毛囊。
所述组织裂解液由Tris-Cl、EDTA、蛋白酶K和NaCl组成。
所述Tris-Cl的浓度为10mM~100mM,优选10mM,pH8.0;所述的EDTA浓度为1~4mM,优选为2mM,pH8.0,所述的蛋白酶K的浓度为100ug/ml~200ug/ml,优选为200μg/ml;所述的NaCl的浓度为0~0.8M,优选为0.2M。
本发明提供的无需提取动物组织DNA的直接PCR方法,和目前存在的方法和试剂盒相比,该方法简单、快速和节约成本。使用该方法,仅需一步处理动物组织样品,然后直接取2μl处理液为模板完成PCR扩增。此外,该方法特别适用于小组织样品如一根动物毛,因为用目前存在的方法和试剂盒,至少需要5~6根动物毛才能完成DNA的提取。该方法从样品处理到PCR扩增都在PCR仪上完成,在动物中可以实现高通量的以PCR扩增为基础的分子操作如基因分型、微卫星分析、亲子鉴定及基因的克隆和测序。
附图说明
图1所示为不同裂解液处理猪耳组织后直接PCR法扩增的产物。图中,1、2、3、4分别表示用裂解液1、裂解液2、裂解液3、裂解液4处理猪耳组织后直接PCR法扩增的产物。5表示没有经任何裂解液处理,直接用耳组织作模板PCR扩增的产物。
图2所示为裂解液中不同EDTA浓度对PCR扩增效率的影响。
图3所示为裂解液中不同EDTA浓度的PCR电泳图。
图4所示为裂解液中不同NaCl浓度对PCR扩增效率的影响。
图5所示为马毛、鸡血、及猪耳组织经优化的组织裂解液处理后直接PCR扩增结果。图中1、3和5表示马毛、鸡血及猪耳组织经优化组织裂解液处理后直接PCR扩增的结果;2、4和6表示用传统酚-氯仿抽提法从马毛、鸡血及猪耳组织提取的DNA为模板PCR扩增的结果。
具体实施方式
以下实施例用于说明本发明,但不用来限制本发明的范围。在不背离本发明精神和实质的情况下,对本发明方法、步骤或条件所作的修改或替换,均属于本发明的范围。
若未特别指明,实施例中所用的技术手段为本领域技术人员所熟知的常规手段。
实施例1
配置四种不同的组织裂解液:
裂解液1:10mM Tris-Cl pH8.0,1mM EDTA pH8.0,200μg/ml蛋白酶K;
裂解液2:10mM Tris-Cl pH8.0,1mM EDTA pH8.0,200μg/ml蛋白酶K,0.1%SDS;
裂解液3:10mM Tris-Cl pH8.0,1mM EDTA pH8.0,200μg/ml蛋白酶K,0.01M NaCl;
裂解液4:10mM Tris-Cl pH8.0,1mM EDTA pH8.0,200μg/ml蛋白酶K,0.1%SDS,0.01M NaCl;
取0.01g的耳组织,放入一个干净的200μl PCR管,充分剪碎,然后分别取上述4种不同的裂解液50μl,先用55℃温育30min,然后再95℃变性5min让蛋白酶K失活,最后直接取2μl 4种不同的消化液作为模板,以未经任何裂解液处理的耳组织为对照,进行PCR扩增,扩增猪myhc IIb基因片段。
PCR反应体系:终浓度为250μM dNTP,10mMTris-Cl,pH8.3,50mM KCl,1.5mM MgCl2,2pM上游引物,2pM下游引物,2μl组织消化液,1U Taq DNA聚合酶,用ddH2O补足至20μl。
PCR扩增的上游引物为P1:5’GGGGATTTGGGTTTTGGTTA 3’;下游引物P2:5’CAGACGATCTACGGCAGTCA 3’。PCR扩增条件:94℃预变性4min,94℃变性30s,61℃复性30s,72℃延伸40s,40个循环,然后72℃延伸7min,最后16℃保温。
扩增结束后,取5μl扩增产物进行琼脂糖胶分析。结果发现,组织裂解液1和3处理组在电泳分析时有明显的PCR产物(图1中,1和3泳道),而组织裂解液2和4(含有0.1%SDS)处理组,检测不到PCR产物(图1中,2和4泳道),泳道5也未扩增出PCR产物。说明耳组织未经任何处理不能直接作为PCR的模板,SDS不适宜作为组织裂解液的成分。
实施例2
裂解液:10mM Tris-Cl pH8.0,1mM EDTA pH8.0,100μg/ml蛋白酶K,0.01M NaCl
取0.01g的耳组织,放入一个干净的200μl PCR管,充分剪碎,然后取上述的裂解液50μl,先用37℃温育25min,然后再95℃变性5min让蛋白酶K失活,最后直接取2μl消化液作为模板,以未经任何裂解液处理的耳组织为对照,进行PCR扩增,扩增猪myhc IIb基因片段。PCR反应体系和反应条件同实施例1。
扩增结束后,取5μl扩增产物进行琼脂糖胶分析。结果发现,经裂解液消化的耳组织能扩增出700bp左右的片段,而未经消化耳组织不能扩增出条带。
实施例3
对裂解液1:10mM Tris-Cl,pH8.0,1mM EDTA,pH8.0,200μg/ml蛋白酶K中的EDTA浓度进行优化,设置1、2、4、6、8、10、12、14、16、18、20mM 11个不同浓度。耳组织的处理方式和PCR反应体系和条件同实施例1。每个浓度做三个处理,每个处理做三个重复的PCR扩增,扩增猪myhc IIb基因片段。PCR产物经琼脂糖凝胶检测后发现,6mM浓度以后已经检测不到条带(图2)。前3个浓度的PCR产物经琼脂糖凝胶电泳纯化,纯化产物经NanoDrop 2000(NanoDropTechnologies,Wilmington,DE,USA)测定。结果表明,2mM EDTA是最佳浓度(图3)。
实施例4
在优化后的组织裂解液1:10mM Tris-Cl pH8.0,2mM EDTApH8.0,200ug/ml蛋白酶K的基础上,对NaCl的浓度进行了优化。设置0.01、0.02、0.04、0.06、0.08、0.1、0.2、0.4、0.6、0.8M 10个浓度。耳组织的处理方式、PCR反应体系和条件同实施例1。每个浓度做三个处理,每个处理做三个重复的PCR扩增,扩增猪myhc IIb基因片段。所有PCR产物经琼脂糖凝胶电泳纯化,纯化产物经NanoDrop2000(NanoDrop Technologies,Wilmington,DE,USA)测定。结果表明,0.2M是组织裂解液中NaCl的最佳浓度(图4)。
实施例5
取一根有明显毛囊的马毛放入一个干净的PCR管,然后取5μl优化的组织裂解液(10mM Tris-Cl(pH8.0),2mM EDTA(pH8.0),0.2MNaCl,200μg/ml蛋白酶K)完全浸没毛囊,再去除毛囊上部大部的毛组织,55℃温育30min,95℃变性5min,然后取2μl该组织裂解液直接作为模板进行PCR扩增,扩增马线粒体上的D-loop区。上游引物P3:5’CTAGCTCCACCATCAAC ACC3’,下游引物P4:5’ATGGCCCTGAAGAAAGAACC3’。
PCR反应体系同实施例1。
PCR扩增条件:94℃预变性4min,94℃变性30s,60℃复性30s,72℃延伸30s,40个循环,然后72℃延伸7min,最后16℃保温。
结果表明,马毛经优化的组织裂解液处理后直接PCR扩增的效果(图5中第1泳道)同用酚-氯仿抽提法提取马毛的DNA为模板的PCR扩增的效果一致(图5中第2泳道)。
实施例6
取2μl鸡血放入一个干净的200μl PCR管,然后用48μl优化的组织裂解液(10mM Tris-Cl,pH8.0,2mM EDTA,pH8.0,0.2M NaCl,200μg/ml蛋白酶K)与之充分混匀,55℃温育30min,95℃变性5min,然后取2μl该组织裂解液直接作为模板进行PCR扩增,扩增鸡cyt3A80基因片段。上游引物P5:5′TGCCTGGTTGCTTATGTC 3′,下游引物P6:5′GCTAACTGGGAATTGCTG 3′。
PCR的反应体系同实施例1
PCR扩增条件:94℃预变性4min,94℃变性30s,61℃复性30s,72℃延伸20s,40个循环,然后72℃延伸7分钟,最后16℃保温。
结果表明,鸡血经优化的组织裂解液处理后直接PCR扩增的效果(图5中第3泳道)同用酚-氯仿抽提法提取鸡血的DNA为模板的PCR扩增的效果一致(图5中第4泳道)。
实施例7
取0.01g的耳组织,放入一个干净的200μl PCR管,充分剪碎,然后取50μl优化的组织裂解液(10mM Tris-Cl,pH8.0,2mM EDTA,pH8.0,0.2M NaCl,200μg/ml蛋白酶K)与之混匀,55℃温育30min,95℃变性5min,然后取2μl该组织裂解液直接作为模板进行PCR扩增,扩增猪myhc IIb基因片段。上游引物P1:5’GGGGATTTGGGTTTTGGTTA 3’,下游引物P2:5’CAGACGATCTACGGCAGTCA 3’。
PCR反应体系同实施例1
PCR扩增条件:94℃预变性4min,94℃变性30s,61℃复性30s,72℃延伸40s,40个循环,然后72℃延伸7分钟,最后16℃保温。
结果表明,猪耳组织经优化的组织裂解液处理后直接PCR扩增的效果(图5中第5泳道)同用酚-氯仿抽提法提取猪耳组织DNA为模板的PCR扩增的效果一致(图5中第6泳道)。
序列说明:
SEQ ID NO.1~6分别是引物P1、P2、P3、P4、P5和P6。
Figure ISA00000217351200011
Figure ISA00000217351200021

Claims (10)

1.一种无需提取动物组织DNA的直接PCR方法,其特征在于,以动物组织消化液为模板直接进行PCR扩增。
2.根据权利要求1所述的PCR方法,其特征在于,所述动物组织消化液按如下步骤获得:将动物组织与组织裂解液混合,37~55℃温育25~30min,95℃变性5min。
3.根据权利要求2所述的PCR方法,其特征在于,所述动物组织消化液按如下步骤获得:动物组织与组织裂解液混合,55℃温育30min,95℃变性5min。
4.根据权利要求1、2或3所述的PCR方法,其特征在于,所述组织裂解液由Tris-Cl、EDTA、蛋白酶K和NaCl组成。
5.根据权利要求4所述的PCR方法,其特征在于,所述Tris-Cl的浓度为10~100mM,pH8.0,所述的EDTA浓度为1~4mM,pH8.0,所述的蛋白酶K的浓度为100~200μg/ml,所述的NaCl的浓度为0~0.8M。
6.根据权利要求5所述的PCR方法,其特征在于,所述的Tris-Cl的浓度为10mM,所述的EDTA浓度为2mM,所述的蛋白酶K的浓度为200μg/ml,所述的NaCl浓度为0.2M。
7.根据权利要求1所述的PCR方法,其特征在于,所述的动物组织选自耳组织、血液或毛发。
8.根据权利要求7所述的PCR方法,其特征在于,所述的毛发带有毛囊。
9.根据权利要求1所述的PCR方法,其特征在于,所述的PCR的反应体系如下:
终浓度为250μM dNTP,10mMTris-Cl,pH8.3,50mM KCl,1.5mMMgCl2,2pM上游引物,2pM下游引物,2μl组织消化液,1U Taq DNA聚合酶,用ddH2O补足至20μl。
10.根据权利要求1所述的PCR方法,其特征在于,所述PCR的反应条件如下:
94℃预变性4min,94℃变性30s,61℃复性30s,72℃延伸20~40s,40个循环,然后72℃延伸7min,最后16℃保温。
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