具体实施方式
本发明主要通过以下技术方案实施:
一、生产用菌毒种的来源及特性
1.犬副流感病毒
(1)犬副流感病毒的分离
1)病毒由本发明人分离自大面积发生犬窝咳的肉狗养殖场中。将采集到的鼻腔拭子过滤除菌,接种生长至对数末期的Vero细胞上(购自Cambivac,Co.Ltd)。37℃静置培养7天,冻融2次后,获得含有病毒粒子的悬液。
2)吸取上述病毒悬液,提取DNA及RNA模板,经RT-PCR鉴定,该病毒悬液中含有犬副流感病毒。
按王凤雪等人(王凤雪,闰喜军,柴秀丽,等.核酸水平检测犬副流感病毒方法的建立.中国动物检疫,2007,24(12),24-25.)提供的副流感病毒PCR鉴定引物和方法进行扩增。
P1 5’-TACAATCCCACCTACAACAC-3’;P2 5’-GAATGATCCCTCCTCAAAGC-3’
扩增后产物为265bp测序结果与已报道的序列相符
Tacaatcccacctacaacactaaaaccggtaatcagggtatttatactaacctctaataacccagagctaagatcccggcttcttctattctgcctacggattgttctcagtaatggtgcaagggattcccatcgctttggagcattacttacaatgttttcgctaccatcagccacaatgctcaatcatgtcaaattagctgaccagtcaccagaagctgatatcgaaagggtagagatcgatggctttgaggagggatcattc。
(2)病毒的纯化
取病毒悬液以蚀斑克隆的方法得到一株病毒的单克隆命名为CPIV-CY-7F株。
(3)犬副流感病毒的弱化
取CPIV-CY-7F X代次病毒接种Vero细胞系进行连续传代。每传20代,喷雾接种5只CPI抗体阴性(血清中和效价低于1/4)的幼犬,每只接种107TCID50病毒悬液1ml。如至少1只出现CPIV感染症状,则认为病毒仍然具有一定的毒力。经连续传代至+80代,攻毒易感犬只未出现CPIV感染症状,将该代次病毒,继续传代5次至+85代,得到一株犬副流感病毒(Canine parainfluenzavirus)弱化毒株,命名为CPIV-CY-c株,该病毒株已于2011年09月26日送交北京市朝阳区北辰西路1号院3号中国科学院微生物研究所中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心保藏,保藏编号为:CGMCC No.5268。
(4)生产用犬副流感弱毒株CPIV-CY-c株毒种的纯净性检验
1)无菌检验按《中华人民共和国兽药典》(中国兽药典委员会.中华人民共和国兽药典二○一○年版三部.中国农业出版社,2011.,本发明以下简称《中国兽药典》)规定的方法:对CPIV-CY-c株X+85~X+90代毒种进行无菌检验,分别接种T.G、G.P小管和G.A斜面培养基各2支,每支0.2mL,一支置37℃培养;一支置于25℃培养,观察3日,移植后的病毒培养物接种的T.G、G.P和G.A斜面培养基,观察五日均无细菌、霉菌生长,表明CPIV-CY-c株毒种未受细菌与霉菌的污染。
2)支原体检验按《中国兽药典》规定的方法对C90代原始种毒,X+85与X+90代基础种毒进行支原体检验,经过5日、10日、15日培养,观察液体培养基无颜色变化,再经移植后培养14日观察,支原体液体培养基仍然无颜色变化;接种毒种的琼脂平板上均未出现支原体菌落。表明CPIV-CY-c株毒种无支原体污染。
3)外源病毒检验按《中国兽药典》要求,对X+85代原始种毒,X+85与X+90代基础种毒进行了外源病毒的检测。
用间接免疫荧光法检测狂犬病病毒(RV),结果未发现狂犬病病毒(RV)荧光细胞颗粒,表明CPIV-CY-c株毒种无RV污染;过Vero细胞检验犬瘟热病毒,结果表明CPIV-CY-c株毒种无犬瘟热病毒污染;通过致细胞病变检查方法进行检测,结果无致细胞病变的外源病毒污染;红细胞吸附性外源病毒检验中,结果表明无吸附红细胞的外源病毒污染。
以上结果表明,CPIV-CY-c株毒种无外源病毒污染。
(5)犬副流感病毒CPIV-CY-c株的稳定性
取CPIV-CY-c株病毒滴鼻接种易感犬只,将病毒在动物体内连续传代+10代,期间未观察到任何可疑CPIV感染症状,证明该病毒在+10代以内保持毒力稳定。
2.犬的支气管败血波氏菌
(1)支气管败血波氏菌的分离鉴定
1)支气管败血波氏菌Bb-SD25d株由本发明人分离自肉狗养殖场中。
2)将临床采集的鼻腔拭子接种支气管败血波氏菌选择性平板Bordet-Gengou Agar(购自BD,Difco)进行培养,挑取边缘光滑的可疑菌落,接种至API 20 NE试纸条进行菌种生化鉴定,确定最终获得数十支气管败血波氏菌菌株。
3)分子生物学鉴定按Daniela Hozbor等人(Daniela Hozbor,Frncose Fouque,NicoleGuiso.Detection of Bordetella bronchiseptica by the polymerase chainreaction.Gene,1999,150:333-341.)提供的支气管败血波氏菌PCR鉴定引物和方法进行扩增:
P1:5′-AGGCTCCCAAGAGAAAGGCTT-3′
P2:5′-TGGCGCCTGCCCTATC-3′
扩增出的产物为237bp,测序结果与已报道的基因序列相符:
Tggcgcctgccctatcccgcccgcgccgcacggacgcctgtccccgcaggaacatgccctttgccgccagattcccccgcacatttccgaacttcactttttttgcttaagtccgtcgcaaacctgccgtaatccaggcaacaaaggaaatcgcggcgctgtgcaagcgaaagtccgatgttacgaatgggcggcctagctgcccggtttgaagaagcctttctctcttgggagcct。
挑选10个候选菌株,分别接种Tryptose Phospate Broth培养基,37℃ 300r/min震荡培养20小时,效价达到1010CFU/ml左右。随机挑选支气管败血波氏菌抗体阴性的幼犬4只,将其分别置于两个0.8m3的无菌容器中,以小型喷雾装置,向犬鼻周围持续喷雾细菌悬液30ml/只进行攻毒。
从20株候选菌株中筛选得到了一株不引起犬窝咳症状的支气管败血波氏菌(Bordetellabronchiseptica)菌株,命名为Bb-SD25d株。该菌株已于2011年09月26日送交北京市朝阳区北辰西路1号院3号中国科学院微生物研究所中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心保藏,保藏编号为:CGMCC No.5292。
(2)支气管败血波氏菌Bb-SD25d株的稳定性
取Bb-SD25d株支气管败血波氏菌喷雾接种易感犬1只。3天后,从犬鼻腔分离该菌,再次喷雾接种易感犬1只,如此在动物体内连续传代10代。试验发现,该菌株在传代过程中没有导致易感犬只出现任何症状。说明,该菌株毒力在10代以内稳定。
3.犬副流感病毒CPIV-CY-c株/支气管败血波氏菌Bb-SD25d株免疫原性
取CPIV-CY-c株种毒接种Vero细胞进行传代,传代至第90代作为效力试验用病毒。
16只CPIV抗体阴性的三周龄实验犬随机分为4组,第一、二、三组各4只,分别滴鼻免疫接种Bb-SD25d株支气管败血波氏菌105、107、109CFU/只,CPIV-CY-c第90代种毒102、104、106TCID50/只。第四组作为非免疫对照组。
免疫攻毒:所有分组免疫3周以后进行攻毒检验。攻毒检验用菌种选用同时期分离的可诱导易感犬只产生犬窝咳临床症状的分离株Bb-JSK2株,每只犬选择喷雾接种109CFU/ml菌悬液30ml,之后再滴鼻接种107TCID50/ml的CPIV D008株病毒液1ml。
攻毒结果显示,第一组4只易感幼犬有2只出现咳嗽,另外2只未出现咳嗽症状,但精神沉郁、食欲减退、有轻微发烧症状。第二、三组未出现任何异常症状。病理解剖结果表明,发病犬只呼吸道黏膜分泌物明显增加。证明免疫106CFU Bb-SD25d细菌和104TCID50的CPIV-CY-c病毒可以产生足够的免疫保护力。
表1 犬副流感病毒/支气管败血波氏菌免疫原性测定结果
*第一组2只出现咳嗽,另外2只未出现咳嗽症状,但精神沉郁、食欲减退、有轻微发烧症状
二、二联疫苗的制备
取CPIV-CY-c株生产代次种毒接种Vero-VA1细胞系扩增得到CPIV-CY-c株半成品病毒悬液。取Bb-SD25d株支气管败血波氏菌生产代次菌种,接种Tryptose Phosphate Broth培养基后,置37℃ 300r/min震荡培养,获得Bb-SD25d半成品悬液。
将上述两种半成品按一定比例进行混合,加入冻干保护剂进行冻干,制成犬副流感/支气管败血波氏菌二联活疫苗。
三、疫苗检验
(1)物理性状:本品为淡黄色海绵状疏松团块,易与瓶壁脱离,加稀释液后迅速溶解。
(2)纯粹检验:用tryptose phosphate broth培养基鉴定。按《中国兽药典》中的规定进行检验,应纯粹。
(3)活菌计数:用tryptose phosphate broth培养基将疫苗进行稀释,然后用tryptosesoya agar培养基制备成的平板进行活菌计数,每头份所含活菌数应不低于6.3*107CFU/mL。
(4)鉴别检验:将疫苗作10-2稀释,并用0.22微米的滤器进行过滤后,与等量的犬副流感病毒阳性血清混合,经25℃中和1小时,接种4个Vero细胞25cm2细胞培养瓶,同时设病毒对照组2瓶,置37℃含5%CO2培养箱中,连续观察4天,细胞应不会出现任何病变。
(5)外源病毒检验:按《中国兽药典》中的规定进行检验,应无外源病毒。
(6)安全检验:将疫苗用PBS稀释,每1ml含10头份疫苗,肌肉接种2-3周龄易感犬(抗体检测阴性)5只,观察日21天,应健活。本发明人试生产的三批疫苗2010001批、2010002批和2010003批均安全检验合格。
(7)效力检验:用DMEM/F12将疫苗溶解,使每1ml疫苗含1头份,并用0.22um滤器进行过滤后,然后做10倍系列稀释,取10-3,10-4,10-5,10-64个稀释度,分别接种已长成单层Vero细胞的96孔微量细胞培养板,每个稀释度接种6个孔,每孔100μl,同时设不接毒对照,置37.0℃.5%二氧化碳培养箱中培养,观察96小时,记录细胞病变(CPE)孔数,按Reed-Muench法计算TCID50,每头份疫苗病毒含量应不低于104.3TCID50。
(8)剩余水分测定:每批冻干制品任抽4个样品,各样品剩余水分均不应超过4%如果有超过时,可重检1次,重检后如有1个样品超过规定,该批制品应判为不合格(根据《中华人民共和国兽药典》规定)。
(9)真空度测定:包装前测定真空度,无真空的制品,应予剔除报废。(根据《中国兽药典》规定。
实施例
实施例1
生产菌毒种株的安全性试验
1.副流感病毒CPIV-CY-c株的安全性:
选取1月龄的实验用比格犬10只,分别免疫104.5TCID50、105.0TCID50、105.5TCID50和106.0TCID50的剂量,并设两只对照同条件下观察21天:免疫后无任何异常反应,表明该副流感病毒毒株在104.5TCID50到106.0TCID50的剂量下是安全的(表2)。
表2:副流感病毒CPIV-CY-c株的安全性
2.支气管败血波氏菌Bb-SD25d株的安全性:
选取1月龄的实验用比格犬10只,每组二只,分成五组,将Bb-SD25d株支气管败血波氏菌进行计数后,进行稀释至108.0CFU/ml、108.5CFU/ml、109.0CFU/ml和109.5CFU/ml,分别肌肉注射一组,每只犬免疫1ml,,并设两只对照同条件下观察21天:免疫后的状况一切正常,无任何反应,表明本菌株108.0CFU/只到109.5CFU/只的剂量是安全的(表3)。
表3:支气管败血波氏菌Bb-SD25d株的安全性
实施例2
疫苗的制备
1.CPIV半成品的制备:
细胞传代与扩增:复苏Vero生产用种子细胞至DMEM/F12中(含1%胎牛血清),待细胞生长并铺满单层后,按1∶3~1∶6进行传代,代次限定为5代。
病毒接种:用转瓶生产Vero细胞生长至指数末期,即细胞生长至约90%。以感染复数(M.O.I)0.5接种CPIV-CY-c株犬副流感病毒生产用种毒,37℃继续培养80小时,冻融2次后,1000g 10min离心去除细胞碎片,上清即为CPIV半成品悬液。
2.支气管败血波氏菌半成品的制备:
取支气管败血波氏菌生产种子,接种Tryptose Phosphate Broth培养基后,置37℃300r/min震荡培养约26~30小时后,置4℃ 1000g离心取沉淀,加入无菌PBS重悬沉淀即为支气管败血波氏菌半成品悬液。
3.疫苗的分装冻干
根据半成品检验结果,用PBS调整半成品原液体积,使半成品混合后每1ml病毒-细菌混合液中至少含有105。0TCID50的CPI病毒和108.0CFU的支气管败血波氏菌。将上述混合液与牛奶蔗糖保护剂按1∶1的比例进行成分混合后,分装至瓶中进行冻干。
实施例3
成品检验
(1)物理性状:本品为淡黄色海绵状疏松团块,易与瓶壁脱离,加稀释液后迅速溶解。
(2)纯粹检验:用tryptose phosphate broth培养基鉴定。按《中国兽药典》中的规定进行检验,应纯粹。
(3)活菌计数:用tryptose phosphate broth培养基将疫苗进行稀释,然后用tryptosesoya agar培养基制备成的平板进行活菌计数,每头份所含活菌数应不低于6.3*107.0CFU。
(4)鉴别检验:将疫苗作10-2稀释,并用0.22微米的滤器进行过滤后,与等量的犬副流感病毒阳性血清混合,经25℃中和1小时,接种4个Vero细胞25cm2细胞培养瓶,同时设病毒对照组2瓶,置37℃含5%CO2培养箱中,连续观察4天,细胞应不会出现任何病变。
(5)外源病毒检验:按《中国兽药典》中的规定进行检验,应无外源病毒。
(6)安全检验:将疫苗用PBS稀释,每1ml含10头份疫苗,肌肉接种2-3周龄易感犬(抗体检测阴性)5只,观察日21天,应健活。本发明人试生产的三批疫苗2010001批、2010002批和2010003批均安全检验合格。
(7)效力检验:用DMEM/F12将疫苗溶解,使每1ml疫苗含1头份,并用0.22um滤器进行过滤后,然后做10倍系列稀释,取10-3,10-4,10-5,10-64个稀释度,分别接种已长成单层Vero细胞的96孔微量细胞培养板,每个稀释度接种6个孔,每孔100ul,同时设不接毒对照,置37.0℃、5%二氧化碳培养箱中培养,观察96小时,记录细胞病变(CPE)孔数,按Reed-Muench法计算TCID50,每头份疫苗病毒含量应不低于104.3TCID50。
(8)剩余水分测定:每批冻干制品任抽4个样品,各样品剩余水分均不应超过4%如果有超过时,可重检1次,重检后如有1个样品超过规定,该批制品应判为不合格(根据《中华人民共和国兽药典》规定)。
(9)真空度测定:包装前测定真空度,无真空的制品,应予剔除报废。(根据《中国兽药典》规定)。
实施例4
疫苗安全性试验
(1)同种犬不同日龄的安全试验
选取同一窝幼犬(或同日龄同品种的犬)8只,并需要经过抗体的检测:犬副流感病毒为阴性和支气管败血波氏菌的抗原、抗体均为阴性,两只为一组分成四组,分别在3周龄、4周龄和5周龄进行10倍免疫剂量的肌肉注射,另外两只为一组作为空白对照同条件饲养管理,观察21天,观察结果免疫后的状况一切正常,无任何反应,这表明本疫苗对3周龄到5周龄的犬是安全的(见表4)
表4 10倍免疫剂量疫苗安全性试验
(2)同种犬的不同免疫方法安全性试验
选取同一窝幼犬(或同日龄同品种的犬)8只,并需要经过抗体的检测:犬副流感病毒为阴性和支气管败血波氏菌的抗原、抗体均为阴性,两只为一组分成四组,分别进行10倍剂量口服、10倍剂量滴鼻、10倍剂量后肢肌肉注射,另外两只为一组作为空白对照,同条件饲养管理,观察21天,观察结果免疫后的状况一切正常,无任何反应,这表明本疫苗对犬的不同免疫途径都是安全的(见表5)。
表5 不同免疫方法安全性试验
实施例5
犬传染性气管支气管炎二联活疫苗(犬窝咳活疫苗)的效力检验
取本发明人制备的犬传染性气管支气管炎二联活疫苗(犬窝咳活疫苗),使用前将疫苗用稀释液稀释至特定免疫剂量。
取血清反应及口鼻培养物为阴性的幼犬25只(>3周龄,<6周龄),随机分为3组:免疫组1,免疫组2和对照组。免疫组1各10只犬进行皮下注射1mL疫苗免疫,免疫组2鼻腔喷雾接种1mL疫苗免疫,对照组5只犬注射1mL生理盐水。在免疫后两周,进行攻毒检验。每只犬喷雾接种Bb-JSK2株10
10CFU/ml菌悬液30ml,之后再滴鼻接种10
7TCID
50/ml的CPIV D008株(
No:VR-399)病毒液1ml。连续进行14日临床观察实验动物体温和连续咳嗽日数。
结果免疫组在疫苗免疫后两周,对犬副流感病毒强毒毒株及支气管败血波氏菌致病菌攻毒保护率均为90%和100%(见表6)。
表6 犬传染性气管支气管炎二联活疫苗(犬窝咳活疫苗)的效力检验
结论为,在用本发明犬窝咳活疫苗进行免疫接种两周后,用强毒株进行攻毒,疫苗保护率近100%,此实验说明本发明可以有效地对幼犬犬窝咳综合症起到预防保护作用。