CN102321569B - 一种石鲽肝脏细胞系的构建方法 - Google Patents

一种石鲽肝脏细胞系的构建方法 Download PDF

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Abstract

本发明涉及一种石鲽肝脏细胞系的构建方法,它是以石鲽肝脏组织细胞为材料,采用两步酶消化法启动原代培养,在含胎牛血清、肝细胞生长因子、硫酸软骨素、N-乙酰葡萄糖盐酸盐和石鲽肝脏抽提液的DMEM/F12培养液pH值7.0-7.4中培养;采用胰蛋白酶消化法进行传代培养;本发明工艺科学合理,避免了常规细胞系构建中的酶消化法对石鲽肝脏细胞的损伤,细胞可正常贴壁生长,各培养液添加物有效促进了肝脏细胞的增殖,由本发明构建的石鲽肝脏细胞系目前已传至第110代,细胞增殖状态良好,可望应用该细胞系进行分子细胞水平上多种中草药有效成分对鱼类病毒进行抗病毒作用机理研究,从而研制出病害防治中的有效治疗药物或免疫增强剂,解决日益严重的各种水产养殖病害。

Description

一种石鲽肝脏细胞系的构建方法
技术领域
    本发明涉及一种利用石鲽肝脏组织细胞建立肝脏细胞系的方法——石鲽肝脏细胞系的构建方法。
背景技术
石鲽(Kareius bicoloratus)是温热带海洋底栖鱼类,盛产于我国的黄海、渤海,是我国重要的海水养殖经济鱼类。频繁爆发的各种病毒性疾病对石鲽养殖业带来了严重的影响,造成患病石鲽大面积死亡,经济损失严重,并可能通过食物链威胁到人类健康。目前尚无适当的药物或疫苗可进行有效防治,亟待开发和生产安全高效的无公害渔药。其中,将抗病毒谱广、毒副作用小的各种中草药有效成分应用于疾病防治,可以解决使用化学药物造成的耐药性和药物残留超标等问题,符合国际上食用性动物药品的“低毒、无残留、高药效”的发展要求。因此,为了研究石鲽病毒传播机制、宿主细胞的防御机制及病毒与宿主之间的相互作用机理,并进行中草药有效成分抗病毒机理研究,利用病毒易于感染的石鲽肝脏组织,建立石鲽肝脏连续性细胞系是十分必要的。
鱼类肝脏组织含有较多的胶原和纤维组织,现有专利中的鱼类细胞系构建方法中,快速剪碎组织时产生的机械剪切力,会对肝脏细胞产生很大影响,不能使肝脏原代细胞正常贴壁并增殖,所提供的各种酶消化法处理后,肝脏组织块中细胞迁出数量少,消化后的细胞数量少,不易贴壁,且鱼类肝脏组织不同于哺乳动物肝脏,无法使用目前构建哺乳动物肝脏细胞系常用的灌注消化法进行细胞系建立。因此,需要研究一种有效的石鲽肝脏细胞系的构建方法,以建立石鲽肝脏细胞系,为在分子细胞水平上研究多种中草药有效成分的抗病毒作用机理,从而研制出病害防治中的有效治疗药物或免疫增强剂,解决日益严重的各种水产养殖病害。
发明内容
本发明的目的是利用石鲽肝脏组织,针对肝脏组织特点,提供一种石鲽肝脏细胞系的构建技术,以弥补现有技术的不足。
本发明的构建方法:首先对鲜活石鲽用75%酒精消毒处理,用纱布擦除体表粘液,置于超净工作台中解剖取下肝脏组织,磷酸盐缓冲液漂洗后粗剪成约50-100 立方毫米的组织块。根据肝脏组织特点,设定两次酶消化处理。首先在消化液I(含0.1%-0.2%的胰蛋白酶和0.1%-0.2%EDTA的磷酸盐缓冲液)中对处理好的肝脏组织块消化5-10分钟,用血清中和反应后,离心收集肝脏组织块;再在消化液II(0.1%-0.2%Ⅳ型胶原酶的DMEM/F12培养液)中进行第二次酶消化处理,首先用滴管缓慢吹打组织块,使其混合均匀,静置消化0.5小时后将上部悬液取出;再加入新的消化液II,慢速将肝脏组织块继续剪至小于1 立方毫米(约0.5-1小时)后,继续消化1小时,消化完毕后,混合所得细胞悬液,经200目钢网过滤,离心收集后,用含有5%胎牛血清、1‰-2‰比例的硫酸软骨素和1‰-2‰比例的N-乙酰葡萄糖盐酸盐的pH值为7.0-7.4的DMEM/F12培养液充分悬浮,均匀接种于已用0.1%明胶预先铺板的24孔细胞培养板中,22-24℃下贴壁1小时后,每孔加入1mL石鲽肝脏细胞专用增殖培养液,置22-24℃生化培养箱中培养,第二天半量更换石鲽肝脏细胞专用增殖培养液一次,待石鲽肝脏细胞长满培养孔后,将细胞悬浮、混合,转至25毫升培养瓶中培养,每隔3-5天半量更换石鲽肝脏细胞专用增殖培养液一次;待细胞长成单层后,使用浓度为0.125%-0.25%胰蛋白酶溶液消化,按1瓶传2瓶的方式进行传代培养;所述的石鲽肝脏细胞专用增殖培养液配方为含有20%胎牛血清、1‰-2‰比例的硫酸软骨素和1‰-2‰比例的N-乙酰葡萄糖盐酸盐、pH值为7.0-7.4的DMEM/F12培养液。为了促进石鲽肝脏细胞的分裂和快速增殖,本发明又添加了0.02‰-0.04‰的人肝细胞生长因子和10%-20%的已抽滤的石鲽肝脏抽提液。
本发明的有益效果是:针对石鲽肝脏组织特点,采用两步酶消化法,避免原代培养中常规酶消化法及组织块处理时机械剪切力对肝脏细胞造成的影响,获得的原代肝脏细胞可以正常贴壁生长,并通过添加多种细胞外基质成分及添加物,使肝脏细胞快速增殖,连续传代并成功建系,经这种方法所构建的肝脏细胞系现已传至第110代,细胞仍保持石鲽肝脏细胞的特性,该细胞系可在分子细胞水平上进行鱼类病毒学研究并进行相关治疗药物的研制。
具体实施方式
将上述本发明的方法按照细致步骤进行详述如下:
1、石鲽肝脏组织块的初步处理:首先对鲜活石鲽用75%酒精浸泡5-10分钟,用纱布擦除体表粘液,置于超净工作台中解剖取下肝脏组织,磷酸盐缓冲液漂洗2遍后在含有5%胎牛血清的DMEM/F12培养液中将肝脏组织粗剪成约50-100 立方毫米的组织块,800rpm离心收集肝脏组织块。
2、对肝脏组织块进行两步酶消化法处理:在消化液I(含0.1%-0.2%的胰蛋白酶和0.1%-0.2%EDTA的磷酸盐缓冲液)中对上一步处理好的肝脏组织块消化5-10分钟,加入2滴胎牛血清中和反应后,1000rpm离心收集肝脏组织块;再在肝脏组织块中加入消化液II(0.1%-0.2%Ⅳ型胶原酶的DMEM/F12培养液),用滴管缓慢吹打组织块,使其混合均匀,静置消化0.5小时后将上部细胞悬液取出;再加入新的消化液II,慢速将肝脏组织块继续剪至小于1 立方毫米(约0.5-1小时)后,继续消化1小时。
3、 石鲽肝脏细胞专用增殖培养液的配制:取常规配制的DMEM/F12培养液(pH 7.0-7.4)3.0毫升,加入硫酸软骨素5~10毫克,N-乙酰葡萄糖盐酸盐5-10毫克,完全溶解后用0.22微米的微孔滤膜过滤除菌,加入1毫升胎牛血清,补加常规配制的DMEM/F12培养液至5.0毫升,即为本发明的石鲽肝脏细胞专用培养液。为了促进石鲽肝脏细胞的分裂和快速增殖,并添加石鲽肝脏细胞所需的众多未知的促分裂增殖因子,达到其最佳生长条件,本发明又添加了0.02‰-0.04‰的人肝细胞生长因子和10%-20%的已抽滤的石鲽肝脏抽提液,此石鲽肝脏抽提液为将石鲽肝脏组织匀浆经0.22微米的微孔滤膜过滤除去其他杂质而得。
4、石鲽肝脏细胞培养的获得及原代培养的启动:混合消化完毕后的细胞悬液经200目钢网过滤,离心收集后,用1毫升含有5%胎牛血清、1‰-2‰比例的硫酸软骨素和1‰-2‰比例的N-乙酰葡萄糖盐酸盐的DMEM/F12培养液(pH值7.0-7.4)充分悬浮,均匀接种于已用0.1%明胶预先铺板的24孔细胞培养板中,每孔加入的细胞悬液覆盖底部即可,22-24℃下贴壁1小时后,每孔加入1mL石鲽肝脏细胞专用增殖培养液,置22-24℃生化培养箱中培养,第二天半量更换石鲽肝脏细胞专用增殖培养液一次,待石鲽肝脏细胞长满培养孔后,将多个孔中细胞悬浮混合,转至25毫升培养瓶中培养,每隔3-5天,吸出2.5毫升上述25毫升培养瓶中的培养液,以去除未贴壁的组织和死细胞,加入2.5毫升新鲜的石鲽肝脏细胞专用培养液。
5、石鲽肝脏细胞的传代培养:待石鲽肝脏细胞长成单层后,吸出培养瓶中的培养液,向每个培养瓶中加入1毫升浓度为0.125%-0.25%的胰蛋白酶溶液,静置消化0.5-1分钟;吸去胰蛋白酶溶液,将刚刚吸出的5毫升旧培养液加回,用滴管吹打培养瓶底制成石鲽肝脏细胞悬液;从每个培养瓶中分别取出2.5毫升肝脏细胞悬液,分别加入到新的培养瓶中,每个培养瓶补加上述专用培养液2.5毫升,使之最终体积至5毫升;待石鲽肝脏细胞再次长成单层后,仍以上述的相同方法进行传代培养,至细胞系建立。
实施例1
将鲜活石鲽于盛有75 %酒精的容器中浸泡消毒5-10分钟,用纱布擦除体表粘液,移入超净工作台中,用棉球擦拭鱼体表后解剖取出肝脏组织,置于盛有磷酸盐缓冲液的烧杯中漂洗2遍;转入含有5%胎牛血清DMEM/F12培养液的青霉素小瓶中粗剪成约50-100 立方毫米的组织块;800rpm离心收集肝脏组织块,加入消化液I(含0.1%的胰蛋白酶和0.1%EDTA的磷酸盐缓冲液)对肝脏组织块消化5分钟;加入2滴胎牛血清中和反应后,1000rpm离心收集组织块;再在消化液II(0.1%Ⅳ型胶原酶的DMEM/F12培养液)中,用滴管缓慢吹打组织块将酶液与组织块混合均匀,静置消化0.5小时后,取出上部细胞悬液,再加入新的消化液II,慢速将肝脏组织块继续剪至小于1 立方毫米(约0.5小时)后,继续消化1小时。
取常规配制的DMEM/F12培养液(pH 7.0-7.4)3.0毫升,加入硫酸软骨素5毫克,N-乙酰葡萄糖盐酸盐5毫克,完全溶解后用0.22微米的微孔滤膜过滤除菌,加入1毫升胎牛血清,补加常规配制的DMEM/F12培养液至5.0毫升,即为本发明的石鲽肝脏细胞专用培养液。为了促进石鲽肝脏细胞的分裂和快速增殖,并添加石鲽肝脏细胞所需的众多未知的促分裂增殖因子,达到其最佳生长条件,本发明又添加了0.02‰的人肝细胞生长因子和20%的已抽滤的石鲽肝脏抽提液,此石鲽肝脏抽提液为将石鲽肝脏组织匀浆经0.22微米的微孔滤膜过滤除去其他杂质而得。
混合消化完毕后的细胞悬液经200目钢网过滤,1000rpm离心收集后,用1毫升含有5%胎牛血清、1‰比例的硫酸软骨素和1‰比例的N-乙酰葡萄糖盐酸盐的DMEM/F12培养液(pH值7.0-7.4)充分悬浮,均匀接种于已用0.1%明胶预先铺板的24孔细胞培养板中,每孔加入的细胞悬液覆盖底部即可,22℃下贴壁1小时后,每孔加入1mL石鲽肝脏细胞专用增殖培养液,置22℃生化培养箱中培养,第二天半量更换石鲽肝脏细胞专用增殖培养液一次,待石鲽肝脏细胞长满培养孔后,将多个孔中细胞悬浮混合,转至25毫升培养瓶中培养,每隔3-5天,吸出2.5毫升上述25毫升培养瓶中的培养液,以去除未贴壁的组织和死细胞,加入2.5毫升新鲜的石鲽肝脏细胞专用培养液。待石鲽肝脏细胞长成单层后,吸出培养瓶中的培养液,向每个培养瓶中加入1毫升浓度为0.125%的胰蛋白酶溶液,静置消化1分钟;吸去胰蛋白酶溶液,将刚刚吸出的5毫升旧培养液加回,用滴管吹打培养瓶底制成石鲽肝脏细胞悬液;从每个培养瓶中分别取出2.5毫升肝脏细胞悬液,分别加入到新的培养瓶中,每个培养瓶补加上述专用培养液2.5毫升,使之最终体积至5毫升;待石鲽肝脏细胞再次长成单层后,仍以上述的相同方法进行传代培养,至细胞系建立。
实施例2
将鲜活石鲽于盛有75 %酒精的容器中浸泡消毒5-10分钟,用纱布擦除体表粘液,移入超净工作台中,用棉球擦拭鱼体表后解剖取出肝脏组织,置于盛有磷酸盐缓冲液的烧杯中漂洗2遍;转入含有5%胎牛血清DMEM/F12培养液的青霉素小瓶中粗剪成约50-100 立方毫米的组织块;800rpm离心收集肝脏组织块,加入消化液I(含0.1%的胰蛋白酶和0.2%EDTA的磷酸盐缓冲液)对肝脏组织块消化10分钟;加入2滴胎牛血清中和反应后,1000rpm离心收集组织块;再在消化液II(0.2%Ⅳ型胶原酶的DMEM/F12培养液)中,用滴管缓慢吹打组织块将酶液与组织块混合均匀,静置消化0.5小时后,取出上部细胞悬液,再加入新的消化液II,慢速将肝脏组织块继续剪至小于1 立方毫米(约1小时)后,继续消化1小时。
取常规配制的DMEM/F12培养液(pH 7.0-7.4)3.0毫升,加入硫酸软骨素10毫克,N-乙酰葡萄糖盐酸盐5毫克,完全溶解后用0.22微米的微孔滤膜过滤除菌,加入1毫升胎牛血清,补加常规配制的DMEM/F12培养液至5.0毫升,即为本发明的石鲽肝脏细胞专用培养液。为了促进石鲽肝脏细胞的分裂和快速增殖,并添加石鲽肝脏细胞所需的众多未知的促分裂增殖因子,达到其最佳生长条件,本发明又添加了0.02‰的人肝细胞生长因子和10%的已抽滤的石鲽肝脏抽提液,此石鲽肝脏抽提液为将石鲽肝脏组织匀浆经0.22微米的微孔滤膜过滤除去其他杂质而得。
混合消化完毕后的细胞悬液经200目钢网过滤,1000rpm离心收集后,用1毫升含有5%胎牛血清、2‰比例的硫酸软骨素和1‰比例的N-乙酰葡萄糖盐酸盐的DMEM/F12培养液(pH值7.0-7.4)充分悬浮,均匀接种于已用0.1%明胶预先铺板的24孔细胞培养板中,每孔加入的细胞悬液覆盖底部即可,24℃下贴壁1小时后,每孔加入1mL石鲽肝脏细胞专用增殖培养液,置24℃生化培养箱中培养,第二天半量更换石鲽肝脏细胞专用增殖培养液一次,待石鲽肝脏细胞长满培养孔后,将多个孔中细胞悬浮混合,转至25毫升培养瓶中培养,每隔3-5天,吸出2.5毫升上述25毫升培养瓶中的培养液,以去除未贴壁的组织和死细胞,加入2.5毫升新鲜的石鲽肝脏细胞专用培养液。待石鲽肝脏细胞长成单层后,吸出培养瓶中的培养液,向每个培养瓶中加入1毫升浓度为0.125%的胰蛋白酶溶液,静置消化0.5分钟;吸去胰蛋白酶溶液,将刚刚吸出的5毫升旧培养液加回,用滴管吹打培养瓶底制成石鲽肝脏细胞悬液;从每个培养瓶中分别取出2.5毫升肝脏细胞悬液,分别加入到新的培养瓶中,每个培养瓶补加上述专用培养液2.5毫升,使之最终体积至5毫升;待石鲽肝脏细胞再次长成单层后,仍以上述的相同方法进行传代培养,至细胞系建立。
实施例3
将鲜活石鲽于盛有75 %酒精的容器中浸泡消毒5-10分钟,用纱布擦除体表粘液,移入超净工作台中,用棉球擦拭鱼体表后解剖取出肝脏组织,置于盛有磷酸盐缓冲液的烧杯中漂洗2遍;转入含有5%胎牛血清DMEM/F12培养液的青霉素小瓶中粗剪成约50-100 立方毫米的组织块;800rpm离心收集肝脏组织块,加入消化液I(含0.2%的胰蛋白酶和0.2%EDTA的磷酸盐缓冲液)对肝脏组织块消化5分钟;加入2滴胎牛血清中和反应后,1000rpm离心收集组织块;再在消化液II(0.2%Ⅳ型胶原酶的DMEM/F12培养液)中,用滴管缓慢吹打组织块将酶液与组织块混合均匀,静置消化0.5小时后,取出上部细胞悬液,再加入新的消化液II,慢速将肝脏组织块继续剪至小于1 立方毫米(约1小时)后,继续消化1小时。
取常规配制的DMEM/F12培养液(pH 7.0-7.4)3.0毫升,加入硫酸软骨素10毫克,N-乙酰葡萄糖盐酸盐10毫克,完全溶解后用0.22微米的微孔滤膜过滤除菌,加入1毫升胎牛血清,补加常规配制的DMEM/F12培养液至5.0毫升,即为本发明的石鲽肝脏细胞专用培养液。为了促进石鲽肝脏细胞的分裂和快速增殖,并添加石鲽肝脏细胞所需的众多未知的促分裂增殖因子,达到其最佳生长条件,本发明又添加了0.04‰的人肝细胞生长因子和10%的已抽滤的石鲽肝脏抽提液,此石鲽肝脏抽提液为将石鲽肝脏组织匀浆经0.22微米的微孔滤膜过滤除去其他杂质而得。
混合消化完毕后的细胞悬液经200目钢网过滤,1000rpm离心收集后,用1毫升含有5%胎牛血清、2‰比例的硫酸软骨素和2‰比例的N-乙酰葡萄糖盐酸盐的DMEM/F12培养液(pH值7.0-7.4)充分悬浮,均匀接种于已用0.1%明胶预先铺板的24孔细胞培养板中,每孔加入的细胞悬液覆盖底部即可,24℃下贴壁1小时后,每孔加入1mL石鲽肝脏细胞专用增殖培养液,置24℃生化培养箱中培养,第二天半量更换石鲽肝脏细胞专用增殖培养液一次,待石鲽肝脏细胞长满培养孔后,将多个孔中细胞悬浮混合,转至25毫升培养瓶中培养,每隔3-5天,吸出2.5毫升上述25毫升培养瓶中的培养液,以去除未贴壁的组织和死细胞,加入2.5毫升新鲜的石鲽肝脏细胞专用培养液。待石鲽肝脏细胞长成单层后,吸出培养瓶中的培养液,向每个培养瓶中加入1毫升浓度为0.25%的胰蛋白酶溶液,静置消化0.5分钟;吸去胰蛋白酶溶液,将刚刚吸出的5毫升旧培养液加回,用滴管吹打培养瓶底制成石鲽肝脏细胞悬液;从每个培养瓶中分别取出2.5毫升肝脏细胞悬液,分别加入到新的培养瓶中,每个培养瓶补加上述专用培养液2.5毫升,使之最终体积至5毫升;待石鲽肝脏细胞再次长成单层后,仍以上述的相同方法进行传代培养,至细胞系建立。

Claims (2)

1.一种石鲽肝脏细胞系的构建方法其特征是它包括如下步骤:对鲜活石鲽用75%酒精消毒处理,用纱布擦除体表粘液,置于超净工作台中解剖取下肝脏组织,磷酸盐缓冲液漂洗后粗剪成约50-100 立方毫米的组织块;进行两步酶消化法后,混合所得细胞悬液;经200目钢网过滤,离心收集后,用含有5%胎牛血清、1‰-2‰比例的硫酸软骨素和1‰-2‰比例的N-乙酰葡萄糖盐酸盐的DMEM/F12培养液充分悬浮,均匀接种于已用0.1%明胶预先铺板的24孔细胞培养板中,22-24℃下贴壁1小时,每孔再加入1mL石鲽肝脏细胞专用增殖培养液,置22-24℃生化培养箱中培养,第二天半量更换石鲽肝脏细胞专用增殖培养液一次,待石鲽肝脏细胞长满培养孔后,转至25毫升培养瓶中培养,每隔3-5天半量更换石鲽肝脏细胞专用增殖培养液一次;待细胞长成单层后,使用浓度为0.125%-0.25%胰蛋白酶溶液消化,按1瓶传2瓶的方式进行传代培养,并最终建立石鲽肝脏细胞系;所述石鲽肝脏细胞专用增殖培养液配方为含有20%胎牛血清、1‰-2‰比例的硫酸软骨素和1‰-2‰比例的N-乙酰葡萄糖盐酸盐的DMEM/F12培养液pH值7.0-7.4;所述两步酶消化法是指在消化液I中消化肝脏组织块5-10分钟,消化液I是磷酸盐缓冲液,该磷酸盐缓冲液中含0.1%-0.2%的胰蛋白酶和0.1%-0.2%EDTA,离心收集组织块后再加入消化液II,消化液II是0.1%-0.2%Ⅳ型胶原酶的DMEM/F12培养液,混合均匀静置消化0.5小时后将上部悬液取出;再加入新的消化液II,用0.5-1小时慢速将肝脏组织块继续剪至小于1 立方毫米后,继续消化1小时,获得所需的肝脏细胞。
2.如权利要求1所述的构建方法,其特征是在上述石鲽肝脏细胞专用增殖培养液中添加了占上述专用增殖培养液0.02‰-0.04‰的人肝细胞生长因子和10%-20%的已抽滤的石鲽肝脏抽提液;石鲽肝脏抽提液为将石鲽肝脏组织匀浆经0.22微米的微孔滤膜过滤除去其他杂质而得。
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* Cited by examiner, † Cited by third party
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CN102766595B (zh) * 2012-08-07 2013-11-20 中国科学院昆明动物研究所 一种鱇浪白鱼心脏细胞系的构建方法
CN102757933B (zh) * 2012-08-07 2013-10-23 中国科学院昆明动物研究所 一种鱇浪白鱼肌肉细胞系的构建方法
CN103992981A (zh) * 2013-12-19 2014-08-20 集美大学 一种大黄鱼肝脏细胞系及其建立方法
CN104293731A (zh) * 2014-10-13 2015-01-21 中国水产科学研究院淡水渔业研究中心 建鲤原代肝细胞的分离培养方法

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* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
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CN101392235A (zh) * 2008-11-06 2009-03-25 浙江大学 一种永生化猪肝细胞大规模培养的方法
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