CN102286625B - 一种与男性生殖功能障碍相关的精浆微小核糖核酸组合及其应用 - Google Patents

一种与男性生殖功能障碍相关的精浆微小核糖核酸组合及其应用 Download PDF

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Abstract

本发明属于生物技术领域,公开了一种与男性生殖功能障碍相关的精浆微小核糖核酸组合及其应用。该miRNA组合包括下列miRNA:miR-34c-5p,miR-181a,miR-374b和miR-509-5p。该组合可用于制备诊断或监测男性生殖功能障碍的试剂。

Description

一种与男性生殖功能障碍相关的精浆微小核糖核酸组合及其应用
技术领域
本发明属于生物技术领域,涉及一种与男性生殖功能障碍相关的精浆微小核糖核酸(microRNA,简称miRNA)组合及其应用。
背景技术
据WHO统计,不育(孕)夫妇约占育龄夫妇的10%~15%,其中男性因素约占30%~40%[1,2]。近年来,男性不育的比例呈上升趋势,而人们对优生优育的要求越来越高,因此为了有效诊断和治疗男性不育,寻找临床价值更高的男性不育标志物迫在眉睫。目前国内临床实验室通过检测精液中精子的密度和活力、精浆生化指标、血液中性激素水平、染色体核型和Y染色体微缺失等方法来判断男性睾丸的生精功能。但目前的临床检测手段对许多无、少精子症的病因无法作出解释和判断,给临床治疗带来了极大的困扰。精液中除精子外,绝大部分是精浆。精浆由附睾、精囊、前列腺、睾丸网及尿道旁腺的分泌物组成,其化学成分中除90%的水外,还有糖、脂质、蛋白质、肽类激素、胺类、有机酸、有机碱以及无机离子等多种成分。研究表明,相对于正常男性,男性生殖功能障碍患者的精液,特别是精浆中的化学成分往往会发生一定程度的改变。目前开展的常规精浆检测项目包括果糖、α-葡糖苷酶、酸性磷酸酶、锌和肉毒碱以及一些免疫学指标,包括抗精子抗体和抗弓行虫抗体等,这些检测项目仅有助于诊断有限的几种男性附属性腺功能异常及个别免疫学因素,不能直接反映睾丸的生精功能和全面评价精液质量[3]
因此亟待找到一种比现有方法更可靠同时又简单易行的新方法来鉴定男性睾丸的生精功能以及判断附属性腺的病理。
miRNA是真核生物中一类长约22个核苷酸并参与基因转录后水平调控的非编码单链小核糖核酸分子。miRNA通过与靶mRNA的3’端非翻译序列完全或部分互补结合,导致靶mRNA降解或转录后翻译抑制来调控靶基因的表达[4]。它们在进化上高度保守,广泛存在于动植物细胞中。近五年来,在人类、小鼠、大鼠等多种生物物种中鉴别出数百种miRNA分子。miRNA存在于几乎每一种组织细胞中,对各种生命过程包括生殖、发育都会产生潜在影响,人体30%的蛋白质编码基因都由miRNA调控[5,6]
睾丸是男性的主要生殖器官,睾丸的精子中也存在miRNA。在各级生精细胞中一些特定的miRNA高度表达,表明这些miRNA参与精子的发生,对精原细胞的增殖和精子生成起着重要作用[7-9]。因此,对这些miRNA进行研究就有可能寻找到一些与男性生殖功能,特别是与睾丸生精功能密切相关的miRNA作为标志物,进而用于男性生殖功能障碍的临床诊断和预测。
发明内容
本发明的目的是提供一种与男性生殖功能障碍相关的精浆微小核糖核酸组合。
本发明的另一个目的是提供上述精浆微小核糖核酸组合的应用。
本发明人发现精浆中能够检测到高表达丰度的miRNA,特别是发现其中一组miRNA的表达异常与生殖功能有关,例如它们在精浆中的表达水平与睾丸的生精功能密切相关。因此,本发明通过研究男性生殖功能障碍过程中精浆miRNA的特异性变化,筛选出在不育及正常生育状态下表达差异显著的精浆miRNA,通过检测这些miRNA,为诊断男性生殖功能障碍提供新的信息和标志物,对提高男性生殖功能障碍的发现率,病程监控、预后和药效评价过程中的针对性以及疗效都具有积极的意义。
本发明的上述目的是采用以下技术方案来实现的:
一种与男性生殖功能障碍相关的精浆微小核糖核酸组合,该miRNA组合包括下列miRNA:miR-34c-5p,miR-181a,miR-374b和miR-509-5p。
所述的精浆微小核糖核酸组合,该miRNA组合还包括miR-146-5p和miR-513a-5p,进一步,该miRNA组合还包括miR-122。
所述的精浆微小核糖核酸组合,其中男性生殖功能障碍是指无精、少精和/或弱精。
所述的精浆微小核糖核酸组合,其中与无精和/或弱精相关的精浆微小核糖核酸组合包括miR-34c-5p,miR-181a,miR-374b和miR-509-5p。进一步地,该组合为miR-34c-5p,miR-181a,miR-374b,miR-509-5p,miR-122,miR-146-5p和miR-513a-5p。
所述的精浆微小核糖核酸组合,其中与少精相关的精浆微小核糖核酸组合包括miR-34c-5p,miR-181a,miR-374b和miR-509-5p。进一步地,该组合为miR-34c-5p,miR-181a,miR-374b,miR-509-5p,miR-146-5p和miR-513a-5p。
上述的精浆微小核糖核酸组合在制备诊断或监测男性生殖功能障碍的试剂中的应用,其中男性生殖功能障碍是指无精、少精和/或弱精。
上述miRNA组合的筛选方法包括以下步骤:
(1)收集生育正常男性以及生殖功能障碍男性的精浆,并提取总RNA;
(2)采用高灵敏度、精确性和高重复性的Solexa测序技术(Solexa sequencingtechnology),对上述RNA进行检测,初筛选出生殖功能障碍与正常男性精浆中表达差异显著的一组miRNA;
(3)进一步用适时荧光定量PCR方法验证。
具体来说(结合图1及实施例),上述筛选方法包括以下步骤:(1)分别收集正常生育男性及生殖功能障碍男性的精浆,并提取总RNA,其中所述生殖功能障碍包括无精(非梗阻性)、少精或弱精;(2)根据已知的人全部成熟miRNA,对上述RNA进行测序和检测,初筛出生殖功能障碍男性与正常男性精浆中表达差异明显的一组miRNA;(3)将抽提的RNA逆转录为cDNA,采用荧光定量PCR(TaqMan探针法)方法进一步对初筛出的miRNA进行复筛和验证,挑选出稳定、特异表达的一组miRNA,进行临床价值评估。
本发明使用的检测方法可以选自:RT-PCR方法、Solexa测序技术(Solexasequencing technology)、Real-time PCR方法以及生物芯片方法中的一种或几种,这些方法是本领域技术人员熟知的方法,采用的试剂均可从商业途径得到。例如,精浆中miRNA分子的检测方法包括以下步骤:
(1)使用Trizol试剂(Invitrogen公司)提取精浆总RNA;
(2)通过RNA逆转录反应得到cDNA;
(3)根据人全部成熟体miRNA设计引物进行PCR反应;
(4)进行PCR产物的琼脂糖凝胶电泳;
(5)EB染色后在紫外灯下观察结果。
在所述步骤(5)之后还可以包括下列步骤:用TaqMan探针法检测并比较精浆样本相对于正常男性精浆中miRNA的量的变化。
本发明提供了一种用于检测和/或预测男性生殖功能障碍的miRNA组合,其包括下列miRNA的组合:
  miRNA   对应的核苷酸序列   序列编号
  miR-34c-5p   AGGCAGUGUAGUUAGCUGAUUGC   SEQ ID NO.1
  miR-181a   AACAUUCAACGCUGUCGGUGAGU   SEQ ID NO.2
  miR-374b   AUAUAAUACAACCUGCUAAGUG   SEQ ID NO.3
  miR-509-5p   UACUGCAGACAGUGGCAAUCA   SEQ ID NO.4
上述组合可以进一步包括以下三种miRNA:
  miRNA   对应的核苷酸序列   序列编号
  miR-122   UGGAGUGUGACAAUGGUGUUUG   SEQ ID NO.5
  miR-146-5p   UGAGAACUGAAUUCCAUAGGCU   SEQ ID NO.6
  miR-513a-5p   UUCACAGGGAGGUGUCAU   SEQ ID NO.7
本发明所述男性生殖功能障碍包括男性不育。具体而言,所述男性生殖功能障碍是生精功能障碍以及其他原因导致的男性不育,例如无精(非梗阻性)、少精或弱精。
本发明的有益效果:
本发明所述的miRNA组合可应用于男性生殖功能障碍的检测中,例如为男性生殖功能障碍补充新的检测指标、用于病程监测、预后和药效评价之中。本发明所提供的上述miRNA组合具有以下几个方面的有益效果:
首先,精浆相对其它组织较易获得,与睾丸活检或者睾丸穿刺相比,属于无创性检查,极大地方便了医疗人员的使用,减轻了患者的痛苦;
其次,精浆中的miRNA反映的是整个生精阶段的病理、生理情况,其检测结果具有临床指导意义;
第三,精浆miRNA检测能在分子水平上反映精子发生过程中基因转录后调控状态,提高了检测的准确水平,并为男性生殖功能障碍,尤其是生精功能障碍的治疗提供了潜在靶点。
综上所述,检测精浆中的特定miRNA,简单易行且效果优越,本发明从精浆miRNA的特异性变化这一新角度出发,发现疾病并且区分男性生殖功能障碍,从而建立起一种检测生精功能障碍的新技术并提供与男性生殖功能障碍相关的标志物。该技术仅仅需要病人的精浆而不需要任何其它组织,通过最精简的miRNA组合来检测特定miRNA的变化趋势,再通过该变化趋势监测男性生殖功能障碍发生的可能性,指导诊断和治疗。由此可见,检测精浆miRNA水平能拓展男性生殖功能障碍,例如睾丸生精功能的诊断或监测指标,提高检测的灵敏度,丰富诊断男性生殖功能障碍的手段,这些精浆miRNA的水平有望成为诊断男性不育的重要标志物,具有极重要的临床应用潜力和价值。
附图说明
图1为本发明的主要流程图。
图2为TaqMan探针定量PCR方法的标准曲线。
图3为TaqMan探针定量PCR方法的重复性。
A.miRNA提取方法的重复性;B.定量PCR方法的重复性。
图4为筛选出的miRNA在少精患者与正常生育中的ROC曲线(A-D)。
图5为筛选出的miRNA在无精或弱精患者与正常生育中的ROC曲线。
A-G.无精症组与正常组;H-N.弱精症组与正常组;O-U.无精症组与弱精症组;
图6为几种常规生化指标包括锌、果糖、α-葡糖苷酶、酸性磷酸酶在不育患者与正常生育中的ROC曲线。
A-C.锌,其中A:无精症组与正常组;B:弱精症组与正常组;C:无精症组与弱精症组。
D-F.果糖,其中D:无精症组与正常组;E:弱精症组与正常组;F:无精症组与弱精症组。
G-I.α-葡糖苷酶,其中G:无精症组与正常组;H:弱精症组与正常组;I:无精症组与弱精症组。
J-L.酸性磷酸酶,其中J:无精症组与正常组;K:弱精症组与正常组;L:无精症组与弱精症组。
具体实施方式
以下通过实施例对本发明作进一步的阐述。
实施例中所用的引物、探针均为美国ABI公司的商业化产品。
实施例1:生殖功能障碍的特异miRNA表达谱筛选
(1)研究对象为结婚后未采取任何避孕措施2年以上不育男性(其配偶检查正常,本身无性功能障碍、精索静脉曲张,无心脑血管、恶性肿瘤、肝肾功能异常等疾病。患者年龄在24-34岁之间,病程1~7年),以年龄匹配的已育不超过两年的男性为正常对照(精液质量正常,无全身性疾病,年龄在24-34岁之间),所有受试者禁欲3~7天后留取精液,用WLJY-9000伟力彩色精子质量检测系统(北京伟力公司)进行精子质量和功能分析。分析标准均按世界卫生组织标准进行(“人类精液及精子-宫颈粘液相互作用实验室检验手册[M]”(第4版),世界卫生组织编,谷群等译,北京:人民卫生出版社,2001.5.1)。经精子分析将受试者分为以下4类:无精:精子密度=0;少精:精子密度<20×106/ml,a级精子>25%或(a+b)级精子>50%;弱精:精子密度>20×106/ml,a级精子<25%或(a+b)级精子<50%;正常:精子密度>20×106/ml,a级精子>25%或(a+b)级精子>50%。
精子分析后将精液1500g离心10min,再12,000g离心5min,收集精浆。
(2)收集非梗阻性无精(经重复精液质量检测或睾丸穿刺活检确诊)、弱精以及正常生育者精浆标本分别45例、58例和100例,三组中的标本分别混合,三组总体积均为120ml。分别提取三组混合精浆中的RNA,具体方案为:利用Trizol试剂(Invitrogen公司)提取总RNA,得到的上清液使用酚氯仿三步法进一步去除蛋白等杂质提纯RNA。
(3)对三组精浆总RNA进行Solexa测序分析。
具体方案为:Solexa测序法的基础是单分子克隆阵列技术,能够在整个基因组水平上区分单个碱基的差别,从而区分个体间的差异。先将接头连接到小分子RNA片段上,再经PCR扩增后制成库。随后在含有接头的芯片上加入已连接接头的小分子RNA,经反应,将不同片段扩增。在下一步反应中,四种荧光标记的染料用边合成边测序的原理,在每个循环过程里,荧光标记的核苷和聚合酶被加入到单分子阵列中。互补的核苷和核苷酸片断的第一个碱基配对,通过酶加入到引物上。多余的核苷被移走。这样每个单链DNA分子通过互补碱基的配对被延伸,利用生物发光蛋白,比如萤火虫的荧光素酶,可通过碱基加到引物后端时所释放出的焦磷酸盐来提供检测信号。针对每种碱基的特定波长的激光激发结合上的核苷的标记,这个标记会释放出荧光。荧光信号被CCD采集,CCD快速扫描整个阵列检测特定的结合到每个片断上的碱基。通过上述的结合,检测可以重复几十个循环,这样就有可能决定核苷酸片断中的几十个碱基。最后再比对序列,筛选出所要得到的miRNA的拷贝数。
(4)miRNA表达谱分析。
人类miRNA数据库(版本miRbase 12.0和Sanger data)中包含的miRNA共有692个,采用Solexa技术检测精浆中所有692个miRNA序列和拷贝数值,拷贝值反映各个miRNA的表达量。若拷贝数=0表示精浆中没有该miRNA,拷贝数值越大,其相对的miRNA的表达量越多。
若miRNA在正常组中的拷贝数大于50,且在三组间的差异大于2.0倍,被认为变化明显,否则视为不变化。结果发现,在检测的692种miRNA中,共有19种符合该条件(详见表1)。无精组中14个miRNA拷贝数下降,5个上升;弱精组中7个下降,12个上升。
表1.Solexa测序初筛出的在不育患者精浆中变化明显的miRNA
Figure BDA0000087252030000071
实施例2:精浆中miRNA的RT-PCR实验
将表1中初筛出的miRNA,再进一步用定量PCR方法进行复筛和验证,筛选出表达差异显著的miRNA。
首先将提取的精浆总RNA反转录成cDNA。针对每一种miRNA,设计一个含相同茎环结构的基因特异性反向引物(ABI公司产品),利用miRNA特异性反向引物进行逆转录,得到含共同茎环结构但属于特定miRNA的cDNA。
仪器使用的是ABI Prism 7300荧光定量PCR仪。
本实验以不同浓度人工合成的每种miRNA成熟体作标准曲线。人工合成的miRNA成熟体原液逆转录成cDNA,用DEPC水稀释成10fmol/L到105pmol/L之间的浓度梯度。miRNA的cDNA需单独逆转,反应体系为:2μl RNA、2μl 5×AMV缓冲液、1μl 10mmol各种dNTP混合物(Takara公司)、0.5μl AMV(Takara公司)以及1μl miRNA成熟体逆转录引物(美国ABI公司提供,专用于miRNA逆转录),用3.5μl DEPC水补足体积至10μl。
用作标准曲线的miRNA成熟体荧光定量PCR反应体系:1μl cDNA、0.3μl Taq酶(Takara公司)、0.33μl TaqMan探针(由ABI公司提供,专用于miRNA荧光定量)、1.2μl 25mM MgCl2、0.4μl 2.5m M各种dNTP混合物(Takara公司产品)、2μl 10×PCR缓冲液以及14.77μl DEPC水。
待测标本中的每种miRNA检测时所采用的逆转录体系和荧光定量PCR反应体系同用作标准曲线的人工合成的miRNA成熟体,不过每种miRNA用各自特有的逆转录引物和TaqMan探针(由ABI公司提供)。数据处理方法为绝对定量法,即每次进行荧光定量PCR时,将所需检测的样本与标准曲线同时进行PCR扩增,扩增结束后根据扩增曲线设定统一的阈值,然后根据标准品的浓度及每个浓度对应的Cq值绘制标准曲线(图2)(此标准曲线以合成的每种miRNA成熟体绘制的标准曲线;Cq值的计算是公知的;图中的R指代的是pearson相关系数,可以从侧面反映出所作直线的斜率,计算方式可以通过Excel绘制散点图并添加趋势线得到,也可通过其他常用统计软件如spss13.0,statistics6.0等计算)并根据此标准曲线及待测样本的Cq值计算出该样本所需测定的miRNA绝对含量。
评估所采用的定量PCR方法的重复性:1.miRNA提取方法的重复性:取20例正常人精浆,混合后分成相同的两份(每份500μl),分别提取其总RNA,然后用定量PCR方法测定表达水平从低到高的16种miRNA(包括miR-1,miR-106b,miR-122,miR-128,miR-146b-5p,miR-181a,miR-193a-3p,miR-19b,miR-34c-5p,miR-374b,miR-495,miR-509-5p,miR-513a-5p,miR-532-5p,miR-890,miR-9)。这16种miRNA是随机选择的,包含表达量由低到高的三类miRNA,是为了说明提取各种浓度的miRNA都有较好的重复性。每种miRNA重复测定3次,取平均值。相关性分析显示,两份标本所测结果的相关系数(pearson’s系数)接近1(R2=0.9692)(图3A),提示miRNA提取方法重复性好。2.定量PCR方法的重复性:另取20例正常人精浆,混合后提取总RNA,将RNA分成相同的两份,然后用定量PCR方法测定上述16种miRNA。同样,每种miRNA重复3次,取平均值。相关性分析显示,两份RNA所测结果的相关系数接近1(R2=0.9776)(图3B),表明本发明所采用的定量PCR方法具有很好的重复性。
实施例3:定量PCR方法对初筛出的血清miRNA复筛
男性不育者共60例,其中非梗阻性无精症30例、弱精症30例,以年龄匹配的生育能力正常的男性24例作对照。患者和正常人的筛选标准同实施例1。测试者的临床信息见表2。用TaqMan定量PCR方法对受试者精浆标本进行逐个检测,从Solexa方法初筛出的19种miRNA中筛选出患者组与对照组之间表达差异显著的miRNA(具体步骤参见实施例2)。结果发现,初筛出的19种miRNA中有7种miRNA在患者组中表达量与对照组相比有显著差异(p<0.01),它们在无精组中均显著降低,而在弱精组中均明显升高,这7种miRNA是miR-34c-5p,miR-122,miR-146b-5p,miR-181a,miR-374b,miR-509-5p和miR-513a-5p(见表3)。
表2.复筛组和验证组所有受试者的临床信息
Figure BDA0000087252030000091
Figure BDA0000087252030000101
*数据以mean±SD表示.P1:无精vs正常;P2:弱精vs正常;P3:无精vs弱精;b:以two-sided x2test表示.
表3.定量PCR方法复筛出的miRNA*
Figure BDA0000087252030000102
*miRNAs浓度以mean±SEM(fM/L)表示.P1:无精组vs对照组;P2:弱精组vs对照组;P3:无精组vs弱精组.
实施例4:定量PCR方法对复筛出的精浆miRNA的临床验证
将复筛出的7种miRNA(包括miR-34c-5p,miR-122,miR-146b-5p,miR-181a,miR-374b,miR-509-5p和miR-513a-5p)进一步用定量PCR方法在大批量临床标本中进行验证,筛选出稳定的、表达差异显著的miRNA。临床研究的受试者无精者43例,弱精者49例,以正常44例作对照(患者和正常人的筛选标准同实施例1,详细临床信息见表2)。验证结果证实,复筛出的7种miRNA在两患者组中的变化趋势更加明显,即在无精组中显著降低,而在弱精组中明显升高(结果见表4)。这7种miRNA有助于无精和弱精的诊断。
此外,也测定了34例少精患者精浆中这些miRNA水平,发现除miR-122外,其他6种miRNA在少精者精浆中的浓度均低于正常对照,其中4种(包括miR-34c-5p、miR-181a、miR-374b和miR-509-5p)与正常对照组相比有显著差异(至少P<0.05),但降低幅度不如无精者(表5),因此这4种miRNA有助于少精症的诊断。
表4.定量PCR方法对复筛出的miRNA进一步验证结果*
Figure BDA0000087252030000111
*miRNAs浓度以mean±SEM(fM/L)表示.P1:无精组vs对照组;P2:弱精组vs对照组;P3:无精组vs弱精组.
表5.定量PCR方法检测少精患者的结果*
Figure BDA0000087252030000112
*miRNAs浓度以mean±SEM(fM/L)表示.
实施例5:筛选出的miRNA临床价值评估
根据4种在少精患者精浆浓度显著降低的miRNA(包括miR-34c-5p、miR-181a、miR-374b和miR-509-5p)浓度绘制ROC曲线(图4),并计算曲线下面积(AUC)(表6)以评估筛选出的miRNA对少精诊断的准确性。结果发现,这4种miRNA的AUC在0.628~0.721之间(见表6)。
将复筛组和验证组精浆标本综合起来(无精n=73,弱精n=79,正常n=68),根据每份标本精浆miRNA的浓度绘制ROC曲线(图5)并计算曲线下面积(AUC)(表7)以评估筛选出的miRNA对无精或弱精诊断的准确性。结果发现这7种miRNA的AUC在0.733~0.921之间(见表7)。
我们同时也对目前临床上常规精浆生化指标(包括锌、果糖、α-葡糖苷酶、酸性磷酸酶)的AUC进行了分析(图6)。这5种现有的生化指标AUC在0.510~0.622之间(见表8)。
通过比较可明显看出,我们所选择的miRNA对无精、弱精或少精诊断的准确性明显高于目前临床上所使用的生化指标。
表6.4种miRNA的ROC曲线下面积(AUC)(少精患者与对照组)
Figure BDA0000087252030000113
Figure BDA0000087252030000121
表7.7种miRNA的ROC曲线下面积(AUC)(无精或弱精组与对照组)
Figure BDA0000087252030000122
表8.几种常规生化指标的ROC曲线下面积(AUC)
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Figure IDA0000087252100000011
Figure IDA0000087252100000021

Claims (3)

1.一种精浆微小核糖核酸组合在制备诊断或监测男性生殖功能障碍的试剂中的应用,所述的精浆微小核糖核酸组合包括下列miRNA:miR-34c-5p,miR-181a,miR-374b和miR-509-5p;所述的男性生殖功能障碍是指无精、少精和/或弱精;所述的miR-34c-5p的序列为SEQ ID NO.1,miR-181a的序列为SEQ ID NO.2,miR-374b的序列为SEQ ID NO.3,miR-509-5p的序列为SEQ ID NO.4。
2.根据权利要求1所述的应用,其特征在于与无精或弱精相关的精浆微小核糖核酸组合为miR-34c-5p,miR-181a,miR-374b,miR-509-5p,miR-122,miR-146-5p和miR-513a-5p;所述的miR-122的序列为SEQ ID NO.5,miR-146-5p的序列为SEQ IDNO.6,miR-513a-5p的序列为SEQ ID NO.7。
3.根据权利要求1所述的应用,其特征在于与少精相关的精浆微小核糖核酸组合为miR-34c-5p,miR-181a,miR-374b,miR-509-5p,miR-146-5p和miR-513a-5p;所述的miR-146-5p的序列为SEQ ID NO.6,miR-513a-5p的序列为SEQ ID NO.7。
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