CN102277410A - 一种精浆α-糖苷酶活性定量检测试剂盒及应用 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种精浆α-糖苷酶活性定量检测试剂盒,包括R1试剂和R2试剂;R1试剂包括以下含量的组份:90-110mmol/L pH6.8-7.0缓冲液、1.0-3.0U/L葡萄糖氧化酶、1.0-2.5U/L过氧化物酶和0.01-0.1%防腐剂;R2试剂包括以下含量的组份:90-110mmol/L pH6.8-7.0缓冲液、100-115mmol/L生色剂、70-100mmol/L麦芽糖、0.2-1.0mmol/L 4-氨基安替比林和0.01-0.1%防腐剂。本发明还公开了该精浆α-糖苷酶活性定量检测试剂盒在测定精浆α-糖苷酶活性中的应用。本发明仅采用2种液体试剂,试剂种类和用量都减少了许多;采用速率法检测,样本不需预稀释,缩短了反应时间;与全自动生化仪配套使用,简化了步骤,节省了试剂,降低了人为误差,自动化、规模化的检测,在提高检测结果准确性和可靠性的同时,大大提高了检测效率。
Description
技术领域
本发明属于生物医学检验测定技术领域,涉及一种体外诊断用试剂盒及其应用,具体地说是一种精浆α-糖苷酶活性定量检测试剂盒及其应用。
背景技术
附睾是精子输送、成熟、贮存的场所,附睾分泌功能的下降会对精子的活性和功能产生不良影响。目前,用以检测附睾分泌功能的指标有甘油磷酸胆碱、左旋肉碱以及α-糖苷酶(α-糖苷酶)。研究表明,与左旋肉碱和甘油磷酸胆碱相比,在输精管结扎和确诊为生殖道梗阻的患者中,α-糖苷酶对附睾分泌功能的检测更加特异和灵敏,被认为是附睾分泌功能的标志酶和特异性酶。在输精管结扎、梗阻、切除或先天性精囊缺如、发良不良的患者中,α-糖苷酶活性显著降低;另外,在不完全射精或射精过频以及附睾炎、附睾分泌功能紊乱的患者中,该酶活性也呈现下降现象。相反,α-糖苷酶活性越高,则精子与透明带结合能力越强,宫腔内人工授精成功的可能性越大。精浆α-糖苷酶结合其它指标如精浆果糖、精子染色等的检测,还可实现梗阻性无精子症患者的梗阻部位定位,分泌型或排泄型无精症的鉴别、附睾水平上局部梗阻的判断等,被认为是一种快速、敏感、无创伤性的检测方法。
目前,精浆α-糖苷酶(α-GLUC)活性定量检测的方法主要是化学比色法,该法多为手工或半自动操作,加样程序多,操作步骤复杂,试剂和样品混匀一定的时间后,通过分光光度计逐一比色测定,再根据公式计算出结果,不但耗时耗力,而且人为误差也比较大。
现在,临床生化检验基本上都实现了自动化分析。全自动生化仪就是将原始手工操作过程中的取样、混匀、温育、检测、结果计算、判断、显示和打印结果及清洗等步骤全部或者部分自动运行,由于其测量速度快、准确性高、消耗试剂量小,现已在各级医院、防疫站、计划生育服务站等得到了广泛应用,配合使用可大大提高常规生化检验的效率和收益。遗憾的是,截止到目前,无论是国外还是国内,对于精浆α-糖苷酶项目的检测,除了早期的科研成果外,尚没有一种可与全自动生化仪相配套的、商品化的检测试剂盒问世,因此,建立一种与全自动生化仪相配套使用的精浆α-糖苷酶活性定量检测试剂盒及检测方法就显得尤为迫切和重要。
发明内容
本发明的目的在于克服现有技术的不足,填补市场上的空缺,提供一种与全自动生化仪相配套使用的精浆α-糖苷酶活性定量检测试剂盒。
本发明的另一目的在于提供所述精浆α-糖苷酶活性定量检测试剂盒在检测精浆α-糖苷酶活性中的应用。
为解决上述技术问题,本发明采用了如下的技术方案:
一种精浆α-糖苷酶活性定量检测试剂盒,包括R1试剂和R2试剂,其中R1试剂包括以下含量的组份:90-110mmol/L pH6.8-7.0缓冲液、1.0-3.0U/L葡萄糖氧化酶、1.0-2.5U/L过氧化物酶和0.01-0.1%防腐剂;R2试剂包括以下含量的组份:90-110mmol/LpH6.8-7.0缓冲液、100-115mmol/L生色剂、70-100mmol/L麦芽糖、0.2-1.0mmol/L 4-氨基安替比林和0.01-0.1%防腐剂;
其中,所述生色剂为苯酚、2,4-二氯酚、3,5-二氯-2-羟基苯磺酸钠或4-氨基-3-甲基苯甲酸;所述缓冲液为磷酸盐缓冲液或Tris缓冲液;所述防腐剂为硫柳汞、庆大霉素或ProClin系列防腐剂中任意一种。
所述的精浆α-糖苷酶活性定量检测试剂盒在检测精浆α-糖苷酶活性中的应用。
其中,利用精浆α-糖苷酶活性定量检测试剂盒监测检测精浆α-糖苷酶活性,包括如下步骤:
1)样品制备:新鲜精液液化后通过3000~5000rpm离心10~20min,所获得的上清液即是;
2)在全自动生化仪上输入基本参数如下:
检测项目:α-GLUC;
样品试剂比:1∶60;
试剂比例:R1∶R2=1∶4;
检测方法:速率法;
定标方法:因子法;
主波长:500-520nm;
辅波长:600-700nm;
反应方向:上升;
反应时间:140-270秒;
检测时间:90-120秒;
3)定标操作:
采用因子法定标,直接输入理论因子F值即可;
F值的计算公式如下:
其中,103为mmol至μmol的转化系数;Vt为反应液总体积;ε为醌亚胺的理论摩尔消光系数即13.78×103;L为比色皿光径(1cm);Vs为样品体积;
4)样本检测:
将制备好的精浆样本和R1试剂、R2试剂放在全自动生化仪的相应位置上,全自动生化仪根据理论因子得出样本中α-糖苷酶的活性:
酶活性单位U定义:在上述反应条件下,每分钟催化1μmol麦芽糖分解所需的酶量为一个酶活性单位;
精浆中α-糖苷酶活性(U/L)=ΔA/min×F
其中,ΔA/min即每分钟吸光度的变化率,F值为已知。
所述R1试剂为液体溶液,所述缓冲溶液为磷酸盐缓冲液或三羟甲基氨基甲烷(Tris)缓冲液,用于为反应提供适宜的反应条件;R1试剂中,1.0-3.0U/L葡萄糖氧化酶和1.0-2.5U/L过氧化物酶是发挥其作用的有效用量,分别用于氧化反应生成葡萄糖和过氧化氢。
所述R2试剂为液体溶液,所述缓冲溶液为磷酸盐缓冲液或Tris缓冲液,用于为反应提供适宜的反应条件;R2试剂中,麦芽糖的含量为70-100mmol/L,用作α-糖苷酶反应的底物;低于底物的下限70mmol/L时,会导致试剂盒的线性范围降低,吸光度变化不明显,高于底物的上限100mmol/L时,会使试剂盒的成本增加,不符合试剂反应的经济效益,在70-100mmol/L范围内,底物的浓度越高,每分钟吸光度的变化速率越快;R2试剂中,所用生色剂为苯酚(Phenol,P),浓度为100-115mmol/L,是在反应中起显色作用的有效用量,还可以是2,4-二氯酚(2,4-Dichlorophenol,2.4-DCP)、4-氨基-3-甲基苯甲酸(4-Amino-3-methylbenzoic acid)和3,5-二氯-2-羟基苯磺酸钠(3,5-Dichloro-2-hydroxybenzenesμlfonic acid sodium salt,DHBS)等;R2试剂中,0.2-1.0mmol/L的4-氨基安替比林是与生色剂一起发挥作用的有效用量,是生成红色产物醌亚胺的不可或缺的一种成分;
所述防腐剂为硫柳汞,含量为0.01-0.1%,该范围在有效杀菌的同时不会对反应起任何副作用,可延长试剂盒的有效期,还可以是其它具有防腐作用的庆大霉素或ProClin系列防腐剂中的任何一种等,但应避免使用叠氮钠,其对α-糖苷酶的活性有一定的抑制作用。
上述应用的方法中,所述步骤1)中,所制备的精浆样本可于分离当天检测,也可于-20℃以下冻存备用,至少可保存2周以上,但应避免反复冻融;所述步骤2)中,样本试剂比应根据全自动生化仪的参数而定,应考虑到全自动生化仪的最小加样量,比色皿的反应液体积范围等;所述步骤3)中,理论因子F值在不同的全自动生化仪上会有所不同,理论因子F值的计算公式为:其中,103为mmol至μmol的转化系数;Vt为反应液总体积;ε为醌亚胺的理论摩尔消光系数即13.78×103;L为比色皿光径(1cm);Vs为样品体积;所述步骤4)中,当样本中α-糖苷酶的活性过高,超出试剂盒的线性范围时,应用生理盐水稀释后重测,结果乘以稀释倍数即可。
本发明的检测方法是酶法检测,所述的R1试剂、R2试剂为含葡萄糖氧化酶、过氧化物酶、4-氨基安替比林、麦芽糖、防腐剂的磷酸盐缓冲溶液,检测原理是,
在α-糖苷酶的催化下,麦芽糖分解为α-D-葡萄糖,α-D-葡萄糖在葡萄糖氧化酶的作用下,生成过氧化氢,再利用Trinder反应系统,在过氧化物酶催化下,与4-氨基安替比林和苯酚,生成红色醌亚胺,醌亚胺在500-520nm波长处有最大吸收峰,通过监测500-520nm波长处的每分钟吸光度变化率,进而检测出样本中α-糖苷酶的活性。
与现有技术相比,突出的技术效果在于:
1、本试剂盒采用速率法检测精浆α-糖苷酶的活性,仅采用2种液体试剂,可于4℃保存备用,与传统的手工法相比,速率法更适于α-糖苷酶活性的检测,所用试剂的种类和用量都明显减少,检测时间也显著缩短;
2、采用本试剂盒及检测方法,样本制备好后不需要预稀释,检测过程也不需单独再做空白管、标准管,简化了操作步骤,降低了人为误差;双波长的检测方法扣除了试剂本身的吸光度变化率,使得检测结果更加准确;
3、本发明实现了从手工向全自动检测方法的转变,填补了市场上的空缺,采用全自动生化仪进行自动化、规模化的检测,释放了大量的人力,节约了大量的耗材,对反应时间、反应过程的准确控制和监测,显著提高了检测结果的准确性和可靠性;
4、采用本发明可以在检测同一份样本a-GLUC活性的同时,还可以与全自动生化仪相配套的精浆果糖、γ-L-谷氨酰基转肽酶、锌等试剂盒联合使用,并同时检测这些项目,检测结束后,可以以报告的形式打印出同一份样本所测项目的所有结果,可满足医院男性不育相关科室、人类精子库、计划生育研究所等机构对精液质量、精子筛选的需要,以及对于男性不育症的辅助诊断等,大大提高了精液常规生化分析的效率和收益,非常适于常规检测和推广。
具体实施方式:
根据下述实施例,可以更好的理解本发明。然而,本领域的技术人员容易理解,实施例所描述的具体的物料配比、工艺条件及其结果仅用于说明本发明,而不应当也不会限制权利要求书中所详细描述的本发明。
实施例1
本实施例中的一种精浆α-糖苷酶活性定量检测试剂盒为双试剂,包括R1试剂和R2试剂,分别按以下成分和用量配制:
1)R1试剂
pH7.0磷酸盐缓冲液 100mmol/L;
葡萄糖氧化酶 1.2U/L;
过氧化物酶 1.2U/L;
硫柳汞 0.05%;
2)R2试剂:
pH7.0磷酸盐缓冲液 100mmol/L;
苯酚 106mmol/L;
麦芽糖 87mmol/L;
4-氨基安替比林 0.4mmol/L;
庆大霉素 0.05%;
上述试剂全部溶解完全后,分装入瓶,制成液体双试剂,直接使用。
实施例2
本实施例中的一种精浆α-糖苷酶活性定量检测试剂盒为双试剂,包括R1试剂和R2试剂,分别按以下成分和用量配制:
1)R1试剂
pH6.8磷酸盐缓冲液 110mmol/L;
葡萄糖氧化酶 2.0U/L;
过氧化物酶 2.0U/L;
庆大霉素 0.1%;
2)R2试剂:
pH6.8磷酸盐缓冲液 110mmol/L;
3,5-二氯-2-羟基苯磺酸钠 100mmol/L;
麦芽糖 70mmol/L;
4-氨基安替比林 1.0mmol/L;
ProClin150 0.1%;
上述试剂全部溶解完全后,分装入瓶,制成液体双试剂,直接使用。
实施例3
本实施例中的一种精浆α-糖苷酶活性定量检测试剂盒为双试剂,包括R1试剂和R2试剂,分别按以下成分和用量配制:
1)R1试剂
pH6.9Tris缓冲液 90mmol/L;
葡萄糖氧化酶 3.0U/L;
过氧化物酶 2.5U/L;
ProClin300 0.01%;
2)R2试剂:
pH6.9Tris缓冲液 90mmol/L;
4-氨基-3-甲基苯甲酸 115mmol/L;
麦芽糖 100mmol/L;
4-氨基安替比林 0.2mmol/L;
ProClin950 0.01%;
上述试剂全部溶解完全后,分装入瓶,制成液体双试剂,直接使用。
实施例4
利用实施例1中的试剂盒检测精浆中α-糖苷酶活性的方法,具体操作步骤如下:
1)样品制备:新鲜精液液化后通过3000rpm离心10min,所获得的上清液即是;
2)在Olympus AU400全自动生化仪的操作软件上输入基本参数如下:
检测项目:α-GLUC;
样品量:5μl;
R1试剂和R2试剂用量比为4∶1;R1试剂量:240μl;R2试剂量:60μl;
检测方法:速率法;
定标模式:MB(因子法);
主波长:520nm;
辅波长:660nm;
反应方向:上升;
主读数点1:21;
主读数点2:26;
3)定标操作:采用因子法定标,直接输入理论因子F值4427即可;
F值的计算公式如下:
其中,103为mmol至μmol的转化系数;Vt为反应液总体积即305μl;ε为醌亚胺的理论摩尔消光系数即13.78×103;L为比色皿光径(1cm);Vs为样品体积即5μl;
4)样本检测:
将1)中制备好的精浆样本和R1试剂、R2试剂放在全自动生化仪的相应位置上,输入样本的检测信息后,开始检测。测试结束后,全自动生化仪根据理论因子自动计算出样本中α-糖苷酶的活性。
酶活性单位U定义:在上述反应条件下,每分钟催化1μmol麦芽糖分解所需的酶量为一个酶活性单位;
精浆中α-糖苷酶活性(U/L)=ΔA/min×F,其中,ΔA/min即每分钟吸光度的变化率,在全自动生化仪上自动测定给出,理论因子为已知。
例如,全自动生化仪测得某份精浆中的ΔA/min为0.0546,则该份精浆中α-糖苷酶活性=0.0546×4427=241.71U/L
实施例5
利用实施例2中的试剂盒检测精浆中α-糖苷酶活性的方法,具体操作步骤如下:
1)样品制备:新鲜精液液化后通过5000rpm离心10min,所获得的上清液即是;
2)在劳拉Faith-1000全自动生化仪的操作软件上输入基本参数如下:
检测项目:α-GLUC;
样品量:6μl;
R1试剂和R2试剂用量比为4∶1;R1试剂量:288μl;R2试剂量:72μl;
检测方法:速率法;
定标模式:因子法;
主波长:510nm;
辅波长:630nm;
反应方向:上升;
主读数点1:28;
主读数点2:32;
3)定标操作:
采用因子法定标,直接输入理论因子F值4427即可;
F值的计算公式如下:
其中,103为mmol至μmol的转化系数;Vt为反应液总体积即366μl;ε为醌亚胺的理论摩尔消光系数即13.78×103;L为比色皿光径(1cm);Vs为样品体积即6μl;
4)样本检测:
将1)中制备好的精浆样本和R1试剂、R2试剂放在全自动生化仪的相应位置上,输入样本的检测信息后,开始检测。测试结束后,全自动生化仪根据理论因子自动计算出样本中α-糖苷酶的活性。
酶活性单位U定义:在上述反应条件下,每分钟催化1μmol麦芽糖分解所需的酶量为一个酶活性单位;
精浆中α-糖苷酶活性(U/L)=ΔA/min×F,其中,ΔA/min即每分钟吸光度的变化率,在全自动生化仪上自动测定给出,理论因子为已知。
例如,全自动生化仪测得某份精浆中的ΔA/min为0.0366,则该份精浆中α-糖苷酶活性=0.0366×4427=162.03U/L
实施例6
利用实施例3中的试剂盒检测精浆中α-糖苷酶活性的方法,具体操作步骤如下:
1)样品制备:
新鲜精液液化后通过4500rpm离心15min,所获得的上清液即是;
2)在Olympus AU400全自动生化仪的操作软件上输入基本参数如下:
检测项目:α-GLUC;
样品量:4μl;
R1试剂和R2试剂用量比为4∶1;R1试剂量:192μl;R2试剂量:48μl;
检测方法:速率法;
定标模式:MB(因子法);
主波长:520nm;
辅波长:700nm;
反应方向:上升;
主读数点1:15;
主读数点2:22;
3)定标操作:
采用因子法定标,直接输入理论因子F值4427即可;
F值的计算公式如下:
其中,103为mmol至μmol的转化系数;Vt为反应液总体积即244μl;ε为醌亚胺的理论摩尔消光系数即13.78×103;L为比色皿光径(1cm);Vs为样品体积即4μl;
4)样本检测:
将1)中制备好的精浆样本和R1试剂、R2试剂放在全自动生化仪的相应位置上,输入样本的检测信息后,开始检测。测试结束后,全自动生化仪根据理论因子自动计算出样本中α-糖苷酶的活性;
酶活性单位U定义:在上述反应条件下,每分钟催化1μmol麦芽糖分解所需的酶量为一个酶活性单位;
精浆中α-糖苷酶活性(U/L)=ΔA/min×F,其中,ΔA/min即每分钟吸光度的变化率,在全自动生化仪上自动测定给出,理论因子为已知;
例如,某份精浆用生理盐水稀释2倍后,全自动生化仪测得的ΔA/min为0.0304,则该份精浆中α-糖苷酶活性=0.0304×4427×2=269.16U/L;
实施例7
在实施例1和实施例4的基础上进行批内和批间精密度的检测(即本发明的试剂盒的检测结果的重现性)
选择α-糖苷酶活性低、高值的混合精浆样本各1份,准备5个批次的检测试剂盒,每个批次试剂盒测同一个浓度精浆样本8次,共有40个数据,从5个批次中每一样本重复测定8次的结果算出批内精密度,从所有40个结果计算出批间精密度,结果均以变异系数的百分数即CV%表示。其中,CV%=标准差/平均值×100%,该系数越小,表明同一份样本重复检测结果的离散程度越小,即检测结果的重现性越好。表1是采用所述试剂盒及检测方法与手工或半自动的精密度比较结果,表明采用本发明检测精浆α-糖苷酶的活性,结果重现性好。
表1手工、半自动和全自动的精密度结果比较
手工检测 | 半自动检测 | 本发明的全自动检测 | |
批内精密度 | CV%≤15% | CV%≤10% | CV%≤8% |
批间精密度 | CV%≤15% | CV%≤13% | CV%≤8% |
实施例8
在实施例1和实施例4的基础上进行线性范围的检测(即本发明的试剂盒可准确测量的活性范围)。
选取α-糖苷酶活性低、高值的混合精浆样本各1份,低值样本为1号样本,高值样本为5号,二者3∶1混合为2号,等分混合为3号,1∶3混合为4号,1∶4混合为5号,制备成5个等浓度梯度的样本,每个浓度样本重复检测4次取平均吸光度,根据实验结果,以样本号为X轴,以平均吸光度为Y轴,进行直线回归,发现相关系数R≥0.990,根据吸光度乘以定标因子4427,得出α-糖苷酶活性的线性范围为70-624U/L,表示在该范围内,α-糖苷酶的活性与吸光度之间的相关性好,是本发明试剂盒可准确测量的活性范围。
实施例9
在实施例1和实施例4的基础上通过回收试验验证准确度。
选取α-糖苷酶活性的高值和低值混合样本各1份,用低值混合样本对高值混合样本进行不同比例稀释,低值样本分别占75%、50%、25%,每份样本重复测定4次,分别计算平均回收率,其平均回收率分别表示为回收率1、回收率2和回收率3。其中,回收率=实测结果/理论结果×100%,回收率越接近100%,表示检测结果的准确度越高。表2是采用所述试剂盒及检测方法与手工或半自动的回收率比较结果,表明采用本发明检测精浆α-糖苷酶的活性,结果准确度好。
表2手工、全自动、半自动的回收结果比较
手工检测 | 半自动检测 | 本发明的全自动检测 | |
回收率1 | 84% | 86% | 94.2% |
回收率2 | 80% | 83% | 93.3% |
回收率3 | 77% | 87% | 101.2% |
平均回收率 | 80% | 85% | 96.2% |
实施例10
在实施例1和实施例4的基础上进行试剂空白吸光度变化率的检测。
将α-糖苷酶反应体系中的样本换成蒸馏水进行检测,其它检测条件不变,所测结果即为试剂空白吸光度变化率(ΔA/min),是该试剂盒的质量指标之一。多次检测结果表明,ΔA/min≤0.01,当超出该范围时,提示可能操作不当或试剂已过期。
实施例11
在实施例1和实施例4的基础上进行正常参考值范围的确定
收集193例精液常规分析参数均正常的健康体检者精浆样本,年龄19~45岁,在全自动生化仪上进行检测,检测结果经正态性检验若确定为正态分布,根据根据(平均值)±1.96S(标准差)计算参考范围,否则按百分位数法计算参考区间。用SPSS17.0统计分析软件分析发现,其结果呈正态分布,参考范围为:118.92-530.95U/L。
本发明所述实施例2和实施例5、实施例3和实施例6以及所述其它浓度范围内的试剂盒及检测方法,其精密度、准确度、线性范围和试剂空白吸光度变化率的检测方法和步骤与实施例1和实施例4的类似,在此不再赘述。
Claims (3)
1.一种精浆α-糖苷酶活性定量检测试剂盒,其特征在于,包括R1试剂和R2试剂,其中R1试剂包括以下含量的组份:90-110mmol/L pH6.8-7.0缓冲液、1.0-3.0U/L葡萄糖氧化酶、1.0-2.5U/L过氧化物酶和0.01-0.1%防腐剂;R2试剂包括以下含量的组份:90-110mmol/L pH6.8-7.0缓冲液、100-115mmol/L生色剂、70-100mmol/L麦芽糖、0.2-1.0mmol/L 4-氨基安替比林和0.01-0.1%防腐剂;
其中,所述生色剂为苯酚、2,4-二氯酚、3,5-二氯-2-羟基苯磺酸钠或4-氨基-3-甲基苯甲酸;
所述缓冲液为磷酸盐缓冲液或Tris缓冲液;
所述防腐剂为硫柳汞、庆大霉素或ProClin系列防腐剂中任意一种。
2.权利要求1所述的精浆α-糖苷酶活性定量检测试剂盒在检测精浆α-糖苷酶活性中的应用。
3.根据权利要求2所述的应用,其特征在于包括如下步骤:
1)样品制备:新鲜精液液化后通过3000~5000rpm离心10~20min,所获得的上清液即是;
2)在全自动生化仪上输入基本参数如下:
检测项目:α-GLUC;
样品试剂比:1∶60;
试剂比例:R1∶R2=1∶4;
检测方法:速率法;
定标方法:因子法;
主波长:500-520nm;
辅波长:600-700nm;
反应方向:上升;
反应时间:140-270秒;
检测时间:90-120秒;
3)定标操作:
采用因子法定标,直接输入理论因子F值即可;
F值的计算公式如下:
其中,103为mmol至μmol的转化系数;Vt为反应液总体积;ε为醌亚胺的理论摩尔消光系数即13.78×103;L为比色皿光径(1cm);Vs为样品体积;
4)样本检测:
将制备好的精浆样本和R1试剂、R2试剂放在全自动生化仪的相应位置上,全自动生化仪根据理论因子得出样本中α-糖苷酶的活性:
酶活性单位U定义:在上述反应条件下,每分钟催化1μmol麦芽糖分解所需的酶量为一个酶活性单位;
精浆中α-糖苷酶活性(U/L)=ΔA/min×F
其中,ΔA/min即每分钟吸光度的变化率,F值为已知。
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