CN102212130A - 高通量抗血清析出及纯化制备方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种高通量抗血清析出及纯化制备方法,将整只兔子的血液注入5ml含有多糖的羧基或羟基的一种到几种物质和某种无机盐的溶液I的器皿中室温放置30分钟,得上层抗血清;然后倒入流穿亲和纯化柱,用PBS溶液洗两次,再依次用等体积的含有三种酸根和含羟基物质的溶液II和溶液III洗脱抗体,最后用同一个收集管收集该两个组分,即得纯化的抗体。可不借助离心机,省去透析和添加保护剂,血清得率、抗体活性高,适宜保存,且极大地降低了生产成本。
Description
技术领域
本发明涉及一种医药抗体的析出及纯化制备方法,特别是涉及一种高通量兔血抗血清析出及抗体纯化制备方法。
背景技术
在目前的抗血清制备和纯化生产领域,主要沿用实验室条件下的操作方法:
在血清制备阶段,首先将血液置于离心管中,待血液凝固后(37℃静置2h,或4℃放置过夜),通过离心机离心获得血清。此类方法存在诸多问题,例如,当需要处理的血清比较多时,离心管需要量也要相应增多;离心管的标记、离心前的平衡、离心机对放入的离心管数目的限制、离心机每次20分钟的运行时间、离心后血清的转移及新的器皿的标记、含有血块的离心管的清洗和处理等。这些操作会造成血清处理费时费力,并且很容易混淆出错。
在血清亲和纯化阶段,传统方法使得血清穿过亲和柱,PBS溶液洗两次,最后用tris-glycine(PH 2.5或PH 3.0)的溶液将结合在亲和柱上的抗体洗脱下来,利用透析袋在无氨基和羧基的某种缓冲液(如PBS)中过夜透析后,加入甘油后保存。然而,传统tris-glycine洗脱液对抗体活性损伤很大,不同抗体表现的不一致,经常会造成洗脱后的抗体发生变性沉淀,或效价相比于纯化前的血清急剧下降的情况。当抗体生产量大时,透析和添加保护剂等步骤也非常费时和费力。
发明内容
为解决上述传统方法在抗血清制备和纯化过程中存在的问题,本发明的目的是提出一种新的抗血清提取和纯化技术,采用三种特制的溶液,可不借助离心机,快速、高通量地获得用于亲和纯化的抗血清,并且可摆脱透析和添加保护剂的步骤,使纯化的抗体效价提高。
本发明解决上述技术问题采取的技术方案是:一种高通量抗血清析出及纯化制备方法,依次包括以下步骤:
一、在任何器皿中预先加入5ml溶液I,再把整只兔子的血液注入其中;
二、室温放置30分钟,血清便自动析出,分成两层,上层为血清,下层为血块,将上层血清分离,即得抗血清,血清产量比传统的离心法高出近20%;其下层的血块与传统方法产生的血块不同,可轻松甩出器皿,之后用自来水稍加冲洗就可清洗干净;
三、将步骤二得到的上层抗血清倒入流穿亲和纯化柱,用PBS溶液洗两次,然后依次用等体积的溶液II和溶液III洗脱抗体,最后用同一个收集管收集该两个组分,即得纯化的抗体。
溶液I含有羧基或羟基的一种到几种物质和某种无机盐,其中的一种物质为多糖,这些物质与血液发生作用,使得血清快速析出,溶液中的盐离子又能保证血细胞不破裂,血液较长时间不变质。
溶液II和溶液III不含羧基、氨基、醛基物质,但含有三种酸根和含羟基的物质,这些物质可以防止抗体在纯化过程中变性,也可以很好地解离蛋白之间的相互作用,还不影响抗体氨基、羧基的标记。
步骤二得到的两层结构,如果不想立即进行血清纯化,可在4℃条件下保存14天,不影响抗体质量,也不会出现溶血和腐败现象,而传统法会出现溶血,变质现象。
步骤三得到的抗体溶液可直接冷冻保存,无需PH中和,无须透析,也不需要额外添加甘油进行保护,且抗体活性很高。
本发明的有益效果是:通过使用溶液I、II和III这三种溶液,可高通量并且高质量的完成抗血清的析出和纯化,并且极大的降低了生产成本。与现有的传统方法相比,本发明无需使用离心机离心及其他专用器皿即可获得血清,血清产量比传统的离心法高出近20%;分离出的血块与传统方法产生的血块不同,可轻松甩出器皿,之后用自来水稍加冲洗就可清洗干净,省工省力;如果不想立即进行血清纯化,可在4℃条件下保存14天,不影响抗体质量,也不会出现溶血和腐败现象,而传统法会出现溶血,变质现象;抗体溶液可直接冷冻保存,无需PH中和,无须透析,也不需要额外添加甘油进行保护,且抗体活性很高,是传统方法抗体效价的3到10倍,有些抗体达到100倍。
为进一步说明本发明区别传统方法的显著的优点,现结合具体实验效果和数据进行对比:
参见附图1、2,图1是本发明血清制备的效果图,将兔血放入含有溶液I的管子中,室温放置30分钟的效果。从图中可见上层血清量明显多于用传统方法得到的血清量,一般相比离心法可提高20%。图2是本发明抗体洗脱的数据对比图,总共测试了8种抗血清(标记为I-VIII,见图中表A),每种血清平均分成两份,序号1,3,5,7,9,11,13,15为传统方法洗脱结果,序号2,4,6,8,10,12,14,16为使用溶液II和溶液III进行纯化的结果,表A反映118的纯化物的抗体含量(OD280值正比于抗体浓度),可见使用本发明的方法,抗体含量明显高于传统方法;图中图B表示这16种抗体的效价比较,使用本发明提供的溶液II和溶液III进行抗体纯化,可有效的防止抗体蛋白在纯化过程中的变性,平均抗体效价提高3~10倍,少数可提高100倍。
又例如,若一个人按传统离心法每天要获得40个兔子的血清,假设使用50ml离心管,需要120根管子离血清,60根管子盛放离心好的血清。一般离心机每次可容纳6只管子,由于离心时需要平衡管,所以每次只能离3根血。除离心15分钟外,再加上减速用时间,平衡,标记管子,倾倒等时间,差不多120根血要用了20个小时。由于离心管成本很高,需要反复使用,而离心后的血块紧紧结合在离心管底,清洗较困难。120根管子清洗,及每根管子标记的清除,额外又需要4个小时。
用了本发明的溶液I,40个兔子只需要40个干净的矿泉水瓶(或类似的便宜器皿)来收集兔血。室温静置30分钟后,血清自动析出,可立即倒出血清纯化,也可不必倒出血清在4℃长期保存以待需要时再使用。对于矿泉水瓶底的剩余的血细胞沉淀可不必清洗,直接连瓶扔掉,如果需要清洗,只需甩掉沉淀,自来水冲洗三遍即可。可见,使用溶液I后,不仅采血方便,而且取消了整个血清制备的中间过程,直接进入到将上层血清倒入纯化柱的纯化阶段,整个制备流程大大简化。
按照传统的方法纯化40个抗血清,4%-10%纯化产品会出现沉淀或溶液不是十分透明(抗体已变性),在透析袋加入和取出样品,标记样品都很费力,费时,也很容易造成抗体量或质的损失,加入甘油后要充分混匀才可进行冰冻保存,即使这样,传统方法纯化的有些抗体在冷冻保存时,抗体效价会随时间快速下降,造成很多抗体在最后的纯化一步中功亏一篑。而使用本专利提供的溶液II和溶液III进行抗体纯化,可有效的防止抗体蛋白在纯化过程中的变性,平均抗体效价提高3-10倍,少数提高100倍。
另外,溶液I在将来很可能可以用于临床样品的血清快速检测(如常规手段,或蛋白芯片等新手段),溶液II和溶液III不仅适合抗体纯化,也适合利用抗体柱进行抗原亲和纯化,对于科研和生产企业都有一定的价值。
附图说明
图1是本发明血清制备的效果图。
图2是本发明抗体洗脱的数据对比图。
具体实施方式
下面结合具体实施方式,对本发明作进一步说明。
一种高通量抗血清析出及纯化方法,可依次按照以下步骤制备:
一、在例如干净的矿泉水瓶或任何器皿中,预先加入5ml溶液I,再把一整只兔子的血液注入其中;
二、室温放置30分钟,血清便自动析出,分成两层,上层为血清,下层为血块,将上层血清分离,即得抗血清;其下层的血块与传统方法产生的血块不同,可轻松甩出器皿,之后用自来水稍加冲洗就可清洗干净;如果不想立即进行血清纯化,可在4℃条件下保存14天,不影响抗体质量,也不会出现溶血和腐败现象;
三、将步骤二得到的上层抗血清倒入流穿亲和纯化柱,用PBS溶液洗两次,然后依次用等体积的溶液II和溶液III洗脱抗体,最后用同一个收集管收集该两个组分,即得纯化的抗体;抗体溶液可直接冷冻保存,无需PH中和,无须透析,也不需要额外添加甘油进行保护。
本方法使用的溶液I含有羧基或羟基的一种到几种物质和某种无机盐,其中的一种物质为多糖,这些物质与血液发生作用,使得血清快速析出,溶液中的盐离子又能保证血细胞不破裂,血液较长时间不变质。溶液II和溶液III不含羧基、氨基、醛基物质,但含有三种酸根和含羟基的物质,这些物质可以防止抗体在纯化过程中变性,也可以很好地解离蛋白之间的相互作用,还不影响抗体氨基、羧基的标记。
Claims (5)
1.一种高通量抗血清析出及纯化制备方法,其特征是依次包括以下步骤:
一、在任何器皿中预先加入5ml溶液I,再把整只兔子的血液注入其中;
二、室温放置30分钟,血清便自动析出,分成两层,上层为血清,下层为血块,将上层血清分离,即得抗血清;
三、将步骤二得到的上层抗血清倒入流穿亲和纯化柱,用PBS溶液洗两次,然后依次用等体积的溶液II和溶液III洗脱抗体,最后用同一个收集管收集该两个组分,即得纯化的抗体。
2.根据权利要求1所述的高通量抗血清析出及纯化制备方法,其特征是溶液I含有羧基或羟基的一种到几种物质和某种无机盐,其中的一种物质为多糖。
3.根据权利要求1所述的高通量抗血清析出及纯化制备方法,其特征是溶液II和溶液III不含羧基、氨基、醛基物质,但含有三种酸根和含羟基的物质。
4.根据权利要求1所述的高通量抗血清析出及纯化制备方法,其特征是步骤二得到的两层结构的保存方法是在4℃、最长放置14天。
5.根据权利要求1所述的高通量抗血清析出及纯化制备方法,其特征是步骤三得到的抗体溶液可直接冷冻保存。
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2010
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Title |
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黄名英: "提高兔抗血清制备量的措施", 《疫病防治》 * |
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