CN101967486B - 一种抗虫基因OsRG1及其编码产物与应用 - Google Patents

一种抗虫基因OsRG1及其编码产物与应用 Download PDF

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Abstract

本发明公开了一种抗虫相关基因OsRG1其及其编码产物与应用,该抗虫基因OsRG1具有SEQ ID No.1的DNA序列。该序列由763个核苷酸碱基组成,包含一个由624个核苷酸构成的完整的编码框,编码208个氨基酸残基的小分子量蛋白。研究发现OsRG1与水稻的抗虫相关,该基因的表达产物能对褐飞虱起很好的趋避和抗生作用。本发明将在作物育种,特别是在水稻抗虫育种中得到广泛应用。

Description

一种抗虫基因OsRG1及其编码产物与应用
技术领域
本发明涉及生物技术领域,特别地,涉及一种抗虫基因OsRG1及其编码产物与应用。
背景技术
随着全球人口的增加和耕地面积的减少,人们对粮食单产的要求越来越高。虫害造成的粮食损失一般约占粮食总产量的10-30%,重灾年份则颗粒无收,因此如何减少虫害以增加粮食总产量,是人们面临的迫切问题。培育抗性品种是减少害虫危害的一个重要措施。
稻飞虱属于同翅目飞虱科,主要包括褐飞虱Nilaparvata lugens
Figure BSA00000171801100011
白背飞虱Sogatella furcifera等,是我国水稻上的最重要害虫之一。近几年来,则为稻飞虱主要种类之一的褐飞虱,更是年年大暴发,对我国水稻粮食生产造成了严重危害。据浙江省农业厅调查统计,2005年浙江省第5代褐飞虱发生量每667m2达30万头以上的有66.7万hm2,占水稻总种植面积的86%;每667m2在100万头以上的有33.3万hm2,占42%;最高田块的发生量达到每667m21000万头以上;绝收的面积达5333hm2,造成直接水稻产量损失120万吨。造成褐飞虱近几年来特大爆发的一个重要原因,是目前生产上缺乏抗稻飞虱的水稻品种。因此,发掘抗稻飞虱基因,培育抗稻飞虱品种,将是控制稻飞虱危害的一个重要方面。
至今,国内外已在水稻抗稻飞虱基因鉴定与定位等方面取得了很大成绩。至今已命名了13个抗褐飞虱的主基因,并对其中的8个进行了染色体定位;此外,也鉴定和定位了10多个抗褐飞虱的数量形状基因座(QTL)。对抗白背飞虱的主基因已命名了6个,并对其中的2个进行了定位;同时,也有10多个抗白背飞虱的数量形状基因座被鉴定和定位。然而,至今为止,国内外尚没有克隆到水稻的抗稻飞虱基因。
发明内容
本发明的目的在于针对现有技术的不足,提供一种抗虫基因OsRG1及其编码产物与应用。
本发明的目的是通过以下技术方案来实现的:
一种抗虫基因OsRG1,它具有SEQ ID No.1的DNA序列。
一种权利要求1所述抗虫基因OsRG1的编码蛋白,它包含SEQ ID No.2的氨基酸序列的蛋白质,或者是将SEQ ID No.2的氨基酸残基序列经过一个或多个氨基酸残基的取代、缺失或者添加且具有与SEQ ID No.2的氨基酸残基序列相同活性的由SEQ ID No.2衍生的蛋白质。
一种权利要求1所述抗虫基因OsRG1在转基因植物中的应用。
一种权利要求1所述抗虫基因OsRG1在作物育种中的应用。
本发明的有益效果是,本发明利用SSH方法和基因芯片技术分析了水稻在害虫为害后的差异表达基因,结合RT-PCR和RACE技术分离获得了OsRG1基因;以OsRG1基因片段合成同位素探针,应用Northern杂交方法分析了OsRG1基因在飞虱为害后的表达情况;利用转基因技术验证了OsRG1基因的生物学功能,发现OsRG1基因在水稻对稻飞虱的抗性中发挥着重要作用。该基因的分离克隆,对于作物的抗虫育种,尤其对水稻的抗稻飞虱育种将起到重要的促进作用。
附图说明
图1是OsRG1基因特异PCR扩增产物凝胶电泳图;
图2是pMD-19-OsRG1酶切鉴定凝胶电泳图;
图3是水稻受稻飞虱为害后OsRG1基因的表达情况电泳图;
图4是OsRG1基因的结构示意图;
图5是含OsRG1基因的水稻遗传转化质粒T-DNA框结构示意图;
图6是OsRG1基因表达减少稻飞虱的产卵量;
图7是OsRG1基因表达明显增强对稻飞虱的抗性。
具体实施方式
本发明利用差减杂交技术SSH,结合基因芯片检测技术,分析了水稻在害虫为害后所诱导的差异表达基因。从SSH克隆库中分析获得OsRG1基因片段,以此片段设计正向和反向引物,分别进行3’-RACE和5’-RACE RP-PCR获得了该基因的5’端和3’端基因PCR片段,并直接测序拼接。根据基因测序拼接获得DNA序列,在5’端和3’端非编码区重新设计一对引物OsRG1-F1和OsRG1-R1,提取害虫为害的水稻叶片mRNA并反转录成cDNA,以此cDNA为模板并以OsRG1-FA和OsRG1-R1为引物进行常规PCR反应,获得OsRG1全基因序列并连接到pMD-T克隆载体测序验证。Northern杂交结果证明OsRG1在害虫早期就开始诱导表达,并且持续相当长的时间,证明OsRG1基因在水稻种起重要作用。通过获得含OsRG1基因的水稻转基因突变体,通过生物测定,证明了OsRG1是一个重要抗飞虱基因。对该基因的分离和克隆以及生物学功能的分析,对于作物的抗虫育种,尤其对水稻的抗稻飞虱育种将起到重要的促进作用。
实现本发明的具体技术步骤如下:
1.OsRG1基因的分离和序列分析
利用基因芯片技术和SSH技术分析了水稻在害虫为害后的差异表达基因,获得害虫为害诱导的特异表达基因克隆库,并筛选到单克隆LYG22。测序分析发现此克隆并没有覆盖该基因的完整编码区。
为了获得该片段的完整编码区序列,我们用3’-RACE和5’-RACE技术扩增该片段的3’末端和5’末端片段。根据TaKaRa Race试剂盒方法,以害虫为害水稻叶片mRNA为模板合成cDNA双链。以该片段正向引物F1与3’RACE锚定引物P3配对,反向引物R1与5’RACE锚定引物P5配对作常规PCR分别获得5’RACE PCR片段和3’RACE PCR片段,PCR片段经PCR片段回收试剂盒纯化后,测序得到LYG22的5’末端和3’末端序列信息。
以LYG22的5’末端和3’末端序列信息在5’端和3’端非编码区重新设计一对引物OsRG1-F1和OsRG1-R1,并以上面合成的cDNA双链为模板,PCR扩增后连接入pMD-19T克隆载体,挑取4个克隆送上海生物工程公司测序,每个分别测通2次。测序结果,用生物信息专业DNA拼接软件Conting 3.1拼接。获得OsRG1基因DNA序列,见序列表SEQ ID No.1表示的序列。根据该序列的开放阅读框(0RF),推算出该基因编码蛋白的氨基酸序列,如SEQ ID No.2所示。
2.OsRG1基因在害虫为害后的表达谱分析
取水稻经飞虱为害O,1.5,3,6,12,24,48,72h的茎杆,用Trizol法提取其总RNA,分别将10μg各时间点RNA经1%甲醛电泳分离后,通过毛细管上吸的方法转到尼龙膜上,经紫外交联固定RNA在膜上。以OsRG1基因片段合成同位素探针,对膜进行杂交分析。Northern杂交结果证明OsRG1在害虫为害早期就开始诱导表达,并且持续相当长的时间(图3)。
3.构建含OsRG1基因水稻遗传转化载体(图5)。构建的表达载体以电击法转化农杆菌,获得含有表达载体的工程农杆菌,以本实验成熟的农杆菌转基因方法侵染水稻愈伤,愈伤经抗性筛选后获得整合了目的基因的愈伤组织,再经分化培养基和生根培养基中培养,获得含OsRG1基因转基因水稻。对水稻植株进行观察未发现植株生理缺陷,能获得正常世代。生物测定试验表明,稻飞虱成虫含OsRG1基因水稻上的产卵量明显减少,如图6A和B。稻飞虱抗性实验表明含OsRG1基因水稻长势明显优于对照水稻,接稻飞虱在16天后对照水稻基本枯死,而含OsRG1基因水稻水稻仅外面的叶片枯黄(图7)。
下面结合具体实施例,进一步阐述本发明。应理解,这些实施例仅用于说明本发明而不用于限制本发明范围。
实施例1、OsRG1 cDNA片段的获得
1)水稻茎杆RNA的提取、质量检测及总cDNA第一链合成;
2)从总cDNA第一连中以聚合酶链式反应(PCR)合成OsRG1 cDNA片段
上游引物:5’-ATCAGGATTTGAGAGAG-3’
下游引物:5’-ATTCTTGGATTCTATAAAGACCTA-3’
PCR扩增条件:95℃×3min→(98℃×10sec→68℃×1min)×30循环→72℃×1Omin,得到特异PCR扩增产物见附图1。
3)pMD-19-OsRG1克隆载体构建及基因碱基解析
PCR产物通过T克隆入Takara公司pMD-19载体获得pMD-19-OsRG1载体,并通过CaCl2法转入TG1大肠杆菌。pMD-19-OsRG1经EcoRI和PstI酶切鉴定(图2)后,将含pMD-19-OsRG1载体的TG1菌液送上海生物工程有限公司测序。用软件Chromas和Contig对测序进行拼接获得序列表中的序列SEQ ID No.1。将此cDNA的基因命名为OsRG1。
实施例2、OsRG1基因表达谱分析-Northern杂交
将各种材料的总RNA荧光法定量后,取10μg各个样品在1.0%的琼脂糖凝胶上75V电压电泳60min,在GENE凝胶成像仪成像后,浸泡于0.05M的NaOH中25min,用DEPC处理的ddH20淋洗3-4次,放入10倍体积的20×SSC中,温和摇动45min。
用向上毛细管转移法,使RNA吸附在带正电的尼龙膜上,经UV交联仪交联后,80℃烘烤120min固定。
探针标记:按Prime-a-Gene Label ing Syntem(Promega)试剂盒说明书进行。RPH1基因DNA模板25ng,经95-100℃水浴变性5min,立即放冰上冷却,按表1要求加入相应的试剂,加入同位素的操作需在有机屏挡板后进行。25℃反应60min后,95-100℃变性5min,冰上放置5min,备用。
表1探针标记反应体系
  组分  体积(μl)   终浓度
  模板DNA   10   500ng/ml
  5×buffer   10   1×
  dNTP   2   20uM
  BSA   2   400ug/ml
  [α-32P]d CTP   2.5   333nM
  DNA Polymerase   1   100U/ml
  H2O   22.5
  Tatol   50
预杂交和杂交:杂交膜在0.25M磷酸缓冲液(pH7.2)缓冲液中润湿,放入杂交管,加入10ml的预杂交液(0.5M pH7.2磷酸缓冲液;0.5M pH8.0EDTA;20%SDS;0.1g BSA),在杂交炉中62-65℃预杂交1-4小时。加入OsRG1同位素探针,65℃杂交12-18小时。倒去杂交液,杂交膜在Wash solution I(1×SSPE,0.5%SDS(W/V))室温洗脱2次,每次5min;在Wash solution II(O.2×SSPE,0.1%SDS(W/V))65℃洗2次,每次15min。杂交膜用吸水纸吸干后,用保鲜膜包裹,平整放入磷屏。压屏2小时后在台风扫描仪成像。
实施例3、OsRG1基因抗虫功能研究
1)设计正向和反向引物,PCR扩增出第89到第627的长624个碱基的DNA片段OsRG1基因全编码序列。
2)以DNA亚克隆方法OsRG1基因插入到pCAMBIA1300,获得含OsRG1基因的表达载体p1300-OsRG1。
3)将p1300-OsRG1,以电击法转入农杆菌EHA105,获得农杆菌工程细胞系。以农杆菌转染法侵染水稻愈伤组织,共侵染水稻愈伤在含有潮霉素的NBDS培养基上培养,第1次筛选20天。当新的抗性愈伤长出后,将抗性愈伤从母体上剥离,转入新的筛选培养基NBDS2,一个抗性愈伤即为一个株系。抗性愈伤经继代扩繁后,在预分化培养基MS-PG上,26-28℃、避光,培养7-10天;然后,转入分化培养基MS-RG,16h光照、26-28℃培养2-3周,愈伤先转绿后分化出T0代植株。
4)T0代转基因植株获得的T1代种子,经含潮霉素的培养基筛选,去除未含有OsRG1的植株,并单株种植。收获T2代种子,对每个单株的种子进行鉴定。获得转OsRG1基因的纯合品系,用于后面的生物学功能分析。
5)转基因品系和非转基因水稻都进行害虫为害试验,比较稻飞虱雌成虫产卵量、选择性等指标,分析OsRG1的在抗稻飞虱中的作用。
实施例4、OsRG1基因在水稻抗虫育种中的应用
1)以实施例3获得的转OsRG1基因的纯合品系水稻为材料,分析OsRG1基因在水稻抗虫育种中的应用。
2)稻飞虱分别危害转基因苗与对照苗,16天后对照水稻基本枯死,而含OsRG1基因水稻水稻仅外面的叶片枯黄(图7)。可见OsRG1基因可以很好的应用于抗稻飞虱的水稻抗虫育种。
Figure ISA00000171801300011

Claims (4)

1.一种抗虫基因OsRG1,其特征在于,它的DNA序列如SEQ ID No.1所示。
2.一种权利要求1所述抗虫基因OsRG1的编码蛋白,其特征在于,它的氨基酸序列如SEQ ID No.2所示。
3.一种权利要求1所述抗虫基因OsRG1在转基因水稻中的应用。
4.一种权利要求1所述抗虫基因OsRG1在水稻育种中的应用。
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