CN101870962A - 藏羚羊皮肤成纤维细胞系的构建方法 - Google Patents

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本发明涉及一种藏羚羊皮肤成纤维细胞系的构建方法,该方法包括以下步骤:(1)采样;(2)藏羚羊耳部皮肤组织原代培养;(3)传代与纯化;(4)细胞冻存;(5)细胞复苏。本发明通过建立原代培养、细胞传代、细胞冻存与复苏的方法,获得了高活力藏羚羊成纤维细胞系,为深入开展藏羚羊分子生物学及细胞生物学的相关研究提供了研究材料与技术支持。

Description

藏羚羊皮肤成纤维细胞系的构建方法
技术领域
本发明涉及一种成纤维细胞的培养,尤其涉及藏羚羊皮肤成纤维细胞系的构建方法。
背景技术
藏羚羊(Pantholops hodgsoni)隶属于偶蹄目牛科山羊亚科藏羚属,青藏高原特有物种,属国家一级保护动物和《濒危野生动植物种国际贸易公约》(CITES)中严禁进行贸易活动的濒危动物,主要分布在中国境内的青海、西藏、新疆三省的高寒荒漠化草原、高寒草原和高寒草甸地区,平均生活在海拔4100~5500m之间恶劣的环境中。由于环境因素导致深入研究藏羚羊存在着很大困难,目前关于藏羚羊的研究主要以宏观动物学研究为主,包括:动物行为、种群分布、个体生物学、系统发生学、寄生虫、疾病的诊断和治疗、羊绒的物理和化学性质等。关于藏羚羊分子生物学和细胞生物学的研究较少。鉴于此,建立藏羚羊细胞系以解决研究材料的问题十分必要。
细胞培养技术是生命科学研究领域的重要研究技术。现代生物技术中无论是基因治疗、干细胞、动物克隆都以细胞为载体进行。细胞的生长需要一定的营养环境,用于维持细胞生长的营养基质称为培养基。目前商品化的常用培养基包括MEM培养基系列、DMEM培养基系列、RPMI-1640培养基系列、199培养基系列、水解乳蛋白细胞培养基、F10、F12细胞培养基系列等。在众多培养基中,哪种培养基可以培养藏羚羊皮肤成纤维细胞以及建立藏羚羊皮肤成纤维细胞系的具体方法没有详细报道。
发明内容
本发明所要解决的技术问题是提供一种获得藏羚羊皮肤成纤维细胞、为开展藏羚羊分子生物学和细胞生物学的相关研究提供研究材料的藏羚羊皮肤成纤维细胞系的构建方法。
为解决上述问题,本发明所述的一种藏羚羊皮肤成纤维细胞系的构建方法,包括以下步骤:
(1)采样:从雌性成年藏羚羊个体的耳部取1cm2皮肤组织,并将其放入装有贮存液的离心管中;
(2)藏羚羊耳部皮肤组织原代培养:将所述步骤(1)所得的藏羚羊耳部皮肤组织依次经含有双抗的杜氏磷酸缓冲液(D-PBS)浸洗、含有双抗的D/F12培养液冲洗后,将样本组织块放入35mm培养皿中,剪碎;然后用吸管将碎组织块移入预先用胎牛血清涂布的培养瓶中,均匀地摆放于培养瓶底部;最后将培养瓶倒置放在饱和湿度二氧化碳培养箱中,3h后翻转培养瓶,加入3~5mL D/F12培养液继续培养10~18天,得到生长至80%~90%汇合的原代细胞;
(3)传代与纯化:将所述步骤(2)所得的原代细胞进行传代培养;首先将原代细胞用磷酸盐缓冲液(PBS)清洗,再用1~2mL含0.05%胰蛋白酶和0.01%乙二胺四乙酸(EDTA)的混合液消化,得到消化液A;然后将所述消化液A放入饱和湿度二氧化碳培养箱2~3min,取出,加入与消化液A等量的D/F12培养液终止消化,得到消化液B;将所述消化液B经离心、去上清液后,得到细胞沉淀物A;用D/F12培养液将所述细胞沉淀物A传入另一个培养瓶中,在37.5℃、含5%CO2的饱和湿度二氧化碳培养箱中继续培养3~6天,得到生长至80%~90%汇合的皮肤成纤维细胞;
(4)细胞冻存:将所述步骤(3)所得的皮肤成纤维细胞用1~2mL含0.05%胰蛋白酶和0.01%乙二胺四乙酸(EDTA)的混合液消化,离心后加入细胞冻存液混匀,先在4℃保存半小时,然后在-70℃冰箱中过夜,最后直接投入液氮保存,得到冻存皮肤成纤维细胞;
(5)细胞复苏:将所述步骤(4)所得的冻存皮肤成纤维细胞放入37℃水浴中融化,吸出细胞悬液,用9倍所述细胞悬液体积的D/F12培养液进行洗涤,经离心、去上清后,得到细胞沉淀物B;用D/F12培养液充分悬浮细胞沉淀物B,并接种于培养瓶中,置于饱和湿度二氧化碳培养箱中培养即可。
所述步骤(1)中的贮存液为加入双抗的T20;所述加入双抗的T20是由占总溶液体积的20%的胎牛血清(FBS)和80%的含10mM羟乙基哌嗪乙磺酸的TCM199基础培养液组成,并在配置后加入双抗,然后用NaOH调节pH值至7.2~7.4的溶液。
所述步骤(2)中的杜氏磷酸缓冲液是由0.8g/100mL的NaCl、0.0203g/100mL的KCl、0.1152g/100mL的Na2HPO4、0.0203g/100mL的KH2PO4、0.0134g/100mL的CaCl2·2H2O、0.01g/100mL的MgCl2·6H2O、0.0036g/100mL的丙酮酸钠、0.0075g/100mL的青霉素、0.005g/100mL的链霉素和0.1g/100mL的葡萄糖组成。
所述步骤(2)、(3)和(5)中的D/F12培养液均是由占总培养液体积的10%的胎牛血清(FBS)、90%的D/F12和双抗组成。
所述步骤(3)中的磷酸盐缓冲液是由0.8g/100mL的NaCl、0.02g/100mL的KCl、0.115g/100mL的Na2HPO4和0.02g/100mL的KH2PO4组成。
所述步骤(4)中的冻存液是由占总溶液体积的20%的胎牛血清(FBS)、10%的二甲基亚砜(DMSO)、70%的D/F12和双抗组成。
所述步骤(2)、(3)和(5)中的饱和湿度二氧化碳培养箱是指温度为37.5℃、含5%CO2的饱和湿度空气的二氧化碳培养箱。
所述双抗是指75μg/mL的青霉素和100μg/mL的链霉素。
本发明与现有技术相比具有以下优点:
1、本发明通过建立藏羚羊皮肤成纤维细胞的培养方法获得藏羚羊皮肤成纤维细胞,为开展藏羚羊分子生物学和细胞生物学的相关研究提供了研究材料。
2、本发明在进行组织块帖壁法原代培养时,通过预先对培养瓶底壁涂布血清和倒置培养3h,有效地避免了组织块在培养液中脱离底壁浮起,有效地提高了组织块成活率。
3、本发明采用了组织块帖壁法进行原代培养,与酶消化法相比,所获得的成纤维细胞较好的保持了原有组织细胞的特性,而避免了酶消化对细胞表面蛋白质的破坏以及对细胞特性的改变(参见图1)。
4、本发明利用皮肤成纤维细胞对消化液较上皮细胞敏感的原理,控制合适的消化时间便可使成纤维细胞脱壁,而上皮细胞因脱壁较慢仍贴在培养瓶壁上,因此,只需经过几次传代就可以得到纯化的皮肤成纤维细胞(参见图2)。
附图说明
下面结合附图对本发明的具体实施方式作进一步详细的说明。
图1为本发明藏羚羊耳部皮肤组织经培养前消毒处理及剔除毛发处理后,采用组织块贴壁培养法进行原代培养,经10天培养组织块周围有成纤维细胞游出,环绕于组织块周围。
图2为本发明原代培养的皮肤细胞经过2~3次传代以后得到的较纯的成纤维细胞,成纤维细胞呈梭型。
具体实施方式
材料:本实验所用耳部皮肤组织供体为患有严重脑包虫病的雌性成年藏羚羊个体。藏羚羊为我课题组经国家林业局批准的人工驯养藏羚羊。
试剂:
杜氏磷酸缓冲液(D-PBS)是由0.8g/100mL的NaCl、0.0203g/100mL的KCl、0.1152g/100mL的Na2HPO4、0.0203g/100mL的KH2PO4、0.0134g/100mL的CaCl2·2H2O、0.01g/100mL的MgCl2·6H2O、0.0036g/100mL的丙酮酸钠、0.0075g/100mL的青霉素、0.005g/100mL的链霉素和0.1g/100mL的葡萄糖组成。
贮存液为加入双抗的T20;所述加入双抗的T20是由占总溶液体积的20%的胎牛血清(FBS)和80%的含10mM羟乙基哌嗪乙磺酸的TCM199基础培养液组成,并在配置后加入双抗,然后用NaOH调节pH值至7.2~7.4的溶液。
D/F12培养液均是由占总培养液体积的10%的胎牛血清(FBS)、90%的D/F12和双抗组成。
磷酸盐缓冲液(PBS)是由0.8g/100mL的NaCl、0.02g/100mL的KCl、0.115g/100mL的Na2HPO4和0.02g/100mL的KH2PO4组成。
冻存液是由占总溶液体积的20%的胎牛血清(FBS)、10%的二甲基亚砜(DMSO)、70%的D/F12和双抗组成。
双抗是指75μg/mL的青霉素和100μg/mL的链霉素。
一种藏羚羊皮肤成纤维细胞系的构建方法,包括以下步骤:
(1)采样:取样时,先用灭菌的剪刀剪掉雌性成年藏羚羊个体的耳部毛发,再用剃须刀片尽可能的剔除残留的发根。然后用香皂、蒸馏水、新洁尔灭、生理盐水、75%酒精、D-PBS依次清洗,最后剪取1cm2皮肤组织,并将其放入已装有贮存液的50mL离心管中。
(2)藏羚羊耳部皮肤组织原代培养:将步骤(1)所得的藏羚羊耳部皮肤组织用含有双抗的D-PBS浸洗5次,每次浸泡3min;再用含有双抗的D/F12培养液冲洗3遍后,将样本组织块放入35mm培养皿中,用剪刀尽量将组织块剪碎;然后用吸管将碎组织块移入预先用胎牛血清涂布的培养瓶中,均匀地摆放于培养瓶底部;最后将培养瓶慢慢翻转,倒置放在饱和湿度二氧化碳培养箱中,3h后轻轻翻转培养瓶,加入3~5mL D/F12培养液继续培养10~18天,得到生长至80%~90%汇合的原代细胞。
(3)传代与纯化:将步骤(2)所得的原代细胞进行传代培养;首先将原代细胞用无Ca2+、Mg2+的PBS清洗2次,再用1~2mL含0.05%胰蛋白酶和0.01%乙二胺四乙酸(EDTA)的混合液消化,得到消化液A(消化液A以铺满培养瓶底为宜);将消化液A放入饱和湿度二氧化碳培养箱2~3min,取出,在显微镜下观察消化情况,轻轻敲打底部,然后加入与消化液A等量的D/F12培养液终止消化,得到消化液B;将消化液B转移至离心管中以1000转/分钟离心5min,去上清液后,得到细胞沉淀物A;用D/F12培养液将细胞沉淀物A轻轻混匀,传入另一个培养瓶中,在饱和湿度二氧化碳培养箱中继续培养3~6天,得到生长至80%~90%汇合的皮肤成纤维细胞,该皮肤成纤维细胞呈梭型(参见图2)。
(4)细胞冻存:将步骤(3)所得的皮肤成纤维细胞用1~2mL含0.05%胰蛋白酶和0.01%乙二胺四乙酸(EDTA)的混合液消化,离心后加入细胞冻存液混匀,先在4℃保存半小时,然后将细胞冻存盒直接放入-70℃冰箱中过夜,最后直接投入液氮保存,得到冻存皮肤成纤维细胞。
(5)细胞复苏:将步骤(4)所得的装有冻存皮肤成纤维细胞的冻存管从液氮中取出,迅速放入37℃水浴中融化,吸出细胞悬液放于15mL离心管中,用9倍所述细胞悬液体积的D/F12培养液进行洗涤后,以1000转/分钟离心5min,去上清后,得到细胞沉淀物B;用D/F12培养液充分悬浮细胞沉淀物B,并接种于培养瓶中,置于饱和湿度二氧化碳培养箱中培养即可。
上述步骤(2)、(3)和(5)中的饱和湿度二氧化碳培养箱是指温度为37.5℃、含5%CO2的饱和湿度空气的二氧化碳培养箱。

Claims (8)

1.一种藏羚羊皮肤成纤维细胞系的构建方法,包括以下步骤:
(1)采样:从雌性成年藏羚羊个体的耳部取1cm2皮肤组织,并将其放入装有贮存液的离心管中;
(2)藏羚羊耳部皮肤组织原代培养:将所述步骤(1)所得的藏羚羊耳部皮肤组织依次经含有双抗的杜氏磷酸缓冲液浸洗、含有双抗的D/F12培养液冲洗后,将样本组织块放入35mm培养皿中,剪碎;然后用吸管将碎组织块移入预先用胎牛血清涂布的培养瓶中,均匀地摆放于培养瓶底部;最后将培养瓶倒置放在饱和湿度二氧化碳培养箱中,3h后翻转培养瓶,加入3~5mL D/F12培养液继续培养10~18天,得到生长至80%~90%汇合的原代细胞;
(3)传代与纯化:将所述步骤(2)所得的原代细胞进行传代培养;首先将原代细胞用磷酸盐缓冲液清洗,再用1~2mL含0.05%胰蛋白酶和0.01%乙二胺四乙酸的混合液消化,得到消化液A;然后将所述消化液A放入饱和湿度二氧化碳培养箱2~3min,取出,加入与消化液A等量的D/F12培养液终止消化,得到消化液B;将所述消化液B经离心、去上清液后,得到细胞沉淀物A;用D/F12培养液将所述细胞沉淀物A传入另一个培养瓶中,在37.5℃、含5%CO2的饱和湿度二氧化碳培养箱中继续培养3~6天,得到生长至80%~90%汇合的皮肤成纤维细胞;
(4)细胞冻存:将所述步骤(3)所得的皮肤成纤维细胞用1~2mL含0.05%胰蛋白酶和0.01%乙二胺四乙酸的混合液消化,离心后加入细胞冻存液混匀,先在4℃保存半小时,然后在-70℃冰箱中过夜,最后直接投入液氮保存,得到冻存皮肤成纤维细胞;
(5)细胞复苏:将所述步骤(4)所得的冻存皮肤成纤维细胞放入37℃水浴中融化,吸出细胞悬液,用9倍所述细胞悬液体积的D/F12培养液进行洗涤,经离心、去上清后,得到细胞沉淀物B;用D/F12培养液充分悬浮细胞沉淀物B,并接种于培养瓶中,置于饱和湿度二氧化碳培养箱中培养即可。
2.如权利要求1所述的藏羚羊皮肤成纤维细胞系的构建方法,其特征在于:所述步骤(1)中的贮存液为加入双抗的T20;所述加入双抗的T20是由占总溶液体积的20%的胎牛血清和80%的含10mM羟乙基哌嗪乙磺酸的TCM199基础培养液组成,并在配置后加入双抗,然后用NaOH调节pH值至7.2~7.4的溶液。
3.如权利要求1所述的藏羚羊皮肤成纤维细胞系的构建方法,其特征在于:所述步骤(2)中的杜氏磷酸缓冲液是由0.8g/100mL的NaCl、0.0203g/100mL的KCl、0.1152g/100mL的Na2HPO4、0.0203g/100mL的KH2PO4、0.0134g/100mL的CaCl2·2H2O、0.01g/100mL的MgCl2·6H2O、0.0036g/100mL的丙酮酸钠、0.0075g/100mL的青霉素、0.005g/100mL的链霉素和0.1g/100mL的葡萄糖组成。
4.如权利要求1所述的藏羚羊皮肤成纤维细胞系的构建方法,其特征在于:所述步骤(2)、(3)和(5)中的D/F12培养液均是由占总培养液体积的10%的胎牛血清、90%的D/F12和双抗组成。
5.如权利要求1所述的藏羚羊皮肤成纤维细胞系的构建方法,其特征在于:所述步骤(3)中的磷酸盐缓冲液是由0.8g/100mL的NaCl、0.02g/100mL的KCl、0.115g/100mL的Na2HPO4和0.02g/100mL的KH2PO4组成。
6.如权利要求1所述的藏羚羊皮肤成纤维细胞系的构建方法,其特征在于:所述步骤(4)中的冻存液是由占总溶液体积的20%的胎牛血清、10%的二甲基亚砜、70%的D/F12和双抗组成。
7.如权利要求1所述的藏羚羊皮肤成纤维细胞系的构建方法,其特征在于:所述步骤(2)、(3)和(5)中的饱和湿度二氧化碳培养箱是指温度为37.5℃、含5%CO2的饱和湿度空气的二氧化碳培养箱。
8.如权利要求1所述的藏羚羊皮肤成纤维细胞系的构建方法,其特征在于:所述双抗是指75μg/mL的青霉素和100μg/mL的链霉素。
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Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102719394A (zh) * 2012-06-20 2012-10-10 山东农业大学 山羊真皮成纤维细胞系的构建方法
CN103004752A (zh) * 2013-01-18 2013-04-03 江西省科星生物工程有限公司 以海藻糖为原料的皮肤保存液及制备方法和皮肤保存方法
CN104673743A (zh) * 2015-02-13 2015-06-03 中国人民解放军第二军医大学 一种从动物组织中获得原代细胞的组织块培养方法
CN105010307A (zh) * 2015-07-08 2015-11-04 中国检验检疫科学研究院 一种肝原代细胞的冻存液及其冻存复苏方法
CN109468271A (zh) * 2018-12-28 2019-03-15 广州暨大美塑生物科技有限公司 一种皮肤组织来源成纤维细胞快速分离培养方法
CN115161269A (zh) * 2022-07-07 2022-10-11 石家庄市农林科学研究院 一种乌苏里貉成纤维细胞的分离培养方法

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101033462A (zh) * 2006-03-10 2007-09-12 上海国睿生命科技有限公司 一种真皮成纤维样细胞的培养和用途
CN101619322A (zh) * 2008-07-01 2010-01-06 重庆宗申军辉生物技术有限公司 皮肤组织工程种子细胞及构建方法、腺病毒载体及用途

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101033462A (zh) * 2006-03-10 2007-09-12 上海国睿生命科技有限公司 一种真皮成纤维样细胞的培养和用途
CN101619322A (zh) * 2008-07-01 2010-01-06 重庆宗申军辉生物技术有限公司 皮肤组织工程种子细胞及构建方法、腺病毒载体及用途

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
《广东医学》 20081210 刘爱军等 人皮肤成纤维细胞的高效分离培养及鉴定 1969-1970 1-8 第29卷, 第12期 2 *
《潍坊医学院学报》 20041230 孙文娟等 人皮肤角质形成细胞和成纤维细胞的原代培养和鉴定的实验研究 401-403 1-8 第26卷, 第06期 2 *
《草食家畜》 20050625 王端明等 牛皮肤成纤维细胞体外培养系统的建立 22-24 1-8 , 第02期 2 *

Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102719394A (zh) * 2012-06-20 2012-10-10 山东农业大学 山羊真皮成纤维细胞系的构建方法
CN103004752A (zh) * 2013-01-18 2013-04-03 江西省科星生物工程有限公司 以海藻糖为原料的皮肤保存液及制备方法和皮肤保存方法
CN104673743A (zh) * 2015-02-13 2015-06-03 中国人民解放军第二军医大学 一种从动物组织中获得原代细胞的组织块培养方法
CN105010307A (zh) * 2015-07-08 2015-11-04 中国检验检疫科学研究院 一种肝原代细胞的冻存液及其冻存复苏方法
CN109468271A (zh) * 2018-12-28 2019-03-15 广州暨大美塑生物科技有限公司 一种皮肤组织来源成纤维细胞快速分离培养方法
CN115161269A (zh) * 2022-07-07 2022-10-11 石家庄市农林科学研究院 一种乌苏里貉成纤维细胞的分离培养方法

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